JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu yöntem interpozisyonu ven greft tavşanların yerleşimini, greft iletim ve dayanıklı transgene ifade ulaşılmasına anlatılmaktadır. Bu soruşturma transgenes ve protein ürünlerini aşılı damarlarında fizyolojik ve patolojik rolleri ve gen terapileri ven greft hastalığı için test sağlar.

Özet

Ven greft bypass cerrahisi tıkayıcı damar hastalığı için ortak bir tedavidir; Ancak, uzun vadeli başarı greft hatası nedeniyle kan pıhtılaşması, intimal hiperplazi ve ateroskleroz ile sınırlıdır. Bu makalenin amacı iki taraflı venöz interpozisyonu Greftler giyen bir tavşan..... yerleştirerek, sonra Greftler dayanıklı transgene ifade elde bir gen transferi vektör ile transducing bir yöntem göstermektir. Yöntemi normal ven greft homeostazı, genler ve protein ürünleri biyolojik rollerinin incelenmesi sağlar. Ayrıca transgenes ven greft başarısızlık, e.gengelleyebilir faaliyetleri için test sağlar., ister bir transgene ifade neointimal büyüme engeller, damar iltihabı azaltır veya ateroskleroz tavşanların azaltır beslenen yüksek yağlı diyet ile. Bir ilk hayatta kalma ameliyat sırasında sağ ve sol dış juguler ven parçalarını çıkardım ve bilateral ters uç-yan ortak karotid arter interpozisyonu greft yerleştirilir. 28 gün sonra gerçekleştirilen ikinci bir hayatta kalma ameliyat sırasında her greft dolaşımı damar klipleri ile yalıtılmış ve lümen (bir arteriotomy) yardımcı bağlı adenoviral (HDAd) vektör içeren bir çözüm ile doldurulur. 20-min kuluçka sonra vektör çözüm emişli, arteriotomy tamir ve akış geri yüklenir. Damarları bireysel deneysel iletişim kuralları tarafından dikte zaman noktalarda hasat. Greft yerleştirme ve iletim arasında 28 günlük gecikmeye arteriyel dolaşımı için ven greft adaptasyon sağlamak gereklidir. Bu adaptasyon hızlı önce veya hemen sonra aşılama transduced ven greft oluşur transgene ifade kaybı önler. Sağlam, dayanıklı transgene ifade aşılı damarlarında elde etmek için onun yetenek benzersiz bir yöntemdir. Diğer büyük hayvan ven greft modellerle karşılaştırıldığında, tavşan düşük maliyetli ve kolay kullanım avantajları var. Kemirgen ven greft modellerle karşılaştırıldığında, tavşan bol doku analizi için sağlamak daha büyük ve daha kolay manipüle kan damarları var.

Giriş

Ateroskleroz lipid birikimi ve damar duvarındaki inflamasyon gemi lümen, kalp krizi, felç ve bacaklarda1,2kaybı daralma için kurşun Kronik iltihabi bir hastalıktır. Perkütan girişimler (Örn., anjiyoplasti ve stent uygulamaları) ve medikal tedavi (e.g., Statinler ve antiplatelet ajanlar) yararlı tedaviler için ateroskleroz; Ancak, koroner ve periferik dolaşımları ciddi obstrüktif hastalık her iki tedavisinde etkisiz çoğu zaman. Bypass greftleme, otojen damar parçalar, kullanarak şiddetli, diffüz koroner ve periferik damar hastalığı3,4olan hastalar tedavi için ortak bir yordam kalır. Ancak, her iki koroner yerleştirilen Greftler damar ve periferik dolaşımları zavallı uzun vadeli açıklık oranlarına sahip. Koroner dolaşım ven greft 1 yıl ve % 50 tıkandı yaklaşık % 10-20 10 yıl5,6tarafından tıkandı. Periferik dolaşım ven greft başarısızlık oranları 30-%50 5 yıl7de vardır.

Tam yerinde hastalığın bir tedavi gen ürünü teslim edebilirsiniz çünkü gen tedavisi damar grefti başarısızlık önlenmesi için çekici bir yaklaşımdır. Buna göre çok sayıda preklinik çalışmaları ven greft gen terapisi8,9test ettik. Ancak, aslında tüm bu çalışmaların erken zaman puan (2-12 hafta)10,11,12,13,14,15, etkinliğini inceledik 16 , 17. gen tedavisi müdahalelerin dayanıklı sağlayabilir bulgusuna farkındayız genellikle sonuçlar neointimal hiperplazi ve ateroskleroz4geç ven greft hatalarına karşı koruma (yıl). Aşılı damarlarında dayanıklı transgene ifade sağlar ve böylece gen tedavisi müdahalelerin geç gibi erken zaman noktalarda test sağlayan bir yöntem geliştirdik. Dayanıklı transgene ifade elde etmek için HDAd vektörler ve Gecikmeli İletim strateji yöntem içermektedir. HDAd vektörel çizimler sağlamak uzun süreli transgene ifade onlar viral genler tarafından bağışıklık sistemi18,19,transduced hücre tanıma (ve ret)20, önlenmesi, eksikliği nedeniyle 21. Ertelenen iletim (greft yerleştirme sonrası gerçekleştirilen 28 gün) erken aşılama22sonra oluşan arterialization işlemi sırasında transduced hücrelerinin kaybı önler.

Ven greft iletim greft yerleştirme10,11,12,15,16 zamanında tedavi transgene ifade ven greft duvardaki ulaşmak diğer yöntemleri itimat ,17. Seri olarak ölçülen zaman transgene ifade bu yaklaşım kullanarak hızlı bir şekilde iletim22,23sonra azalır. Buna göre bu yaklaşımı kullanarak çalışmalar ven, etkinlik 4 hafta ötesinde değerlendirilmesi ile en değil bir aşılama sonra 12 hafta ötesinde etkinliğini inceleyen değil. Buna ek olarak, bizim Yöntem damar grefti elde stably en az 24 hafta boyunca ve arterler büyük olasılıkla gerçekleştirilen benzer çalışmalar üzerinde tabanlı devam ederse transgene ifade devam ediyor uzun süre22,24. Biz kararlı transgene ifade, bu süre elde hiçbir diğer damar grefti gen terapisi müdahalesi farkındayız.

Bir tavşan modeli bizim yöntem geliştirmek için kullanılır. Diğerleri kemirgenler, tavşan, kullanmış ya da damar sınamak için daha büyük hayvanlar gen terapisi10,11,12,15,16,17,25grefti, 26. Kemirgen modellerle karşılaştırıldığında, adatavşanı are daha pahalı ve daha sıkı düzenleyici gereksinimlerine tabidir. Ancak, daha büyük hayvanlar için karşılaştırıldığında (Örn., domuzlar ve köpekler), adatavşanı are çok daha az pahalı satın almak ve ev ve işlemek daha kolay. Ayrıca, insan damarlarının fizyolojik tavşan damarları benzer27, onlar yeterince büyük perkütan girişimler28,29test etmek için kullanılabilir ve bu yeterli doku sağlar birden çok uç nokta (Örn., histoloji, protein, RNA) bir tek damar numune22,30kullanılarak incelenebilir. Ven greft tavşanlarla yüksek yağlı diyet ile beslenir, buna ek olarak, onlar ven greft ateroskleroz31,32, koroner arter bypass ven greft başarısızlık4,5 ortak bir neden olan geliştirmek . Bu aterosklerotik tavşan ven greft gen terapisi müdahaleler bu yöntemle teslim test etmek için bir substrat olarak hizmet verebilir. Sağlanan Protokolü tavşan ven greft dayanıklı transgene ifade ulaşmak için gerekli teknik becerileri Master müfettişler yardımcı olabilir.

Protokol

Tüm hayvan iletişim kuralları ve çalışmalar Washington Office hayvan refah üniversite tarafından kabul edildi.

1. işlem öncesi (için tüm ameliyatları)

  1. Paraspinous kaslar kas içi enjeksiyon (IM) tarafından 30 mg/kg ketamin ve 1.5 mg/kg xylazine tavşanına anestezi.
    Not: Yiyecek ve su ameliyattan önce sınırlı değildir.
  2. Anestezi yeterli derinlik için beklerken, hazırlık odası ve ameliyathane (OR) tablolarda ayarlayın.
    1. Tavşan boyun ve kulak (sadece hayatta kalma cerrahi) intravenöz (IV) liman yerleşimini tıraş için hazırlık odasını hazırlayın. Oftalmik merhem, fentanil yama (hayatta kalma cerrahi), saç kesme makineleri, alkol hazırlık pad, ¾" kateter, enjeksiyon liman ve cerrahi bant x 24-G hazırlık masaya koyun.
    2. Ameliyathanede, izleme ekipmanları ayarla ve problar (elektrokardiyogram (EKG), Nabız oksimetri (SpO2) ve sıcaklık) ilişkili. IV pompa 100 mL serum fizyolojik IV çantalı bir 18-G veya 19-G iğne ile hazırlamak ve akış hızı 10 mL/h ayarla/kg (sadece hayatta kalma cerrahi). Oksijen ve isoflurane ekipman ile bir nosecone (damar grefti veya hasat ameliyatları) ayarlayın.
      1. Nosecone tavşan için güvenli hale getirmek için gaz nosecone için malzemeleri tüp etrafında bir gazlı bez şerit döngü. Bu döngü nereye nosecone için verdiği tüp çevreleyen. Gazlı bez şerit ücretsiz biter her ikisi de yaklaşık 45 cm uzun olmalıdır. Nosecone (ile ekli gazlı bez) tablo baş ucuna yerleştirin.
    3. Dolaşımdaki su açmak ve/veya zorla hava ısınma Battaniye OR tablo. Isınma battaniye üzerinde rulo havlu boyun desteği konumlandırın ve elektrokoter dağıtıcı elektrot tabak yerleştirin.
    4. Yerel bir analjezik olarak bir şırınga %2 lidokain HCl 1 mL birleştirmek ve % 0,5 bupivacaine HCl. 1 mL seyreltik virüs istenen konsantrasyonu (HDAd için 2 x 1011 viral parçacıkların/mL al, kullan) steril DMEM ve buz (gen transferi cerrahi sadece) üzerinde tutun.
    5. Yeterli bir anestezik derinlik ulaşıldıktan sonra tavşan ameliyat için hazırlayın.
      Not: yeterli anestezik derinlik sağlamak için pedal çekilme refleks olmaması için Test. Ameliyat boyunca pedal refleks izlemeye devam edin.
      1. Oftalmik merhem tavşan gözler için geçerlidir.
      2. Rektal sıcaklık probu yerleşim için izin vermek için hemen üstünde rektum eldivenli parmağınızla basın ve parmakları tavşan rektum muhbirlik kaldırmak için anüs doğru hareket.
      3. Sternal çentik dan tavşan mandibula kenarına tıraş. IV yerleşim için bir kulak ve fentanil yama yönetim (sadece hayatta kalma cerrahi) için ters kulak traş. SpO2 prob yerleşimini için sol arka orta ayak parmakları tıraş.
    6. Vektör infüzyon ameliyat için tavşan tüp takacağım. 4 mm O.D./3 mm Manşonsuz kimlik Endotrakeal Tüp, bir arthroscope üzerinde dişli kullanın. Tavşan sternal recumbency yerleştirin ve hiper-boyun uzatın. Geniş açık tutmak belgili tanımlık adatavşanı ağız ve glottis ve laryngeal kıvrımlar görselleştirmek için arthroscope kullanın. Sırasında ilham, yavaşça Endotrakeal tüp larinks ve trakea içine yerleştirin.
    7. Hayatta kalma ameliyatlarında yerleştirin ve bir 24-G IV kateter tavşan sol kulak damar içine güvenli ve o bir enjeksiyon portu ile kap. 25 µg/h fentanil yama belgili tanımlık adatavşanı sağ kulak için geçerlidir.
      Not: Belgili tanımlık adatavşanı sağ tarafında konumlandırılmış bir cerrah için iletişim kuralıdır. Cerrah-ecek var olmak belgili tanımlık adatavşanı sol tarafında teller ve cerrah karşısında IV tutmak için bu adımı taraf tersine. Gelecekteki adımları gerektiği şekilde değişelim.
    8. Damar grefti ve hasat ameliyat genel anestezi ile bir nosecone yönetmek; vektör infüzyon ameliyat için genel anestezi Endotrakeal tüp yoluyla yönetmek.
      Not: Entübasyon tüm ameliyatlar için kullanılabilir.  Deneyim, ancak, trakeal ve gırtlak travma komplikasyonlar entübasyon sırasında riskleri entübasyon faydaları daha ağır basar.  Gen transferi için greft (özellikle tavşanlarda kolesterol beslemeli) içeren tek ameliyat cerrahidir hangi entübasyon net bir yarar sağlamak gibi görünüyor.
    9. Tavşan Ameliyathaneye taşırlar. Tavşan sadece tavşan kafası konumlandırılmış boyun destek havlu ile ameliyat masasında sırtüstü pozisyonda yerleştirin. Düz ve yaklaşık yatay kadar yavaşça tavşan boyun uzatmak.
    10. Nosecone (damar grefti ve hasat ameliyatları) tavşan için yer veya Endotrakeal Tüp (vektör infüzyon cerrahi) O2 1 L/dk ile bağlanın ve isoflurane başlatın. Bir nosecone kullanıyorsanız, ekli gazlı bez şeritler çevresinde tavşan boyun destek havlu ucu sarma tarafından güvenli. İsoflurane konsantrasyon (genellikle % 1-2) bir cerrahi anestezi düzeyini korumak için gereken şekilde ayarlayın.
    11. Merkezi elektrokoter dağıtıcı elektrot plaka tavşan geri altında. Rektal sıcaklık probu takın ve SpO2 sonda ve EKG ilan tavşan için geçerlidir.
    12. Serum fizyolojik damar tavşan sol kulakta kateter noktasına bağlanın ve IV infüzyon pompa 10 mL/sa başlatmak/kg. 1 saat sonra 5 mL/h için salin infüzyon hızı azaltmak/kg.
    13. Gevşek tavşan ön ayakları ameliyat masasına için bir kısıtlama bağla.
      Not: İsteğe bağlı olarak, küçük bir plastik masa tavşan tavşan göğüs/karın bölgesinde basarak ve potansiyel olarak gastroözofageal reflü ve aspirasyon neden cerrah önlemek için üzerine yerleştirilebilir.
    14. Subkutan lidokain/bupivacaine (2 mL, 50/50 mix, adım 1.2.4) enjekte (SQ) lokal anestezi için planlanan kesi hattı boyunca boynunda.
    15. Cerrahi dezenfekte yardımcınız olabilir site scrubs KLORHEKSİDİN GLUKONAT ve isopropanol alternatif 3 ile daha sonra site povidone-iyot ile sprey. Cerrah bodur, önlük ve eldiven, aseptik ilkeleri aşağıdaki var.
      1. Hayatta kalma cerrahi aseptik koşullar altında gerçekleştirmek. Steril olmayan tüm öğeleri işlemek ve aseptik steril malzemeler için cerrah geçmek veya aseptik onları bol dökümlü enstrüman masaya koyun yardımcınız olabilir.
      2. Aseptik steril olmayan ekipman mikroskop gibi işlemek için cerrah kullanım steril havlu var. 2 x cerrahi büyüteçler ameliyat ilk yarısında gerçekleştirirken giymek cerrah var.

2. damar grefti cerrahisi (yaşam)

  1. Aletleri ve steril alan hazırlamak.
    1. Steril paketleri (masa örtüsü, bir kağıt örtüsü ve 6 havlu) açın ve aseptik için cerrah ve içeriğini aktarmadan yardımcınız olabilir.
    2. Aracı tablo asmak. Kağıt örtüsü ve steril havlu bol dökümlü aracı tablo üzerine yerleştirin. 4 havlu ile yalnızca cerrahi sitesi boyunda maruz bırakarak tavşan, asmak. Kağıt örtüsü tavşan için yatıyordu. Bir havlu daha sonra kullanılacak olan ve sonuncusu yedeğidir.
    3. Sterilize edilmiş araç paketi açın ve aseptik alet tepsi için cerrah geçmek yardımcınız olabilir. Aletleri aracı tablo üzerinde düzenleyin.
    4. Aşağıdaki donanımları açın ve aseptik o cerrah için geçti veya enstrüman masaya koyun yardımcınız olabilir: bir 1-mL şırınga, bir 3-mL şırınga, bir 20-mL şırınga, bir 21 G iğne, 3-0 Poliglikolik Asit (PGA) dikiş, 5-0 PGA dikiş , 7-0 polipropilen sütür ve bir 24 G IV kateter.
    5. Elektrokoter kablonun bir 7,25" Kantrowitz forseps kullanarak tavşan kapsayan örtüsü için güvenli. Kablosunun fişini ucunu kenarına elektrokoterizasyon birimine bağlı ve Yardımcısı tarafından açık için ameliyat masasının üzerinde bırakın.
    6. Bir serum fizyolojik çanta veya yardımcısı tarafından düzenlenen flakon steril serum fizyolojik ile 20 mL şırıngaya doldur. Bu serum maruz doku dehidratasyon işlemi sırasında önlemek için gerektiği gibi kullanın.
    7. 5000 IU/mL heparin 0.1 mL 5 mL serum fizyolojik çözeltisi, i.eekleyerek 5 mL heparinized fizyolojik tuzlu su çözeltisi hazırlamak., 100 IU heparin/mL, küçük bir cerrahi kase. Bu çözüm karotid arter ve ven greft aşılama işlemi sırasında düzenli olarak temizlemek için kullanın.
    8. Tavşan boyun cerrahi sitesi üzerinden kağıt örtüsü delik. Kullanım havlu Mengeneler temel havlu yere delik köşe kelepçe.
  2. Vasküler diseksiyon
    Not: 2 x cerrahi büyüteçler ameliyat bu bölümü ile yardım etmek için kullanın.
    1. Sternal çentik ve alt çene (yaklaşık 7-9 cm uzunluğunda) arasında orta çizgi boyunca elektrokoter ile deriyi kesme ve tavşan boyun deri için havlu havlu Mengeneler ile kelepçe. Kaudal sonunda şerit elektrokoter ile ile kısa bir yanal kesme yapmak. Açık açık büyük makas kullanarak tüm orta çizgi boyunca fasya altında incelemek. Elektrokoter ile orta çizgi boyunca disseke Fasial katman kesti.
    2. Sağ taraftaki başlatın. Trakea örten sternohyoid kas ve ortak şah damarı ortaya çıkarmak için V şekilli sternocephalic kas arasında incelemek.
    3. 4-5 cm kesimini de ortak şah damarı dikkatle incelemek ve dokuları çevreleyen büyük dalları (genellikle yan başına 1-2) ücretsiz. Faringeal sinir geçiş için proksimale boyun tabanından diseksiyon klemple genişletir. Kullanım cerrahi silikon döngüler karotid arter geri çekilmesi diseksiyon sırasında yardımcı olmak. 5-0 ipek sütür ile ortak karotid arter büyük dalları her dal klemple kesmeden önce ligate.
      Not: ortak karotid arter veya arter üzerinde çapraz daha küçük sinirler paralellikler vagus siniri bozmamaya dikkat.
    4. Diseksiyon (adım 2.2.3) sol tarafında yineleyin.
    5. Doku-holding forseps subkutan doku katmanı geçici olarak kapatmak için kullanın. Dış juguler ven maruz kadar sağ tarafında deriden yüzeysel fasya incelemek. 4-5 cm kesimini de dış juguler ven teşrih ve şubeleri şube kesmeden önce küçük dalları 5-0 ipek sütür ile birleştirilmesi (ligasyon) çevreleyen doku üzerinden ücretsiz.
    6. Diseksiyon (adım 2.2.5) sol tarafında yineleyin.
    7. Heparin (150 IU/kg) IV kateter enjekte ve 10 mL serum fizyolojik ile yıkayın.
    8. Dış juguler ven sağ tarafta 3 cm segmentinin ölçmek ve kaudal sonuna 5-0 ipek sütür ile ligate. Damar kan ile doldurmak izin verin ve sonra beyin damar kesiminin sonuna ligate. Kafatası dış juguler ven kesiminin sonuna bölmek, dikkatli bir 24-G IV-kateter bağlı 3-mL şırınga kullanarak heparinized normal salin (100 U/mL) ile gemi floş. Kaudal sonunda ven segment bölün. Ven segment kaudal ve kraniyal biter belirsizliğe yer bırakmadan kimlik olan standart bir konumda yerleştirin.
  3. Damar grefti
    1. Asistan cerrah cerrahi büyüteçler kaldırmak ve cerrahi mikroskop (25 X) yerini ver.
      Not: Cerrah içinde mikroskop steril bir havlu asmak. Bu kısırlık koruyarak mikroskop işlemek cerrah sağlar.
    2. Şu ortak karotid arter her iki ucuna mini-kelepçeler için doldurma, sonra kaudal pensi yerleştirerek arter sağlamak için önce kranyal kelepçe yerleştirerek, izole segment, kelepçe.
    3. Sert kağıt (steril dikiş paketinden kullanılabilir) 1 × 2 cm parçası keser ve pozlama geliştirmek için ortak karotid arter altında yerleştirir.
    4. Bir arteriotomy kaudal pensi (kaudal arteriotomy) sadece kafatası gerçekleştirin. Arteriotomy uzunluğu kafatası sonuna damar çapına eşit olması gerekir. IV kateter aracılığıyla kaudal arteriotomy şırınga takın ve karotid arter lümen heparinized normal salin ile yıkayın.
    5. Kafatası sonuna kaudal arteriotomy 7-0 polipropilen sütür tek dikiş (Şekil 1) ile kullanarak, damar dikiş.
      1. Kaudal kaudal arteriotomy kafatası sonuna damar parçasının sonuna dikiş için ilk dikiş yerleştirin. İkinci dikiş kafatası kafatası sonuna damar parçasının kaudal arteriotomy sonuna dikiş için ilk dikiş, üzerinden 180 ° yerleştirin.
      2. Üçüncü dikiş bir noktada ilk iki dikiş, anastomoz yan tarafındaki üzerinden eşit uzaklıkta yer. Dördüncü dikiş anastomoz, ilk iki dikiş ve üçüncü dikiş karşısında eşit uzaklıkta medial tarafına yerleştirin. 4 ek dikiş (dikiş 5-8) her dikiş 1-4 arasında yerleştirin.
      3. Kraniyal arteriotomy kafatası klip kaudal tarafında gerçekleştirmek. Kraniyal arteriotomy kafatası sonu ve kaudal arteriotomy kaudal sonu arasındaki mesafe ven kesimin uzunluğu aynı olması gerekir. Kraniyal arteriotomy uzunluğu kaudal sonuna damar çapına eşittir.
    6. Ven cranially herhangi bir katlanmış tanıtımı olmadan karotis üzerine döşeme anastomoz uzanır. Karotid arter Temizleme ve kraniyal arteriotomy üzerinden heparinized normal salin ile damar. Serum arter kaudal anastomoz ile ven içine akar ve damar ücretsiz ve unsutured ucundan çıkar. Flushing ven Ayrıca büküm üzerinden önler.
    7. Kaudal sonuna damar kraniyal arteriotomy (Şekil 1) için dikiş.
      1. Kaudal sonuna damar parçasının kaudal sonuna kraniyal arteriotomy dikiş için bir ilk dikiş yerleştirin. İkinci bir dikiş kaudal sonuna damar parçasının kraniyal arteriotomy kafatası sonu dikiş yerleştirin. Anastomoz 2.3.5.2. adımda açıklandığı gibi tamamlayın. Sadece son düğüm üzerinde kafatası anastomoz bağlıdır önce kısa bir süre açık, kelepçe arka kanama izin vermek için disseke ortak karotid arter kesiminin, kafatası ucundaki karotid arter ve aşılı ven havada dışarı yıkar. O zaman, son düğüm sıkın.
    8. Ven greft doldurma kan ile izin ve kaudal pensi serbest bırakmak için kafatası kelepçe serbest bırakın. Tempolu pulsasyonu ven greft görülmelidir. Herhangi bir anastomoses kanamayı durdurmak için kuru gazlı bezle hafif basınç uygulayın.
    9. Her iki ucunda da anastomoses 3-0 ipek sütür ile bağlayan ortak karotid arter kesiminin ligate ve karotis (Şekil 1) bitişik harfler arasında yarım bölün. Karotid arter her anastomoz bitişik papaverin (3.5 mg/mL) birkaç damla uygulanır.
    10. Heparin (75 IU/kg) kulak IV kateter enjekte ve 10 mL serum fizyolojik ile yıkayın. Şu anda, fentanil yama fentanil analjezik plazma seviyeleri sağlamıştır kadar ameliyat sonrası analjezi sağlamak için buprenorfin (SQ, 0,02 mg/kg) enjekte.
      Not: İlk iğne sonra plazma fentanil bir terapötik konsantrasyon ulaşıncaya kadar analjezi sağlamak için gerekli 6 h ek buprenorfin iğne (SQ, 0,02 mg/kg) olabilir.
    11. Sol tarafta (adımları 2.2.8, 2.3.2-2.3.9) aşılama yineleyin.
    12. Subkutan doku 5-0 PGA dikiş ile sürekli bir modeli kullanarak kapatın. Cilt 3-0 PGA dikiş ile bir intradermal desen kullanarak kapatın. Her iki ucunda knot gömün.
  4. Ameliyat sonrası kurtarma, temizleme ve bakım
    Not: tavşan anestezi sakin, sessiz bir ortamda kurtarmak izin verir. Tamamen iyileşmiş kadar tavşan uygun oksijenlenme ve vücut sıcaklık için sürekli olarak izlemek.
    1. İsoflurane ve oksijen kapalı ve anestezi makine tavşan kesin. IV sıvı tüp tavşan kesmek, ancak acil erişim için kulak ven IV limanda bırakın.
    2. Tavşan bir kurtarma kafes için taşıma ve onun yanına koyun. Termal bir sıcak su battaniye (veya destek zorla-hava ısınma ile) sağlar. SpO2 stabil olana O2 nosecone tarafından ver.
    3. Tavşan ayağa kalk ve onun kafes içinde ambulate kadar diğer yanının her 15dk için tavşan çevirme. Sonra kulak IV Kanül kaldırmak ve tavşan onun kafes için dönün. Sadece tamamen anesteziden kurtarıldıktan sonra tavşan diğer hayvanlar şirkete geri.
    4. Biohazard ve "Sharps" atık bertarafı için herhangi bir atık aşağıdaki uygun iletişim kuralı atmayın.
    5. Postoperatively, belgili tanımlık adatavşanı sağlık ve cerrahi yara her gün kontrol edin. Fentanil yama tarafından yönetilen değil ağrı için ihtiyaç olarak buprenorfin yönetmek. Fentanil yama ameliyat sonrası günde 3 kaldırın.

3. Transkutanöz ultrason

  1. Greft açıklık değerlendirmek için ultrason sigara anestezi tavşan ' 5-7 gün ven greft cerrahisi ve gen transferi ameliyattan sonra muayenesi.
    1. Anestezi tavşan güvenli bir battaniyeye sarın ve tavşan boynunu genişletilmiş bir veteriner V-yalak sırtüstü yerleştirin. Boyun tıraş veya gerekirse, depilatory bir ajanı ile tüylerden. Boyun için ultrason jeli uygulayın ve bir ultrason muayenesi.
      Not: Bir ultrason sınav de gen transferi cerrahi ve terminal greft hasat greft açıklık incelemek ve greft lümen çapı ölçmek için zamanda imzalat tavşan gerçekleştirilir. Sınav sadece boyun ovma önce yapılır ve sigara anestezi tavşan gelince benzer bir şekilde gerçekleştirilir.

4. gen transferi cerrahi gerçekleştirilen ~ 28 gün sonra greft yerleştirme (Survival cerrahi)

  1. Aletleri ve steril alan hazırlamak.
    1. Adımları 2.1.1-2.1.3 izleyin. ven greft ameliyatta.
    2. Aşağıdaki ekipman ve ya aseptik açmak yardımcı izin için cerrah geçmek veya enstrüman masaya yerleştirin: altı 1 mL şırınga (iğne ile) bir 3-mL şırınga, bir 20-mL şırınga, bir 21 G iğne, bir 19-G iğne, 3-0 PGA dikiş , 5-0 PGA dikiş, 7-0 polipropilen sütür, iki 24 G IV kateterler ve steril kan akışı sonda.
    3. Adımları 2.1.5-2.1.6 izleyin. ven greft ameliyatta.
    4. Arter ve ven greft yıkamak için bir 1-mL şırınga ile 1 mL DMEM ve virüs çözümü ile 1-mL-şırınga iki hazırlayın (~ 0.5-0.7 mL virüs çözüm/damar grefti). Virüs çözülme ve DMEM içinde seyreltik yardımcı'yı ver. Lidokain/bupivacaine (50/50 mix, adım 1.2.4) 0.5 mL bir 3-mL şırınga hazırla.
    5. Adım 2.1.8 ven greft cerrahisi izleyin.
  2. Yalıtım bitişik karotid arter ve ven greft
    Not: Bu bölümü için 2 x cerrahi büyüteçler kullanılmalıdır.
    1. Sternal çentik ve alt çene (yaklaşık 7-9 cm uzunluğunda) arasında orta çizgi boyunca elektrokoter ile deriyi kesme ve cilt aç havlu Mengeneler ile kelepçe. Lidokain/bupivacaine (50/50 mix, adım 1.2.4) 0.5 mL subkutan doku için geçerlidir.
    2. Kaudal sonunda şerit elektrokoter ile ile kısa bir yanal kesme yapmak. Açık açık tüm orta çizgi boyunca fasya altında incelemek. Orta çizgi boyunca disseke fasya elektrokoter ile kesti.
    3. Sağ taraftaki başlatın. Trakea overlaying sternohyoid kas ve damar grefti ortaya çıkarmak için V şekilli sternocephalic kas arasında incelemek. Dikkatle ven greft ve 1.5-2.0 cm karotid arter greft kafatası ve kaudal iki bitişik izole etmek.
    4. 4.2.3. adımda takip sol tarafında diseksiyon yineleyin.
  3. Ven greft kan akımını ölçmek.
    1. Sağ tarafta cerrahi yara den ses dalgaları iletimini etkinleştirmek için normal salin ile doldurun. (Birim debimetre için bağlı) 2-mm perivasküler akışı sondayı salin yara boşluğunda içine sokmak ve akış oranı sıfır olarak ayarlayın.
    2. Karotid arter etrafında akış sonda kaudal veya kafatası ven greft için yerleştirin. Bir elektronik veri toplama sistemi ile akış sonda gelen verileri kaydetmek.
    3. 4.3.2. adımda takip sol tarafında akış ölçüm yineleyin.
    4. En yüksek sistolik kan akış hızı, en az diyastolik akım hızı ve ortalama akış oranı temelinde rezistivite hesaplayın. Ayrıca akış oranına göre laminer kesme stres ve lümen çapı (Transkutanöz ultrason ile ölçülen) hesaplar.
  4. Vektör çözüm ven greft demlemek
    Not: Cerrahi mikroskop (16 X) delinme, infüzyon ve şahdamarı tamiri için gerektiği gibi kullanılır.
    1. Cerrahın cerrahi büyüteçler kaldırmak ve cerrahi mikroskop yerini yardımcınız olabilir. Steril bir havlu üzerinde mikroskop asmak cerrah var. Steril havlu kısırlık koruyarak mikroskop işlemek cerrah sağlar.
    2. IV kateter heparin (150 IU/kg) enjekte yardımcınız olabilir ve serum floş.
    3. Bir büyük iğne sürücü yaklaşık 80 ° eğim hemen üstünde 21 G iğne eğmek için kullanın (eğimi; eğmek değil Şekil 2A).
    4. Ortak karotid arter ven greft ile mini-kelepçeler için doldurma, sonra kaudal klip yerleştirerek arter sağlamak için önce kranyal kelepçe yerleştirerek, her ucundaki kelepçe. Kaudal klip yaklaşık 10 mm arteriotomy de yer bırakın anastomoz, kaudal yerleştirin.
    5. İki ipek bağları atardamar etrafında sadece kaudal greft için koymak ve her - onları sıkma olmadan tek bir yukarıdan aşağı düğüm kravat.
    6. Boyun arterine için greft kaudal bükülmüş 21 G iğne kaudal vasküler klibin sadece kafatası delik. Arka veya yan duvarları delmek değil dikkatli olun. İğne lümen ve iki kez Lümen açık olduğundan emin olmak için ileri geri ilerlemek, sonra dikkatle iğne çekilme.
      Notlar: Ortak karotid ponksiyon arteryel adventitia iyi forseps ile açgözlü ve hafifçe açık duvar iğne kaldırma noktasına (Şekil 2A) sadece kaudal ucu eklerken kaldırma tarafından destekli. Bu iğne ile arka duvarına isabet riskini azaltır.
    7. Birkaç gelişeceğini gazlı bez yastıkları ile infüzyon için kullanılan şırınga yerleştirmek için bir yuva oluşturun. Bu gazlı bez yuva kaudal cerrahi siteye koyun.
    8. Salt DMEM şırınga 24 G IV-kateter koymak ve kateter şırınga üzerinde sıkın (şırınga silinecektir sonra bu ameliyatta) kaçağı önlemek yeterli ve kateter viraj ~ ucundan 4 mm böylece yayımlandıktan sonra viraj 75° tutar.
    9. Ortak karotid arteriotomy bend noktaya kadar IV kateter takın ve damar grefti lümen iki kez DMEM 0.5 mL ile yıkayın. Her yineleme için ven greft DMEM ile doldurun. Sonra DMEM hafifçe greft kafatası sonundaki eldivenli bir parmak basarak greft kaldırın. Dikkatlice parmak arteriotomy luminal içeriği ortaya çıkartmak için greft kaudal kısmına doğru kaydırın.
    10. DMEM şırınga kateter gemi içinde bırakarak kateter, kaldırın. Havasız kateter girer emin virüs solüsyon içeren şırınga bağlayın. Onlar kateter ucu, ama onları sıkın değil kadar gevşek düğümlü ipek arter bağları taşıyın.
    11. Kalan DMEM kateter dışarı itmek için virüs çözümü 0,03 mL süzülür. Tüm sıvı damar grefti lümen bir parmağınızla hafifçe kafatası için kaudal basarak çıkarın.
    12. Lümen imzalamaya arter ve kateter ucu etrafında iki bağları sıkın. Damar şişmiş kadar virüs çözümü süzülür. Şırınga gazlı bez yuva üzerinde yavaşça yere bırak.
      Not: Ven greft onun öncesi iletim kalibre genişletir ve virüs infüzyon sırasında şişirilmiş kalır önemlidir. Eğer değilse, gen transferi miktarı önemli ölçüde azalmıştır.
    13. Virüs içeren çözüm ven greft lümen 20 dk için bırakın ve sonra boş bir şırınga için kateter bağlı virüs içeren şırınga değiştirin. Gemi çöker kadar yavaşça greft virüs içeren çözümden Aspire edin. Kateter yerinde bırakarak şırınga, kaldırın. Kesmek ve ipek dikiş çöz ve kateter gemiden çekmek. Kateter dikkatli endotel zarar görmesini önlemek için karotis arterin kaldırın.
    14. Cerrahi mikroskop yardımıyla, arteriotomy 7-0 polipropilen sütür ile bir X-desen (Şekil 2B) kullanarak kapatın.
      1. Dikiş İğne bağı ile kavramak, sağ alt köşesinde arteriotomy gemisine girin ve sol alt köşesinde gemi çıkın. Açılış çapraz gemi dışında ve üst-sağdan ikinci geçişi için üst sola dön.
      2. Dikişi sıkma önce kısaca arter ve ven greft hava ve kalan virüs temizlemek için beyin damar klip serbest bırakın. Kıskaç serbest bırakıldığında kan arteriotomy dışarı akacaktır.
      3. Yakın dikişi hafifçe çekerek arteriotomy sona erer ve onları birlikte 2 kare knot kravat.
        Not: dikişi çok sıkı çekerek, akışını rahatsız, kan pıhtılaşması riskini artırdığı, ve potansiyel olarak kontrolsüz değişkenleri tanıtmak dokusunun demetleme neden olur.
    15. Beyin damar klip, sonra kaudal klip bırakın. Herhangi bir hafif basınç uygulamak için gazlı bez kullanarak kanamayı kes.
    16. Bu sıralarda, fentanil yama analjezik fentanil plazma düzeyleri sağlamıştır kadar ameliyat sonrası analjezi sağlamak için buprenorfin (SQ, 0,02 mg/kg) enjekte.
      Not: İlk iğne sonra plazma fentanil bir terapötik konsantrasyon ulaşıncaya kadar analjezi sağlamak için gerekli 6 h ek buprenorfin iğne (SQ, 0,02 mg/kg) olabilir.
    17. Virüs infüzyon protokolü aşağıdaki adımları 4.4.5-4.4.15 sol tarafında yineleyin.
  5. Yara kapatma
    1. Subkutan doku ile 5-0 PGA dikiş, sürekli bir modeli kullanarak kapatın. Cilt 3-0 PGA dikiş ile bir intradermal desen kullanarak kapatın. Her iki ucunda knot gömün.
  6. Ameliyat sonrası kurtarma, temizleme ve bakım
    1. Adım 2.4 izleyin.

5. hasat (Terminal)

  1. Aletleri ve cerrahi sitesi hazırlamak.
    1. Adımları 2.1.1-2.1.3 ven greft cerrahisi izleyin.
    2. Açma ve aseptik enstrüman masaya yerleştirin (veya cerrah için geçmek) yardımcı'yı izin: bir 20 mL şırınga, bir 21G iğne, 3-0 ipek sütür ve steril kan akışı sonda.
    3. Adımları izleyin 2.1.5-2.1.6 ve 2.1.8 ven greft cerrahisi.
  2. Yalıtım ortak karotid arter ve ven greft
    1. Sternal çentik ve alt çene (yaklaşık 7-9 cm uzunluğunda) arasında orta çizgi boyunca elektrokoter ile deriyi kesme ve tavşan boyun deri için havlu havlu Mengeneler ile kelepçe.
    2. Kaudal sonunda şerit elektrokoter ile ile kısa bir yanal kesme yapmak. Açık açık tüm orta çizgi boyunca fasya altında incelemek. Elektrokoter ile orta çizgi boyunca disseke fasya kesti.
    3. Sağ taraftaki başlatın. Trakea örten sternohyoid kas ve ortak karotis ve damar grefti ortaya çıkarmak için sternocephalic V şekilli kaslar arasında incelemek.
    4. Doğru ven greft ve ortak karotid arter çevre dokulardan ücretsiz incelemek. Arter ve ven greft geri çekilmesi sırasında diseksiyon için cerrahi silikon döngüler kullanın.
    5. Diseksiyon aşağıdaki adımları 5.2.3-5.2.4 sol tarafında yineleyin.
  3. Aşağıdaki adımları 4.3.1-4.3.3 gen transferi cerrahi akışı ölçümleri yapmak.
  4. Hasat ven greft
    1. 3-0 ipek sütür ile Şu ortak karotid arter greft için kafatası ligate. O zaman için greft kaudal karotis ligate.
    2. Doğru ven greft bitişik karotid arter d ve bitişik anastomoz arasında bölerek tüketim. Ven greft tavşan çıkarma kaldırmak ve lümen serum fizyolojik ile yıkayın.
    3. Karotid arter ve anastomoses her iki uçtan ven greft kırpın. Ven greft uzak aşırı adventitial dokudan trim ve greft bölümler halinde farklı bitiş noktası analizleri için gerektiği gibi kesti.
    4. Sol ven greft adımları 5.4.1-5.4.3 tekrar ederek hasat.
  5. Fenitoin/Fentobarbital IV tavşan ötenazi için 1 mL enjekte.
  6. Biohazard ve "Sharps" atık bertarafı için herhangi bir atık aşağıdaki uygun iletişim kuralı atmayın.

Sonuçlar

Işleç deneysel verileri oluşturmak için bu yöntemi kullanmadan önce yeni bir işleç teknik yeterlilik doğrulanması gerekir. Yeni bir işleç elde etmek gerekir ilk kilometre taşı tutarlı ven greft açıklık ven-aşılama ameliyat ve sonraki Gecikmeli İletim ameliyattan sonra olmuştur. Her ameliyat bir arzu ve ulaşılabilir sonra bitti % 90 açıklık. Açıklık olmayan invaziv genellikle ameliyat sonrası günlük 5-7 gerçekleştirmek Transkutanöz ultrason kullanarak te...

Tartışmalar

Bu iletişim kuralı kritik adımlarda anestezi yönetimi, arter/aşılı damar anticoagulation, cerrahi manipülasyon ve aşılı damarın hemodinamik ölçümleri içerir. İki nispeten uzun işlemleri (genellikle 3-3.5 bilateral ven greft için h ve ikili greft iletim için 1,5-2,5 h) içeren bu modelde birden çok hayatta kalma cerrahi anestezi düzgün yönetimi önemlidir. Biz anestezi ile bir nosecone ve endotrakeal entübasyon tarafından yönetilen ve entübasyon pozitif basınç havalandırma atelectasis engell...

Açıklamalar

Yazarlar ifşa gerek yok.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Disposables
3mL syringe with 24G needleBecton Dickinson3095712x for vein graft surgery; 2x for gene transfer  surgery
1 mL syringe with 27G needleBecton Dickinson3096232x for vein graft surgery, 5x for gene transfer surgery
19G needleBecton Dickinson305187Gene transfer surgery
20 mL syringe, luer lockNipro Medical CorpJD+20L
Catheters, 24Ga x 3/4”Terumo Medical ProductsSROX2419V
21G needleBecton Dickinson305165Gene transfer surgery and for 20 mL syringe of saline
Gauze 4” x 4”Dynarex3242~10-15 per surgery
3-0 silk sutureCovidien Ltd.S-244
5-0 silk sutureCovidien Ltd.S-182
7-0 polypropylene sutureCP Medical8703PVein graft surgery
7-0 polypropylene sutureCP Medical8648PGene transfer surgery
5-0 polyglycolic acid sutureCP Medical421A
3-0 polyglycolic acid sutureCP Medical398A
Alcohol swabsCovidien Ltd.6818For the placement of I.V. line
Catheter plugVetoquinol411498
Ketamine HCl, 100 mg/mLVedco Inc.5098916106
Xylazine, 100 mg/mLAkorn Inc.4821
Lidocaine, 20 mg/mLPfizer409427702
Marcaine 0.5%Pfizer409161050
Beuthanasia D-SpecialIntervet Inc.NDC 00061047305Harvest surgery only
Buprenorphine HCl, 0.3 mg/mLPatterson Veterinary12496075705
Saline IV bag, 0.9% sodium chlorideBaxter2B1309
Heparin  (5000 U/mL)APP PharmaceuticalsNDC 63323-047-10
Papaverine (3.5 mg/ml)American Reagent Inc.NDC 0517-4002-25Diluted from 30mg/mL stock; Use 1 mL maximum
Fentanyl patch, 25 mcg/hApotex Corp.NDC 60505-7006-2
IsofluraneMultiple vendorsCatalog number not available
 Viral vectorGene transfer surgery only
Surgical Instruments
Metzenbaum needle holder 7" straightRobozRS-7900
Operating scissors 6.5" straight blunt/bluntRobozRS-6828
Needle holder /w suture scissorsMiltex8-14-IMC
Castroviejo scissorsRobozRS-5658
Castroviejo needle holder, 5.75" straight with lockRobozRS-6412
Stevens scissors 4.25" curved blunt/bluntRobozRS-5943
Alm retractor 4" 4X4 5mm blunt prongsRobozRS-65142x
Backhaus towel clamp 3.5"Roboz4x
Micro clip setting forceps 4.75"RobozRS-6496
Micro vascular clips, 11 mmRoboz
Surg-I-LoopScanlan International1001-81M5 cm length
Bonaccolto forceps, 4” (10 cm) long longitudinal serrations, cross serrated tip, 1.2mm tip widthRobozRS-5210
Dumont #3 forceps Inox tip size .17 × .10 mmRobozRS-5042
Graefe forceps, 4” (10 cm) long serrated straight, 0.8 mm tipRobozRS-5280
Halstead mosquito forceps,  5" straight, 1.3 mm tipsRobozRS-71102x
Halstead mosquito forceps,  5" curved, 1.3mm tipsRobozRS-7111
Jacobson mosquito forceps 5" curved extra delicate, 0.9 mm tipsRobozRS-7117
Kantrowitz forceps, 7.25" 90 degree delicate, 1.7 mm tipsRobozRS-7305
Tissue forceps 5", 1X2 teeth, 2 mm tip widthRobozRS-8162
Allis-Baby forceps, 12 cm, 4x5 teeth, 3 mm tip widthFine Science Tools11092-122x
Adson forceps, 12 cm, serrated, straightFine Science Tools11006-12
Veterinary electrosurgery handpiece and electrodeMACAN ManufacturingHPAC-1; R-F11
Surgical Suite Equipment
Circulating warm water blanket and pumpMultiple vendorsCatalog number not available
Bair hugger warming unit3MModel 505
IV infusion pumpHeskaVet IV 2.2
Isoflurane vaporizer and scavengerMultiple vendorsCatalog number not available
Veterinary multi-parameter monitorSurgivetSurgivet Advisor
Veterinary electrosurgery unitMACAN ManufacturingMV-9
Surgical microscopeD.F. VasconcellosM90025X magnification for vein graft surgery; 16X magnification for gene transfer surgery

Referanslar

  1. Libby, P., Bornfeldt, K. E., Tall, A. R. Atherosclerosis: Successes, Surprises, and Future Challenges. Circ Res. 118, 531-534 (2016).
  2. Fowkes, F. G., et al. Comparison of global estimates of prevalence and risk factors for peripheral artery disease in 2000 and 2010: a systematic review and analysis. Lancet. 382, 1329-1340 (2013).
  3. Mohr, F. W., et al. Coronary artery bypass graft surgery versus percutaneous coronary intervention in patients with three-vessel disease and left main coronary disease: 5-year follow-up of the randomised, clinical SYNTAX trial. Lancet. 381, 629-638 (2013).
  4. de Vries, M. R., Simons, K. H., Jukema, J. W., Braun, J., Quax, P. H. Vein graft failure: from pathophysiology to clinical outcomes. Nat Rev Cardiol. 13 (8), 451-470 (2016).
  5. Harskamp, R. E., Lopes, R. D., Baisden, C. E., de Winter, R. J., Alexander, J. H. Saphenous vein graft failure after coronary artery bypass surgery: pathophysiology, management, and future directions. Ann Surg. 257, 824-833 (2013).
  6. Sabik, J. F. Understanding saphenous vein graft patency. Circulation. 124 (3), 273-275 (2011).
  7. Owens, C. D., Ho, K. J., Conte, M. S. Lower extremity vein graft failure: a translational approach. Vasc Med. 13, 63-74 (2008).
  8. Robertson, K. E., McDonald, R. A., Oldroyd, K. G., Nicklin, S. A., Baker, A. H. Prevention of coronary in-stent restenosis and vein graft failure: does vascular gene therapy have a role. Pharmacol Ther. 136, 23-34 (2012).
  9. Yla-Herttuala, S., Baker, A. H. Cardiovascular Gene Therapy: Past, Present, and Future. Mol Ther. 25, 1095-1106 (2017).
  10. Schwartz, L. B., et al. Adenoviral-mediated gene transfer of a constitutively active form of the retinoblastoma gene product attenuates neointimal thickening in experimental vein grafts. J Vasc Surg. (5), 874-881 (1999).
  11. Eefting, D., et al. Local lentiviral short hairpin RNA silencing of CCR2 inhibits vein graft thickening in hypercholesterolemic apolipoprotein E3-Leiden mice. J Vasc Surg. 50, 152-160 (2009).
  12. Handa, M., et al. Adventitial delivery of platelet-derived endothelial cell growth factor gene prevented intimal hyperplasia of vein graft. J Vasc Surg. 48 (6), 1566-1574 (2008).
  13. Kloppenburg, G. T., Grauls, G. E., Bruggeman, C. A., Stassen, F. R. Adenoviral activin A expression prevents vein graft intimal hyperplasia in a rat model. Interact Cardiov Th. 8, 31-34 (2009).
  14. Eefting, D., et al. A novel urokinase receptor-targeted inhibitor for plasmin and matrix metalloproteinases suppresses vein graft disease. Cardiovasc Res. 88, 367-375 (2010).
  15. Eichstaedt, H. C., et al. Gene transfer of COX-1 improves lumen size and blood flow in carotid bypass grafts. J Surg Res. 161, 162-167 (2010).
  16. Kritz, A. B., et al. In vivo modulation of Nogo-B attenuates neointima formation. Mol Ther. 16 (11), 1798-1804 (2008).
  17. Peroulis, M., et al. The role of ex-vivo gene therapy of vein grafts with Egr-1 decoy in the suppression of intimal hyperplasia. Eur J Vasc Endovasc. 40, 216-223 (2010).
  18. Kochanek, S., et al. A new adenoviral vector: Replacement of all viral coding sequences with 28 kb of DNA independently expressing both full-length dystrophin and b-galactosidase. Proc Natl Acad Sci U S A. 93, 5731-5736 (1996).
  19. Parks, R. J., et al. A helper-dependent adenovirus vector system: Removal of helper virus by Cre-mediated excision of the viral packaging signal. P Natl Acad Sci USA. 93, 13565-13570 (1996).
  20. Chen, H. -. H., et al. Persistence in muscle of an adenoviral vector that lacks all viral genes. P Natl Acad Sci USA. 94, 1645-1650 (1997).
  21. Wen, S., Graf, S., Massey, P. G., Dichek, D. A. Improved vascular gene transfer with a helper-dependent adenoviral vector. Circulation. 110, 1484-1491 (2004).
  22. Du, L., Zhang, J., Clowes, A. W., Dichek, D. A. Efficient gene transfer and durable transgene expression in grafted rabbit veins. Hum Gene Ther. 26, 47-58 (2015).
  23. Channon, K. M., et al. Efficient adenoviral gene transfer to early venous bypass grafts: comparison with native vessels. Cardiovasc Res. 35, 505-513 (1997).
  24. Flynn, R., et al. Expression of apolipoprotein A-I in rabbit carotid endothelium protects against atherosclerosis. Mol Ther. 19, 1833-1841 (2011).
  25. George, S. J., et al. Sustained Reduction of Vein Graft Neointima Formation by Ex Vivo TIMP-3 Gene Therapy. Circulation. 124, 135-142 (2011).
  26. Chiu-Pinheiro, C. K., et al. Gene transfer to coronary artery bypass conduits. Ann Thorac Surg. 74, 1161-1166 (2002).
  27. Byrom, M. J., Bannon, P. G., White, G. H., Ng, M. K. Animal models for the assessment of novel vascular conduits. J Vasc Surg. 52, 176-195 (2010).
  28. Ribichini, F., et al. Effects of oral prednisone after stenting in a rabbit model of established atherosclerosis. J Am Coll Cardiol. 50, 176-185 (2007).
  29. Langheinrich, A. C., et al. Quantification of in-stent restenosis parameters in rabbits by Micro-CT. Rofo. 177 (4), 501-506 (2005).
  30. Wacker, B. K., Dronadula, N., Zhang, J., Dichek, D. A. Local Vascular Gene Therapy With Apolipoprotein A-I to Promote Regression of Atherosclerosis. Arterioscler Thromb. 37, 316-327 (2017).
  31. Zwolak, R. M., Kirkman, T. R., Clowes, A. W. Atherosclerosis in rabbit vein grafts. Arteriosclerosis. 9, 374-379 (1989).
  32. Qiang, B., et al. Statin therapy prevents expansive remodeling in venous bypass grafts. Atherosclerosis. 223, 106-113 (2012).
  33. Casa, L. D. C., Ku, D. N. Thrombus Formation at High Shear Rates. Annu Rev Biomed Eng. 19, 415-433 (2017).
  34. Chen, C., Coyle, K. A., Hughes, J. D., Lumsden, A. B., Ku, D. N. Reduced blood flow accelerates intimal hyperplasia in endarterectomized canine arteries. Cardiovasc Surg. 5 (2), 161-168 (1997).
  35. Binns, R. L., Ku, D. N., Stewart, M. T., Ansley, J. P., Coyle, K. A. Optimal graft diameter: effect of wall shear stress on vascular healing. J Vasc Surg. 10, 326-337 (1989).
  36. Oka, K., Mullins, C. E., Kushwaha, R. S., Leen, A. M., Chan, L. Gene therapy for rhesus monkeys heterozygous for LDL receptor deficiency by balloon catheter hepatic delivery of helper-dependent adenoviral vector. Gene Ther. 22, 87-95 (2015).
  37. Miyake, T., et al. Prevention of neointimal formation after angioplasty using nuclear factor-kappaB decoy oligodeoxynucleotide-coated balloon catheter in rabbit model. Circ Cardiovasc Interv. 7, 787-796 (2014).
  38. Chorny, M., et al. Site-specific gene delivery to stented arteries using magnetically guided zinc oleate-based nanoparticles loaded with adenoviral vectors. FASEB J. 27, 2198-2206 (2013).
  39. Hoshino, K., et al. Three catheter-based strategies for cardiac delivery of therapeutic gelatin microspheres. Gene Ther. 13, 1320-1327 (2006).
  40. Nouri, F., Sadeghpour, H., Heidari, R., Dehshahri, A. Preparation, characterization, and transfection efficiency of low molecular weight polyethylenimine-based nanoparticles for delivery of the plasmid encoding CD200 gene. Int J Nanomed. , 5557-5569 (2017).
  41. Jia, S. F., et al. Eradication of osteosarcoma lung metastases following intranasal interleukin-12 gene therapy using a nonviral polyethylenimine vector. Cancer Gene Ther. , 260-266 (2002).
  42. Morishita, R., et al. Intimal hyperplasia after vascular injury is inhibited by antisense cdk 2 kinase oligonucleotides. J Clin Invest. 93, 1458-1464 (1994).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

T psay 139insan hastal klaraterosklerozgen tedavisitranslasyonel al malartav and juguler venortak karotid arterinterpozisyonu hayvan modelleri damar greftidamar hastal klaradenovirusyard mc ba ml adenovirus

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır