JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Burada, sıçan beyin yüzdeki yalıtım ve membran örnekleri hazırlanması için bir yöntemi açıklanmıştır. Bu iletişim kuralı örnekleri kabul edilebilir protein ile bireysel hayvanlardan verim zenginleştirilmiş microvessel üreten açık avantajı vardır. Örnekleri daha sonra beyin mikrovasküler endotel, sağlam protein analizleri için kullanılabilir.

Özet

Kan - beyin bariyerini (BBB) çeşitli patofizyolojik ve farmakolojik uyaranlara yanıt veren dinamik bariyer dokudur. Bu uyaranlara kaynaklanan bu tür değişiklikler büyük ölçüde ilaç dağıtım beyne modüle ve, uzantısı tarafından (CNS) hastalıkları merkezi sinir sistemi tedavisinde önemli sorunlar neden. Farmakoterapi, etkileyen birçok BBB değişiklikler lokalize ve endotel hücre düzeyinde ifade proteinleri içerir. Gerçekten de, böyle bir bilgiye BBB fizyolojisi sağlığı ve hastalıkları üzerinde insan bu membran proteinlerinin büyük ilgi yol açtı. Bir temel bilim araştırma açısından bu deneysel hayvan--dan hasat beyin dokusundan yüzdeki yalıtım için basit ama güçlü ve tekrarlanabilir bir yöntem için bir gereklilik anlamına gelir. Taze izole yüzdeki membran örnekleri hazırlamak için bu örnek hazırlıklar endotel hücrelerinde zenginleştirilmiş ama nörovasküler birimi (astrocytes, microglia, nöronlar, varlığında diğer hücre tipleri sınırlı esastır perisitlerden). Bir yararı protein ifadesi deneysel bir nüfus içinde gerçek değişkenliği yakalamak için bireysel hayvanlardan örnekleri hazırlamak için yeteneğidir. Bu el yazması kullanılmaktadır sıçan beyin yüzdeki yalıtım ve membran örnekleri hazırlanması için bir yöntem ile ilgili ayrıntılar sağlanmaktadır. Örneklerinden elde edilen, microvessel zenginleştirme dextran örnek arabellekte nerede dahil dört Santrifüjü adımlar kullanılarak elde edilir. Bu iletişim kuralı diğer laboratuvarlar için kendi özel uygulamalar tarafından kolayca adapte edilebilir. Bu iletişim kuralı oluşturulan örnekleri üzerinden BBB yanıt fizyolojik, patofizyolojik ve farmakolojik uyaranlara karşı anlayış büyük ölçüde yardımcı olabilir protein analizi deneyler sağlam deneysel veri vermeye gösterilmiştir.

Giriş

Kan - beyin bariyerini (BBB), merkezi sinir sistemi (MSS) ve sistemik dolaşımı arasındaki arayüzü var ve beyin homeostazı bakım içinde önemli bir rol oynamaktadır. Özellikle, BBB işlevleri tam olarak kontrol çözünen konsantrasyonları beyin hücre dışı sıvı ve verimli bir şekilde beyin dokusu tarafından CNS1önemli metabolik taleplerini yerine getirmek için gerekli olan bu besin kaynağı. Öncelikle mikrovasküler endotel hücre düzeyinde var, BBB, potansiyel olarak zararlı xenobiotics yapamadığı sağlarken beyin parankimi erişmek bazı maddelerin etkinleştirmek ayrık mekanizmaları sahip olması gereken bu roller ima birikir. Nitekim, beyin mikrovasküler endotel hücreleri Poşlu değildir ve sigara seçici geçirgenlik2eksikliği sağlar sınırlı pinocytosis sergilemek. Ayrıca, beyin microvessel endotel hücreleri hızlı bir fiziksel "bitişik endotelyal hücreler arasında mühürle" ve büyük ölçüde kan kaynaklı maddeler paracellular Difüzyon beyin içine kısıtlamak formu için hareket sıkı Kavşağı ve adherens junction proteinler parankimi. Nitekim, seçici geçirgenlik endojen ve eksojen maddelerin alımı ve sızma taşıyıcı3fonksiyonel ifade gerektirir. Genel olarak, sıkı kavşaklar, adherens kavşaklar ve Işınlayıcılar konser BBB benzersiz bariyer özelliklerini korumak için çalışır.

BBB fizyolojik, patofizyolojik ve farmakolojik uyaranlara yanıt veren dinamik bir engeldir. Örneğin, hipoksi/reoxygenation stres vasküler işaretçileri için artan paracellular geçirgenliği ile ilişkili olduğu ifade (occludin,Yani, zonulae occluden-1 (ZO-1)), kritik sıkı kavşak proteinlerin modüle için gösterilen olarak sukroz4,5,6. Travmatik beyin hasarı7 ve çevresel enflamatuar ağrı8,9ortamda BBB, benzer gözlemler yapılmıştır. Bu aynı hastalıklar da taşıma mekanizmaları BBB10,11,12,13,14modüle. Nitekim, hipoksi/reoxygenation yaralanma organik anyon polipeptit 1a4 taşıma fonksiyonel ifade artırır (Oatp1a4) BBB, hangi yol açabilir için belirli Oatp taşıma yüzeylerde kan beyin taşımacılığının önemli artışlar gibi taurocholate atorvastatin ve13. BBB özellikleri, farmakoterapi kendisi, ilaç-ilaç etkileşimleri ve beyinde uyuşturucu etkinliği her iki derin değişiklikler için bir temel oluşturabilir bir mekanizma tarafından da değiştirilebilir. Örneğin, asetaminofen hedefleri nükleer reseptör sinyal mekanizmalar beyin mikrovasküler endotel hücrelerinde kritik sızma ışınlama P-glikoprotein (P-gp) fonksiyonel ifade artırır ve zamana bağımlı analjezi değiştirir morfin tarafından doğan, bir opioid analjezik ilaç ve kurulan P-gp substrat15taşımacılığı. Hastalıklar veya uyuşturucu indüklenen, BBB değişiklikleri kapsamlı bir anlayış aynı zamanda kimlik ve bu değişiklikleri denetleyen belirli düzenleyici mekanizmaları karakterizasyonu gerektirir. Nitekim, ayrık sinyal yolları sıkı kavşak proteinler16,17 ve Işınlayıcılar15, moleküler ifade denetleyen beyin mikrovasküler endotel hücrelerinde tespit edilmiştir 18,19. Birlikte ele alındığında, bu gözlemler karmaşık moleküler yolları BBB sıkı kavşak düzenlenmesi ve Işınlayıcılar sağlık ve hastalığında katılmaktadırlar gösterir.

BBB çalışmanın önemli bir mücadelesine izole yüzdeki beyin dokusundan deneysel hayvan ve membran örnekleri sonraki hazırlanması elde edilmesi için basit ve etkili bir yöntem mutlak zorunluluktur. Böylece onlar hem beyin mikrovasküler endotel hücrelerinde zenginleştirilmiş ve diğer hücre tipleri huzurunda sınırlı bu örnekler hazırlanmalıdır. Son birkaç yıl içinde--dan kemirgen beyin microvasculature yalıtım için birden fazla metodolojiler içinde bilimsel literatür13,20,21,22bildirilmiştir. Bu makalede bir basit, sağlam ve tekrarlanabilir yöntemi protein ifade analiz için kullanılabilecek endotel membran zenginleştirilmiş örnekleri hazırlanması ve yüzdeki--dan sıçan beyin yalıtım için. Bir avantaj bu microvessel yalıtım protokol örnek hazırlıklar kaliteli ve yeterli protein verim ile bireysel bir deneysel hayvan edinmek için yeteneğidir. Bu protein ifadesindeki arası hayvan değişkenlik dikkate sağlar. Protein değişiklikleri BBB, gerçek büyüklükte aşırı tahmini (veya altında tahmin) şimdi önlenebilir çünkü böyle bir önceden bu iletişim kuralı yer sağlamlık BBB çalışmaların büyük ölçüde iyileşmiştir. Ayrıca, birden çok Santrifüjü adımı dextran ile eklenmesi nöronlar gibi istenmeyen hücresel bileşenlerin kaldırılmasını kolaylaştırmak ise deneysel örneklerinde yüzdeki geliştirilmiş zenginlik sağlar.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protokol

Tüm yordamlar ana hatlar aşağı bir kurumsal hayvan bakım ve kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmış olan ve ulusal kurumları Sağlık (NIH) ve hayvan araştırma için uygun: In Vivo deneyler (varış) yönergeleri raporlama. İletişim kuralı için yordamsal akışı şekil 1' de tasvir edilir.

1. kurulum yordamı için

  1. Beyin microvessel arabellek (BMB) hazırlayın. Temiz bir ölçek 54.66 g D-mannitol, 1.90 g EGTA ve 1.46 g 2-amino-2-(hydroxymethyl)-1,3-propanediol (yani, Tris) Bankası ağırlığında tarafından başlatın. 1.0 L deiyonize su ekleyin. Manyetik karıştırıcı kullanarak BMB arabellek bileşenleri karıştırmak. Bir kez belgili tanımlık eriyik iyice karışık, pH 7.4 1.0 M HCl kullanarak için ayarlayın.
  2. Hayvanlar anesthetizing önce % 26 dextran (MW 75.000) çözüm (w/v) hazırlayın. Dextran çözüm aşağıdaki adımlarda açıklandığı şekilde hazırlayın.
    Not: Dextran yaklaşık 1,5-2 h sulu arabellekte çözülmeye alabilir, çünkü bu çözüm önceden hazırlamak kritik önemlidir.
    1. Temiz bir kabı içine toz dextran (100 mL arabellek başına 26 g) dışarı tartın.
    2. BMB uygun hacmi ölçmek ve ayrı, temiz kabı dağıtmak.
    3. Yavaş yavaş BMB toz dextran içeren kabı dökün. El ile bir cam heyecan çubuk kullanarak BMB dökme sırasında toz dextran karıştırın.
    4. PH 7.4 ile kullanmak için 1.0 M HCl hemen önceki için ayarlayın.
      Not: Beyin yüzdeki 12 bireysel Sprague-Dawley Rat üzerinden bir tipik yalıtım (erkek veya kadın; 3 ay-in yaş; 200-250 g) 200 mL dextran çözeltisi (yani, 52 g dextran BMB 200 ml) gerektirir.

2. çıkarma beyin dokusunun Sprague-Dawley Rat

  1. İstenen deneysel tedavi aşağıdaki anestezi ketamin (50 mg/kg; 2.5 mL/kg ı.p.) ve xylazine kullanan Sprague-Dawley Rat (10 mg/mL; 2.5 mL/kg ı, p.). Sırasıyla ketamin ve son konsantrasyonları 20 mg/mL ve 4,0 mg/mL % 0,9 serum xylazine oranında seyreltin. Hayvanlar tarafından IACUC yönergelere uygun olarak bilenmiş bir Giyotin kullanarak işten çıkarma ötenazi. Hem erkek hem de dişi Sprague-Dawley Rat için aynı yordamı kullanın.
  2. Sıçan kafatası derisini Cerrahi makas kullanarak tek bir çapraz kesim yaparak çıkarabileceğim.
  3. Rongeurs kullanarak, dikkatle kafatası plaka kaldırmak ve beyin bulaşmasına neden.
  4. Bir spatula kullanarak beyin kaldırın. Cerebrum ayırmak ve izole beyin dokusu BMB 5 mL içeren 50 mL konik tüp yerleştirin. Proteaz inhibitörü kullanılmadan önce kokteyl BMB arabellek hemen 1.0 mL 1.0 μL ekleyin.

3. beyin işleme

  1. Beyin dokusu 50 mL konik tüp sizden temiz bir petri kabına aktarın.
  2. Forseps kullanarak, yavaşça beyin gevşek serebral korteks yapıştırılır vardır dış zarları kaldırmak için 12,5 cm Çap filtre kağıdı rulo. Yavaşça beyin dokusu filtre kağıdı karşı basın ve doku tekrar rulo. Filtre kağıdı bu adımı sırasında sık sık açmak.
  3. Choroid plexus serebral hemisferlerin forseps kullanarak ayırın.
    Not: Choroid plexus serebral ventrikül yüzeye yerelleştirilmiş bir açık membranöz doku olarak görünür.
  4. Yavaşça beyin dokusu dümdüz ve kalan meninkslerde ve olfaktör ampuller forseps kullanarak kaldırın.
  5. Kortikal beyin dokusu soğutulmuş cam harç yerleştirin. BMB içeren proteaz inhibitörü kokteyl 5.0 mL harç için ekleyin.
  6. Bir genel gider güç homogenizer kullanarak, 15 vuruş yukarı ve aşağı 3.700 rpm'de kullanarak beyin dokusu lunaparkçı. Homojenizasyon bir 10 mL harç ve havaneli doku taşlama kullanarak gerçekleştirin. Tek tek her örnek homojenizasyon arasında % 70 etanol kullanarak havaneli temiz.
    Not: vuruş hızı açısından tutarlı olmalıdır homojenizasyon ve parlaklığı.
  7. Homogenate etiketli santrifüj tüpler içine dökün.

4. Santrifüjü adımları

  1. Beyin homogenate içeren her etiketli santrifüj tüpü 8.0 mL % 26 dextran çözeltisi ekleyin.
  2. Tüp iki kez ters çevir'i ve sonra iyice girdap örnek. Vortexing beyin homogenate çözüm % 26 dextran çözüm ile kapsamlı bir karıştırma sağlamak için birçok açıdan kullanarak her örneğinin kuralları.
  3. Santrifüj örnekleri, 5000 x g 4 ° C'de 15 dakika
    Not: bazı analizleri için beyin yüzdeki beyin parankimi ile karşılaştırmak yararlı olur. Beyin parankimi ifadede protein değerlendirilmesi-meli var olmak gerekli, bu Santrifüjü adım (yani, beyin parenkima kesir) süpernatant toplanacak ve ileride kullanmak üzere-80 ° C'de depolanan.
  4. Bir vakum aspiratör kullanarak süpernatant kaldırmak ve Pasteur pipet cam.
    Not: Pelet rahatsız etmek dikkat alınmalıdır. Aksi takdirde, hangi önemli ölçüde bu yordamdan protein verim azalacak toplanan beyin yüzdeki miktarı azalacaktır.
  5. Pelet BMB içeren proteaz inhibitörü kokteyl (yani, 1.0 μL proteaz inhibitörü BMB arabellek 1.0 mL kokteyl) 5.0 ml resuspend. Girdap Pelet ayrıntılı karıştırma sağlamak için.
  6. % 26 dextran 8.0 mL her santrifüj tüpü ve girdap bu protokolü 4.1-4.2 adımlarda açıklandığı gibi ekleyin.
  7. Santrifüj örnekleri, 5000 x g 4 ° C'de 15 dakika
  8. Bir vakum şişe ve cam pipet kullanarak, süpernatant Aspire edin ve beyin microvessel içeren bu Pelet değil bozulur emin olun.
    Not: tüp duvara yapıştırılır aşırı malzeme yüzdeki içermiyor ve dikkatle temizlenmesi ve kaldırıldı.
  9. Ek bir 4,8 4,5 adımları iki kez tekrarlayın.
  10. Bir kez 4 dextran Santrifüjü adım tamamlanmıştır, her Pelet ve örnek resuspend girdap BMB 5.0 mL ekleyin.
    Not: adım 4,10 tamamlanmasını takiben, protein yerelleştirme analizi için bütün yüzdeki toplanabilir. Bu 50 μL yeniden askıya alınmış microvessel Pelet aliquot alarak ve cam mikroskop slaytta bulaşması gerçekleştirilebilir. Yüzdeki o zaman ısı için bir ek 10 dk. slaytlar sonra çalışmalar görüntüleme için gerekli kadar 4 ° C'de depolanan için buz gibi etanol fiksasyonu ardından Isıtma blokta 10 min 95 ° C'de sabit vardır.

5. ultrasantrifüj toplam beyin mikrovasküler membranlar örnekleri hazırlamak için

  1. Örnekleri soğutulmuş cam homogenizer aktarın.
  2. Bir genel gider güç homogenizer kullanarak, 8-10 vuruş aşağı yukarı 3000 rpm'de kullanarak beyin dokusu lunaparkçı. Homojenizasyon bir 10 mL harç ve havaneli doku taşlama kullanarak yapılır. Tek tek her örnek homojenizasyon takip % 70 etanol kullanarak havaneli temiz.
  3. Ultracentrifuge tüpler temizlemek için örnekleri aktarın. Numara ve bireysel her tüpün tartın. Denge ve tüpler yükleme ultracentrifuge rotor içine önce çift.
    Not: Tüm ağırlığında ve ultracentrifuge tüpler eşleştirme kapaklar ile üzerinde tüp ağırlıklar doğru ölçüm sağlamak için yapılmalıdır.
  4. Santrifüj örnekleri 150.000 x g 4 ° C'de 1 h için de
  5. Bir vakum şişe ve cam Pasteur pipet, kullanarak Aspire süpernatant kullanarak bakım kapiller membran Pelet bozmaya değil.
  6. Pelet boyutuna göre deiyonize su ve BMB bir 1:1 (v/v) oranı oluşur depolama arabellek uygun bir birimi ekleyin. Genellikle, granül 400-500 μL depolama arabellek içinde resuspended. Proteaz inhibitörü kokteyl 1.0 μL depolama arabellek 1.0 mL başına oranında depolama arabellek ekleyin.
  7. Girdap örnekleri Pelet depolama arabellek resuspend.
  8. Bir cam Pasteur pipet kullanarak, kapiller membran örnekleri etiketli 1.5 mL microcentrifuge tüp aktarın.
  9. Geçiş örnek bir iğne aracılığıyla şırınga 5 x örnek iyice karıştırılır ve hücresel yok toplamları bulunduğundan emin olun.
  10. Örnekleri-80 ° analiz için gerekli kadar C'de depolayın.
    Not: Her microvessel membran örnek Protein içeriği Bradford yöntemi kullanılarak ölçülür.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Sonuçlar

Deneysel akışı sıçan beyin yüzdeki izolasyonu ve microvessel membran örnekleri hazırlanması için şekil 1' de gösterilmiştir. Burada sunulan yordamını kullanarak--dan sıçan beyin sağlam yüzdeki başarılı yalıtım gösterilmiştir (şekil 2A). Bu gemiler Santrifüjü dextran ve hemen ultrasantrifüj membran örnekleri (yani, aşağıdaki tamamlanma adımının 4.10) hazırlamaya başlamadan önce tamamlanması...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Tartışmalar

Bu makalede, taze sıçan beyin dokusundan izole yüzdeki membran protein örnekleri hazırlama basit ve etkili bir yöntem açıklanmıştır. İzole microvasculature sıçan beyin yüzdeki yalıtım ve/veya membran hazırlıklar nesil için çeşitli yaklaşımlar içinde edebiyat13,20,21,22 bildirilmiştir , 24. microvessel yalıtım Protokolü yukarıda a?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Açıklamalar

Yazarlar ifşa gerek yok.

Teşekkürler

Bu eser PTR için Ulusal Sağlık Enstitüleri (R01-NS084941) ve Arizona Biyomedikal Araştırma Komisyonu (ADHS16-162406) gelen hibe tarafından desteklenmiştir. WA geçmiş bir ulusal kurumları sağlık eğitim Grant'ın (T32-HL007249) için önceden doktora bir randevudan destek aldı.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Protease Inhibitor CocktailSigma-Aldrich#P8340Component of brain microvessel buffer
D-mannitolSigma-Aldrich#M4125Component of brain microvessel buffer
EGTASigma-Aldrich#E3889Component of brain microvessel buffer
Trizma BaseSigma-Aldrich#T1503Component of brain microvessel buffer
Dextran (MW 75,000)Spectrum Chemical Mftg Corp#DE125Dextran used in centrifugation steps to separate microvessels from brain parenchyma
ZetamineMWI Animal Health#501072General anesthetic
XylazineWestern Medical Supply#5530General anesthetic
0.9% saline solutionWestern Medical SupplyN/AGeneral anesthetic diluent
Filter Paper (12.5 cm diameter)VWR#28320-100Used for removal of meninges from brain tissue
Centrifuge TubesSarstedt#60.540.386Disposable tubes used for dextran centrifugation steps
Pierce™ Coomassie Plus (Bradford) AssayThermoFisher Scientific#23236Measurement of protein concentration in membrane preparations
Wheaton Overhead Power HomogenizerDWK Life Sciences#903475Required for homogenization of samples
10.0ml glass mortar and pestle tissue grinderDWK Life Sciences#358039Required for homogenization of samples
Hydrochloric AcidSigma-Aldrich#H1758Required for pH adjustment of buffers
Bovine Serum AlbuminThermoFisher Scientific#23210Protein standard for Bradford Assay
Standard ForcepsFine Science Tools#91100-12Used for dissection of brain tissue
Friedman-Pearson RongeursFine Science Tools#16020-14Used for opening skull to isolate brain
50 ml conical centrifuge tubesThermoFisher Scientific#352070Used for collection of brain tissue following isolation
Glass Pasteur PipetsThermoFisher Scientific#13-678-20CUsed for aspiration of cellular debris following dextran spins
Ethanol, anhydrousSigma-Aldrich#459836Used for cleaning tissue grinder; diluted to 70% with distilled water
Ultracentrifuge tubesBeckman-Coulter#41121703Used for ultracentrifugation of samples

Referanslar

  1. Rolfe, D. F., Brown, G. C. Cellular energy utilization and molecular origin of standard metabolic rate in mammals. Physiol Rev. 77 (3), 731-758 (1997).
  2. Brzica, H., Abdullahi, W., Ibbotson, K., Ronaldson, P. T. Role of Transporters in Central Nervous System Drug Delivery and Blood-Brain Barrier Protection: Relevance to Treatment of Stroke. J Cent Nerv Syst Dis. 9, 1179573517693802(2017).
  3. Ronaldson, P. T., Davis, T. P. Targeting transporters: promoting blood-brain barrier repair in response to oxidative stress injury. Brain Res. 1623, 39-52 (2015).
  4. Witt, K. A., Mark, K. S., Hom, S., Davis, T. P. Effects of hypoxia-reoxygenation on rat blood-brain barrier permeability and tight junctional protein expression. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 285 (6), H2820-H2831 (2003).
  5. McCaffrey, G., et al. Occludin oligomeric assemblies at tight junctions of the blood-brain barrier are altered by hypoxia and reoxygenation stress. J Neurochem. 110 (1), 58-71 (2009).
  6. Lochhead, J. J., et al. Oxidative stress increases blood-brain barrier permeability and induces alterations in occludin during hypoxia-reoxygenation. J Cereb Blood Flow Metab. 30 (9), 1625-1636 (2010).
  7. Lucke-Wold, B. P., et al. Bryostatin-1 Restores Blood Brain Barrier Integrity following Blast-Induced Traumatic Brain Injury. Mol Neurobiol. 52 (3), 1119-1134 (2015).
  8. Campos, C. R., Ocheltree, S. M., Hom, S., Egleton, R. D., Davis, T. P. Nociceptive inhibition prevents inflammatory pain induced changes in the blood-brain barrier. Brain Res. , 6-13 (2008).
  9. Ronaldson, P. T., Demarco, K. M., Sanchez-Covarrubias, L., Solinsky, C. M., Davis, T. P. Transforming growth factor-beta signaling alters substrate permeability and tight junction protein expression at the blood-brain barrier during inflammatory pain. J Cereb Blood Flow Metab. 29 (6), 1084-1098 (2009).
  10. Seelbach, M. J., Brooks, T. A., Egleton, R. D., Davis, T. P. Peripheral inflammatory hyperalgesia modulates morphine delivery to the brain: a role for P-glycoprotein. J Neurochem. 102 (5), 1677-1690 (2007).
  11. Ronaldson, P. T., Finch, J. D., Demarco, K. M., Quigley, C. E., Davis, T. P. Inflammatory pain signals an increase in functional expression of organic anion transporting polypeptide 1a4 at the blood-brain barrier. J Pharmacol Exp Ther. 336 (3), 827-839 (2011).
  12. Pop, V., et al. Early brain injury alters the blood-brain barrier phenotype in parallel with beta-amyloid and cognitive changes in adulthood. J Cereb Blood Flow Metab. 33 (2), 205-214 (2013).
  13. Thompson, B. J., et al. Hypoxia/reoxygenation stress signals an increase in organic anion transporting polypeptide 1a4 (Oatp1a4) at the blood-brain barrier: relevance to CNS drug delivery. J Cereb Blood Flow Metab. 34 (4), 699-707 (2014).
  14. Tome, M. E., et al. P-glycoprotein traffics from the nucleus to the plasma membrane in rat brain endothelium during inflammatory pain. J Cereb Blood Flow Metab. 36 (11), 1913-1928 (2016).
  15. Slosky, L. M., et al. Acetaminophen modulates P-glycoprotein functional expression at the blood-brain barrier by a constitutive androstane receptor-dependent mechanism. Mol Pharmacol. 84 (5), 774-786 (2013).
  16. Artus, C., et al. The Wnt/planar cell polarity signaling pathway contributes to the integrity of tight junctions in brain endothelial cells. J Cereb Blood Flow Metab. 34 (3), 433-440 (2014).
  17. Yu, H., et al. Long-term exposure to ethanol downregulates tight junction proteins through the protein kinase Calpha signaling pathway in human cerebral microvascular endothelial cells. Exp Ther Med. 14 (5), 4789-4796 (2017).
  18. Abdullahi, W., Brzica, H., Ibbotson, K., Davis, T. P., Ronaldson, P. T. Bone morphogenetic protein-9 increases the functional expression of organic anion transporting polypeptide 1a4 at the blood-brain barrier via the activin receptor-like kinase-1 receptor. J Cereb Blood Flow Metab. 37 (7), 2340-2345 (2017).
  19. Mesev, E. V., Miller, D. S., Cannon, R. E. Ceramide 1-Phosphate Increases P-Glycoprotein Transport Activity at the Blood-Brain Barrier via Prostaglandin E2 Signaling. Mol Pharmacol. 91 (4), 373-382 (2017).
  20. Betz, A. L., Csejtey, J., Goldstein, G. W. Hexose transport and phosphorylation by capillaries isolated from rat brain. Am J Physiol. 236 (1), C96-C102 (1979).
  21. Yousif, S., Marie-Claire, C., Roux, F., Scherrmann, J. M., Decleves, X. Expression of drug transporters at the blood-brain barrier using an optimized isolated rat brain microvessel strategy. Brain Res. 1134 (1), 1-11 (2007).
  22. McCaffrey, G., et al. Tight junctions contain oligomeric protein assembly critical for maintaining blood-brain barrier integrity in vivo. J Neurochem. 103 (6), 2540-2555 (2007).
  23. Brzica, H., et al. The liver and kidney expression of sulfate anion transporter sat-1 in rats exhibits male-dominant gender differences. Pflugers Arch. 457 (6), 1381-1392 (2009).
  24. Ronaldson, P. T., Bendayan, R. HIV-1 viral envelope glycoprotein gp120 produces oxidative stress and regulates the functional expression of multidrug resistance protein-1 (Mrp1) in glial cells. J Neurochem. 106 (3), 1298-1313 (2008).
  25. Pustylnikov, S., Sagar, D., Jain, P., Khan, Z. K. Targeting the C-type lectins-mediated host-pathogen interactions with dextran. J Pharm Pharm Sci. 17 (3), 371-392 (2014).
  26. Obermeier, B., Daneman, R., Ransohoff, R. M. Development, maintenance and disruption of the blood-brain barrier. Nat Med. 19 (12), 1584-1596 (2013).
  27. Abdullahi, W., Davis, T. P., Ronaldson, P. T. Functional Expression of P-glycoprotein and Organic Anion Transporting Polypeptides at the Blood-Brain Barrier: Understanding Transport Mechanisms for Improved CNS Drug Delivery? AAPS J. 19 (4), 931-939 (2017).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Neurosciencesorunu 135kan beyin bariyerinibeyin y zdekiDextran ay rmafarkl aral klarlaendotel h cremembran proteinlerininmolek ler Farmakolojita y c lars k kav aklarWestern Blot

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır