JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu makalede, bir kısıtlamacı kullanarak kronik immobilize fareler depresif benzeri davranış indüksiyon için Basitleştirilmiş ve standartlaştırılmış bir protokol sağlar. Buna ek olarak, depresyon indüksiyonu doğrulamak için davranış ve fizyolojik teknikler açıklanmıştır.

Özet

Depresyon henüz tam olarak anlaşılmadı, ancak çeşitli etken faktörler bildirilmiştir. Son zamanlarda, depresyon prevalansı arttı. Ancak, depresyon veya depresyon araştırma için terapötik tedaviler az. Böylece, mevcut yazıda, biz hareket kısıtlaması ile indüklenen depresyon bir fare modeli öneriyoruz. Kronik hafif stres (CMS) depresif benzeri davranışları teşvik etmek için tanınmış bir tekniktir. Ancak, çeşitli hafif gerilimlerin bir kombinasyonundan oluşan karmaşık bir prosedür gerektirir. Buna karşılık, kronik immobilizasyon stres (BDT), belirli bir süre için bir kısıtlama kullanarak hareketi kısıtlayarak depresif davranışı tetikleyen bir kısıtlama modelinden değiştirilmiş, kolayca erişilebilen bir kronik stres modelidir. Depresif benzeri davranışları değerlendirmek için, sakaroz tercih testi (SPT), kuyruk süspansiyon testi (TST), ve stıtk tahlil stres Marker kortikosteron seviyeleri ölçmek için bu deney birleştirilir. Açıklanan protokoller, CIS indüksiyonu ve depresyon doğrulama için davranış ve fizyolojik faktörlerin değişikliklerin değerlendirilmesi göstermektedir.

Giriş

Major depresif bozukluk (MDD) dünya çapında zihinsel özürlülük önde gelen nedenidir, beklenenden daha hızlı artan bir insidansı ile. 2001 yılında, Dünya Sağlık Örgütü MDD 2020 tarafından dünyada ikinci en yaygın hastalık olacağını tahmin etmiştir. Ancak, zaten ikinci en yaygın 20131oldu. Buna ek olarak, mevcut antidepresanlar gecikme etkinliği, ilaç direnci, Relapse ve çeşitli yan etkileri2,3dahil olmak üzere birçok sınırlama vardır. Araştırmacılar bu nedenle daha etkili antidepresanlar geliştirmelidir. Ancak MDD 'nin belirsiz patofizyolojisi, yeni antidepresanların gelişmesine engel teşkil etmiştir.

Uzun vadeli stres MDD için ana risk faktörüdür. Aynı zamanda MDD etiyolojisi4,5ile ilgili Hipotalamik-hipofiz-adrenal (hPa) eksen, disfonksiyon neden olabilir. Daha önce açıklandığı gibi, hPa eksen stres kaynaklı psikiyatrik patofizyolojide depresyon ve anksiyete bozuklukları da dahil olmak üzere önemli bir rol oynar kortikoone seviyeleri artırarak6,7,8, 9. many hayvan modelleri, MDD4olan hastalarda gözlenen hPa ekseninin sürekli aktivasyonuna dayanmaktadır. Dahası, kronik stres ve subkutan enjekte glukokortikoidler tarafından indüklenen yüksek glukokortikoidler nöronal hücre ölümü ile birlikte depresif davranışlar neden, Nörojen süreçlerin atrofi, ve kemirgenler beynin azaltılmış yetişkin nörojenezi10 , 11. depresyon ile ilişkili başka bir önemli beyin alanı medial prefrontal korteks (MPFC). MPFC hipotalamus ve amigdala gibi beyin subregions kontrol önemli bir rol oynar, bu kontrol duygusal davranış ve stres tepkiler,8,9. Örneğin, dorsal MPFC kaynaklı hPa eksen disfonksiyonunda lezyonlar ve kısıtlama stresi nedeniyle Gelişmiş kortikoone salgılanması12,13. Yeni bir çalışmada aynı zamanda tekrarlanan kısıtlama stres artmış kortikosteron seviyeleri gösterdi, hangi glutamat ile glüamin takviyesi tarafından azalmış olabilir-glutamin döngüsü nöronlar ve astrosit arasında mPFC9.

MDD etiyolojisini incelemek için kullanılan ilk kronik stres paradigması Katz14tarafından önerilmiştir. Willner ve al. sonra Katz bulguları dayalı bir kronik hafif stres (CMS) modeli önerdi. Bu modelin, antidepresanların CMS kaynaklı anhedonik davranış gibi15,16' ya geri yüklendiğini gözlemleyerek öngörü geçerliliği olduğunu doğruladı. Tipik olarak, CMS modeli hafif gürültü, kafes eğme, ıslak yatak, değiştirilmiş ışık-karanlık döngüleri, kafes sallayarak, zorla yüzme ve sosyal yenilgi gibi çeşitli hafif gerilimlerin bir kombinasyonu oluşur. CMS modeli yaygın araştırmacılar tarafından kullanılmaktadır; Ancak, bu model kötü çoğaltabilirlik ve zaman ve enerji-verimsizdir. Bu nedenle, depresyon değerlendirmek için depresif benzeri davranış ve fizyolojik analiz indüksiyon için standardize ve basitleştirilmiş bir protokol için artan bir talep vardır. CMS modeline kıyasla, kronik immobilizasyon stres (BDT; Ayrıca kronik kısıtlama stres olarak da bilinir) modeli daha basit ve daha etkilidir; Bu nedenle, BDT modeli yaygın kronik stres çalışmaları kullanılabilir17,18,19,20,21,22,23, 24. Buna ek olarak, BDT hem erkek hem de kadın fareler depresif davranışlar geliştirmek için kullanılabilir25,26. BDT döneminde, hayvanlar 2 veya 4 hafta9,27,28için günde 1-8 saat boyunca vücut uygun boyutta bir silindir yerleştirilir. Bu, 2 hafta boyunca günde 2 saat için kısıtlama stres koşulu fareler en az ağrı ile depresif davranışlar neden yeterlidir9,28. Kısıtlama koşullarında kan kortikoone seviyeleri hızla arttı9,28,29. Çeşitli çalışmalar BDT modelinin öngörü geçerliliği olduğunu göstermiştir, BDT kaynaklı depresif belirtileri antidepresanlar tarafından restore edildiğini teyit19,20,30,31. Burada, BDT 'nin ayrıntılı prosedürlerini, ayrıca CIS 'den sonra bazı davranışsal ve fizyolojik sonuçları rapor ediyoruz.

Protokol

Tüm deneysel protokoller ve hayvan bakımı, Gyeongsang Ulusal Üniversitesi (GLA-100917-M0093) hayvan araştırmaları için üniversite Hayvansal bakım Komitesi 'nin yönergelerine göre yapılmıştır.

1. malzemeler

  1. Fare
    1. Postnatal hafta 7 ' de 22 – 24 g tartım C57BL/6 gerinim arka planı kullanın. Deneylerden 1 hafta önce üreme odasında habituate.
      Not: tüm fareler bir laboratuar hayvan şirketi satın alındı.
    2. 12 saatlik ışık/karanlık döngüsünün altında (22 – 24 °C) sıcaklık kontrollü Vivarium (saat 6:00 ' de ışıklar) altında tek başına ev fareler, normal laboratuar Chow ve su mevcut reklam libitum ile.
  2. Bağı
    1. Bir kare kaide üzerinde sabit ve depresif davranışlar (Şekil 1a) üretmek için bir silindirik, şeffaf, akrilik tank (yükseklik = 8,5 cm, çap = 2,5 cm) kullanın. Bu silindir çapı, böylece fare çevirmek ve ileri veya geri hareket edemez vücut sığacak şekilde yapılmıştır. Kısıtlama ticari olarak satın alınabilir veya laboratuvarda yapılabilir.
  3. Kuyruk süspansiyon aparatı
    1. Saydam akrilik yapılmış makul boyutta kuyruk süspansiyon kutusu kullanın (yükseklik = 30 cm, genişlik = 20 cm, uzunluk = 20, Şekil 1B). Hayvanlar arasındaki etkileşimleri önlemek için, kutu içinde dikdörtgen bölümler kullanın, böylece zemin ve üç dört duvar akrilik plakalar tarafından engellenir. Video kaydına izin vermek ve yatay çubuğu düzeltmek için kutunun kalan iki tarafını açık bırakın. Kutu ticari olarak satın alınabilir veya laboratuvarda yapılabilir.
  4. Video kayıt cihazı ve video izleme yazılımı
    1. Davranış deneyinin kaydedilmesine izin vermek için bir bilgisayara ve bir tripod (veya diğer destek ürünlerine) bağlı bir siyah ve beyaz ekran kapalı devre televizyon kamerası ( malzeme tablosunabakın) kullanın. Video kaydı, bu denemede davranışsal skorlamaya izin vermek için gereklidir, çünkü en az iki fare aynı anda test edilir.
    2. Video verilerinin video izleme yazılımı kullanılarak analiz edilmesine izin verecek kadar yüksek olduğundan emin olun (bkz. malzeme tablosu) bağlı bilgisayarda yüklü.

2. BDT kısıtlama tarafından depresyon indüksiyon

Not: fareyi hafifçe, ancak güvenle sıkıca tutun. Hem kaba hem de belirsiz kullanım, deneyde başka bir stres faktörüdür ve fare ile mücadele, ısırma ve çizilmeye yönelik önemli bir nedenidir.

  1. Dijital lüks metre kullanarak oda ışığını ışık (200 lux) koşullarına ayarlayın.
  2. Test ve deneme önce en az 30 dakika için test odasına fareyi yerleştirmeden önce en az bir hafta içinde ayrı bir kafeste fareyi ev.
    Not: fareleri, denemeden en az 3 gün öncesine kadar en az günde bir kez ele alın, böylece fareler deneylere aşina olur. Deneyden önce bir adaptasyonel süre fareler test odası gibi durum, boyunca uyum sağlamasına emin olmak için gereklidir.
  3. Fareyi Tensing önlemek için yavaşça fare kuyruğu tutun ve sonra dikkatle kaba bir yüzeye (kafes veya kafes kapağı tel çubuk üst) yerleştirin.
  4. Küçük bir beyaz havlu ile kısıtlama kapağı, ve sonra hafifçe fare kısıtlunun açılışında, böylece fareyi isteksiz gönüllü girer.
    Not: Bu durumda, fare ile kısıtlama girdiği için ters yönde konumlandırılmış. Gönüllü olarak kısıtlama girmek için fareyi yol için, kısıtlama iç koyu yapmak için küçük bir havlu ile kaplıdır.
  5. Kuyruk, ayaklar ve testisler gibi vücudun zarar görmesini önlemek için dikkatli olmak, mümkün olduğunca sıkı fare dizginlemek için kapatma yerleştirin.
  6. Fare 2 saat/gün (9:00 A.M. için 11:00 A.M.) için 15 ardışık gün için restrain.
  7. Ölçmek vücut ağırlığı ve gıda alımı her 48 h kısıtlayıcı maruz kalma sırasında (yani, gıda alımı miktarı sırasında 48 h sırasında hareket kısıtlama başlatılması).
    Not: vücut ağırlığı ve gıda alımı ölçümünde, BDT sırasında test odasında ev kafeslerinde kontrol fareler yerleştirin. Diğer çevresel faktörlerin BDT fareler için aynı olduğundan emin olun.
  8. Sukroz tercih testi (SPT) ve kuyruk süspansiyon testi (TST) gibi davranışsal testler yaparak depresyonun indüksiyonunu onaylayın (4 ve 5. adımlara bakın).
  9. ELISA tahlil kullanarak stres Marker kortikoone ölçerek depresyon indüksiyonu onaylayın (Bölüm 6 bakın).

3. sukrose tercih testi

  1. Test etmeden önce, iki içme şişesi varlığı için fareler habituate (bir içeren 0,1 M sakaroz ve diğer içeren düz su) için 48 h. 24 h sonra iki şişe konumlarını geçiş bir yan önyargı tarafından üretilen herhangi bir şok azaltmak için.
  2. 3 günde, 24 saat boyunca suyun fareler mahrum.
  3. SPT deney gününde, 6 saat için iki içme şişesi fareler açığa. 3 saat sonra su şişelerinin konumunu değiştirin.
  4. Sakaroz çözeltisi ve tüketilen suyun hacmini (ml) kaydedin ve sonra hayvanların sukrose benzeşimini hesaplayın.
  5. Genel olarak, test sırasında toplam sıvı tüketimi üzerinde sukroz tercih hacminin bir yüzdesi olarak sakaroz tercihi hesaplayın.

4. kuyruk süspansiyon testi

  1. TST başlamadan önce BDT kaynaklı fareler en az 30 dk test odasına getirin.
  2. Oda ışığını Dim (50 lux) koşullarına ayarlayın.
  3. En yüksek çözünürlüklü video dosyasını elde etmek için, kamerayı fareyi olabildiğince yakın bir yere yerleştirin (farenin 40 cm civarında).
  4. Sellophane yapışkan bant (kuyruk ucunda uzaklığı 1 cm) kullanarak yatay çubuk (alt satırdan 30 cm) sıkıca fareyi askıya alın. En kısa sürede diğer stres kaynaklarını en aza indirmek için fare teyp uygulama işlemini tamamlayın.
  5. Fare süspansiyon kutusunun ortasına yerleştirildikten sonra, kayıt yapmaya başlayın ve 6 dakika boyunca sürekli olarak davranış değişikliklerini inceleyin.
    Not: fare kuyruğunu tırmanmaya çalışırsa, bunu önlemek için bir sopa veya tırmanmaya stoper kullanın.
  6. Deney sonunda, onun ev kafesi için fareyi hareket ettirin ve dikkatle kuyruğundan teyp kaldırın.
  7. Video izleme yazılımını kullanarak hareketli dönemlerin birikmiş süresini analiz edin.
    Not: hareketsizlik süresi en önemli BDT parametresidir. Bu, yazılımın seviye filtreleme cihazı içinde yer alan bir hareket eşik açısından tanımlanan, hareketli dönemlerin birikmiş süresi olarak hesaplanabilir.

5. ELISA tarafından kandaki kortikoone düzeylerini ölçme

Not: davranış testinden bir gün sonra, fareler kan toplama için feda edilir.

  1. Anestezi kadar bir indüksiyon odasında% 5 izofluran ile fareyi anestezize. Ameliyat sırasında uyanmayı önlemek için fare indüksiyon odasında yeterli zaman (en az 2 dakika) olduğundan emin olun.
  2. 1 mL şırıngayı kullanarak kalbinden kan toplayın ve kanı buz üzerinde K3EDTA içeren vacutainers içinde saklayın (saat 9 ' da)
  3. 4 °C ' de 15 dakika boyunca 1.000 × g 'de santrifüjleme ile ayrı plazma.
  4. Üreticinin protokolüne göre, kortikotek ELISA kiti (bkz. malzeme tablosu) kullanılarak plazma kortikoone seviyeleri ölçmek.

Sonuçlar

Temsili denemede tüm veriler grup başına 6-8 fareler tarafından elde edilmiştir. Şekil 1' de temsili materyaller ve fareyi gönüllü olarak eklemek için yöntem gösterilir.

BDT indüksiyonunda davranış testini ve kan örneklemesini gerçekleştirmek için fare, Şekil 2a'da özetlenen deneysel prosedüre tabi tutulmuştur. Şekil 2 ve Şekil 3' te gösterildiği gi...

Tartışmalar

Beynin karmaşıklığı ve MDD heterojenliği tamamen durumu yeniden hayvan modelleri oluşturmak için zor hale. Birçok araştırmacı bir endophenotype tabanlı yaklaşım32kullanarak bu zorluk üstesinden gelmiştir, hangi Anhedoni (ödüllendirici uyaranlara ilgi eksikliği) ve umutsuzluk evrimsel olarak korunan ve ölçülebilir davranışlar hayvan modellerinde kabul edilir, Ayrıca depresyon33hastalarda görülür. Şu anda, BDT ve MDD arasında translasyonel alaka...

Açıklamalar

Yazarların ifşa etmesi gereken hiçbir şey yok.

Teşekkürler

Bu araştırma, Eğitim Bakanlığı (NRF-2015R1A5A2008833 ve NRF-2016R1D1A3B03934279) tarafından finanse edilen Kore Ulusal Araştırma Vakfı (NRF) ile temel bilim araştırma programı tarafından destekleniyordu ve Sağlık Bilimleri Enstitüsü 'nün hibe (ıHS GNU-2016-02) Gyeongsang Ulusal Üniversitesi 'nde.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
1 ml disposable syringesSungshim MedicalP000CFDO
BalanceA&D CompanyFX-2000i
Ball nozzleJeung Do B&PJD-C-88
CCTV cameraKOCOMKCB-381
Corticosterone ELISA kitsCayman Chemical
Digital lux meterTESTES-1330A
Ethovision XT 7.1Noldus Information Technology
IsofluraneHANA PHARM CO., LTD.Ifran solution
MiceKoatechC57BL/6 strain
RestrainerDae-jong Instrument IndustryDJ-428
Saccharose (sucrose)DAEJUNG7501-4400
Small animal isoflurane anaesthetic systemSummit
Acrylic barThe apparatus was made in the lab for TST test
Tail suspension boxThe apparatus was made in the lab
TimerElectronics TomorrowTL-2530
Water bottleJeung Do B&PJD-C-79

Referanslar

  1. Ferrari, A. J., et al. Burden of Depressive Disorders by Country, Sex, Age, and Year: Findings from the Global Burden of Disease Study 2010. PLoS Medicine. 10 (11), (2013).
  2. Trivedi, M. H., et al. Evaluation of outcomes with citalopram for depression using measurement-based care in STAR*D: implications for clinical practice. The American Journal of Psychiatry. 163 (1), 28-40 (2006).
  3. Gartlehner, G., et al. Second-Generation Antidepressants in the Pharmacologic Treatment of Adult Depression: An Update of the 2007 Comparative Effectiveness Review. Second-Generation Antidepressants in the Pharmacologic Treatment of Adult Depression: An Update of the 2007 Comparative Effectiveness Review. [Internet]. , (2011).
  4. Checkley, S. The neuroendocrinology of depression and chronic stress. British Medical Bulletin. 52 (3), 597-617 (1996).
  5. Parker, K. J., Schatzberg, A. F., Lyons, D. M. Neuroendocrine aspects of hypercortisolism in major depression. Hormones and Behavior. 43 (1), 60-66 (2003).
  6. de Kloet, E. R., Joels, M., Holsboer, F. Stress and the brain: from adaptation to disease. Nature Reviews Neuroscience. 6 (6), 463-475 (2005).
  7. McEwen, B. S. Central effects of stress hormones in health and disease: Understanding the protective and damaging effects of stress and stress mediators. European Journal of Pharmacology. 583 (2-3), 174-185 (2008).
  8. Chiba, S., et al. Chronic restraint stress causes anxiety- and depression-like behaviors, downregulates glucocorticoid receptor expression, and attenuates glutamate release induced by brain-derived neurotrophic factor in the prefrontal cortex. Progress in Neuro-Psychopharmacology and Biological Psychiatry. 39 (1), 112-119 (2012).
  9. Son, H., et al. Glutamine has antidepressive effects through increments of glutamate and glutamine levels and glutamatergic activity in the medial prefrontal cortex. Neuropharmacology. 143, 143-152 (2018).
  10. Gregus, A., Wintink, A. J., Davis, A. C., Kalynchuk, L. E. Effect of repeated corticosterone injections and restraint stress on anxiety and depression-like behavior in male rats. Behavioural Brain Research. 156 (1), 105-114 (2005).
  11. Woolley, C. S., Gould, E., McEwen, B. S. Exposure to excess glucocorticoids alters dendritic morphology of adult hippocampal pyramidal neurons. Brain Research. 531 (1-2), 225-231 (1990).
  12. Diorio, D., Viau, V., Meaney, M. J. The role of the medial prefrontal cortex (cingulate gyrus) in the regulation of hypothalamic-pituitary-adrenal responses to stress. The Journal of Neuroscience. 13 (9), 3839-3847 (1993).
  13. Figueiredo, H. F., Bruestle, A., Bodie, B., Dolgas, C. M., Herman, J. P. The medial prefrontal cortex differentially regulates stress-induced c-fos expression in the forebrain depending on type of stressor. European Journal of Neuroscience. 18 (8), 2357-2364 (2003).
  14. Katz, R. J. Animal model of depression: Effects of electroconvulsive shock therapy. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 5 (2), 273-277 (1981).
  15. Willner, P., Towell, A., Sampson, D., Sophokleous, S., Muscat, R. Reduction of sucrose preference by chronic unpredictable mild stress, and its restoration by a tricyclic antidepressant. Psychopharmacology. 93 (3), 358-364 (1987).
  16. Slattery, D. A., Cryan, J. F. Modelling depression in animals: at the interface of reward and stress pathways. Psychopharmacology. 234 (9-10), 1451-1465 (2017).
  17. Joo, Y., et al. Chronic immobilization stress induces anxiety- and depression-like behaviors and decreases transthyretin in the mouse cortex. Neuroscience Letters. 461 (2), 121-125 (2009).
  18. Jung, S., et al. Decreased expression of extracellular matrix proteins and trophic factors in the amygdala complex of depressed mice after chronic immobilization stress. BMC Neuroscience. 13 (1), (2012).
  19. Seo, J. S., et al. NADPH Oxidase Mediates Depressive Behavior Induced by Chronic Stress in Mice. Journal of Neuroscience. 32 (28), 9690-9699 (2012).
  20. Seo, J. S., et al. Cellular and molecular basis for stress-induced depression. Molecular Psychiatry. 22 (10), 1440-1447 (2016).
  21. Bowman, R. E., Zrull, M. C., Luine, V. N. Chronic restraint stress enhances radial arm maze performance in female rats. Brain Research. 904 (2), 279-289 (2001).
  22. McLaughlin, K. J., Baran, S. E., Wright, R. L., Conrad, C. D. Chronic stress enhances spatial memory in ovariectomized female rats despite CA3 dendritic retraction: Possible involvement of CA1 neurons. Neuroscience. 135 (4), 1045-1054 (2005).
  23. Qin, M., Xia, Z., Huang, T., Smith, C. B. Effects of chronic immobilization stress on anxiety-like behavior and basolateral amygdala morphology in Fmr1 knockout mice. Neuroscience. 194, 282-290 (2011).
  24. Popoli, M., Yan, Z., McEwen, B. S., Sanacora, G. The stressed synapse: The impact of stress and glucocorticoids on glutamate transmission. Nature Reviews Neuroscience. 13 (1), 22-37 (2012).
  25. Bourke, C. H., Neigh, G. N. Behavioral effects of chronic adolescent stress are sustained and sexually dimorphic. Hormones and Behavior. 60 (1), 112-120 (2011).
  26. Eiland, L., Ramroop, J., Hill, M. N., Manley, J., McEwen, B. S. Chronic juvenile stress produces corticolimbic dendritic architectural remodeling and modulates emotional behavior in male and female rats. Psychoneuroendocrinology. 37 (1), 39-47 (2012).
  27. Sun, L., et al. Effects of Hint1 deficiency on emotional-like behaviors in mice under chronic immobilization stress. Brain and Behavior. 7 (10), 1-11 (2017).
  28. Kim, K. S., Han, P. L. Optimization of chronic stress paradigms using anxiety-and depression-like behavioral parameters. Journal of Neuroscience Research. 83 (3), 497-507 (2006).
  29. Kim, G., et al. The GABAB receptor associates with regulators of G-protein signaling 4 protein in the mouse prefrontal cortex and hypothalamus. BMB Reports. 47 (6), (2014).
  30. Jangra, A., et al. Honokiol abrogates chronic restraint stress-induced cognitive impairment and depressive-like behaviour by blocking endoplasmic reticulum stress in the hippocampus of mice. European Journal of Pharmacology. 770, 25-32 (2016).
  31. Hurley, L. L., Akinfiresoye, L., Kalejaiye, O., Tizabi, Y. Antidepressant effects of resveratrol in an animal model of depression. Behavioural Brain Research. 268 (5), 1-7 (2014).
  32. Gottesman, I. I., Gould, T. D. The endophenotype concept in psychiatry: etymology and strategic intentions. The American Journal of Psychiatry. 160 (4), 636-645 (2003).
  33. Cryan, J. F., Mombereau, C. In search of a depressed mouse: Utility of models for studying depression-related behavior in genetically modified mice. Molecular Psychiatry. 9 (4), 326-357 (2004).
  34. Son, H., Jung, S., Shin, J., Kang, M., Kim, H. Anti-Stress and Anti-Depressive Effects of Spinach Extracts on a Chronic Stress-Induced Depression Mouse Model through Lowering Blood Corticosterone and Increasing Brain Glutamate and Glutamine Levels. Journal of Clinical Medicine. 7 (11), 406 (2018).
  35. Crowley, J. J., Blendy, J. A., Lucki, I. Strain-dependent antidepressant-like effects of citalopram in the mouse tail suspension test. Psychopharmacology. 183 (2), 257-264 (2005).
  36. Ripoll, N., David, D. J. P., Dailly, E., Hascoët, M., Bourin, M. Antidepressant-like effects in various mice strains in the tail suspension test. Behavioural Brain Research. 143 (2), 193-200 (2003).
  37. Mayorga, A. J., Lucki, I. Limitations on the use of the C57BL/6 mouse in the tail suspension test. Psychopharmacology. 155 (1), 110-112 (2001).
  38. Cryan, J. F., Mombereau, C., Vassout, A. The tail suspension test as a model for assessing antidepressant activity: review of pharmacological and genetic studies in mice. Neurosci Biobehav Rev. 29 (4-5), 571-625 (2005).
  39. Can, A., Dao, D. T., Terrillion, C. E., Piantadosi, S. C., Bhat, S., Gould, T. D. The Tail Suspension Test. Journal of Visualized Experiments. (58), 2-7 (2011).
  40. Weiss, I. C., Pryce, C. R., Jongen-Rêlo, A. L., Nanz-Bahr, N. I., Feldon, J. Effect of social isolation on stress-related behavioural and neuroendocrine state in the rat. Behavioural Brain Research. 152 (2), 279-295 (2004).
  41. Hilakivi, L. A., Ota, M., Lister, R. Effect of isolation on brain monoamines and the behavior of mice in tests of exploration, locomotion, anxiety and behavioral “despair.”. Pharmacology, Biochemistry and Behavior. 33 (2), 371-374 (1989).
  42. Dalla, C., Pitychoutis, P. M., Kokras, N., Papadopoulou-Daifoti, Z. Sex differences in response to stress and expression of depressive-like behaviours in the rat. Current Topics In Behavioral Neurosciences. 8 (2), 97-118 (2011).
  43. Bangasser, D. A., Valentino, R. J. Sex differences in stress-related psychiatric disorders: Neurobiological perspectives. Frontiers in Neuroendocrinology. 35 (3), 303-319 (2014).
  44. Palanza, P. Animal models of anxiety and depression: How are females different?. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 25 (3), 219-233 (2001).
  45. Novais, A., Monteiro, S., Roque, S., Correia-Neves, M., Sousa, N. How age, sex and genotype shape the stress response. Neurobiology of Stress. 6, 44-56 (2017).
  46. Kim, J. G., Jung, H. S., Kim, K. J., Min, S. S., Yoon, B. J. Basal blood corticosterone level is correlated with susceptibility to chronic restraint stress in mice. Neuroscience Letters. 555, 137-142 (2013).
  47. Jeong, J. Y., Lee, D. H., Kang, S. S. Effects of Chronic Restraint Stress on Body Weight, Food Intake, and Hypothalamic Gene Expressions in Mice. Endocrinology and Metabolism. 28 (4), 288 (2013).
  48. Gould, T. D., Dao, D. T., Kovacsics, C. E. . Mood and anxiety related phenotypes in mice: characterization using behavioral tests. , (2009).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Davransay 147n robilimhayvan modelidepresyonkronik immobilizasyon streskuyruk s spansiyon testisukroz tercih testikortikooneC57BL 6 gerinim

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır