JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Buradaki protokol, kristaloidlerin övolemik bir domuz/domuz yavrusunun merkezi damarlarına sürekli uygulanmasının, akut hacim aşırı yüklenmesinin fizyolojik etkilerinin uygun şekilde araştırılmasına nasıl izin verdiğini göstermektedir.

Özet

Bu protokol, yetişkin Yorkshire domuzları ve domuz yavruları için akut hacimli aşırı yük domuz modelini tanımlar. Her iki domuz çağı da genel anestezi, endotrakeal entübasyon ve mekanik ventilasyona tabi tutulur. Bir santral venöz kateter ve bir arteriyel kateter, sırasıyla dış juguler ven ve karotis artere cerrahi kesi yoluyla yerleştirilir. Bir pulmoner arter kateteri, merkezi venöz kateterin bir giriş kılıfından yerleştirilir. PlasmaLyte kristalloid çözeltisi daha sonra yetişkin domuzlarda 100 mL / dk oranında ve domuz yavrularında 10 dakika boyunca 20 mL / kg bolusta uygulanır. Hipervolemi, kalp debisinde% 15 azalma veya yetişkin domuzlarda 5 L'de ve domuz yavrularında 500 mL'de elde edilir. Kalp atış hızı, solunum hızı, gelgit sonu karbondioksit, oksijene doymuş hemoglobin fraksiyonu, arteriyel kan basıncı, merkezi venöz basınç, pulmoner arter basıncı, pulmoner kılcal kama basıncı, kısmi arteriyel oksijen basıncı, laktat, pH, baz fazlalığı ve oksijene doymuş hemoglobinin pulmoner arter fraksiyonu gibi hemodinamik veriler deney sırasında izlenir. Bu modelle gözlemlenen ön veriler, yetişkin domuzlarda merkezi hemodinamik parametreler ile akut hacim aşırı yüklenmesi arasında istatistiksel olarak anlamlı değişiklikler ve güçlü doğrusal regresyonlar göstermiştir. Sadece pulmoner kılcal kama basıncı, domuz yavrularında akut hacim aşırı yüklenmesine hem doğrusal bir regresyon hem de istatistiksel bir anlamlılık gösterdi. Bu modeller, bilim insanlarına akut hacim aşırı yüklenmesini anlamak ve önlemek için yaşa uygun terapötik ve izleme stratejilerinin keşfedilmesinde yardımcı olabilir.

Giriş

Vücut sıvı hacminde ani ve aşırı artış ile karakterize bir durum olan akut hacim aşırı yüklenmesi, kapsamlı bir çalışma gerektiren kritik bir tıbbi sorundur1. Sıklıkla agresif ve/veya uygun olmayan sıvı resüsitasyonu, kan transfüzyonu ve kalp yetmezliği ve böbrek yetmezliği gibi komorbiditelerle ilişkilidir. Ciddi morbiditeye ve mortalite olasılığının artmasına neden olabilir 1,2,3. Klinik önemine rağmen, akut aşırı hacim yükünün patofizyolojisi tam olarak anlaşılamamıştır 3,4. Ayrıca, spesifik tanı kriterlerinin ve etkili izleme stratejilerinin olmaması, titiz bilimsel araştırmalara duyulan ihtiyacın altını çizmektedir. Akut hacim aşırı yüklenmesini incelemek sadece hasta sonuçlarını iyileştirmek için değil, aynı zamanda insan fizyolojisi anlayışımızı ilerletmek için de çok önemlidir. Vücudun sıvı homeostaz mekanizmalarını ve aşırı strese verdikleri tepkileri keşfetmek için eşsiz bir fırsat sunar1. Liberal sıvı resüsitasyonunu önlemek ve daha hedefe yönelik bir resüsitasyon yaklaşımını teşvik etmek için hedefe yönelik sıvı tedavisini (GDFT) araştıran çalışmalar, perioperatif ortamlarda ve sepsiste morbidite ve mortalitede iyileşme göstermiştir 1,3,4. Bu çalışmalarda, santral venöz basınç ölçümleri ile santral venöz kateterler, ScVO2, arteriyel hat laktat ölçümleri, transözofageal Doppler yoluyla inme hacmi/kardiyak debi ölçümleri, lityum dilüsyon kardiyak debi, arteriyel nabız kontur analizi, torasik elektriksel biyoempedans ve transpulmoner termodilüsyon 1,3,4,5. Hacim durumunu değerlendirmek için kullanılan, her biri doğruluk ve kullanılabilirlik açısından sınırlamaları olan çoklu yaklaşımlar, intravasküler hacim değerlendirmesini geliştirerek GDFT'de önemli bir iyileşme için yer olduğunu göstermektedir 3,4.

Domuz modelleri, insan kardiyovasküler fizyolojisiçalışmasında özellikle değerli araçlar olarak ortaya çıkmıştır 6. Kalp büyüklüğü, koroner anatomi ve hemodinamik parametreler gibi domuz ve insan kardiyovasküler sistemleri arasındaki anatomik ve fizyolojik benzerlikler, domuzları translasyonel araştırmalar için ideal modeller haline getirir6. Ayrıca, domuzlar aşırı hacim yüklenmesine insanlarla karşılaştırılabilir bir tepki sergilerler, bu da onları akut hacim aşırı yüklenmesinin patofizyolojisini ve çeşitli terapötik müdahalelerin etkinliğini incelemek için mükemmel modeller haline getirir 7,8. Domuz modellerinin kullanılması, insan çalışmalarında genellikle elde edilemeyen gerçek zamanlı hemodinamik ölçümler ve doku örnekleri gibi yüksek kaliteli, ayrıntılı veri noktalarının toplanmasına da olanak tanır7. Veri noktalarının bu üstünlüğü, akut hacim aşırı yükünün daha kapsamlı bir şekilde anlaşılmasını sağlar ve bu da sonuçta daha etkili izleme ve önleme stratejilerinin geliştirilmesine katkıda bulunabilir.

Akut hacim aşırı yüklenmesinin incelenmesinde domuz yavrusu modellerinin kullanılması, özellikle bu alandaki pediatrik araştırmaların azlığı göz önüne alındığında büyük önem taşımaktadır. Domuz yavruları, insan bebeklerine fizyolojik ve gelişimsel benzerlikleri ile, pediatrik popülasyonu anlamak için yetişkin meslektaşları gibi paha biçilmez bir model sağlar 9,10,11. Konjenital kalp hastalıkları veya yoğun bakım müdahaleleri ile ilgili olanlar gibi pediatrik hastalarda aşırı hacim yüklenmesi koşullarının yüksek insidansına rağmen, bu alandaki araştırmalar, özellikle insan bebeklerini doğru bir şekilde temsil eden hayvan modelleri söz konusu olduğunda, belirgin şekilde sınırlı kalmıştır 5,12,13. Domuz yavrusu modellerinin kullanılması, akut hacim aşırı yüklenmesinin pediatrik spesifik patofizyolojisi ve potansiyel terapötik stratejilerin etkinliği hakkında fikir vererek bu boşluğu kapatmaya yardımcı olabilir 7,11.

Bu el yazması, akut hacim aşırı yüklenmesini indüklemek ve bu tür hacim değişikliklerinin hacim durumunun izlenmesinde kullanılan ortak periferik ve merkezi veri noktaları üzerindeki hemodinamik etkilerini incelemek için hem yetişkin hem de pediatrik domuzların doğrudan dış juguler venine sürekli bir kristalloid çözelti infüzyonu kullanma yöntemini açıklamaktadır. Ana hatlarıyla belirtilen bu yöntem, gelecekteki bilim adamlarının akut hacim aşırı yüklenmesinin altında yatan patofizyolojik mekanizmaları araştırmalarına ve potansiyel üstün izleme modalitelerini ve yeniliklerini değerlendirmelerine yardımcı olmak için değerli bir araç olarak hizmet etmelidir.

Protokol

Çalışma protokolü, Vanderbilt Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (protokol M1800176-00) tarafından onaylandı ve Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı için Ulusal Sağlık Enstitüsü Yönergelerine sıkı sıkıya bağlı kaldı. Bu deneyde yaklaşık 40-45 kg ve 4-10 kg ağırlığındaki erkek ve dişi Yorkshire domuzları ve domuz yavruları kullanılmıştır. Mevcut yaklaşım, sipariş edilen domuzlarda önceden var olan tıbbi durumlar için bir taramayı kapsamamaktadır. Bu uygulamanın istenen sonuçları potansiyel olarak etkileyebileceğini veya gizleyebileceğini kabul ederek, satıcının bilgilerine göre bu tür bir müdahale olasılığının düşük olduğuna dikkat etmek önemlidir. Sınırlama, prosedürün doğal bir yönü olarak kabul edilir ve kabul edilir.

1. Anestezi ve ventilasyon

  1. Yetişkin domuz modeli
    1. Ketamin (2.2 mg / kg) / ksilazin (2.2 mg / kg) / telazol (4.4 mg / kg) kas içine (IM) yavaşça enjekte ederek domuzu uyuşturun. İndüksiyondan hemen sonra, kulak kepçesinin arka tarafındaki merkezi veya marjinal kulak damarına 18-24G intravenöz (IV) bir kateter yerleştirilir. IV'ü 1 inç yapışkan bantla sabitleyin.
    2. Domuzu sırtüstü pozisyonda ameliyathane masasına yerleştirin. Yaşamsal belirtiler, uyaranlara yanıt verme, hareketin varlığı veya yokluğu, çene tonu gevşekliği, kalp atış hızındaki dalgalanmalar, gelgit sonu CO2 seviyelerindeki değişiklikler ve solunum hızındaki değişiklikler gibi faktörler tarafından belirlenen anestezi derinliğini değerlendirmek için belirli parametreleri denetlemekten sorumlu bağımsız bir hayvan laboratuvarı teknisyenine danışın. Bu değerlendirmeler, inhale anestezik dozajında ayarlamalara rehberlik eder.
    3. Domuzu doğrudan laringoskopi yoluyla 6,5 mm'lik bir endotrakeal tüp ile endotrakeal olarak entübe edin ve endotrakeal manşeti 3-5 mL hava ile şişirin. Domu, 8 mL / kg'lık bir tidal hacim, 35-40 mmHg'lik bir gelgit sonu CO2'ye titre edilmiş solunum hızı ve 5 cm H2O'luk pozitif ekspiratuar son basınç ile hacim kontrollü ventilasyonda tutun. % 1 izofluranın solunması yoluyla anesteziyi koruyun.
    4. Dişi domuzlarda idrar çıkış hacmini izlemek için üretraya bir Foley kateteri yerleştirin ve üretradan Foley yerleştirmenin anatomik zorluğuna ikincil olarak erkek domuzlara cerrahi olarak yerleştirin.
  2. Domuz yavrusu modeli
    1. Ketamin (2.2 mg / kg) / ksilazin (2.2 mg / kg) / telazol (4.4 mg / kg) / deksmedetomidin (0.005 mg / kg) anestezi solüsyonunu yaklaşık 5 haftalık bir domuz yavrusuna enjekte edin (yaklaşık 12 aylık insana eşdeğer) kas içi (IM) enjeksiyon yoluyla. Ardından, hemen 22-24G IV'ü mevcut en iyi damara, muhtemelen kulak kepçesinin arka tarafına yerleştirin.
    2. Domuz yavrusunu sırtüstü pozisyonda ameliyathane masasına yerleştirin.
    3. Doğrudan laringoskopi kullanarak, domuz yavrusunu 4.5-5.5 mm'lik bir endotrakeal tüp ile endotrakeal olarak entübe edin. Endotrakeal tüp manşetini, üzerine iğne takılı olmayan bir şırınga kullanarak 3-5 mL hava ile şişirin. Deksmedetomidin (0.005 - 0.01 mg / kg IV) yeniden uygulanarak veya uygulanmadan% 1 izofluran ile anesteziyi koruyun ve yeniden doz sırasında takdir edilen anestezi derinliğine bağlı olarak her 2 saatte bir.
    4. Hacim kontrollü ventilasyon ile 8 mL / kg'lık bir tidal hacim, 35-40 mmHg'lik bir gelgit sonu CO2'ye titre edilmiş solunum hızı ve 5 cm H2O'luk pozitif bir ekspiratuar son basınç koruyun.
    5. Dişi domuz yavrularında idrar çıkış hacmini izlemek için üretraya bir Foley kateteri yerleştirin. Foley kateterini, üretradan Foley yerleştirmenin anatomik zorluğuna ikincil olarak erkek domuz yavrularına cerrahi olarak yerleştirin.
      NOT: Ek olarak, buprenorfin / deksmedetomidin analjezik uygulaması, gerekli görüldüğü şekilde bolus uygulaması yoluyla gerçekleşecektir. Tutarlılığı korumak için, mekanik ventilatör üzerindeki solunum hızı, deney boyunca gelgit sonu CO2 seviyesini 35-40 mmHg aralığında tutacak şekilde ayarlanacaktır.

2. Kanülasyon ve izleme cihazı yerleşimi

  1. Yetişkin domuz modeli
    1. Tüm ön boynu% 2 kloroheksidin ovma solüsyonu ile dezenfekte edin ve% 5 povidon-iyot solüsyonu14 spreyi ile takip edin.
    2. Hem sağ hem de sol eksternal juguler (EJ) venleri ve internal karotid arterleri (CA) trakeanın hemen lateralinden bilateral vertikal insizyonlarla cerrahi olarak ortaya çıkarın ve monopolar koter ile vaskülatüre kadar inceleyin.
    3. Kelly doku makası ve Lahey ekartörleri ve/veya doku forsepsleri14 kullanarak kayış kaslarını ve yolunu gerektiği gibi inceleyin. Bilateral EJ ve CA'ları ortaya çıkarın.
    4. İki adet 8.5 Fransız (Fr) kanülünü Seldinger tekniğini15 kullanarak sağ EJ'ye yerleştirin. Kanüle edildikten sonra, sağ EJ'nin tanıtıcısından 7 Fr'lik bir pulmoner arter kateteri (PAC) yerleştirin. Hemodinamik izleme için bu doğru EJ kateterini ve PAC'yi kullanın.
    5. Sol EJ'yi 10 Fr'lik bir kanül ile kanüle edin ve PlasmaLyte solüsyonu ile doldurulmuş özel bir makaralı pompa hortumuna bağlayın.
      NOT: Dış juguler damarlar daha büyük çaplı olma eğilimindedir ve kalp kateterizasyonu için daha uygun açıdadır. Bu nedenlerden dolayı, domuz deneylerindeEJ'yi iç juguler (IJ) üzerinde kanüle etmeyi seçtik 1.
    6. Seldinger tekniğini15 kullanarak, deney boyunca invaziv kan basıncının izlenmesi için sağ CA'ya 4 Fr arteriyel bir çizgi yerleştirin.
    7. İstenen izlemeyi pig'e takın.
      1. Telemetri uçları ile kalp atış hızını (HR) ve sistolik kan basıncını (SBP), diyastolik kan basıncını (DBP) ve bir kan basıncı amplifikatörüne bağlı bir basınç dönüştürücüsünü CA kateterine bağlayarak ortalama arteriyel basıncı (MAP) izleyin.
      2. Ortalama pulmoner arter basıncını (MPAP), sistolik pulmoner arter basıncını (SPAP), diyastolik pulmoner arter basıncını (DPAP) ve merkezi venöz basıncı (CVP) uygun PAC portlarına bir kan basıncı amplifikatörüne bağlı bir basınç dönüştürücüsü takarak izleyin.
      3. SBP ve DBP arasındaki farkı bularak nabız basıncını belirleyin. Nabız basıncı değişkenliğini (PPV) hesaplamak için, solunum döngüsü boyunca hem inspirasyon hem de ekspirasyon sırasında en yüksek nabız basıncı seviyeleri arasındaki değişimi hesaplayın.
      4. LabChart 8'in Kan Basıncı Modülünü kullanarak ve bir PowerLab sistemi üzerinde çalışarak PPV ölçümlerini hesaplayın. Bu ayarda, minimum tepe yüksekliğinin 10 mmHg olarak ayarlandığı ve döngülerin 10 döngü boyunca ortalamasının alındığı Arteriyel Hat kanalında 3 dakikalık veri seçin. Yazılım modülünde, her bir darbe döngüsünün tepe noktaları otomatik olarak hesaplanabilir ve görsel olarak onaylanabilir. Elde edilen minimum darbe basıncı ve maksimum darbe basıncı daha sonra PPV'yi hesaplamak için kullanılır.
      5. Cihaza özel hacim/sıcaklık kalibrasyonu kullanarak termodilüsyon kardiyak çıkışını (CO) gerçekleştirin. PAC balonunu 1,5 mL hava ile şişirerek ve kateteri sağdan sola kısıtlı kan akışını temsil eden hem V hem de A dalgalarının görüntülenmesi olana kadar ilerleterek pulmoner kılcal kama basıncı (PCWP) elde edin. PCWP'yi, sona erme sonunda A dalgasının değerindeki değeri olarak okuyun.
    8. Akut hacim aşırı yüklenmesi başlamadan önce 8-10 mmHg'lik (övolemi) bir başlangıç PCWP'si elde etmek için PlasmaLyte16'yı yaklaşık 100 mL / dk oranında uygulayın.
      NOT: Övolemiye ulaşmak için gereken toplam hacim, Tartışmada ele alınan çok sayıda değişkene bağlı olarak değişir. Vanderbilt Üniversitesi Tıp Merkezi'nde bu deneysel protokole tabi tutulan domuzlarda ortalama olarak yaklaşık 500 mL'ye ihtiyaç vardır. Bu model, dengeli tamponlu kristalloid çözelti olarak PlasmaLyte kullanır. Diğer herhangi bir dengeli tamponlu kristaloidin (örneğin, Normosol-R, Laktasyonlu Ringer's) benzer sonuçlar vermesi muhtemeldir. Normal salin16'nın neden olduğu bilinen endotel hücre zarı bütünlüğü kaybını, endotel disfonksiyonunu ve asidozu önlemek için bu modelde tamponlanmamış, asidik normal salin vardır ve bunlardan kaçınılmalıdır.
  2. Domuz yavrusu modeli
    1. Yetişkin domuzlara benzer şekilde, domuz yavruları anestezi uygulandıktan ve mekanik olarak havalandırıldıktan sonra, tüm ön boyunlarını %2 kloroheksidin ovma solüsyonu ile dezenfekte eder ve ardından %5 povidon-iyot solüsyonu14 spreyi ile takip eder. Domuz yavrularında sadece sağ EJ, karotis ve sol femoral arterleri kanüle edin.
    2. Sağ EJ ven ve internal CA'yı trakeanın hemen lateralinden sağ taraflı dikey bir insizyon ile cerrahi olarak ortaya çıkarın ve monopolar koter ile vaskülatüre kadar inceleyin.
    3. Kelly doku makası ve Lahey ekartörleri ve/veya doku forsepsleri14 kullanarak kayış kaslarını ve yolunu gerektiği gibi inceleyin. Sağ taraftaki EJ ve CA'yı ortaya çıkarın.
    4. Domuz yavrusunun alt karın ve kasık bölgesini %2 kloroheksidin ovma solüsyonu ile dezenfekte edin ve ardından %5 povidon-iyot solüsyonu spreyi ile takip edin. Sol femoral arteri (FA)17'de tarif edildiği gibi klasik bir longitudinal teknikle cerrahi olarak ortaya çıkarın.
    5. Sağ EJ'ye 6 Fr santral venöz kateter introdüseri yerleştirin, ardından pulmoner artere 5 Fr PAC yerleştirin.
    6. İki adet 3 Fr arteriyel kateter yerleştirin: biri sağ CA'da ve diğeri sol FA'da. Sık arteriyel kan gazı analizi için sol FA kateterini kan almaya ayırın. 60 mL'lik bir şırınga ile hacim uygulaması için PAC tanıtıcı ile ilişkili açık bağlantı noktasını kullanın.
    7. Sabit bir itme hızında 60 mL'lik bir şırınga kullanarak 10 mL / kg'lık bir PlasmaLyte16 bolusu uygulayın, bir PCWP elde etmek için her bolustan sonra durun ve 8-10 mmHg (övolemi) değerine ulaşıldığında durun.
      NOT: Övolemiye ulaşmak için gereken toplam hacim, bu el yazmasının Tartışmasında ele alınan çok sayıda değişkene bağlı olarak değişir. Vanderbilt Üniversitesi Tıp Merkezi'nde bu deneysel protokole tabi tutulan domuz yavrularında ortalama olarak yaklaşık 50-100 mL'ye ihtiyaç vardır.

3. Hacim yönetimi

  1. Yetişkin domuz modeli
    1. Kanülasyon tamamlandığında ve övolemi elde edildiğinde, ılık PlasmaLyte kristaloid çözeltisini 500 mL'lik artışlarla 100 mL / dk hızında infüze edin (Şekil 1).
    2. Hemodinamik uç noktaların kaydını onaylayın: HR, oksijene doymuş hemoglobin fraksiyonu (SpO2), solunum hızı (RR), gelgit sonu karbondioksit (ETCO2), CVP, SBP, DBP, MAP, PPV, SPAP, DPAP ve MPAP.
    3. Her 500 mL hacimden sonra, 5 L toplam hacimde gerçekleşecek olan ötenaziye kadar veya önceki ölçüme göre% 15'lik bir CO düşüşü olana kadar (hangisi önce gerçekleşirse) statik ölçümleri (CO ve PCWP) elde etmek için gerekli prosedürleri uygulayın.
      NOT: CO'daki düşüş, Starling eğrisi18'in alçalan uzvunun başlangıcını temsil eder. Bu noktada, aşırı hacim yüklenmesi, kalbin kas lifi kasılması için optimum uzunluğu aşacak şekilde genişlemesine yol açar, bu da kasılmanın bozulmasına ve CO18'in azalmasına neden olur.
    4. Övolemide ve toplam hacim uygulamasının sonunda, domuzun kısmi arteriyel oksijen basıncını (PaO2), pH, laktat ve baz fazlalığını elde etmek için bir arteriyel kan gazı analizi yapın.
    5. PlasmaLyte kristalloid çözeltisinin her 500 mL artışından sonra idrar çıkışını (mL) kaydedin. Övolemi elde edildikten sonra idrarın sıfırlanması tavsiye edilir. Domuzu ya toplam 5 L hacimde ya da CO'da %15'lik bir azalma gözlendiğinde, hangisi önce gerçekleşirse, ötenazi yapın.
  2. Domuz yavrusu modeli
    1. Başarılı kanülasyon ve övolemi elde edildikten sonra, PlasmaLyte'ı her 10 dakikada bir şırınga bolusu yoluyla 20 mL / kg'lık artışlarla uygulayın (Şekil 1).
    2. Hemodinamik parametrelerin (HR, RR, SpO2, EtCO2, CVP, SBP, DBP, MPAP, PPV ve MPAP) kaydını onaylayın. Her 10 mL / kg bolustan sonra PCWP'yi ölçün.
      NOT: Gerekli hacim ve 5 Fr PAC'nin küçük iç çapının yarattığı direnç nedeniyle, domuz yavrularında termodilüsyon CO yapılmaz. Bunun yerine, CO'yu hesaplamak için Fick yöntemi19,20 kullanılır. Bu, arteriyel kan gazı analizi ile eş zamanlı olarak gerçekleştirilen pulmoner arter kanından (SvO2) oksijene doymuş hemoglobinin bir kısmının elde edilmesini içerir.
    3. PaO 20, pH, laktat ve baz fazlalığını elde etmek için her 2 mL / kg hacim bolusundan sonra arteriyel kan gazı analizi yapın.
      NOT: Rutin klinik bakımda bu invaziv veri noktalarının birçoğunun sınırlamaları göz önüne alındığında, transtorasik ekokardiyografi (TTE), aort kan akışını ölçmek için domuz yavrusu modelindeki her 20 mL / kg bolustan sonra gerçekleştirilir Tepe Sistolik Hız (PSV) ve Sol Ventrikül Çıkış Yolu (LVOT) çapları - pediatrik klinik uygulamada bir hastanın hacim durumunu tahmin etmek için kullanılan iki veri noktası.
    4. Her 20 mL/kg bolustan sonra PSV ve LVOT çap veri noktalarını ölçmek için TTE gerçekleştirin. Her 20 mL / kg bolustan sonra idrar çıkışını kaydedin. Domuz yavrusunu ya toplam 500 mL hacimde ya da CO'da %15'lik bir azalma gözlendiğinde, hangisi önce meydana gelirse, ötenazi yapın.

4. Hem yetişkin domuzlar hem de domuz yavruları için ötenazi

  1. % 1 izofluranın bakımını onaylayın. IV sodyum pentobarbital (125 mg / kg) enjeksiyonu ile kardiyak arresti indükleyin. Ölümü doğrulamak için enjeksiyon sonrası hayati belirtilerin eksikliğini onaylayın.

Sonuçlar

Yetişkin domuz modeli için doğrusal regresyon analizinden sonra ön temsili pilot veriler, ilk sekiz domuzda hacim uygulamasına doğrusallık göstermiştir (Şekil 2). Bu deney sırasında diğer birçok veri noktası ve 2,5 L'nin üzerindeki hacim ölçülmüş olsa da, bu veriler bugüne kadar yapılan analizi temsil etmektedir. Hacim değerlendirmesi için en çok kullanılan iki yaşamsal belirti olan HR (R2 = 0.15) ve MAP (R2 ...

Tartışmalar

Bu protokolde iki kritik adım vardır. İlk olarak, uygun kanülasyon elde etmek ve hemodinamik/hacim monitörizasyonunun konumlandırılmasını sağlamak için zaman ayrılması zorunludur. Hem yetişkin hem de domuz yavrusu modellerinde, gerekli damarı uygun şekilde kanüle etmek ve gerekli kateteri yerleştirmek için cerrahi kesim gereklidir. Perkütan, ultrason kılavuzluğunda yaklaşımların, domuzlarda ve domuz yavrularında görülen küçük kalibreli damarların etrafınd...

Açıklamalar

Bu raporun konularına özel açıklama yapılmamıştır. Kyle Hocking, PhD, VoluMetrix'in Kurucusu, CEO'su ve Başkanıdır ve Vanderbilt Üniversitesi'ne atanan ve VoluMetrix'e lisanslı venöz dalga formu analizi alanında fikri mülkiyet konusunda bir mucittir. Colleen Brophy, MD, VoluMetrix'in Kurucusu ve CIO'sudur ve Vanderbilt'e atanan ve VoluMetrix'e lisanslı venöz dalga formu analizi alanında fikri mülkiyetin mucididir. Bret Alvis, MD, CMO ve Vanderbilt'e atanan ve VoluMetrix'e lisanslı venöz dalga formu analizi alanında fikri mülkiyet konusunda bir mucittir ve VoluMetrix'in COO'su ile evlidir. Kalan yazarların bildirecek herhangi bir açıklaması yoktur.

Teşekkürler

Yazarlar, yardım ve destek için Dr. José A. Diaz, Jamie Adcock ve Mary Susan Fultz'a ve Vanderbilt Üniversitesi Tıp Merkezi'ndeki SR Işık Laboratuvarı'na teşekkür eder. John Poland'a ve Vanderbilt Üniversitesi Tıp Merkezi perfüzyonistlerinin geri kalanına ve öğrencilerine bu çalışmadaki yardımları için bir başka özel teşekkür. Bu çalışma, Ulusal Sağlık Enstitüleri Ulusal Kalp, Akciğer ve Kan Enstitüsü'nden (BA; R01HL148244). İçerik tamamen yazarların sorumluluğundadır ve Ulusal Sağlık Enstitüleri'nin resmi görüşlerini temsil etmek zorunda değildir.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
1% IsofluranePrimal, Boston, MA, USA26675-46-7https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/aldrich/792632?gclid=Cj0KCQjw9fqnBhDSARIsAHl
cQYS_W-q6tS2s6LQw2Qn7Roa3TGIpTLPf5
2351vrhgp44foEcRozPqtYaAtvfEAL
w_wcB
Arterial CatheterMerit Medical, South Jordan, UT, USAMAK401MAK Mini Access Kit 4F
Arterial CatheterCook Medical, Bloomington, IN, USAC-PMS-300-RA/G01908Radial Artery Catheter Set 3.0Fr./5cm
Blood Pressure AmpAD Instruments, Colorado Springs, CO, USAFE117https://www.adinstruments.com/products/bp-blood-pressure-amp
Central Venous Catheter IntroducerArrow International Inc, Reading, PA, USAAK-098008.5 Fr. x 4" (10 cm) Arrow-Flex
Central Venous Catheter-IntroducerArrow InternationalCP-07611-PSuper Arrow-Flex Percutaneous Sheath Introducer Kit 6Fr./7.5cm
Disposable BP TransducersAD Instruments, Colorado Springs, CO, USAMLT0670https://www.adinstruments.com/products/disposable-bp-transducers
Kendall 930 FoamElectrodesCovidien, Mansfield, MA, USA22935https://www.cardinalhealth.com/en/product-solutions/medical/patient-monitoring/electrocardiography/monitoring-ecg-electrodes/radiolucent-electrodes/kendall-930-series-radiolucent-foam-electrodes.html
LabChart 8 softwareAD Instruments, Colorado Springs, CO, USAN/Ahttps://www.adinstruments.com/products/labchart
Peripheral IV Catheter Angiocath 18-24 Gauge 1.16 inchMcKesson, Irving, TX, USA329830https://mms.mckesson.com/product/329830/Becton-Dickinson-381144
PlamaLyte Crystilloid SolutionBaxter International, Deerfield, IL USA2B2544Xhttps://www.ciamedical.com/baxter-2b2544x-each-solution-plasma-lyte-a-inj-ph-7-4-1000ml
PowerLabADInstruments, Colorado Springs, CO, USAN/Ahttps://www.adinstruments.com/products/powerlab/c?creative=532995768429&keyword=
powerlab&matchtype=e&network=
g&device=c&gclid=CjwKCAjwysipB
hBXEiwApJOcu-ulfO0bfCc-j6B7PpO
kOAGur8IZ4SWNkhNZ7mORGstO
vKON6plWLxoCigsQAvD_BwE
Pulmonary Artery CatheterEdwards Life Sciences, Irvine, CA, USATS105F5True Size Thermodilution Catheter 24cm Proximal Port- Swan Ganz 
Pulmonary Artery Catheter (7F)Edwards Life Sciences, Irvine, CA, USA131F7Swan Ganz 7F x 110cm 
Telazol (Tiletamine HCl and Zolazepam HCl), Injectable Solution, 5 mLPatterson Veterinary, Loveland, CO 8053807-801-4969https://www.pattersonvet.com/ProductItem/078014969?omni=telazol
Terumo Sarns 8000 Roller PumpTerumo Cardiovascular, Ann Arbor, MI, USA16402https://aamedicalstore.com/products/terumo-sarns%E2%84%A2-8000-roller-pump
Xylazine HCl 100 mg/mL, Injectable Solution, 50 mLPatterson Veterinary, Loveland, CO 8053807-894-5244https://www.pattersonvet.com/ProductItem/078945244
Yorkshire Adult PigsOak Hill Genetics, Ewing, IL, USAN/AYorkshire/Landrace 81-100lbs
Yorkshire PigletsOak Hill Genetics N/AFemale "piglet", specify age 5 weeks with a correlating healthy weight range (approximately 10-20lbs.)

Referanslar

  1. Wise, E. S., et al. Hemodynamic parameters in the assessment of fluid status in a porcine hemorrhage and resuscitation model. Anesthesiology. 134 (4), 607-616 (2021).
  2. Rollins, K. E., Lobo, D. N. Intraoperative goal-directed fluid therapy in elective major abdominal surgery: A meta-analysis of randomized controlled trials. Ann Surg. 263 (3), 465-476 (2016).
  3. Som, A., Maitra, S., Bhattacharjee, S., Baidya, D. K. Goal directed fluid therapy decreases postoperative morbidity but not mortality in major non-cardiac surgery: a meta-analysis and trial sequential analysis of randomized controlled trials. J Anesth. 31 (1), 66-81 (2017).
  4. Xu, C., et al. Goal-directed fluid therapy versus conventional fluid therapy in colorectal surgery: A meta analysis of randomized controlled trials. Int J Surg. 56, 264-273 (2018).
  5. Hassinger, A. B., Wald, E. L., Goodman, D. M. Early postoperative fluid overload precedes acute kidney injury and is associated with higher morbidity in pediatric cardiac surgery patients. Pediatr Crit Care Med. 15 (2), 131-138 (2014).
  6. Chen, C., et al. A global view of porcine transcriptome in three tissues from a full-sib pair with extreme phenotypes in growth and fat deposition by paired-end RNA sequencing. BMC Genomics. 12, 448 (2011).
  7. Hou, N., Du, X., Wu, S. Advances in pig models of human diseases. Animal Model Exp Med. 5 (2), 141-152 (2022).
  8. Spannbauer, A., et al. Large animal models of heart failure with reduced ejection fraction (HFrEF). Front Cardiovasc Med. 6, 117 (2019).
  9. Odle, J., Lin, X., Jacobi, S. K., Kim, S. W., Stahl, C. H. The suckling piglet as an agrimedical model for the study of pediatric nutrition and metabolism. Annu Rev Anim Biosci. 2, 419-444 (2014).
  10. Whitaker, E. E., et al. A novel, clinically relevant use of a piglet model to study the effects of anesthetics on the developing brain. Clin Transl Med. 5 (1), 2 (2016).
  11. Gasthuys, E., et al. The potential use of piglets as human pediatric surrogate for preclinical pharmacokinetic and pharmacodynamic drug testing. Curr Pharm Des. 22 (26), 4069-4085 (2016).
  12. Alobaidi, R., et al. Association between fluid balance and outcomes in critically ill children: A systematic review and meta-analysis. JAMA Pediatr. 172 (3), 257-268 (2018).
  13. Soler, Y. A., Nieves-Plaza, M., Prieto, M., Garcia-De Jesus, R., Suarez-Rivera, M. Pediatric risk, injury, failure, loss, end-stage renal disease score identifies acute kidney injury and predicts mortality in critically ill children: a prospective study. Pediatr Crit Care Med. 14 (4), e189-e195 (2013).
  14. Alessa, M. A., et al. Porcine as a training module for head and neck microvascular reconstruction. J Vis Exp. (139), e58104 (2018).
  15. Higgs, Z. C., Macafee, D. A., Braithwaite, B. D., Maxwell-Armstrong, C. A. The Seldinger technique: 50 years on. Lancet. 366 (9494), 1407-1409 (2005).
  16. Cheung-Flynn, J., et al. Normal saline solutions cause endothelial dysfunction through loss of membrane integrity, ATP release, and inflammatory responses mediated by P2X7R/p38 MAPK/MK2 signaling pathways. PLoS One. 14 (8), e0220893 (2019).
  17. Canteras, M., Baptista-Silva, J. C. C., Cacione, D. G. Transverse versus longitudinal inguinotomy for femoral artery approach. Cochrane Database Syst Rev. 2018 (10), CD013153 (2018).
  18. Katz, A. M. The descending limb of the Starling curve and the failing heart. Circulation. 32 (6), 871-875 (1965).
  19. Ragosta, M. . Textbook of Clinical Hemodynamics. , (2017).
  20. LaFarge, C. G., Miettinen, O. S. The estimation of oxygen consumption. Cardiovasc Res. 4 (1), 23-30 (1970).
  21. Soto, F., Kleczka, J. F. Cardiopulmonary hemodynamics in pulmonary hypertension: Pressure tracings, waveforms, and more. Adv Pulmonary Hypertension. 7 (4), 386-393 (2008).
  22. Helen Chum, C. P. Endotracheal intubation in swine. Lab Anim. 41 (11), 309-311 (2012).
  23. Cavallaro, F., Sandroni, C., Antonelli, M. Functional hemodynamic monitoring and dynamic indices of fluid responsiveness. Minerva Anestesiol. 74 (4), 123-135 (2008).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Anahtar Kelimeler Domuz modeliakut hacim y klenmesieri kin Yorkshire domuzlardomuz yavrulargenel anestezisantral ven z kateterarteriyel kateterpulmoner arter kateteriplasmaLytehemodinamik verilerkardiyak debisantral ven z bas npulmoner arter bas ncpulmoner kapiller kama bas ncoksijen sat rasyonulaktatPHbaz fazlal

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır