JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu çalışma, sürekli ve aralıklı basınç ayarları altında 72 saat boyunca basınç ve sıvı toplamayı değerlendirerek yara örtüsü malzemelerinin negatif basınçlı yara tedavi sistemleri ile uyumluluğunu değerlendirmek için tasarlanmış bir tezgah üstü model sunmaktadır.

Özet

Negatif basınçlı yara tedavisi (NPWT) sistemleri, yara yatağına atmosfer altı basınç uygulayarak yara iyileşmesini kolaylaştırır, bu da granülasyon dokusu oluşumunu teşvik eder ve iltihabı azaltır. İyileşmeyi artırmak için bu sistemlerle birlikte yara örtüleri kullanılabilir; bununla birlikte, pansumanların NPWT cihaz performansı üzerindeki etkilerini değerlendirmek zordur. Bu çalışmanın amacı, yara pansuman materyallerinin NPWT cihazları ile uyumluluğunu test etmek için bir tezgah üstü et analog modeli geliştirmektir. Bu çalışmada, kitosan bazlı ileri düzey bir yara bakım cihazı, maksimum ve minimum tedavi baskıları altında NPWT performansı üzerindeki etkileri açısından değerlendirildi. Amaç, kitosan yara bakım cihazı olan ve olmayan numuneler için basınç okumalarını ve sıvı toplamayı karşılaştırmak için modeli kullanmaktı. Tezgah üstü model, birden fazla basınç göstergesine bağlı plastik bir kutu kullanılarak yapılmıştır. Et analogu olarak kullanılan ve kutuya yerleştirilen bir parça domuz göbeği üzerinde dairesel bir kusur oluşturuldu. Defekt standart NPWT köpük veya yara örtüsü ile birleştirilmiş köpük ile dolduruldu. Sığır serumu içeren simüle edilmiş vücut sıvısı kutuya eklendi ve daha sonra 72 saat boyunca maksimum (-200 mmHg) veya minimum (-25 mmHg) basınçlarda test edildi. Basınç ve sıvı toplanması her 12 saatte bir kaydedildi. NPWT sistemi, 72 saatlik test süresi boyunca hem test pansumanları olsun hem de olmasın basıncı başarıyla korudu. Yara pansumanlarının eklenmesi sıvı toplanmasını etkilemedi. Test kutusu, 72 saatlik test süresi boyunca sızdırmaz hale getirilebildiği ve vakum koşullarında muhafaza edilebildiği için bir tezgah üstü model olarak etkili olduğunu kanıtladı. Bu model, yara pansuman malzemelerinin NPWT sistemleri ile uyumluluğunu değerlendirmede faydasını başarıyla göstermiştir.

Giriş

Yaraların yönetimi ve iyileşme sürecine yardımcı olmak için farklı terapötik yaklaşımlar mevcuttur. Bu tür terapötik yaklaşımlar arasında ileri yara örtüleri, büyüme faktörleri, hiperbarik oksijen tedavisi, cilt ikameleri ve negatif basınçlı yara tedavisi (NPWT) bulunur1. NPWT, yara yüzeyine negatif basınç sağlayan sisteme sürekli veya aralıklı olarak atmosfer altı basınç uygulayan yara örtüsü sistemlerini ifade eder. NPWT, akut veya kronik yaraların tedavisinde popüler bir tedavi yöntemi haline gelmiştir2. NPWT sistemi, açık hücreli bir köpük, yapışkan yara örtüsü, bir sıvı toplama sistemi ve bir emme pompasındanoluşur 3. Emme pompası veya vakum, yara üzerinde sabit bir basınç sağlamak için kullanılır, bu da kan akışını artırmaya ve enfeksiyon riskini azaltmaya yardımcı olur4. NPWT, yaradan sıvıyı uzaklaştırarak ve şişliği azaltarak granülasyon dokusu oluşumunu teşvik eder1. Klinik olarak, yaralar için kullanılan emme basıncı miktarı -20 mmHg ile -200 mmHg arasında değişir, ancak test edilen en uygun basınç -125 mmHg'dir5.

NPWT'nin ex vivo deneyleri, test için yeterli tezgah üstü modellerin olmaması nedeniyle bir zorluktur. NPWT sistemlerini test etmek için mevcut yöntemler, NPWT'nin insizyon bölgelerini nasıl etkilediğini test etmek için kullanılan sonlu elemanlar analizi (FEA) bilgisayar simülasyonlarını içerir6. Diğer modeller, sıvı alımını test etmek için kullanılabilen tezgah üstü agar bazlı yara modellerini içerir7. İn vivo, yara iyileşmesini incelemek için domuz modelleri de kullanılmıştır8. Bu modeller, teorik olarak bir yaranın nasıl iyileşmesi gerektiğini tahmin etmek için bir bilgisayarda simüle edilmesinin kolay olması ve bir model malzemesinden çekilen sıvının test edilmesi gibi avantajlara sahiptir. İn vivo test, sistemin canlı deneklerde çalışıp çalışmadığını belirlemek için kesindir8. Bu modellerin hepsinin dezavantajları da var. Bir bilgisayar simülasyonu, bir yaranın gerçek hayatta nasıl iyileşeceğini doğru bir şekilde temsil etmeyebilir. Agar bazlı bir model, yaradan iyi bir sıvı toplanmasının olduğunu gösterebilir, ancak sıvının dokuve kas 7 boyunca nasıl çekileceğini temsil etmeyebilir. İn vivo modeller pahalıdır ve bir çalışmayı tamamlamak için önemli kaynaklar gerektirir. Ayrıca, hayvanları yarı hareketsiz tutmak zor olabilir, bu nedenle sistemi çekmeleriyle ilgili zorluklar olabilir ve bu da kafa karıştırıcı sonuçlara yol açabilir.

NPWT için bir tezgah üstü modele ihtiyaç vardır, böylece yeni malzemeler gerçek doku kullanılarak sistemle kullanım için test edilebilir. Yeni model, sıvı toplamanın doku ve kas tarafından nasıl etkilendiğini yansıtabilmelidir. Yeni model ayrıca, yaranın vakum pompasının sağladığı kadar basınç alıp almadığını belirlemek için yara yatağı içinde basınç okumaları sağlayabilmelidir. Ek yara örtüleri, farklı köpük türleri ve yaranın üzerine farklı yapışkan sargılar gibi yeni malzemeler/cihazlar da test edilebilir.

Bazı yaralar, enfeksiyon riskini azaltarak iyileşme sürecine yardımcı olmak için ek yara örtüleri gerektirir. Ek yara örtüsü malzemelerinin gerekli olmasının bir başka nedeni de, yara yatağının yüzeyi ile açık hücreli köpük arasında doku büyümesini önlemektir. Bu ek pansuman, yara yatağının açık hücreli köpüğe yapışma riskini azaltır, bu da NPWT sistemini durdururken hasarı ve ağrıyı azaltmaya yardımcıolur 9. Bu ek pansumanlar, yara yatağı ile köpük arasında bir bariyer zarı görevi görmek için açık hücreli köpüğün etrafına yerleştirilebilir. Parafin veya vazelin gömülü gazlı bez gibi yara yatağı ile köpük arasında bir arayüz olarak bazı malzemeler kullanılmıştır. Parafin, sistemden vücuda basınç transferini etkilemeyerek yara örtüsü olarak pozitif potansiyel göstermiştir9. Bununla birlikte, vazelin gömülü gazlı bezin sıvı toplanmasını engellediği bildirilmiştir ve bu nedenle uygun bir ek materyal olarak kabul edilmemiştir9.

Kitosan bazlı yara örtüleri, antimikrobiyal etkileri ve biyouyumlulukları nedeniyle NPWT sırasında eklemek için iyi bir ek pansuman olabilir10,11. Kitosan, mantarlarda ve eklembacaklılarda bulunan doğal bir polisakkarit olan kitinin N-deasetillenmiş bir türevidir12,13. Kitosan, geniş bir gram-negatif ve gram-pozitif bakteri spektrumunda doğal antibakteriyel özellikler sergilemiştir14. Bu nedenle kitosan membranları, kolay üretilebilmeleri, uzun raf ömrüne sahip olmaları ve doğuştan gelen antimikrobiyal etkiler göstermeleri nedeniyle yaraların tedavisinde popüler hale gelmiştir10. Bu zarlar ayrıca iyi biyouyumluluk biyolojik bozunma gösterir ve toksik değildir10.

Bu çalışmada, kitosan ve glikozaminoglikan gelişmiş bir yara bakım cihazı olan Foundation DRS, NPWT ile biyouyumluluğunu belirlemek için incelenmiştir. Vakıf DRS, yaralarda hücresel invazyonu ve neo-anjiyogenezi teşvik etmek için ideal kullanım özellikleri ve gözeneklilik için üretilmiş, biyolojik olarak parçalanabilen bir dermal rejenerasyon iskelesidir. Bu cihaz, bir dizi farklı yaralanma ve kullanımda iyileşme için avantajlıdır. Bası yaraları, diyabetik ayak ülserleri, birinci derece yanıklar, travma yaraları, ayrışmış yaralar ve cerrahi yaralar gibi çok çeşitli yaralarda kullanım amacı ile oluşturulmuştur10,11. Temel DRS, cihazın ıslakken hidrojele dönüşmesini önleyen üretim süreci nedeniyle NPWT'de kullanım için iyi bir seçenektir. Bu cihaz, ıslandığında açık bir gözenek yapısını korur, bu da NPWT12,13 uygulaması sırasında sıvının akmasına izin vermelidir.

Bu çalışmanın amacı, yara pansuman malzemelerinin NPWT cihazları ile uyumluluğunu test etmek için kullanılabilecek bir tezgah üstü et analog modeli geliştirmektir. Klinik olarak, çoğu NPWT uygulaması için basınçlar -80 mmHg ila -125 mmHg arasında değişir4. En kötü klinik kullanım koşullarını simüle etmek için, daha yüksek ve daha düşük bir basınç ayarı kullanıldı (-25 mmHg ve -200 mmHg). Bu çalışmanın bir diğer amacı, kitosan yara bakım cihazının eklenmesinin NPWT'nin basınç okumalarına ve sıvı toplanmasına müdahale edip etmediğini belirlemekti. NPWT sırasında sıvı toplanmasındaki aksaklıklar veya basınç kayıpları, kötü yara iyileşmesine ve klinik sonuçlara yol açabilir. Sıvı toplama, kitosan yara bakım cihazı olan ve olmayan test gruplarına benzer olmalıdır. Basınç okumaları, 72 saatin üzerindeki test grupları arasında da benzer olmalıdır. Klinik ortamlarda, yara örtüsü her 48-72 saatte bir değiştirilir, bu nedenle bu çalışmada her numune 72 saat boyunca test edilmiştir3. Test sırasında, basınçta bir düşüş olmadığından emin olmak için basınç okumaları gözlemlenmelidir.

Protokol

Bu çalışmada kullanılan reaktiflerin ve ekipmanların detayları Malzeme Tablosunda listelenmiştir.

1. Test kutusunun oluşturulması

  1. 3,2 fincanlık plastik bir kap edinin.
  2. Kap kapağının ortasında 2 inç çapında bir delik oluşturun. Ayrıca, kap kapağının iki köşesinde kenar contasından yaklaşık 1/2 inç uzakta iki 3/8 delik açın. Delikleri oluşturmak için bir delik testeresi kullanın.
    NOT: Laboratuvar yapımı bir tezgah üstü et analog kutusuna bağlı ticari bir NPWT makinesi kullanılarak genel test kurulumunu gösteren bir şema Şekil 1'de gösterilmektedir. Bu şema, kutunun deneyler için nasıl kullanıldığını özetlemektedir. Bu deney için oluşturulan kutu Şekil 2'de gösterilmiştir.
  3. 3/8 deliğin ilkinde, doğrudan deliğe bir basınç göstergesi bağlayın.
    NOT: Bu gösterge, dokudaki sızıntıları gösterecek olan test dokusunun dışındaki basınç düşüşlerini izlemek için kullanıldı.
  4. İkinci 3/8 delikte, dış çapı 3/8'den az olan küçük, esnek bir IV tüpünü delikten kapağın iç tarafında 7 inç uzunluğa kadar besleyin. Ardından, basınç tüpünü kabın dışındaki düşük basınç göstergesine takın.
    NOT: Basınç tüpü, test sırasında yara yatağına yerleştirilmiştir.

2. Et analog hazırlama

  1. NPWT testi için kas ve yağ dokusunu simüle etmek için burada doku olarak bilinen, ticari olarak temin edilebilen tuzlu domuz göbeği kullanın.
  2. Yaklaşık 1,5 inç genişliğinde ve 0,75 inç derinliğinde bir # 21 bıçak neşteri kullanarak dokunun yüzeyinde dairesel bir yara defekti oluşturun. Ardından, # 21 bıçaklı bir neşter ile dokuyu her iki taraftaki yağın içinden geçirin.
  3. Yara defekti oluşturulduktan sonra, ciltteki fazla yağı çıkarmak için dokuyu silin ve ardından fazla tuzu çıkarmak için gece boyunca deiyonize suya batırın.

3. Test odasının yüklenmesi

  1. Test odasının altını 1.5 inç kalınlığında açık hücreli köpükle doldurun. Ardından, mendili köpüğün üzerine yerleştirin.
    NOT: Doku örneğini manuel olarak ortalayın, böylece oluşturulan yara kusuru doğrudan kapağın üst kısmındaki deliğin altında olur.
  2. Deney grupları için, kitosan yara bakım cihazını yara defektinin içine, defektin alt ve yan kısımları kapanacak şekilde ekleyin. Ardından, kusurun geri kalanını açık hücreli köpükle doldurun.
  3. Test odasındaki manometreye bağlı basınç tüpünü, kusuru doldurmak için kullanılan açık hücreli köpüğün içine yerleştirin. Bu tüpün yara defektinin yüzeyinden yaklaşık yarıya kadar yerleştirildiğinden emin olun.
  4. Dokuyu yapışkan yara örtüsü ile örtün. Daha sonra, yapışkan sargı üzerinde, doğrudan açık hücreli köpüğün ortasının üstünde, yara defektini dolduran küçük bir kesik oluşturun.
  5. Vakum memesini test odasının kapağından geçirin ve küçük kesimin yapıldığı yapışkan sargının üzerine yerleştirin. Vakum memesini yerleştirdikten sonra, yapışkan yara örtüsünü ve vakum memesini aşağı bastırmak için test odasının kapağını kapatın, bu da bir sızdırmazlık oluşturmaya yardımcı olur.
  6. 500 mL sıvı toplama kabını vakum pompasına bağlayın ve ardından vakum memesini sıvı toplama kabına bağlayın.

4. Simüle edilmiş vücut sıvısının oluşturulması

  1. Marques ve ark.15'e göre simüle edilmiş bir vücut sıvısı oluşturun.
  2. 8.035 g NaCl, 0.355 g NaHCO3, 0.225 g KCl, 0.231 g K2HPO43H2O, 0.311 g Cl2Mg6H2O, 0.292 g CaCl, 0.072 g NaSO42-, 6.118 g (HOCH2) 3CNH2, ve toplam çözeltiyi 1 L'ye getirmek için 960 mL deiyonize suda 39 mL 1 M HCl.
    NOT: Simüle edilmiş vücut sıvısının bileşimi Tablo 1'de gösterilmiştir.
  3. Ardından, simüle edilmiş vücut sıvısını 3: 1 oranında sığır serumu ile birleştirin. Mikrobiyal kontrol için nihai çözeltiyi %5 oranında 10x antibiyotik/antimikot ile destekleyin. Sığır serumu ve antibiyotikler/antimikotikler ekledikten sonra çözeltiyi karıştırın ve ardından buzdolabında saklayın.
    NOT: Nihai çözüm, tam çözüm olarak anılacaktır. Bu çözelti steril tutulmamalı ve her numune test edilmeden önce taze hale getirilmelidir.

5. Test koşulları

  1. Test koşuluna bağlı olarak numuneler için vakum pompasındaki ayarları yapın.
    NOT: Test grupları şunlardır: Grup 1 Kontrol (n = 3): -200 mmHg'de sürekli emiş ile tek başına köpük; Grup 2 Kontrol (n = 3): 0 ila -200 mmHg arasında aralıklı emişli tek başına köpük; Grup 3 (n=3): -200 mmHg'de sürekli emişli Köpük Altında Kitosan Yara Bakım Cihazı; Grup 4 (n=3): 0 ile -200 mmHg arasında aralıklı emişli Köpük Altında Kitosan Yara Bakım Cihazı; Grup 5 Kontrol (n = 3): -25 mmHg'de sürekli emiş ile tek başına köpük; Grup 6 Kontrol (n = 3): 0 ila -25 mmHg arasında aralıklı emişli tek başına köpük; Grup 7 (n=3): -25 mmHg'de sürekli emişli Köpük Altında Kitosan Yara Bakım Cihazı; Grup 8 (n=3): 0 ile -25 mmHg arasında aralıklı emişli Köpük Altında Kitosan Yara Bakım Cihazı.
  2. Maksimum basınç test grupları için basıncı -200 mmHg'ye ayarlayın. Minimum basınç test grupları için basıncı -25 mmHg'ye ayarlayın. Ardından, vakum pompası ayarlarını aralıklı veya sürekli basınca yerleştirin. Tüm örnekleri 72 saat boyunca çalıştırın.
    NOT: Sürekli ayar, 72 saat boyunca sürekli olarak basınç uyguladı. Aralıklı ayar, 72 saat boyunca 5/2 oranında (5 dakika basınç, ardından basınçsız 2 dakika) basınç uyguladı. Maksimum ve minimum değerler, klinik NPWT sistemlerinin kullanabileceği basınç aralığına göre seçildi. NPWT'nin tipik olarak bir bandaj değişikliği gerçekleştirmeden önce klinik olarak kullanıldığı sürenin uzunluğuna bağlı olarak 72 saatlik bir döngü seçildi3.
  3. Test sırasında, manometre üzerindeki basıncı ve sıvı toplama kabındaki sıvı miktarını 12 saat boyunca her 72 saatte bir kaydedin.
  4. Vücut sıvısı analog miktarı, görsel olarak gözlemlendiği gibi, test odasının üst kısmının %75'inin altına düşerse, ikincil basınç göstergesini çıkarın ve odaya eksiksiz bir çözelti ekleyin.
    NOT: Numunelerin hazırlanması ve test kurulumu Şekil 3'te görülebilir.
  5. 72 saat sonra vakum pompasını kapatın ve sıvı toplama bidonunu vakum memesinden ayırın. Sıvı toplama kabını vakum pompasından çıkarın.
  6. Dokuyu test odasından çıkarın ve yapışkan yara örtüsünü çekerek çıkarın. Ardından, açık hücreli köpüğü çıkarın ve kitosan yara bakım cihazının hala sağlam olup olmadığını gözlemleyin. Kırılmadan, yırtılmadan veya yırtılmadan çıkarılabiliyorsa sağlam kabul edilir; Bununla birlikte, zar tamamen çıkarılabiliyorsa küçük yırtıklar veya incelme kabul edilebilir.

6. İstatistiksel analiz

  1. İstatistiksel analiz için, test koşulu başına üç test numunesinden test süresi boyunca her 12 saatte bir kaydedilen basınç değerlerini kullanın. İstatistiksel analiz için, test koşulu başına üç test numunesinden nihai sıvı toplama değeri kullanıldı.
    NOT: Tüm istatistiksel analizler için anlamlılık düzeyi α = 0.05 olarak belirlenmiştir.
  2. Her zaman noktasında ortalama ve standart sapmaları (n = 3 / grup) hesaplayın. İstatistiksel analizi gerçekleştirmeden önce, Shapiro-Wilk testini kullanarak her grup için normallik testi yapın (örn., -200 mmHg'de sürekli emiş, -25 mmHg'de sürekli emiş, -200 mmHg'de aralıklı emme ve -25 mmHg'de aralıklı emiş) ANOVA veya Kruskal-Wallis testinin uygun olup olmadığını belirlemek için.
  3. Aynı basınç testi koşullarına tabi tutulan deney ve kontrol grupları için verileri analiz edin (örneğin, -200 mmHg'de sürekli emiş; -25 mmHg'de sürekli emiş; -200 mmHg'de aralıklı emme veya -25 mmHg'de aralıklı emiş) membran tipi ve zamanı ana faktörler olarak kullanarak iki yönlü bir ANOVA veya Kruskal Wallis testi kullanarak.
  4. İstatistiksel farklılıklar tespit edilirse, post-hoc analizler yapın. Hangi grupların farklı olduğunu belirlemek için ANOVA'dan sonra Tukey'in HSD post-hoc testini veya Kruskal-Wallis testinden sonra Dunn post-hoc testini kullanın.
  5. Kontrol ve deney gruplarındaki her numune için nihai sıvı toplama değerlerini kullanarak, eşit olmayan varyansları varsayarak iki kuyruklu bir t-testi gerçekleştirin.
    NOT: Test süresi boyunca basınçta önemli bir düşüş olmadığından emin olmak için her zaman noktasında basınç analiz edilmiştir. Sıvı toplanması her seferinde incelenirken, sadece son zaman noktasında analiz edildi. Bunun nedeni, her dokunun farklı yağ ve kas profillerine sahip olması, farklı sıvı toplama oranlarına neden olması ve genel sıvı toplamayı analiz için zaman noktalarına göre sıvı toplamadan daha kullanışlı hale getirmesidir.

Sonuçlar

Çalışmanın amacı, NPWT için bir doku analoğu kullanan bir tezgah üstü model geliştirmek ve modeli, yara pansuman malzemelerinin negatif basınçlı bir yara tedavi makinesi ile uyumluluğunu araştırmak için kullanmaktır. Model, NPWT makinesinin bir yara bakım cihazının eklenmesiyle zaman içinde basıncı koruyup koruyamadığını incelemek için kullanıldı. Model ayrıca, bir yara bakım cihazının varlığında NPWT makinesi tarafından üretilen basıncın ve topl...

Tartışmalar

NPWT için birkaç tezgah üstü model vardır, ancak bunların önemli sınırlamaları vardır. Loveluck ve ark. NPWT'nin dikişli insizyon bölgelerini nasıl etkilediğini belirlemek için bir FEA bilgisayar modeli geliştirdiler, ancak ek yara pansuman materyallerini hesaba katmadılar6. Rycerz ve ark. NPWT7 sırasında yaralara damlatma solüsyonu dağılımını değerlendirmek için agar tabanlı modeller geliştirdi. Agar, farklı ...

Açıklamalar

Bu çalışma Bionova Medical, Inc.'den (Germantown, TN) bir hibe ile desteklenmiştir.

Teşekkürler

Bu araştırma, Memphis Üniversitesi Biyomedikal Mühendisliği Bölümü ve Bionova Medical'in yardımıyla mümkün olmuştur.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
100x antibiotics/mycoticsGibco15240062This is the 100X antibiotics/antimycotics used in the simulated body fluid
3 M KCI ACTIV.A.C Therapy System KCI Mdical ProductsVFTR006619This is the vacuum pump used in the study. 
3 M KCI InfoV.A.C Canister w/Gel 500 mLeSutures.comM8275063These are the fluid collection canisters used in the study
3 M KCI V.A.C GranuFoam Medium Dressing Kit, SensaT.R.A.CeSutures.comM8275052These are the wound dressing packs with the vacuum nozzle including the open cell foam.
Bovine SerumGibco16170086This was used to mix with the simulated body fluid and the antibiotics/antimycotics
Calcium ChlorideFisher ScientificC614-500This was used to create the simulated body fluid
Excel/PowerpointMicrosoft OfficeN/AThis was used to run the statistics and create the schematic for Figure 1
Foundation DRS Solo BioNova Medical N/AThis is the advanced chitosan wound care device used in the study. 
Hydrochloric AcidFisher ScientificSA54-1This was used to create the simulated body fluid
Magensium ChlorideFisher ScientificM33-500This was used to create the simulated body fluid
Phosphate buffered salineThermo ScientificJ62036.K3This was used to dilute the 100x antibiotic/antimycotic to 10x
Potassium ChlorideSIGMAP-3911This was used to create the simulated body fluid
Potassium Phosphate DibasicFisher BioReagentsBP363-500This was used to create the simulated body fluid
PRM Vacuum Gauge 0 to -10 in HgPRM FiltrationPGCNBTY630652J10HGTwo pressure gauges are needed for the testing chamber.
Salted Pork BellyHormel Food CorporationsUPC: 0003760037988Salted pork belly can be bought from Kroger. It cannot be sliced. It is best to pick samples that have less fat, and more muscle. 
Sodium BicarbonateSIGMAS5761-500GThis was used to create the simulated body fluid
Sodium ChlorideFisher ScientificS640-500This was used to create the simulated body fluid
Sodium SulfateFisher ScientificBP166-100This was used to create the simulated body fluid
Tris(hydroxymethyl) aminomethaneFisher ScientificBP152-500This was used to create the simulated body fluid
Tupperware Brands Corp, Kissimmee , FLTupperwareN/AThis is the box used as the testing chamber. 

Referanslar

  1. Liu, S., et al. Evaluation of negative-pressure wound therapy for patients with diabetic foot ulcers: Systematic review and meta-analysis. Ther Clin Risk Manag. 13, 133-142 (2017).
  2. Capobianco, C. M., Zgonis, T. An overview of negative pressure wound therapy for the lower extremity. Clin Podiatr Med Surg. 26 (4), 619-629 (2009).
  3. Venturi, M. L., Attinger, C. E., Mesbahi, A. N., Hess, C. L., Graw, K. S. Mechanisms and clinical applications of the vacuum-assisted closure (VAC) device: A review. Am J Clin Dermatol. 6 (3), 185-194 (2005).
  4. Ren, Y., Chang, P., Sheridan, R. L. Negative wound pressure therapy is safe and useful in pediatric burn patients. Int J Burns Trauma. 7 (2), 15-23 (2017).
  5. Argenta, L. C., Morykwas, M. J. Vacuum-assisted closure: A new method for wound control and treatment: Clinical experience. Ann Plast Surg. 38 (6), 563-576 (1997).
  6. Loveluck, J., Copeland, T., Hill, J., Hunt, A., Martin, R. Biomechanical modeling of the forces applied to closed incisions during single-use negative pressure wound therapy. Eplasty. 16, e20 (2016).
  7. Rycerz, A. M., Allen, D., Lessing, C. M. Science supporting negative pressure wound therapy with instillation. Int Wound J. 10 (S1), 25-31 (2013).
  8. Hodge, J. G., et al. Novel insights into negative pressure wound healing from an in situ porcine perspective. Wound Repair Regen. 30 (1), 64-81 (2022).
  9. Birke-Sorensen, H., et al. Evidence-based recommendations for negative pressure wound therapy: Treatment variables (pressure levels, wound filler and contact layer) - Steps towards an international consensus. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 64 (Suppl. 1), S1-S16 (2011).
  10. Burkatovskaya, M., et al. Use of chitosan bandage to prevent fatal infections developing from highly contaminated wounds in mice. Biomaterials. 27 (22), 4157-4164 (2006).
  11. Noel, S. P., Courtney, H., Bumgardner, J. D., Haggard, W. O. Chitosan films: A potential local drug delivery system for antibiotics. Clin Orthop Relat Res. 466 (6), 1377-1382 (2008).
  12. Chen, S., Hao, Y., Cui, W., Chang, J., Zhou, Y. Biodegradable electrospun PLLA/chitosan membrane as guided tissue regeneration membrane for treating periodontitis. J Mater Sci. 48 (19), 6560-6568 (2013).
  13. Guo, S., et al. Enhanced effects of electrospun collagen-chitosan nanofiber membranes on guided bone regeneration. J Biomater Sci Polym Ed. 31 (2), 106-118 (2020).
  14. Qasim, S. B., Najeeb, S., Delaine-Smith, R. M., Rawlinson, A., Rehman, I. U. Potential of electrospun chitosan fibers as a surface layer in functionally graded GTR membrane for periodontal regeneration. Dent Mater. 33 (1), 71-83 (2017).
  15. Marques, M. R. C., Loebenberg, R., Almukainzi, M. Simulated biological fluids with possible application in dissolution testing. Dissolut Technol. 18 (3), 15-28 (2011).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

JoVE de Bu AySay 219

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır