Yazarlar, H. Eisen, M. Gubbels, K. kamyonet Grinsven, E. Guillen, A. Drake, V. Mahajan, S. Gao, ve G. verimli tartışmalar ve reaktifler için Yapı müteşekkiriz. Biz J. Dausman, R. Flannery, J. Jackson ve fare koloni yönetimi ile yardımı için müteşekkiriz. P. Wisniewski FACSorting için müteşekkiriz. EMF İnsan Sınır Bilim Programı tarafından desteklenmiştir. RJ Ulusal Sağlık hibe RO1-HD045022 ve R37-CA084198 Enstitüsü tarafından desteklenmiştir. HLP Ulusal Sağlık Enstitüsü hibe tarafından desteklenmiştir.

Bu yöntem bildirilen araştırma <a href="http://www.sciencemag.org/cgi/content/abstract/328/5975/243">Kirak ve ark, Bilim 328 (5975), 243-248 (2010)</a> . 1. Donör Hücreleri İzolasyon Spesifik T ve B hücreleri transnuclear fare modelleri oluşturmak için donör hücreler olarak kullanılmadan önce, fare ilgi bir patojen ile enfekte ya da bir ilgi antijen aşı olmak gerekir. Toxoplasma gondii spesifik CD8 + hücreleri kullanılan olduğundan, aşağıdaki protokolü, kişisel ilgi göre adapte edilebilir, bu hücrelerin ve ihtiyaçlarını üretimi ve izolasyon anlatacağız . <ol><li> Kistler bir fare beyin Homojenat (yaklaşık 40) türetilen BL / 6 H-2 b) ve (H-2 d sınırlı CD8 + T hücrelerinin izolasyonu sağlayan x Balb / c F1 (B6CF1) fareler, intraperitoneal enjekte edilir. </li><li> Immün yanıt zirvesinde, enfekte fare ötenazi, dalak izole edilmiş ve 6 ml kırmızı kan hücresi (RBC) lizis tamponu içeren bir çanak içine yerleştirilmiş. </li><li> Dalak, buzlu tarafı iki kapak slaytlar kullanarak, dikkatli bir zemin ve eritrosit lizis tamponu oda sıcaklığında 5 dakika inkübe. </li><li> 14 ml PBS bir hücre süzgeç (40 veya 70 mm) ile, 50 ml şahin tüp ve 300g az 5 dakika santrifüj hücre süspansiyonu filtre. </li><li> Süpernatantı, hücre pelet, 1.5 ml Eppendorf tüp içine, 1 ml PBS ve transfer tekrar süspansiyon haline getirin. 300g az 5 dakika süreyle santrifüj ve sonra süpernatant kaldırmak. </li><li> 50 mcL PBS içinde hücre pelletini tekrar ilgi hücre tipi (örneğin CD3, B220, CD8 ve CD4) tanımlamak için floresan etiketli antikorlar eklemek ve floresan MHC-I tetramer (CD4-T hücreleri MHC-II tetramer) yüklü etiketli 4, 30 dakika hücre süspansiyonu ve inkübe ilgi peptid ° C. </li><li> 1 ml PBS, 300 g, 3 ml PBS tekrar süspansiyon pelet 5 dakika süreyle santrifüj ekleyin ve bir tüp içine bir hücre süzgeç (40 veya 70 mikron) aracılığıyla hücre süspansiyonu filtre. </li><li> Kapıların sıkı (Şekil 1B) FACSorting gerçekleştirin. </li></ol> 2. Somatik Hücre Nükleer Transferi Somatik Hücre Nükleer Transferi için birkaç protokol vardır. Metafaz-II tutuklandı oosit kullanımı ve Cytochalasin B. Bu nedenle donör hücreleri kullanarak ikinci mayoz bölünme inhibisyonu G0/G1 aşamasında ihtiyaç vardır nitelendirdi. <ol><li> Oosit hazırlanması <ol><li> Dişi fareler BDF1 arka plan, 17:00 ve 19:00 arasında fare başına 5IU PMS ile intraperitoneal enjekte edilir. </li><li> Yaklaşık 47 saat sonra, her bir fare 5IU HCG ile intraperitoneal enjekte edilir. </li><li> HCG enjeksiyonu aynı gün oosit bir kültür çanak (KSOM AA yağ altında damla) hazırlayın ve onları bir kuluçka 37 ° C,% 5 CO 2. Ayrıca, cıva ile onlara yükleyerek SCNT (enükleasyon 7μm ve lenfosit çekirdekleri nükleer transferi için 4 veya 5μm) için gerekli iğneler hazırlar. </li><li> Fareler Euthanize ve HCG sonra 13h (yaklaşık 8:00) hakkında siyon hatası izole. HCZB 1-2 damla siyon hatası toplayın. </li><li> Tek-tek M2 w / Hyaluronidase içeren bir damla siyon hatası taşıyın. Nick forsepsle dikkatli bir şekilde yumurtalık ve açılan oosit-kümülüs kompleks taşımak. Tüm oosit-kümülüs kompleksleri izole edilmiştir, çanak 37 inkübe ° C sonra </li><li> 2-5 dakika (tam zamanlı Hyaluronidase toplu bağlıdır) oosit toplamak sonra HCZB ve plaka KSOM-AA damla içine yıkayın. </li></ol></li><li> Oositlerin Enükleasyon <ol><li> SCNT plaka hazırlamak için bir petri kapağını kullanın. Mikroskop ve mikromanipülatör ayarlayın. </li><li> PVP enükleasyon iğne (7 mm), enükleasyon ile başlamadan önce yıkayın. </li><li> Enükleasyon için HZCB Cytochalasin B (5 mg / ml) ile bir damla oosit bir grup (10-30) yerleştirin. Line-up yatay oosit (en az 5 dakika) kuluçka. </li><li> Bir oosit ve holding iğne önünde yerleştirin. Holding iğne bir vakum uygulanarak yumurtanın sabitleyin. Enükleasyon iğne kullanarak, kromozom-mil-kompleks (CSC, sık sık &quot;çekirdek&quot; olarak da adlandırılır) 03:00 pozisyonda kadar oosit açın. </li><li> Piezo-pulse oosit zarar vermeden dikkatlice zona pellusida nüfuz kullanma. Metafaz-II mili bitişik iğne açılış yerleştirin ve vakum uygulamak. &quot;Çekirdek&quot; yavaş yavaş iğne hareket etmelidir ve membran tamamen çıkarıldıktan sonra kendini imzalaması gerektiğini. </li><li> KSOM-AA damlalar halinde geri enükleasyon oosit aktarın ve onları birçok kez yıkayın. E tekrarlayınyeni bir grup ile oosit çekirdeklenme adımları. Tüm yumurta enükleasyon veya 11:00 civarına kadar kadar devam edin. </li></ol></li><li> Nükleer transfer <ol><li> Nükleer transferi için, döviz, nükleer transfer iğnesi (4 veya 5 mikron) ve PVP ile yıkayın enükleasyon iğne (7 mikron). </li><li> PVP ile bir damla ilgi hücreleri (örneğin CD8 + T hücreleri) koyun, iyice karıştırın ve en az 10 dakika inkübe edin. </li><li> HCZB Cytochalasin B (2.5 mg / ml) ile bir damla enükleasyon oositlerin bir grup (10-30) yerleştirin. Line-up oosit yatay nükleer transfer iğnesi kullanarak kuluçka iken (min. 5 dakika). </li><li> PVP-hücre süspansiyonu bir donör hücre Pick up-and-out dış zar (membran ve sitoplazmada parçaları görünür olmalı) aşağı kırılmış kadar aspire. Gerekirse bir piezo-darbe uygulanabilir. Bir çekirdek izole edildikten sonra, iğne biraz yukarı taşımak ve 10-30 kadar çekirdekleri almaya devam edin. </li><li> Hizalanmış enükleasyon oosit içeren damlasına kadar hareket ettirin. Vakum uygulanarak holding iğnesi bir oosit sabitleyin. Nükleer transfer iğnesi (çekirdekleri uzakta açılması gerekir), zona pellusida bitişik ve iğne zona pellusida geçti kadar piezo-pulse uygulamak yerleştirin. Dikkatlice bir çekirdeği, iğne ucu hareket iğne, iğne ucu 2 / 3 iç kadar oosit içine itmek. Oosit membran biraz iğne, böylece küçük bir negatif basınç uygulayın. </li><li> Bir sonraki adım, oosit aslında &quot;açık&quot; olduğu zaman sadece zaman olduğundan çok kritik. Piezo bir tek darbe uygulayın pozitif basınç uygulayarak iğne çekirdeğini dışarı itmek, iğne ucu oosit yaklaşık 1 / 3 olacak şekilde dikkatlice geri çekin ve daha sonra uygulamak negatif basınç ve iğne geri çekmeye devam oosit mühür. Her oosit ile bu adımı yineleyin. </li><li> Bir grubun bütün oosit bir çekirdek aldıktan sonra, onlar KSOM-AA medya yıkanmış ve kültürü vardır. Oosit ile bu işlemi tekrarlayın. </li><li> Son grup en az 30 dakika KSOM-AA kültürleri edildikten sonra, SrCl2 içeren Ca-ücretsiz aktivasyon medya damlalar halinde SCNT-embriyolar transfer edilir. </li><li> Aktivasyon 6 saat sonra, pseudo-pronuclei miktarı (ÖNYTRLK) pozitif SCNT-embriyolar belirlenir. Embriyoların blastosist aşamasına ulaşana kadar sonra yıkanmış ve KSOM-AA kültür ek 3.5 gün düşer. </li><li> İlaçlar ya da tercih kimyasallar (trichostatin olarak A) aktivasyon ve kültür ortamı eklenebilir. </li></ol></li></ol> Embriyonik kök hücrelerinin, 3.Derivation SCNT-blastosist pseudo-hamile kadın (doğrudan ya da bir adım klonlama olarak da bilinir) içine aktarmak için ya da (aynı zamanda dolaylı ya da iki adım klonlama olarak da bilinir) embriyonik kök hücreleri elde etmek için kullanılabilir. Çok daha ES hücreleri oluşturmak için etkili olduğundan, biz iki adım prosedürü seçin. 5. bölümde açıklandığı gibi, bilim adamı doğrudan klonlama ilgilenen durumda blastosist pseudo-hamile kadınlar doğrudan transfer edilebilir. Embriyonik kök hücrelerinin türetme açıklayan birçok protokol vardır. Burada açıklanan bir besleyici hücreler ve fetal buzağı serumu kullanan standart bir teknik. <ol><li> ES hücre derivasyon için nükleer transferinden sonra ikinci gün, 96-U-plaka hazırlamak. </li><li> 96-U-plaka her kuyuya en az 10 dakika boyunca inkübe Jelatin, 100 mcL ekleyin ve daha sonra kaldırmak. </li><li> Çözülme besleyici hücreler ve tekrar süspansiyon ESD orta göre hacmi, 10 ml ESD orta ve hücre süspansiyonu 200 mcL 25 cm 2 lik bir alana denk örneğin besleyici hücreler yeniden süspanse jelatin ile tedavi edilen her birine eklenir. </li><li> Plaka 37 bir kuluçka ve kültür içine koyun ° C,% 5 CO 2. </li><li> 3,5 gün sonra, embriyoların blastosist aşamasına olmalıdır. </li><li> Birkaç damla ES hücre orta ve asidik thyrode kaplama steril bir bakteriyel bir yemek hazırlayın. </li><li> Blastosist normal ES hücre orta içeren damlalar halinde ilk KSOM-AA damla transfer ve iki kere yıkanır. </li><li> Asidik thyrode bir damla içine dikkatlice bir grup (5-10 blastosist) blastosist transferi ve orada zona pellusida eriyene kadar tutun. </li><li> Blastosist, sonra bir damla ile ES orta içine transfer iki kez yıkanır ve sonra besleyici kaplı 96-U-plaka (iyi birine bir blastosist) yerleştirilir. </li><li> Embriyolar daha sonra onları rahatsız etmeden bir kuluçka 5-7 gün 37 ° C,% 5 CO 2 kültüre. Bu bir embriyo zaman verirbesleyici tabaka ttach ve bir sonucudur oluşturmak için. </li><li> Her kuyuya ESD orta kaplama besleyiciler, 24 kuyucuğu hazırlayın, örneğin 12 mL ESD orta ve 50 cm 2 besleyici eşdeğer bir tekrar süspansiyon hale getirin ve her kuyuya hücre süspansiyonu 500 mcL ekleyin. </li><li> Dikkatlice embriyoların 96-U-plaka ESD orta kaldırmak, 250 mcL HEPES (PBS) ile iki kez iyice yıkayın, 50 mcL tripsin ekleyin ve 37 yaklaşık 5 dakika boyunca inkübe ° C </li><li> Akıbet tek bir hücre süspansiyonu, 37, 24 plaka ve inkübe içine transfer ° C,% 5 CO 2 ayrı düşmüş kadar, birden çok kez yukarı ve aşağı Pipet </li><li> ESC ESC türetme başarılı olursa, koloniler 7-10 gün sonra görünür olmalıdır. </li></ol> 4.Blastocyst enjeksiyon Blastosist enjeksiyon transgenik fare modelinde her türlü oluşturmak için rutin bir tekniktir. Blastosist sonraki transfer ve pseudo-hamile kadın içine enjeksiyon iyi zamanlanmış gerektiğini belirtmek önemlidir. <ol><li> PMS ve HCG ile Başbakan dişi farelerde bölüm 2.1 &#39;de açıklandığı gibi. HCG enjeksiyonu, erkek fareler (kafes ortalama bir kadın ve bir erkek fare) ile birlikte dişi fareler koymak sonra. </li><li> Ertesi gün, fişler için kadın kontrol edin. Bu 0.5dpc (Days yazılan cinsel birleşmede) olarak sayılır. </li><li> Döllenmiş embriyolar, daha sonra, ek olarak 3 gün KSOM-AA bölüm 2.1 &#39;de açıklanan ve kültürlü olarak yumurtalık izole edilir. </li><li> Blastosist enjeksiyon (3.5dpc) günü ES hücrelerinin hazırlayın. </li><li> ES hücrelerinin orta çıkarın, 37, HEPES (PBS) ile iki kez yıkamak tripsin ekleyin ve 5 dakika boyunca inkübe ° C </li><li> ES orta, bir tabak içinde plaka, 37, 45-60 dakika boyunca inkübe ° C,% 5 CO 2 besleyici hücreler (besleyici hücreler Embriyonik kök hücrelerin daha hızlı uymak) miktarını azaltmak için. Tripsinize hücreleri ile yeniden süspanse </li><li> Bir hücre süzgeç (40 veya 70 mikron) ile hücre süspansiyonu bir tüp içine aktarın ve 1000rpm az 5 dakika süreyle santrifüj. </li><li> Gerektiği kadar buz üzerinde 500 mcL ES orta ve mağaza supernatant, tekrar süspansiyon hücre pelletini çıkarın. </li><li> PVP ve HCZB içeren kaplama damla tarafından, steril bir bakteriyel çanağı kapak hazırlayın. </li><li> Cıva ile yükleme koymaktan ve PVP ile yıkanarak 15 mikron iğne hazırlayın. </li><li> Blastosist (10-30 blastosist) bir grup HCZB bir damla içine yerleştirin ve HCZB başka bir damla, 5-50 mcL ES hücre süspansiyonu (konsantrasyonu bağlıdır) ekleyin. </li><li> ES hücrelerinin (50-100 hücreleri) bir iğne ile toplayınız. </li><li> Blastosist damlasına kadar hareket ettirin. Blastosist yatay olarak aynı hizaya getirin ve bir vakum uygulanarak holding iğne ile düzeltmek. </li><li> Iç hücre kütlesi (ICM) 9:00 pozisyonunda kadar bir iğne kullanarak blastosist açın. </li><li> 3 saat enjeksiyon iğnesi yerleştirin, iğne ucu hiç ES hücrelerinin olmadığından emin olun ve piezo-pulse zona pellusida ve trophectoderm blastocoel içine enjeksiyon iğnesi yoluyla nüfuz kadar geçerlidir. </li><li> ES hücreleri ICM sopa, böylece birkaç ES hücreleri (5-15 hücreleri) bırakın. Bir grubun tüm blastosist ES hücreleri ile enjekte edilmiş kadar devam edin. </li><li> Blastosist bir grup tamamlandıktan sonra, KSOM-AA iki kez yıkayın ve tüm blastosist enjekte kadar KSOM-AA ile bir damla tutmak. </li></ol> 5. Embriyo Transferi Pseudo-hamile kadın içine embriyo transferi, çok dikkatli ve araştırmacı enstitü kurallarına göre yapılması gereken gereken bir cerrahi işlem, temsil eder. <ol><li> , Dişi alıcı fareler uyuşturan, sağ alt kadranda tıraş ve dezenfekte edin. </li><li> Makas kullanarak cilt açın ve cilt periton ayrı. </li><li> (Kırmızı nokta) aracılığıyla periton yumurtalık bulun ve yumurtalık yakın periton açık. </li><li> Bir forseps kullanarak, dikkatli bir şekilde, yumurtalık kapmak ve rahim çekin. </li><li> Yaklaşık 10 blastosist kılcal ağız pipet bağlı bir grup seçin. </li><li> Bir forseps ile Fix rahim içine küçük bir iğne ile küçük bir bütün yumruk ve uterus lümenine blastosist kılcal yerleştirin. </li><li> Embriyoların rahim içine dikkatlice bırakın ve kılcal kaldırmak. </li><li> Rahim karın boşluğuna geri itin. </li><li> Periton kenarları bulun ve birkaç dikiş ile kapatın. </li><li> Birkaç zımba ile fare cilt kapatın. </li><li> Post-operatif ağrı, vücut ağırlığının mg başına 5 mg Carprofen yönetmek. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/2168/2168fig1.jpg" alt="Şekil 1" /> Şekil 1: Somatik hücre nükleerB6CF1 arka planda önceden tanımlanmış T hücrelerinin transferi. Mutlak ve göreli SCNT blastosist elde edilen CD8 + T hücreleri ve embriyonik kök hücrelerinden oluşturulan embriyoların numaraları. <img src="/files/ftp_upload/2168/2168fig2.jpg" alt="Şekil 2" /> Şekil 2 SCNT embriyonik kök hücreleri enjekte kimerik farelerin Temsilcisi akım sitometri analizi. Kapısı ve sayısı (toplam CD8 + T hücreleri ortalama yüzde) kimerik farelerde spesifik CD8 + T hücrelerinin varlığını gösterir.

<ol>
	<li>Schatz, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=V(D)J+recombination.">V(D)J recombination.</a> Immunol. Rev. 200, 5-5 (2004).</li><li>Barnden, M. J., Allison, J., Heath, W. R., Carbone, F. R., R, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Defective+TCR+expression+in+transgenic+mice+constructed+using+cDNA-based+alpha-+and+beta-chain+genes+under+the+control+of+heterologous+regulatory+elements.">Defective TCR expression in transgenic mice constructed using cDNA-based alpha- and beta-chain genes under the control of heterologous regulatory elements.</a> Immunol. Cell Biol. 76, 34-34 (1998).</li><li>Eggan, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hybrid+vigor,+fetal+overgrowth,+and+viability+of+mice+derived+by+nuclear+cloning+and+tetraploid+embryo+complementation.">Hybrid vigor, fetal overgrowth, and viability of mice derived by nuclear cloning and tetraploid embryo complementation.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 98, 6209-6209 (2001).</li><li>Kishigami, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Significant+improvement+of+mouse+cloning+technique+by+treatment+with+trichostatin+A+after+somatic+nuclear+transfer.">Significant improvement of mouse cloning technique by treatment with trichostatin A after somatic nuclear transfer.</a> Biochem Biophys Res Commun. 340, 183-183 (2006).</li><li>Wakayama, T., Yanagimachi, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+cloning+with+nucleus+donor+cells+of+different+age+and+type.">Mouse cloning with nucleus donor cells of different age and type.</a> Mol Reprod Dev. 58, 376-376 (2001).</li></ol>

Biz burada SCNT önceden tanımlanmış özgüllüğü transnuclear farelerde T hücreleri oluşturmak için kullanılan olabilir göstermiştir. Burada gösterilen olmasa da, bu tekniğin de önceden tanımlanmış özgüllük ile B hücreleri transnuclear fareler üretmek için kullanılabilir olmalıdır. Dikkate alınması gereken önemli bir şey fare zorlanma ve cinsiyet, enfekte veya aşı ve ilgi T veya B hücreleri izole etmek için kullanılır. T ve B hücreleri genel olarak çok düşük bir yeniden programlama verimliliği, istenilen haplotip F1 hibritler kullanmanızı öneririz. Donör hücre aynı zamanda seks belirler Çünkü, biz erkek farelerde T veya B hücre kullanmanızı öneririz. Bu üremek için daha kolay ve hızlı olan erkek farelerin, sadece erkek kimerik farelerin, germline yoluyla TCR veya BCR gönderemediği anlamına gelir. Birlikte ele alındığında, biz SCNT üzerinden bu epigenetik yeniden programlama immünolojik alan için büyük bir avantaj olacaktır fare modellerinde bir roman türünü oluşturmak için güçlü bir araçtır temsil düşünüyorum.

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Red Blood Cell lysis Buffer</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sigma</td>
<td>R7757</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Cell strainer</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>BD Falcon</td>
<td>REF 352340</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Pregnant Mare Serum (PMS)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Calbiochem</td>
<td>367222</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Human Chorionic Gonadotropin (HCG)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Calbiochem</td>
<td>230734</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Hyaluronidase</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sigma</td>
<td>H4272</td>
<td>Type IV-S</td>
</tr>
<tr>
<td>KSOM-AA</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Millipore</td>
<td>MR-106-D</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>HCZB</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Millipore</td>
<td>MR-173-D</td>
<td>Customized medium</td>
</tr>
<tr>
<td>Ca-free medium for activation</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Millipore</td>
<td>MR-174-D</td>
<td>Customized medium</td>
</tr>
<tr>
<td>SrCl2</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sigma</td>
<td>255521</td>
<td>100mM = 10x</td>
</tr>
<tr>
<td>AlbuMAX I</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Gibco</td>
<td>11020-021</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>PVP</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>MP Biotech</td>
<td>102787</td>
<td>Make 10% solution using HCZB, and add 0.1% AlbuMAX I</td>
</tr>
<tr>
<td>Cytochalasin B</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sigma</td>
<td>C6762</td>
<td>500&mu;g/ml = 100x</td>
</tr>
<tr>
<td>Trichostatin A</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sigma</td>
<td>T8552</td>
<td>5mM = 1000x</td>
</tr>
<tr>
<td>Mineral Oil</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sigma</td>
<td>M5310</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Holding needle</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Humagen</td>
<td>MPH-SM-30</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Injection and transfer needles</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Humagen</td>
<td>4-15, 7-15, 15-15</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Mouth pipette</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sigma</td>
<td>A5177</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Scissors</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fine Science Instruments</td>
<td>14088-10</td>
<td>or something similar</td>
</tr>
<tr>
<td>Forceps</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fine Science Instruments</td>
<td>11251-10</td>
<td>or something similar</td>
</tr>
<tr>
<td>Wound Clip Applicator</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>BD</td>
<td>427630</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Wound Clips</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>BD</td>
<td>427630</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Suture</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Ethicon</td>
<td>K871H</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>DMEM</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sigma</td>
<td>D6429</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>FBS</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Hyclone</td>
<td>SH30071.03</td>
<td>15%</td>
</tr>
<tr>
<td>Penicillin/Streptomycin</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Lonza</td>
<td>17-602E</td>
<td>100x</td>
</tr>
<tr>
<td>Glutamin</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>MP Biomedicals</td>
<td>101806</td>
<td>200mM = 100x</td>
</tr>
<tr>
<td>Non-essential Aminoacids</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Gibco</td>
<td>11140050</td>
<td>100x</td>
</tr>
<tr>
<td>&beta;-Mercaptoethanol</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Gibco</td>
<td>21985-023</td>
<td>5&mu;l in 500ml</td>
</tr>
<tr>
<td>LIF</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Millipore</td>
<td>ESG1106</td>
<td>1000x</td>
</tr>
<tr>
<td>MEK inhibitor</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Cell Signaling</td>
<td>9900L</td>
<td>For ES derivation only, add to ES medium (final concentration 50&mu;M)</td>
</tr>		</tbody>
		</table>
		</div>

transnuclear mice with pre-defined t cell receptor specificities against toxoplasma gondii obtained via scnt

Lenfositler, T hücreleri gibi, belirli bir özgüllük 1 ile bir alıcı oluşturmak için, genetik V (D) J rekombinasyon uğrarlar. Için transgenik farelerin bir yeniden düzenlenmiştir antijen-spesifik T hücre reseptör (TCR) T hücre gelişimi ve işlevi incelemek için vazgeçilmez bir araç olmuştur. Ancak, bu TCRS genellikle, yüksek afinite ile T hücreleri için kaçınılmaz seçer tekrarlanan antijen stimülasyonu, genellikle uzun vadeli kültürden sonra ilgili T hücreleri izole edilmiştir. TCR Rastgele genomik entegrasyon α-ve β-zinciri ve olmayan endojen rehberleri ifade ekspresyon seviyesi ve kinetik değişimlerine yol açabilir. Somatik hücre nükleer transferi yoluyla epigenetik yeniden programlama ilgi herhangi bir hücreden embriyonik kök hücreler ve fareler üretmek için bir araç sağlar. Sonuç olarak, epigenetik işaretleri sıfırlanır SCNT bilinen özgüllük T hücreleri uygulandığında, bu genetik V (D) J düzenlenmeleri, SCNT embriyonik kök hücreler (EKH) ve onlardan elde edilen farelerin aktarılır. Toxoplasma gondii karşı önceden tanımlanmış özgüllükleri T hücrelerinin deneysel olarak tanıtıldı genetik değişiklik yapmadan, kendi endojen lokusların spesifik TCR ifade fare modelleri oluşturmak için kullanılabileceğini göstermiştir. Göreli kolaylığı ve hız gibi transnuclear modeller elde edilebilir olan diğer hastalık modelleri yapımı için söz sahibidir.

Watch this Scientific Journal Video about Transnuclear Mice with Pre-defined T Cell Receptor Specificities Against Toxoplasma gondii Obtained Via SCNT at JoVE.com

Transnuclear Mice with Pre-defined T Cell Receptor Specificities Against Toxoplasma gondii Obtained Via SCNT

Somatik Hücre Nükleer Transferi (SCNT) üzerinden epigenetik yeniden programlama önceden tanımlanmış T hücre reseptör (TCR) özgüllükleri fare modelleri oluşturmak için bir araç olarak kullanılabileceğini göstermektedir. Bu transnuclear fareler, endojen endojen organizatörü kontrol altında lokus karşılık gelen TCR ifade eder.

Karşı Önceden tanımlanmış T Hücre Reseptör özgüllükleri Transnuclear Fare Toxoplasma gondii SCNT ile Elde Edilen

Lymphocytes, such as T cells, undergo genetic V(D)J recombination, to generate a receptor with a certain specificity1. Mice transgenic for a rearranged ...

transnuclear-mice-with-pre-defined-t-cell-receptor-specificities

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Transnuclear Mice with Pre-defined T Cell Receptor Specificities Against Toxoplasma gondii Obtained Via SCNT

14.0K Görüntüleme.  Whitehead Institute for Biomedical Research. Somatik Hücre Nükleer Transferi (SCNT) üzerinden epigenetik yeniden programlama önceden tanımlanmış T hücre reseptör (TCR) özgüllükleri fare modelleri oluşturmak için bir araç olarak kullanılabileceğini göstermektedir. Bu transnuclear fareler, endojen endojen organizatörü kontrol altında lokus karşılık gelen TCR ifade eder.

Video: Transnuclear Mice with Pre-defined T Cell Receptor Specificities Against Toxoplasma gondii Obtained Via SCNT

Obtaining Highly Purified Toxoplasma gondii Oocysts by a Discontinuous Cesium Chloride Gradient

Toxoplasma gondii is an obligate intracellular protozoan pathogen that commonly infects humans. It is a well characterized apicomplexan associated with causing food- and water-borne disease outbreaks. The definitive host is the feline species where sexual replication occurs resulting in the development of the highly infectious and environmentally resistant oocyst. Infection occurs via ingestion of tissue cysts from contaminated meat or oocysts from soil or water. Infection is typically asymptomatic in healthy individuals, but results in a life-long latent infection that can reactivate causing toxoplasmic encephalitis and death if the individual becomes immunocompromised. Meat contaminated with T. gondii cysts have been the primary source of infection in Europe and the United States, but recent changes in animal management and husbandry practices and improved food handling and processing procedures have significantly reduced the prevalence of T. gondii cysts in meat1, 2. Nonetheless, seroprevalence in humans remains relatively high suggesting that exposure from oocyst contaminated soil or water is likely. Indeed, waterborne outbreaks of toxoplasmosis have been reported worldwide supporting the theory exposure to the environmental oocyst form poses a significant health risk3-5. To date, research on understanding the prevalence of T. gondii oocysts in the water and environment are limited due to the lack of tools to detect oocysts in the environment 5, 6. This is primarily due to the lack of efficient purification protocols for obtaining large numbers of highly purified T gondii oocysts from infected cats for research purposes. This study describes the development of a modified CsCl method that easily purifies T. gondii oocysts from feces of infected cats that are suitable for molecular biological and tissue culture manipulation7.

Obtaining Highly Purified Toxoplasma gondii Oocysts by a Discontinuous Cesium Chloride Gradient

This study describes the development of a modified CsCl method that easily purifies T. gondii oocysts from feces of infected cats that are suitable for molecular biological and tissue culture manipulation

Yüksek Saflaştırılmış Alınması Toxoplasma gondii Süreksiz Sezyum Klorür Gradient ookistleri

Toxoplasma gondii is an obligate intracellular protozoan pathogen that commonly infects humans. It is a well characterized apicomplexan associated with ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Toxoplasma gondii Cyst Wall Formation in Activated Bone Marrow-derived Macrophages and Bradyzoite Conditions

Toxoplasma gondii is an obligate intracellular parasite that can invade any nucleated cell of warm-blooded animals. During infection, T. gondii disseminates as a fast replicating form called the tachyzoite. Tachyzoites convert into a slow-growing encysted form called the bradyzoite by a signaling process that is not well characterized. Within animals, bradyzoite cysts are found in the central nervous system and muscle tissue and represent the chronic stage of infection. Conversion to bradyzoites can be simulated in tissue culture by CO2 starvation, using medium with high a pH, or the addition of interferon gamma (IFN&gamma;). Bradyzoites are characterized by the presence of a cyst wall, to which the lectin Dolichos biflorus agglutinin (DBA) binds. Fluorescently labeled DBA is used to visualize the cyst wall in parasites grown in human foreskin fibroblasts (HFFs) that have been exposed to low CO2 and high pH medium. Similarly, parasites residing in murine bone marrow-derived macrophages (BMMs) display a cyst wall detectable by DBA after the BMMs are activated with IFN&gamma; and lipopolysaccharide (LPS). This protocol will demonstrate how to induce conversion of T. gondii to bradyzoites using a high pH growth medium with low CO2 and activation of BMMs. Host cells will be cultured on coverslips, infected with tachyzoites and either activated with addition of IFN&gamma; and LPS (BMMs) or exposed to a high pH growth medium (HFFs) for three days. Upon completion of infections, host cells will be fixed, permeabilized, and blocked. Cyst walls will be visualized using rhodamine DBA with fluorescence microscopy.

Toxoplasma gondii Cyst Wall Formation in Activated Bone Marrow-derived Macrophages and Bradyzoite Conditions

Toxoplasma gondii converts to a cyst form in response to environmental stresses, which can be mimicked in tissue culture models. This video demonstrates techniques to examine cyst wall formation by activating bone marrow-derived macrophages or changing growth medium pH in fibroblast cells.

Aktif Kemik İliği türetilen Makrofajlar ve Bradyzoite Koşullar Toxoplasma gondii Kist Duvar Oluşumu

Toxoplasma gondii is an obligate intracellular parasite that can invade any nucleated cell of warm-blooded animals. During infection, T. gondii ...

A Genetic Screen to Isolate Toxoplasma gondii Host-cell Egress Mutants

The widespread, obligate intracellular, protozoan parasite Toxoplasma gondii causes opportunistic disease in immuno-compromised patients and causes birth defects upon congenital infection. The lytic replication cycle is characterized by three stages: 1. active invasion of a nucleated host cell; 2. replication inside the host cell; 3. active egress from the host cell. The mechanism of egress is increasingly being appreciated as a unique, highly regulated process, which is still poorly understood at the molecular level. The signaling pathways underlying egress have been characterized through the use of pharmacological agents acting on different aspects of the pathways1-5. As such, several independent triggers of egress have been identified which all converge on the release of intracellular Ca2+, a signal that is also critical for host cell invasion6-8. This insight informed a candidate gene approach which led to the identification of plant like calcium dependent protein kinase (CDPK) involved in egress9. In addition, several recent breakthroughs in understanding egress have been made using (chemical) genetic approaches10-12. To combine the wealth of pharmacological information with the increasing genetic accessibility of Toxoplasma we recently established a screen permitting the enrichment for parasite mutants with a defect in host cell egress13. Although chemical mutagenesis using N-ethyl-N-nitrosourea (ENU) or ethyl methanesulfonate (EMS) has been used for decades in the study of Toxoplasma biology11,14,15, only recently has genetic mapping of mutations underlying the phenotypes become routine16-18. Furthermore, by generating temperature-sensitive mutants, essential processes can be dissected and the underlying genes directly identified. These mutants behave as wild-type under the permissive temperature (35 &deg;C), but fail to proliferate at the restrictive temperature (40 &deg;C) as a result of the mutation in question. Here we illustrate a new phenotypic screening method to isolate mutants with a temperature-sensitive egress phenotype13. The challenge for egress screens is to separate egressed from non-egressed parasites, which is complicated by fast re-invasion and general stickiness of the parasites to host cells. A previously established egress screen was based on a cumbersome series of biotinylation steps to separate intracellular from extracellular parasites11. This method also did not generate conditional mutants resulting in weak phenotypes. The method described here overcomes the strong attachment of egressing parasites by including a glycan competitor, dextran sulfate (DS), that prevents parasites from sticking to the host cell19. Moreover, extracellular parasites are specifically killed off by pyrrolidine dithiocarbamate (PDTC), which leaves intracellular parasites unharmed20. Therefore, with a new phenotypic screen to specifically isolate parasite mutants with defects in induced egress, the power of genetics can now be fully deployed to unravel the molecular mechanisms underlying host cell egress.

A Genetic Screen to Isolate Toxoplasma gondii Host-cell Egress Mutants

Forward genetics is a powerful method to unravel the molecular level of how Toxoplasma egresses from its host cell. Protocols are provided to chemically mutagenize parasites, enrich for mutants with defects in induced egress, and validate the phenotype of cloned mutants.

Isolate A Genetik Ekran Toxoplasma gondii Host-hücre çıkış Mutants

The widespread, obligate intracellular, protozoan parasite Toxoplasma gondii causes opportunistic disease in immuno-compromised patients and causes birth ...

Genetic Manipulation in &Delta;ku80 Strains for Functional Genomic Analysis of Toxoplasma gondii

Targeted genetic manipulation using homologous recombination is the method of choice for functional genomic analysis to obtain a detailed view of gene function and phenotype(s). The development of mutant strains with targeted gene deletions, targeted mutations, complemented gene function, and/or tagged genes provides powerful strategies to address gene function, particularly if these genetic manipulations can be efficiently targeted to the gene locus of interest using integration mediated by double cross over homologous recombination.
Due to very high rates of nonhomologous recombination, functional genomic analysis of Toxoplasma gondii has been previously limited by the absence of efficient methods for targeting gene deletions and gene replacements to specific genetic loci. Recently, we abolished the major pathway of nonhomologous recombination in type I and type II strains of T. gondii by deleting the gene encoding the KU80 protein1,2. The &Delta;ku80 strains behave normally during tachyzoite (acute) and bradyzoite (chronic) stages in vitro and in vivo and exhibit essentially a 100% frequency of homologous recombination. The &Delta;ku80 strains make functional genomic studies feasible on the single gene as well as on the genome scale1-4.
Here, we report methods for using type I and type II &Delta;ku80&Delta;hxgprt strains to advance gene targeting approaches in T. gondii. We outline efficient methods for generating gene deletions, gene replacements, and tagged genes by targeted insertion or deletion of the hypoxanthine-xanthine-guanine phosphoribosyltransferase (HXGPRT) selectable marker. The described gene targeting protocol can be used in a variety of ways in &Delta;ku80 strains to advance functional analysis of the parasite genome and to develop single strains that carry multiple targeted genetic manipulations. The application of this genetic method and subsequent phenotypic assays will reveal fundamental and unique aspects of the biology of T. gondii and related significant human pathogens that cause malaria (Plasmodium sp.) and cryptosporidiosis (Cryptosporidium).

Genetic Manipulation in &lt;em&gt;&amp;Delta;ku80&lt;/em&gt; Strains for Functional Genomic Analysis of &lt;em&gt;Toxoplasma gondii&lt;/em&gt;

Here we report a method for using type I and type II &Delta;ku80 strains of Toxoplasma gondii to efficiently generate targeted gene deletions and gene replacements for functional genomic analysis.

Genetik Manipülasyon<em&gt; Δku80</emFonksiyonel Genomik Analiz&gt; Suşlarının<em&gt; Toxoplasma gondii</em

Targeted genetic manipulation using homologous recombination is the method of choice for functional genomic analysis to obtain a detailed view of gene ...

Forward Genetics Screens Using Macrophages to Identify Toxoplasma gondii Genes Important for Resistance to IFN-&#947;-Dependent Cell Autonomous Immunity

Toxoplasma gondii, the causative agent of toxoplasmosis, is an obligate intracellular protozoan pathogen. The parasite invades and replicates within virtually any warm blooded vertebrate cell type. During parasite invasion of a host cell, the parasite creates a parasitophorous vacuole (PV) that originates from the host cell membrane independent of phagocytosis within which the parasite replicates. While IFN-dependent-innate and cell mediated immunity is important for eventual control of infection, innate immune cells, including neutrophils, monocytes and dendritic cells, can also serve as vehicles for systemic dissemination of the parasite early in infection. An approach is described that utilizes the host innate immune response, in this case macrophages, in a forward genetic screen to identify parasite mutants with a fitness defect in infected macrophages following activation but normal invasion and replication in na&#239;ve macrophages. Thus, the screen isolates parasite mutants that have a specific defect in their ability to resist the effects of macrophage activation. The paper describes two broad phenotypes of mutant parasites following activation of infected macrophages: parasite stasis versus parasite degradation, often in amorphous vacuoles. The parasite mutants are then analyzed to identify the responsible parasite genes specifically important for resistance to induced mediators of cell autonomous immunity. The paper presents a general approach for the forward genetics screen that, in theory, can be modified to target parasite genes important for resistance to specific antimicrobial mediators. It also describes an approach to evaluate the specific macrophage antimicrobial mediators to which the parasite mutant is susceptible. Activation of infected macrophages can also promote parasite differentiation from the tachyzoite to bradyzoite stage that maintains chronic infection. Therefore, methodology is presented to evaluate the importance of the identified parasite gene to establishment of chronic infection.

Forward Genetics Screens Using Macrophages to Identify Toxoplasma gondii Genes Important for Resistance to IFN-&amp;#947;-Dependent Cell Autonomous Immunity

Forward genetics is a powerful approach to identify genes in intracellular pathogens important for resistance to cell autonomous immunity. The current approach uses innate immune cells, specifically macrophages, to identify novel Toxoplasma gondii genes important for immune evasion.

İleri Genetik tanımak makrofajlar kullanılarak Ekranlar<em&gt; Toxoplasma gondii</em&gt; Genler önemli direnç için IFN-γ-bağımlı hücre otonom bağışıklık

Toxoplasma gondii, the causative agent of toxoplasmosis, is an obligate intracellular protozoan pathogen. The parasite invades and replicates within ...

Retroviral Transduction of Bone Marrow Progenitor Cells to Generate T-cell Receptor Retrogenic Mice

T cell receptor (TCR) signaling is essential in the development and differentiation of T cells in the thymus and periphery, respectively. The vast array of TCRs proves studying a specific antigenic response difficult. Therefore, TCR transgenic mice were made to study positive and negative selection in the thymus as well as peripheral T cell activation, proliferation and tolerance. However, relatively few TCR transgenic mice have been generated specific to any given antigen. Thus, studies involving TCRs of varying affinities for the same antigenic peptide have been lacking. The generation of a new TCR transgenic line can take six or more months. Additionally, any specific backcrosses can take an additional six months. In order to allow faster generation and screening of multiple TCRs, a protocol for retroviral transduction of bone marrow was established with stoichiometric expression of the TCR&#945; and TCR&#946; chains and the generation of retrogenic mice. Each retrogenic mouse is essentially a founder, virtually negating a founder effect, while the length of time to generate a TCR retrogenic is cut from six months to approximately six weeks. Here we present a rapid and flexible alternative to TCR transgenic mice that can be expressed on any chosen background with any particular TCR.

We present a rapid and flexible protocol for a single T cell receptor (TCR) retroviral-based in vivo expression system. Retroviral vectors are used to transduce bone marrow progenitor cells to study T cell development and function of a single TCR in vivo as an alternative to TCR transgenic mice.

Kemik iliği projenitör hücrelerinin retroviral İletimi T-hücre reseptör Retrogenic fareler üretmek için

T cell receptor (TCR) signaling is essential in the development and differentiation of T cells in the thymus and periphery, respectively.  The vast array ...

Development of Stem Cell-derived Antigen-specific Regulatory T Cells Against Autoimmunity

Autoimmune diseases arise due to the loss of immunological self-tolerance. Regulatory T cells (Tregs) are important mediators of immunologic self-tolerance. Tregs represent about 5 - 10% of the mature CD4+ T cell subpopulation in mice and humans, with about 1 - 2% of those Tregs circulating in the peripheral blood. Induced pluripotent stem cells (iPSCs) can be differentiated into functional Tregs, which have a potential to be used for cell-based therapies of autoimmune diseases. Here, we present a method to develop antigen (Ag)-specific Tregs from iPSCs (i.e., iPSC-Tregs). The method is based on incorporating the transcription factor FoxP3 and an Ag-specific T cell receptor (TCR) into iPSCs and then differentiating on OP9 stromal cells expressing Notch ligands delta-like (DL) 1 and DL4. Following in vitro differentiation, the iPSC-Tregs express CD4, CD8, CD3, CD25, FoxP3, and Ag-specific TCR and are able to respond to Ag stimulation. This method has been successfully applied to cell-based therapy of autoimmune arthritis in a murine model. Adoptive transfer of these Ag-specific iPSC-Tregs into Ag-induced arthritis (AIA)-bearing mice has the ability to reduce joint inflammation and swelling and to prevent bone loss.

We present here a method to develop functional antigen (Ag)-specific regulatory T cells (Tregs) from induced pluripotent stem cells (iPSCs) for immunotherapy of autoimmune arthritis in a murine model.

Otoimmünite karşı Kök Hücre türetilmiş antijen-özgü düzenleyici T hücrelerinin gelişimini

Autoimmune diseases arise due to the loss of immunological self-tolerance. Regulatory T cells (Tregs) are important mediators of immunologic ...

Identification of Mediators of T-cell Receptor Signaling via the Screening of Chemical Inhibitor Libraries

The T-cell receptor (TCR) signaling pathway comprises a multitude of mediators that transmit signals upon the activation of the TCR. Different strategies have been proposed and implemented for the identification of new mediators of TCR signaling, which would improve the understanding of T-cell processes, including activation and thymic selection. We describe a screening assay that enables the identification of molecules that influence TCR signaling based on the activation of developing thymocytes. Strong TCR signals cause developing thymocytes to activate apoptotic machinery in a process known as negative selection. Through the application of kinase inhibitors, those with targets that affect TCR signaling are able to override the process of negative selection. The method detailed in this paper can be used to identify inhibitors of canonical kinases with established roles in the TCR signaling pathways and also inhibitors of new kinases yet to be established in the TCR signaling pathways. The screening strategy here can be applied to screens of higher throughput for the identification of novel druggable targets in TCR signaling.

Identification of Mediators of T-cell Receptor Signaling via the Screening of Chemical Inhibitor Libraries

This paper uses a flow-cytometry-based assay to screen libraries of chemical inhibitors for the identification of inhibitors and their targets that influence T-cell receptor signaling. The methods described here can also be expanded for high-throughput screenings.

T-hücre reseptör üzerinden tarama kimyasal inhibitörü kütüphanelerin sinyal arabulucu tanımlaması

The T-cell receptor (TCR) signaling pathway comprises a multitude of mediators that transmit signals upon the activation of the TCR. Different strategies ...

Single-cell Screening Method for the Selection and Recovery of Antibodies with Desired Specificities from Enriched Human Memory B Cell Populations

The human antibody repertoire represents a largely untapped source of potential therapeutic antibodies and useful biomarkers. While current computational methods, such as next generation sequencing (NGS), yield enormous sets of data on the antibody repertoire at the sequence level, functional data is required to identify which sequences are relevant for a particular antigen or set of antigens. Here, we describe a method to identify and recover individual antigen-specific antibodies from peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from a human blood donor. This method utilizes an initial enrichment of mature B cells and requires a combination of phenotypic cell markers and fluorescently-labeled protein to isolate IgG memory B cells via flow cytometry. The heavy and light chain variable regions are then cloned and re-screened. Although limited to the memory B cell compartment, this method takes advantage of flow cytometry to interrogate millions of B cells and returns paired heavy and light chain sequences from a single cell in a format ready for expression and confirmation of specificity. Antibodies recovered with this method can be considered for therapeutic potential, but can also link specificity and function with bioinformatic approaches to assess the B cell repertoire within individuals.

The BSelex method to identify and recover individual antigen-specific antibodies from human peripheral blood mononuclear cells combines flow cytometry with single cell PCR and cloning.

Zenginleştirilmiş İnsan Hafızası B Hücre Popülasyonlarından İstenilen Özgülliklerle Antikorların Seçimi ve Geri Kazanımı İçin Tek Hücreli Tarama Yöntemi

The human antibody repertoire represents a largely untapped source of potential therapeutic antibodies and useful biomarkers. While current computational ...

Stem Cell-Derived Viral Ag-Specific T Lymphocytes Suppress HBV Replication in Mice

Hepatitis B virus (HBV) infection is a global health issue. With over 350 million people affected worldwide, HBV infection remains the leading cause of liver cancer. This is a major concern, especially in developing countries. Failure of the immune system to mount an effective response against HBV leads to chronic infection. Although HBV vaccine is present and novel antiviral medicines are being created, eradication of virus-reservoir cells remains a major health topic. Described here is a method for the generation of viral antigen (Ag) -specific CD8+ cytotoxic T lymphocytes (CTLs) derived from induced pluripotent stem cells (iPSCs) (i.e., iPSC-CTLs), which have the ability to suppress HBV replication. HBV replication is efficiently induced in mice through hydrodynamic injection of an HBV expression plasmid, pAAV/HBV1.2, into the liver. Then, HBV surface Ag-specific mouse iPSC-CTLs are adoptively transferred, which greatly suppresses HBV replication in the liver and blood as well as prevents HBV surface Ag expression in hepatocytes. This method demonstrates HBV replication in mice after hydrodynamic injection and that stem cell-derived viral Ag-specific CTLs can suppress HBV replication. This protocol provides a useful method for HBV immunotherapy.

Presented here is a protocol for the effective suppression of hepatitis B virus (HBV) replication in mice by utilizing adoptive cell transfer (ACT) of stem cell-derived viral antigen (Ag)-specific T lymphocytes. This procedure may be adapted for potential ACT-based immunotherapy of HBV infection.

Kök Hücre Kaynaklı Viral Ag-Spesifik T Lenfositler Farelerde HBV Replikasyonlarını Baskılar

Hepatitis B virus (HBV) infection is a global health issue. With over 350 million people affected worldwide, HBV infection remains the leading cause of ...