Ulrich Schwarz laboratuar hücresel çekiş güçleri ölçümü (Sabass ve ark, 2008) kullanılan hesaplama izleme yazılımı için teşekkür ederiz. Bu çalışma, bir Burroughs Wellcome Kariyer Ödülü ve ML Gardel ve Tıp Scientist Ulusal Araştırma Hizmet Ödülü (5 T32 GM07281) SP Kış NIH Müdürü Pioneer Ödülü (DP10D00354) tarafından desteklenmiştir.

1. Lamel yüzey etkinleştirilmesi <ol><li> Lamelleri (# 1.5, 22x40 mm), temiz ve toz kaldırmak için, daha önce açıklanan bir protokol (Waterman-Storer, 1998) ve etanol sabunla yıkar bir dizi kullanılarak temizlenebilir. </li><li> Paslanmaz çelik tutucu raf yerleştirin lamelleri, öyle ki lamelleri arayla ve değmiyor. </li><li> Kimyasal davlumbaz (nitril eldiven ve gözlük önerilir), kare bir cam tabak (~ 350ml hacmi) doldurmak için nihai bir konsantrasyon için% 2 (2ml silan / 100 ml izopropanol) 3-isopropanol aminopropyltrimethoxysilane tam güç sulandırmak. Plastik ile reaktivite nedeniyle, izopropanol 3-aminopropyltrimethoxysilane uygulamak için bir cam Pasteur pipet kullanın. </li><li> 1.2 &#39;den tam 10 dakika için bu çözüm içine batırmayın lamelleri, davlumbaz bir heyecan plaka üzerinde yavaşça karıştırarak ederken. </li><li> GKD 2 O (4 borsaları su) daldırma lamelleri yıkayın. 10 dakika karıştırma, son alışverişi için zaman iliklerine izin verin. Amino-silan içeren solüsyonlar, tehlikeli atık olarak bertaraf edilmelidir. </li><li> Inkübatör Kuru lamelleri sıcak sıcaklığında (~ 37 ° C), tozsuz bir ortamda 10 dakika. </li><li> Oda sıcaklığında soğutun. </li><li> Davlumbaz, kare bir cam tabak içinde GKD 2 O% 1 glutaraldehid çözüm batırmayın lamelleri, 30 dakika boyunca plaka karıştırın . </li><li> Karıştırma ile GKD 2 O 3 borsaları, döviz başına 10 dakika yıkayın. Glutaraldehid ile tehlikeli atık olarak bertaraf edin. </li><li> Toz lamelleri yapışmasını önlemek için alüminyum folyo ile kaplanmış, oda sıcaklığında kurutun. </li><li> 2 ay kadar tozdan uzak, kuru bir yerde saklayın. </li></ol> 2. Poliakrilamid Hazırlama (PAA) jel <ol><li> Tablo 1,% 40 Akrilamid ve% 2 bis-akrilamid, akrilamid / bis-akrilamid karışımı stok çözümleri hazırlayın. Biz farklı sertlik PAA jeller için optimize edilmiş çok sayıda hisse senedi çözümler korumak; örnekler Tablo 1 ve 2&#39;de listelenmiştir. Stok çözeltiler 4 C&#39;de karanlık bir şişe içinde tutulur sürece, birkaç yıl boyunca muhafaza edilebilir </li><li> Çalışma çözümler akrilamid / bis-akrilamid son istenilen konsantrasyonları içeren stok çözeltileri elde edilir. Örneğin, biz 2.8kPa PAA jeller yapmak için çalışan bir çözüm GKD 2 O% 7.5 acrylamide/0.10% bis-akrilamid hazırlar. </li><li> Degas akrilamid çözümü için bir vakum odasında 20 dakika, PAA polimerizasyon engelleyen çözüm içindeki oksijeni azaltmak için. </li><li> % 10 amonyum persülfat (APS) solüsyonu (0.5g/5mL) hazırlayın. 3 gün içinde yeni bir çalışma stok kullanın. Alternatif olarak, hisse senetleri, daha sonraki tarihlerde kullanılmak üzere dondurularak muhafaza edilebilir. </li><li> Akrilamid gaz alma iken, cam slayt yüzeyini hidrofobik yapmak şiddetle Yağmur-X mendil ile bir 1x3 &quot;mikroskop cam slayt silin. Kapalı, kenara, nemli Kimwipe cam slayt silin. Set cam slayt aşırı Yağmur-X kaldırmak için. </li><li> Akrilamid çözüm vakum odasından çıkarın ve floresan boncuk eklemek (hacimce% 1, Tablo 1&#39;de yer alan çalışma çözümü için 5 ul). 0.75μl TEMED ekleyin ve jel polimerizasyonu başlatır 2.5 ul% 10 APS. Baloncuklar tanıtımı en aza indirmek için ~ 5 saniye boyunca pipetleme iyice karıştırınız. </li><li> Damlacık üstüne 22x40mm lamel aktif hidrofobik mikroskop lamı (adım 2.4 hazırlanan) ve yer akrilamid çözüm 10-12 ul uygulayın. Jel tüm çözüm kat lamel gerekir. Çözümü içinde ortaya çıkabilecek herhangi bir kabarcıkları yumuşatır. ~ 10 dakika süreyle oda sıcaklığında polimerize jel solüsyonu izin verin. </li><li> Polimerizasyon tamamlanması mikrosantrifüj tüp tersini kalan çalışma çözümü ile tespit edilebilir. Ayrıca, polimerize jel lamel kenarları uzak çekin. Makroskopik polimerizasyon görülmektedir hemen sonra, cam slayt lamel ayırın. Ince uçlu bir cımbız ya da jilet kenarı kullanarak, hidrasyon korumak için dikkatli bir şekilde, GKD 2 O mikroskop lamı yüzey ve batırmayın jel, jel takılı lamel kaldırmak. </li></ol> 3. PAA jel ekstrasellüler matriks (ECM) proteinleri Kaplin PAA jel üst yüzey (3.1 ve 3.2) veya jel hacmi (3.3) içinde ECM protein içeren ya ECM protein eklemek için üç ayrı yöntem kullanılabilir. Burada, inkübasyondan sonra 1 saat süreyle 10 mg / ml fibronektin çözüm cam üzerine adsorbe miktarına eşdeğer bir yüzey ligand yoğunluğu sonucu PAA jeller fibronektin kaplin tartışmak. Tartışmaya bir yöntem seçiminde dikkat edilmesi gereken noktalar ayrıntılı olarak açıklanmıştır. <ol><li> Cross-bağlayan proteinler üzerinde Sulfo SANPAH Reaktif aminler PAA jel yüzey ECM protein kovalent çapraz bağlayıcı heterobifunctional Sulfo-SANPAH PAA jel yüzeye bağlı. <ol><li> S çözme Sulfo-SANPAH 40 ul çalışma alikotları hazırlayın<html> susuz dimetil sülfoksit ulfo SANPAH tozu (DMSO) (ul Sulfo-SANPAH başına 20 mg). -80 Az sıvı azot ve mağaza Flash dondurma stokları ° C daha sonra kullanmak için. </li><li> GKD 2 O bir lamel spinner (&lt;2sn) kullanarak jel yüzeyden çıkarın. Jel kurutma kaçının. </li><li> Kullanımdan hemen önce kat jel yüzey (~ 200 ul) GKD 2 O (2mg/ml pH 7) Sulfo-SANPAH-DMSO alikotları sulandırınız. Sulfo-SANPAH reaktivite yarılanma ömrü oda sıcaklığında su (~ 5 dk) kısa olduğunu unutmayın; bu nedenle, bu adımları hızlı bir şekilde yapılmalıdır. </li><li> UV çapraz bağlayıcı fırında (1.5 dakika süreyle 2-3 santim mesafe 8W, 254 nm dalga boyu) UV ışığı jel yüzey Açığa. Sulfo-SANPAH turuncu ve kahverengi renk değişikliği. </li><li> Dip UV-tedavi taze GKD 2 O ile beher lamelleri ve lamel spinner (&lt;2sn) kullanarak jel yüzey aşırı su çıkarmak. </li><li> Pipet ~ Parafilm Petri kabı kapta soğuk 1mg/ml Fibronektin (FN) (PBS, pH 7.4) 50 mcL. FN damla üst lamel haricindekileri, jel tarafı FN maruz. </li><li> 4 ° C gecede 1-2 saat veya oda sıcaklığında reaksiyona girer. </li><li> PBS (pH 7.4) içeren 6 cm doku kültürü yemekleri Yeri lamelleri, yeterli doku kültürü kaput steril koşullar altında, lamel kapsayacak. </li><li> PBS (pH 7.4) steril koşullar altında birkaç yıkar (3-5), iyice yıkayın. </li><li> 30 dakika süreyle doku kültürü kaput antiseptik lamba kullanımı lamelleri sterilize edin. </li><li> Kaplama hücrelerine önce 30-45 dakika süreyle cep medya lamelleri inkübe edin. </li></ol></li><li> Çapraz bağlantı ECM okside proteinler üzerinde hidrazin hidrat Karbonhidrat gruplar tarafından PAA jel yüzey ve hidrazin hidrat ile jel akuple. <ol><li> 2. bölümünde açıklandığı gibi poliakrilamid jeller hazırlayın. </li><li> Davlumbaz plastik Petri kabı ve eldiven kullanarak yerleştirin PAA jel lamelleri her PAA jel ve inkübe yüzeye en az iki saat süreyle, yaklaşık 1 ml sulandırılmamış hidrazin hidrat pipet, ama 24 saatten daha uzun </li><li> Petri kabı GKD 2 O, hidrazin hidrat çözüm çıkarın ve tehlikeli atık olarak imha ediniz . </li><li> Lamel batırmayın Petri kabı% 5 asetik asit ekleyin. Kapak ve bir saat süreyle inkübe edin. </li><li> Asetik asit çıkarın ve GKD 2 O. ile yıkayın GKD 2 O bir saat süreyle inkübe edin. Lamelleri artık etkin ve çapraz bağ Fibronektin (FN) okside hazırız. </li><li> Son bir 10 mg / ml konsantrasyon, 10 ul 940 ul karanlık bir mikro santrifüj tüpüne 50 mM sodyum asetat tamponu (pH 4.5) 1 mg / ml FN çözüm sulandırınız. </li><li> 50 mM sodyum asetat tamponu (pH 4.5) 1 ml 80 mg sodyum meta-periyodat ekleyerek 20X sodyum meta-periyodat stok olun. </li><li> Meta-periyodat stok 20X sodyum 50 ul 3.2.6 hazırlanan FN çözümü, bu son çalışma konsantrasyonu 10 mcg / ml FN ve 4 mg / ml sodyum meta-periyodat. 30 dakika boyunca oda sıcaklığında karanlık bir tüp içinde inkübe edin. </li><li> Lamel spinner (&lt;2 sn) kullanarak 3.2.5 hazırlanan jel yüzey aktif fazla GKD 2 O çıkarın. Jel kurutma kaçının. </li><li> Pipetleyin ~ FN çözümü üzerine oda sıcaklığında 1 saat boyunca aktif jel yüzey ve inkübe 500 ul. </li><li> PBS (pH 7.4) içeren yemekler Yeri lamelleri, lamel kapağı için yeterli. </li><li> PBS birkaç yıkar (3-5) (pH 7.4) ile iyice yıkayın. </li><li> 30 dakika süreyle doku kültürü kaput antiseptik lamba kullanımı lamelleri sterilize edin. </li><li> Kaplama hücrelerine önce 30-45 dakika süreyle cep medya lamelleri inkübe edin. </li></ol></li><li> Toplu konjugasyon akriloil-X PAA jel ECM protein, succinimidyl ester Bu protokol 2.5 önce yapılır. Proteinlerin reaktif aminler NHS ester, kimya ile bir akrilamid monomer birleştiğinde ve sonra PAA jel dökme içine ko-polimerize. <ol><li> Akriloil-X, üreticinin talimatlarına göre tercih Konjugat ECM protein. Stok çözümler konjuge protein 4 saklanmalıdır ° C </li><li> PAA jel fabrikasyon (örneğin lamel ortalama 10 uL) için gerekli çalışma çözeltisi hacmi hesaplayın. </li><li> Tablo 1&#39;de çalışma çözüm tarifi listelenen miktar su (örneğin% 10 hacmi) 50 mcL çıkarma ve polimerizasyon başlatabilir. </li><li> 3.3.2 &#39;de hesaplanan ses çıkarın ve% 10 hacim ECM / akriloil-X çözümü eklemek. (Örneğin 1 mcL PAA 9 mcL ECM / akriloil-X). Jel polimerize Bu adım, hızla yapılmalıdır. </li><li> 2.6 ve 2.7 adımları tamamlayın daha önce açıklandığı gibi. </li><li> PBS (pH 7.4) steril koşullar altında birkaç yıkar (3-5), iyice yıkayın. </li><li> 30 dakika süreyle doku kültürü kaput antiseptik lamba kullanımı lamelleri sterilize edin. </li><li> Kaplama hücrelerine önce 30-45 dakika süreyle cep medya lamelleri inkübe edin. </li></ol></li></ol>konfokal görüntüleme odasına le &quot;&gt; 4. lamel Bu adımlar, hücreleri ECM-kaplı jel substrat (~ 6-12 saat) yayılmasına izin edildikten sonra yapılır. Konfokal görüntüleme odası (RC-30WA) bir araya getirmek için, rehberlik için Warner Instruments web sitesine bakın yararlı. <ol><li> Sıcak hücre medya ve% 0,5 veya% 0.25 tripsin ve yük 5ml veya 10ml şırınga içine. </li><li> Lamel yerinde tutmak için vakum yağ kullanarak bir Warner Instruments konfokal görüntüleme odası (RC-30WA) Top lamel sahibinin üzerine bir 22x30mm lamel yükleyin. </li><li> Giriş ve çıkış polietilen boru erişim sağlayan, lamel üstüne kauçuk conta oluşturan bir odaya yerleştirin. Bu üst lamel ve kullanılan conta boyutuna bağlı olarak jel kaplı 22x40mm lamel, 150-1000 mm arasında bir boşluk sağlayacaktır. </li><li> Konektörü kiti ve medya tüp yoluyla ve Top lamel üzerine akar ve hava kabarcığı akış hatları belirgin olduğunu kontrol yoluyla giriş boru üzerine Yük şırıngalar,. </li><li> Odasının taban ve hücre tarafı kadar yük jel kaplı 22x40mm lamel üzerine vakum gres yağı uygulayın. Sıcak medya hücrelere uygulayın. </li><li> Odası Conta jel kaplı lamel ayıran oda tabanına yerleştirin lamel tutucu,. Odanın tabanı içinde Konumlandırılması Pins Top lamel Konumlandırılması Delik içinde oturup emin olun. </li><li> Basınç odasının tabanına Plaka uygulayın ve vida ve Basınç Plaka güvenli Basınç Plaka Anahtarı. </li><li> Odanın içinde herhangi bir olası sızıntıları izlemek için tüp ve oda ile medya akışını kontrol edin ve hücre yüzeyinde herhangi bir medya-serbest bölgeler ortadan kaldırmak için. Not: medya ile beslerken hafif bir vakum çekmek için küçük bir iğne kullanarak, medya-serbest bölgeler ortadan kaldırmaya yardımcı olabilir. </li><li> Görüntüleme için bir mikroskop sahibi içinde yer alan Sahne Adaptörü konfokal görüntüleme odasının uygulayın. </li><li> Resim floresan etiketli konfokal bir floresan mikroskop jel substrat içinde gömülü protein ve floresan boncuk. </li><li> Jel içinde yapmacıksız boncuk bir görüntü elde etmek için, jel hücresel yapışıklıklar ayırmak için tripsin serpmek ve floresan boncuklar hücre yapıştırılmış aynı görüntüleme alanında bir görüntü çekmek. Gergin ve yapmacıksız boncuk pozisyonların karşılaştırılması daralma altında jel substrat deplasman ölçümü için izin verir. </li></ol> Temsilcisi Sonuçlar: Yukarıdaki protokol hücre kontraktilite çalışmak için uyumlu PAA jeller hazırlamak için deneysel prosedürü açıklar ve Şekil 1&#39;de gösterilmiştir. Bu protokol ile elde edilen jel yüzeyi boyunca eşit gömülü floresan boncuk (Şekil 2A), nispeten düz ve pürüzsüz. , Odak yapışıklıklar konumu, hücre görüntüleme (Şekil 3A) ve jel yüzey (Şekil 3B) jel daralma, odak yapışıklıkların konfokal optik düzlemde ölçüm yapılması gerekir. Hücreleri yapışık (gergin) karşı müstakil (yapmacıksız) bir jel daralma gömülü floresan boncuk deplasman (Şekil 3B) jel yüzeyi ile görülebilmesi. Hesaplama algoritmaları kullanmak jel boncuk deplasman ve buna karşılık gelen elastik modülü (Şekil 3C ve 3D) (Sabass ve ark, 2008) ile ilişkili çekiş vurguluyor verebilmesidir. Görüntüleme jel içinde derin bir yer alırsa, o zaman boncuk değiştirmeler odak yapışıklıklar uygulanan çekiş güçleri temsilcisi küçük olmalıdır ve olacaktır. <img src="/files/ftp_upload/2173/2173fig1.jpg" alt="Şekil 1" /> Şekil 1 deney düzeneği şematik gösterimi. Bu prosedürün genel amacı, hücresel daralma eğitim amaçlı uyumlu matrisler oluşturmak için. Deneysel işlemin polimerize jeller ankraj amaçlı amino-silane/glutaraldehyde tedavisi lamelleri etkinleştirmek için ilk adım. İkinci adım, aktif lamel üzerine, floresan boncuklar içeren bir poliakrilamid jel polimerize. Üçüncü adım, kimyasal içerir çapraz bağlayarak, 3. adımda listelenen üç kaplin teknikleri birini kullanarak, poliakrilamid jel yüzey ekstrasellüler ligand. Hücreler daha sonra, jel üzerine kaplama ve yapışır ve yaymak için izin verilir. Aktif hücresel daralma altında, jel gömülü boncuk yerinden. <img src="/files/ftp_upload/2173/2173fig2.jpg" alt="Şekil 2" /> Şekil 2 PAA jel üst yüzeyi Optik konfokal dilim gibi (A) floresan 40nm jel içinde gömülü boncuk ve (B) fibronektin immünofloresan tarafından görüntülendi. <img src="/files/ftp_upload/2173/2173fig3.jpg" alt="Şekil 3" /> Şekil 3 bir çekiş kuvveti deney için Temsilci sonucu. (A) bir insan osteosarkom U2OS hücre Odak yapışıklıklar mGFP-paxillin ve (B), gergin (yeşil) ve yapmacıksız (kırmızı) odak yapışıklıklar altında yatan PAA jel gömülü floresan boncuk pozisyonları arked. Oklar boncuk yerinden örnekler göstermektedir. (C) Çekiş stres vektörler ve çekiş (D.) karşılık gelen ısı ölçekli harita hesaplama algoritmaları kullanarak (Sabass ve ark, 2008), jel daralma türetilen vurguluyor. Ölçek çubuğu = 5 mm. Tablo 1: Örnek Stok ve PAA Çözümleri (Tablo 1 Veri Yeung ve ark. Arkadaşlarının elde edilen ilk ve bağımsız bizim laboratuar olarak teyit edildi. ) <table border="1"><tbody><tr><td colspan="5"> Stok PAA Çözümü </td></tr><tr><td> PAA Gel Kayma Modülü (Pa) </td><td> 230 </td><td> 2833 </td><td> 8640 </td><td> 16344 </td></tr><tr><td> % 40 Akrilamid (mL) </td><td> 1,25 </td><td> 3,12 </td><td> 2,34 </td><td> 2,50 </td></tr><tr><td> % 2 Bis-Akrilamid (mL) </td><td> 0,50 </td><td> 0,83 </td><td> 1,88 </td><td> 0,60 </td></tr><tr><td> Su (ml) </td><td> 3,25 </td><td> 1,04 </td><td> 0,78 </td><td> 1. 90 </td></tr><tr><td> Toplam Hacim (ml): </td><td> 5 </td><td> 5 </td><td> 5 </td><td> 5 </td></tr></tbody></table> <table border="1"><tbody><tr><td colspan="5"> Çalışma PAA Çözümü </td></tr><tr><td> Stok Çözüm İkinci el (Pa) </td><td> 230 </td><td> 2833 </td><td> 8640 </td><td> 16344 </td></tr><tr><td> Stok Çözüm Cilt (mcL) </td><td> 150 </td><td> 150 </td><td> 200 </td><td> 300 </td></tr><tr><td> Su (mcL) </td><td> 341,75 </td><td> 341,75 </td><td> 291,75 </td><td> 191,75 </td></tr><tr><td> Boncuk (mcL) </td><td> 5 </td><td> 5 </td><td> 5 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> TEMED (mcL) </td><td> 0,75 </td><td> 0,75 </td><td> 0,75 </td><td> 0,75 </td></tr><tr><td> % 10 APS (mcL) </td><td> 2,5 </td><td> 2,5 </td><td> 2,5 </td><td> 2,5 </td></tr><tr><td> Toplam Hacim (mcL): </td><td> 500 </td><td> 500 </td><td> 500 </td><td> 500 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Final Akrilamid% </td><td> 3 </td><td> 7,5 </td><td> 7,5 </td><td> 12 </td></tr><tr><td> Final Bis-Akrilamid% </td><td> 0,06 </td><td> 0,1 </td><td> 0,3 </td><td> 0,15 </td></tr></tbody></table> Tablo 2: PAA yüzeylerde çeşitli nihai Akrilamid ve bis-akrilamid yüzdelerini Shear Modülü <table border="1"><tbody><tr><td colspan="2"> 12% Akrilamid </td><td></td><td colspan="2"> 7.5% Akrilamid </td></tr><tr><td> % Bis-Akrilamid </td><td> Kayma Modülü (Pa) </td><td></td><td> % Bis-Akrilamid </td><td> Kayma Modülü (Pa) </td></tr><tr><td> 0,145 </td><td> 16344 </td><td></td><td> 0,01 </td><td> 689 </td></tr><tr><td> 0,28 </td><td> 30067 </td><td></td><td> 0,03 </td><td> 1535 </td></tr><tr><td> 0,45 </td><td> 34263 </td><td></td><td> 0,05 </td><td> 2286 </td></tr><tr><td> 0,55 </td><td> 42375 </td><td></td><td> 0,075 </td><td> 2833 </td></tr><tr><td> 0,575 </td><td> 50873 </td><td></td><td> 0,1 </td><td> 4069 </td></tr><tr><td> 0,6 </td><td> 55293 </td><td></td><td> 0,2 </td><td> 5356 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 0,3 </td><td> 8640 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="2"> 5% Akrilamid </td><td></td><td colspan="2"> 3% Akrilamid </td></tr><tr><td> % Bis-Akrilamid </td><td> Kayma Modülü (Pa) </td><td></td><td> % Bis-Akrilamid </td><td> Kayma Modülü (Pa) </td></tr><tr><td> 0,05 </td><td> 430 </td><td></td><td>0,02 </td><td> 1,3 </td></tr><tr><td> 0,075 </td><td> 600 </td><td></td><td> 0,04 </td><td> 54 </td></tr><tr><td> 0,1 </td><td> 1431 </td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

<ol>
	<li>Damljanovic, V., Lajerholm, B. C., Jacobson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bulk+and+micropatterned+conjugation+of+extracellular+matrix+proteins+to+characterized+polyacrylamid+substrates+for+cell+mechanotransduction+assays.">Bulk and micropatterned conjugation of extracellular matrix proteins to characterized polyacrylamid substrates for cell mechanotransduction assays.</a> Biotechniques. 39 (6), 847-851 (2005).</li><li>Engler, A., Bacakova, L. N. e. w. m. a. n., Hategan, C., Griffin, A., M, D. D. i. s. c. h. e. r. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Substrate+compliance+versus+ligand+in+cell+on+gel+responses.">Substrate compliance versus ligand in cell on gel responses.</a> Biophys J. 86 ((1 Pt 1)), 617-628 (2004).</li><li>Gardel, M. L., Sabass, B., Ji, L., Danuser, G., Schwarz, U. S., Waterman, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Traction+stress+in+focal+adhesions+correlates+biphasically+with+actin+retrograde+flow+speed.">Traction stress in focal adhesions correlates biphasically with actin retrograde flow speed.</a> J Cell Biol. 183, 999-1005 (2008).</li><li>Rajagopalan, P., Marganski, W. A., Brown, X. Q., Wong, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+comparison+of+the+spread+area,+contractility,+and+migration+of+balb/c+3T3+fibroblasts+adhered+to+fibronectin-+and+RGD-modified+substrata.">Direct comparison of the spread area, contractility, and migration of balb/c 3T3 fibroblasts adhered to fibronectin- and RGD-modified substrata.</a> Biophys J. 87 (4), 2818-2827 (2004).</li><li>Reinhart-King, C. A., Dembo, M., Hammer, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+dynamics+and+mechanics+of+endothelial+cell+spreading.">The dynamics and mechanics of endothelial cell spreading.</a> Biophys J. 89, 676-689 (2005).</li><li>Stricker, J., Sabass, B., Schwarz, U. S., Gardel, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimization+of+traction+force+microscopy+for+micron-sized+focal+adhesions.">Optimization of traction force microscopy for micron-sized focal adhesions.</a> J. Phys: Condensed Matter. 22, 194104-194114 (2010).</li><li>Sabass, B., Gardel, M. L., Waterman, C. M., Schwarz, U. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High+resolution+traction+force+microscopy+based+on+experimental+and+computational+advances.">High resolution traction force microscopy based on experimental and computational advances.</a> Biophys J. 94, 207-220 (2008).</li><li>Yeung, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+substrate+stiffness+on+cell+morphology,+cytoskeletal+structure,+and+adhesion.">Effects of substrate stiffness on cell morphology, cytoskeletal structure, and adhesion.</a> Cell Motil Cytoskeleton. 60 (1), 24-34 (2005).</li><li>Waterman-Storer, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microtubule/organelle+motility+assays.">Microtubule/organelle motility assays.</a> Curr Protoc Cell Biol. , 13.1.1-13.1.21 (1998).</li></ol>

Bu prosedür, hesaplama izleme rutinleri (Sabass ve ark, 2008) uygulanması ile birlikte, kurulum için bir çekim gücü mikroskobu (TFM) deneyi burada açıklanan mikron ölçekli mekansal çözünürlüğe sahip cep güçlerinin ölçümü için izin verir . Deney protokolünde optimize etmek için, ECM ligand tekdüze kaplama ile saf ve düzgün bir jel substrat oluşturmak için kritik öneme sahiptir. Aşağıda potansiyel tuzaklar tartışın: Üniform Olmayan Jel Yüzey veya Te...

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>3-aminopropyltrimethyoxysilane</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Aldrich</td>
<td>28, 177-8</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>40% Acrylamide</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>BioRad</td>
<td>161-0140</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>2% Bis-acrylamide</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fisher BioReagents</td>
<td>BP1404</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>TEMED</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fisher BioReagents</td>
<td>BP 150-20</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Ammonium persulfate</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fisher Scientific</td>
<td>BP179</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>40nm fluorescent micro-spheres</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Invitrogen</td>
<td>F8789</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Sulfo-SANPAH</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Pierce</td>
<td>22589</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Confocal imaging chamber (RC-30)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Warner Instruments</td>
<td>64-0320</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Coverslip spinner</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Home-built</td>
<td>NA</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Ultraviolet lamp CL1000</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>UVP</td>
<td>95-0228-01</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Stainless steel rack</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Electron Microscopy Sciences</td>
<td>72239-04</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>acryloyl-X, SE (6-((acryloyl)amino)hexanoic acid)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Invitrogen
</td>
<td>A-20770</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Hydrazine hydrate</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sigma Aldrich</td>
<td>225819</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Sodium meta-periodate</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Thermo Scientific</td>
<td>20504</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Isopropanol</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fisher Scientific</td>
<td>A416-4</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Fibronectin</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sigma-Aldrich</td>
<td>F2006</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Collagen</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>BD Biosciences</td>
<td>354236</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Coverslips (#1.5)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Corning</td>
<td>2940&#x2010;224</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Glutaraldehyde</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Electron Microscopy Sciences</td>
<td>16120</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Rain-X</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>SOPUS Products</td>
<td>www.rainx.com</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Acetic Acid</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Acros Organics</td>
<td>64-19-7</td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>

preparation of complaint matrices for quantifying cellular contraction

Ekstrasellüler matriks (ECM) hücresel adezyon düzenlenmesi, hücre göçü ve ECM yeniden şekillenme için esastır. Odak yapışıklıklar makromoleküler meclisleri olduğunu çift ECM kontraktil F-aktin hücre iskeletinin. Bu bağlantı, hücre zarından substrate altında yatan, hücre içi mekanik güçlerin iletim sağlar. Son çalışmalar, ECM mekanik özellikleri, fokal adezyon ve F-aktin morfolojisi yanı sıra, hücre farklılaşması, bölünmesi, çoğalması ve göçü de dahil olmak üzere çok sayıda fizyolojik süreçleri düzenleyen göstermiştir. Böylece, hücre kültürü yüzeylerin kullanımı tam olarak kontrol ve ECM mekanik özellikleri modüle giderek daha yaygın bir yöntem haline gelmiştir. Yapışık bir hücrede fokal yapışıklıklar çekiş kuvvetleri ölçmek için bir yöntem olarak adlandırılan çekim gücü mikroskobu (TFM) yüksek çözünürlüklü görüntüleme ve hesaplama teknikleri ile birlikte, uyumlu substratlar kullanılır. Bu teknik, hücresel daralma sonucu substrat deformasyonların yerel büyüklüğü ve yönü ölçümleri dayanmaktadır. Floresan etiketli proteinlerin yüksek çözünürlüklü floresan mikroskobu ile birlikte, sitoskeletal organizasyon ve yeniden yapılanma çekiş güçleri ile ilişkilendirilmesi mümkün. Burada iki boyutlu hücresel daralma ölçmek için uygun bir iyi karakterize, ayarlanabilir mekanik sertlik, bir hücre kültürü substrat yaratma amaçlı, uyumlu matrislerin hazırlanması için ayrıntılı bir deney protokolünde mevcut. Bu protokoller poliakrilamid hidrojeller imalat, kaplama gibi jeller ECM proteinleri, jeller kaplama hücreleri, ve perfüzyon odasının kullanarak yüksek çözünürlüklü konfokal mikroskopi içerir. Buna ek olarak, veri atıf TFM protokolleri kullanarak hücresel güçlerinin konumu ve büyüklüğü gösteren temsili bir örnek sağlar.

Watch this Scientific Journal Video about Preparation of Complaint Matrices for Quantifying Cellular Contraction at JoVE.com

Preparation of Complaint Matrices for Quantifying Cellular Contraction

Bu video, hücre kültürü için uygun, uyumlu, ekstrasellüler matriks (ECM) kaplanmamış maddeler imal etmek için kullanılan deneysel teknikler göstermek ve çekiş gücü mikroskopi için uygun ve hücre davranışı üzerindeki etkilerinin gözlenmesi ECM sertlik.

Hücresel Daralma miktarının Şikayet Matrisler hazırlanması

The regulation of cellular adhesion to the extracellular matrix (ECM) is essential for cell migration and ECM remodeling.  Focal adhesions are ...

preparation-of-complaint-matrices-for-quantifying-cellular-contraction

Research

JoVE Journal

Bioengineering

17.7K Görüntüleme.  University of Chicago. Bu video, hücre kültürü için uygun, uyumlu, ekstrasellüler matriks (ECM) kaplanmamış maddeler imal etmek için kullanılan deneysel teknikler göstermek ve çekiş gücü mikroskopi için uygun ve hücre davranışı üzerindeki etkilerinin gözlenmesi ECM sertlik.

Video: Preparation of Complaint Matrices for Quantifying Cellular Contraction

Preparation and Photoacoustic Analysis of Cellular Vehicles Containing Gold Nanorods

Gold nanorods are attractive for a range of biomedical applications, such as the photothermal ablation and the photoacoustic imaging of cancer, thanks to their intense optical absorbance in the near-infrared window, low cytotoxicity and potential to home into tumors. However, their delivery to tumors still remains an issue. An innovative approach consists of the exploitation of the tropism of tumor-associated macrophages that may be loaded with gold nanorods in vitro. Here, we describe the preparation and the photoacoustic inspection of cellular vehicles containing gold nanorods. PEGylated gold nanorods are modified with quaternary ammonium compounds, in order to achieve a cationic profile. On contact with murine macrophages in ordinary Petri dishes, these particles are found to undergo massive uptake into endocytic vesicles. Then these cells are embedded in biopolymeric hydrogels, which are used to verify that the stability of photoacoustic conversion of the particles is retained in their inclusion into cellular vehicles. We are confident that these results may provide new inspiration for the development of novel strategies to deliver plasmonic particles to tumors.

We show the preparation and address the feasibility of cellular vehicles containing gold nanorods for the photoacoustic imaging of cancer.

Altın nanorods İçeren Hücresel Araçların Hazırlama ve foto akustik Analizi

Gold nanorods are attractive for a range of biomedical applications, such as the photothermal ablation and the photoacoustic imaging of cancer, thanks to ...

Biyomühendislik

Neonatal Cardiac Scaffolds: Novel Matrices for Regenerative Studies

The only definitive therapy for end stage heart failure is orthotopic heart transplantation. Each year, it is estimated that more than 100,000 donor hearts are needed for cardiac transplantation procedures in the United States1-2. Due to the limited numbers of donors, only approximately 2,400 transplants are performed each year in the U.S.2. Numerous approaches, from cell therapy studies to implantation of mechanical assist devices, have been undertaken, either alone or in combination, in an attempt to coax the heart to repair itself or to rest the failing heart3. In spite of these efforts, ventricular assist devices are still largely used for the purpose of bridging to transplantation and the utility of cell therapies, while they hold some curative promise, is still limited to clinical trials. Additionally, direct xenotransplantation has been attempted but success has been limited due to immune rejection. Clearly, another strategy is required to produce additional organs for transplantation and, ideally, these organs would be autologous so as to avoid the complications associated with rejection and lifetime immunosuppression. Decellularization is a process of removing resident cells from tissues to expose the native extracellular matrix (ECM) or scaffold. Perfusion decellularization offers complete preservation of the three dimensional structure of the tissue, while leaving the bulk of the mechanical properties of the tissue intact4. These scaffolds can be utilized for repopulation with healthy cells to generate research models and, possibly, much needed organs for transplantation. We have exposed the scaffolds from neonatal mice (P3), known to retain remarkable cardiac regenerative capabilities,5-8 to detergent mediated decellularization and we repopulated these scaffolds with murine cardiac cells. These studies support the feasibility of engineering a neonatal heart construct. They further allow for the investigation as to whether the ECM of early postnatal hearts may harbor cues that will result in improved recellularization strategies.

In these studies, we provide methodology for novel, neonatal, murine cardiac scaffolds for use in regenerative studies.

Yenidoğan Kardiyak iskeleleri: Rejeneratif Çalışmaları Roman Matrisler

The only definitive therapy for end stage heart failure is orthotopic heart transplantation.  Each year, it is estimated that more than 100,000 donor ...

2D and 3D Matrices to Study Linear Invadosome Formation and Activity

Cell adhesion, migration, and invasion are involved in many physiological and pathological processes. For example, during metastasis formation, tumor cells have to cross anatomical barriers to invade and migrate through the surrounding tissue in order to reach blood or lymphatic vessels. This requires the interaction between cells and the extracellular matrix (ECM). At the cellular level, many cells, including the majority of cancer cells, are able to form invadosomes, which are F-actin-based structures capable of degrading ECM. Invadosomes are protrusive actin structures that recruit and activate matrix metalloproteinases (MMPs). The molecular composition, density, organization, and stiffness of the ECM are crucial in regulating invadosome formation and activation. In vitro, a gelatin assay is the standard assay used to observe and quantify invadosome degradation activity. However, gelatin, which is denatured collagen I, is not a physiological matrix element. A novel assay using type I collagen fibrils was developed and used to demonstrate that this physiological matrix is a potent inducer of invadosomes. Invadosomes that form along the collagen fibrils are known as linear invadosomes due to their linear organization on the fibers. Moreover, molecular analysis of linear invadosomes showed that the discoidin domain receptor 1 (DDR1) is the receptor involved in their formation. These data clearly demonstrate the importance of using a physiologically relevant matrix in order to understand the complex interactions between cells and the ECM.

This protocol describes how to prepare a 2D mixed matrix, consisting of gelatin and collagen I, and a 3D collagen I plug to study linear invadosomes. These protocols allow for the study of linear invadosome formation, matrix degradation activity, and the invasion capabilities of primary cells and cancer cell lines.

Doğrusal Invadozom Oluşumu ve Aktivitesi Çalışmak İçin 2D ve 3D Matrisler

Cell adhesion, migration, and invasion are involved in many physiological and pathological processes. For example, during metastasis formation, tumor ...

Automated Contraction Analysis of Human Engineered Heart Tissue for Cardiac Drug Safety Screening

Cardiac tissue engineering describes techniques to constitute three dimensional force-generating engineered tissues. For the implementation of these procedures in basic research and preclinical drug development, it is important to develop protocols for automated generation and analysis under standardized conditions. Here, we present a technique to generate engineered heart tissue (EHT) from cardiomyocytes of different species (rat, mouse, human). The technique relies on the assembly of a fibrin-gel containing dissociated cardiomyocytes between elastic polydimethylsiloxane (PDMS) posts in a 24-well format. Three-dimensional, force-generating EHTs constitute within two weeks after casting. This procedure allows for the generation of several hundred EHTs per week and is technically limited only by the availability of cardiomyocytes (0.4-1.0 x 106/EHT). Evaluation of auxotonic muscle contractions is performed in a modified incubation chamber with a mechanical interlock for 24-well plates and a camera placed on top of this chamber. A software controls a camera moved on an XYZ axis system to each EHT. EHT contractions are detected by an automated figure recognition algorithm, and force is calculated based on shortening of the EHT and the elastic propensity and geometry of the PDMS posts. This procedure allows for automated analysis of high numbers of EHT under standardized and sterile conditions. The reliable detection of drug effects on cardiomyocyte contraction is crucial for cardiac drug development and safety pharmacology. We demonstrate, with the example of the hERG channel inhibitor E-4031, that the human EHT system replicates drug responses on contraction kinetics of the human heart, indicating it to be a promising tool for cardiac drug safety screening.

Here, we show the generation of human engineered heart tissue from induced pluripotent stem cells (hiPSC)-derived cardiomyocytes. We present a method to analyze contraction force and exemplary alteration of contraction pattern by the hERG channel inhibitor E-4031. This method shows high level of robustness and suitability for cardiac drug screening.

Kardiyak İlaç güvenlik Taraması için insan mühendisliği kalp dokusunun Otomatik Büzülme Analizi

Cardiac tissue engineering describes techniques to constitute three dimensional force-generating engineered tissues. For the implementation of these ...

Mammalian Cell Division in 3D Matrices via Quantitative Confocal Reflection Microscopy

The study of how mammalian cell division is regulated in a 3D environment remains largely unexplored despite its physiological relevance and therapeutic significance. Possible reasons for the lack of exploration are the experimental limitations and technical challenges that render the study of cell division in 3D culture inefficient. Here, we describe an imaging-based method to efficiently study mammalian cell division and cell-matrix interactions in 3D collagen matrices. Cells labeled with fluorescent H2B are synchronized using the combination of thymidine blocking and nocodazole treatment, followed by a mechanical shake-off technique. Synchronized cells are then embedded into a 3D collagen matrix. Cell division is monitored using live-cell microscopy. The deformation of collagen fibers during and after cell division, which is an indicator of cell-matrix interaction, can be monitored and quantified using quantitative confocal reflection microscopy. The method provides an efficient and general approach to study mammalian cell division and cell-matrix interactions in a physiologically relevant 3D environment. This approach not only provides novel insights into the molecular basis of the development of normal tissue and diseases, but also allows for the design of novel diagnostic and therapeutic approaches.

This protocol efficiently studies mammalian cell division in 3D collagen matrices by integrating synchronization of cell division, monitoring of division events in 3D matrices using live-cell imaging technique, time-resolved confocal reflection microscopy and quantitative imaging analysis.

Memeli hücre bölünmesi yılında niceliksel Confocal yansıma mikroskobu ile 3D matrisler

The study of how mammalian cell division is regulated in a 3D environment remains largely unexplored despite its physiological relevance and therapeutic ...

Gel-seq: A Method for Simultaneous Sequencing Library Preparation of DNA and RNA Using Hydrogel Matrices

The ability to amplify and sequence either DNA or RNA from small starting samples has only been achieved in the last five years. Unfortunately, the standard protocols for generating genomic or transcriptomic libraries are incompatible and researchers must choose whether to sequence DNA or RNA for a particular sample. Gel-seq solves this problem by enabling researchers to simultaneously prepare libraries for both DNA and RNA starting with 100 - 1000 cells using a simple hydrogel device. This paper presents a detailed approach for the fabrication of the device as well as the biological protocol to generate paired libraries. We designed Gel-seq so that it could be easily implemented by other researchers; many genetics labs already have the necessary equipment to reproduce the Gel-seq device fabrication. Our protocol employs commonly-used kits for both whole-transcript amplification (WTA) and library preparation, which are also likely to be familiar to researchers already versed in generating genomic and transcriptomic libraries. Our approach allows researchers to bring to bear the power of both DNA and RNA sequencing on a single sample without splitting and with negligible added cost.

Gel-seq enables researchers to simultaneously prepare libraries for both DNA- and RNA-seq at negligible added cost starting from 100 - 1000 cells using a simple hydrogel device. This paper presents a detailed approach for the fabrication of the device as well as the biological protocol to generate paired libraries.

Jel-seq: DNA ve RNA hidrojel matrisleri kullanarak eşzamanlı sıralama kitaplığı hazırlanması için bir yöntem

The ability to amplify and sequence either DNA or RNA from small starting samples has only been achieved in the last five years. Unfortunately, the ...

Fabrication of a Multiplexed Artificial Cellular MicroEnvironment Array

Cellular microenvironments consist of a variety of cues, such as growth factors, extracellular matrices, and intercellular interactions. These cues are well orchestrated and are crucial in regulating cell functions in a living system. Although a number of researchers have attempted to investigate the correlation between environmental factors and desired cellular functions, much remains unknown. This is largely due to the lack of a proper methodology to mimic such environmental cues in vitro, and simultaneously test different environmental cues on cells. Here, we report an integrated platform of microfluidic channels and a nanofiber array, followed by high-content single-cell analysis, to examine stem cell phenotypes altered by distinct environmental factors. To demonstrate the application of this platform, this study focuses on the phenotypes of self-renewing human pluripotent stem cells (hPSCs). Here, we present the preparation procedures for a nanofiber array and the microfluidic structure in the fabrication of a Multiplexed Artificial Cellular MicroEnvironment (MACME) array. Moreover, overall steps of the single-cell profiling, cell staining with multiple fluorescent markers, multiple fluorescence imaging, and statistical analyses, are described.

This article describes the detailed methodology to prepare a Multiplexed Artificial Cellular MicroEnvironment (MACME) array for high-throughput manipulation of physical and chemical cues mimicking in vivo cellular microenvironments and to identify the optimal cellular environment for human pluripotent stem cells (hPSCs) with single-cell profiling.

Çoğaltılmış yapay hücresel MicroEnvironment dizi imalatı

Cellular microenvironments consist of a variety of cues, such as growth factors, extracellular matrices, and intercellular interactions. These cues are ...

Novel Process for 3D Printing Decellularized Matrices

3D bioprinting aims to create custom scaffolds that are biologically active and accommodate the desired size and geometry. A thermoplastic backbone can provide mechanical stability similar to native tissue while biologic agents offer compositional cues to progenitor cells, leading to their migration, proliferation, and differentiation to reconstitute the original tissues/organs1,2. Unfortunately, many 3D printing compatible, bioresorbable polymers (such as polylactic acid, PLA) are printed at temperatures of 210 &#176;C or higher - temperatures that are detrimental to biologics. On the other hand, polycaprolactone (PCL), a different type of polyester, is a bioresorbable, 3D printable material that has a gentler printing temperature of 65 &#176;C. Therefore, it was hypothesized that decellularized extracellular matrix (DM) contained within a thermally protective PLA barrier could be printed within PCL filament and remain in its functional conformation. In this work, osteochondral repair was the application for which the hypothesis was tested. As such, porcine cartilage was decellularized and encapsulated in polylactic acid (PLA) microspheres which were then extruded with polycaprolactone (PCL) into filament to produce 3D constructs via fused deposition modeling. The constructs with or without the microspheres (PLA-DM/PCL and PCL(-), respectively) were evaluated for differences in surface features.

This protocol describes the production of polycaprolactone (PCL) filament with embedded polylactic acid (PLA) microspheres which contain decellularized matrices (DM) for 3D printing of structural tissue engineering constructs.

Matrisler roman işlemi 3D baskı için Decellularized

3D bioprinting aims to create custom scaffolds that are biologically active and accommodate the desired size and geometry. A thermoplastic backbone can ...

3D Analysis of Multi-cellular Responses to Chemoattractant Gradients

Various limitations of 2D cell culture systems have sparked interest in 3D cell culture and analysis platforms, which would better mimic the spatial and chemical complexity of living tissues and mimic in vivo tissue functions. Recent advances in microfabrication technologies have facilitated the development of 3D in vitro environments in which cells can be integrated into a well-defined extracellular matrix (ECM) and a defined set of soluble or matrix associated biomolecules. However, technological barriers have limited their widespread use in research laboratories. Here, we describe a method to construct simple devices for 3D culture and experimentation with cells and multicellular organoids in 3D microenvironments with a defined chemoattractant gradient. We illustrate the use of this platform for analysis of the response of epithelial cells and organoids to gradients of growth factors, such as epidermal growth factor (EGF). EGF gradients were stable in the devices for several days leading to directed branch formation in breast organoids. This analysis allowed us to conclude that collective gradient sensing by groups of cells is more sensitive vs. single cells. We also describe the fabrication method, which does not require photolithography facilities nor advanced soft lithography techniques. This method will be helpful to study 3D cellular behaviors in the context of the analysis of development and pathological states, including cancer.

We describe a method to construct devices for 3D culture and experimentation with cells and multicellular organoids. This device allows analysis of cellular responses to soluble signals in 3D microenvironments with defined chemoattractant gradients. Organoids are better than single cells at detection of weak noisy inputs.

Chemoattractant degradelere Multi-hücresel tepkiler 3D Analizi

Various limitations of 2D cell culture systems have sparked interest in 3D cell culture and analysis platforms, which would better mimic the spatial and ...

Preparation, Administration, and Assessment of In Vivo Tissue-Specific Cellular Uptake of Fluorescent Dye-Labeled Liposomes

There is a growing interest in using liposomes to deliver compounds in vivo particularly for targeted treatment approaches. Depending on the liposome formulation, liposomes may be preferentially taken up by different cell types in the body. This may influence the efficacy of the therapeutic particle as progression of different diseases is tissue- and cell-type-specific. In this protocol, we present one method for synthesizing and fluorescently labeling liposomes using DSPC, cholesterol, and PEG-2000 DSPE and the lipid dye DiD as a fluorescent label. This protocol also presents an approach for delivering liposomes in vivo and assessing cell-specific uptake of liposomes using flow cytometry. This approach can be used to determine the types of cells that take up liposomes and quantify the distribution and proportion of liposome-uptake across cell types and tissues. While not mentioned in this protocol, additional assays such as immunofluorescence and single-cell fluorescence imaging on a cytometer will strengthen any findings or conclusions made as they permit assessment of intracellular staining. Protocols may also need to be adapted depending on the tissue(s) of interest.

The goal of this protocol is to synthesize fluorescently-labeled liposomes and use flow cytometry to identify in vivo localization of liposomes at a cellular level.

Floresan Boya Etiketli Lipozomların İn Vivo Dokuya Özgü Hücresel Alımının Hazırlanması, Uygulanması ve Değerlendirilmesi

There is a growing interest in using liposomes to deliver compounds in vivo particularly for targeted treatment approaches. Depending on the liposome ...