DE Öğrenme (BFNL) Nöronal Temeli Randolf Menzel yazının önceki bir sürümüne değerli yorumları için teşekkür ediyorum: Bu çalışma, Alman Federal Eğitim ve Araştırma (BMBF) Bernstein Odak içinde Bakanlığı hibe tarafından desteklenmiştir.

1. Hive yakalamak arı <ol><li> 2 ve 16:00 arasında, deney başlamadan bir gün önce, arıların kovanı terk yakalanmış. Bunu yapmak için, UV ışık geçirgen pleksiglas piramit (yükseklik = 30 cm, apeks 3,5 x 3, 5 cm, taban 18 x 18 cm), apeks ve baz kapaklı, 20 düzenleniyor baz açık ve apeks ile kovan girişinin önünde 30 cm mesafe arıların kovanı terk piramidin tabanına girmek o kadar kapalı. Taban sonra kapalı ve yakalanan arılar daha fazla kullanım için laboratuvar haline getirilir. </li></ol> 2. Cam şişeler içine Piramit arı aktarma <ol><li> Laboratuarda, piramidin tabanı üzerinde yer almaktadır. Piramidin duvarları kararmış (örneğin bir havlu ile), fakat apeks bırakıldığı. Çünkü olumlu phototaxis, arılar açıldığında apeks ile piramit bırakacaktır. Bir tek, arılar açık apeks üzerine şişeleri tutarak piramit cam şişe içine transfer edilir. Bir flakon arı başına kullanılır. Bu nedenle, apeks bir arı flakon girdiğinde kapalıdır. </li></ol> 3. Tüpler Harnessing arı <ol><li> Arılar 2.5-3.5 dakika buz cam şişe soğutma immobilize. Arı izlemek ve en kısa sürede durduğu buz kaldırmak için tavsiye edilir. </li><li> Immobilize tek bir arı burnumun özgürce değil, kafa, toraks veya bacaklarda hareket etmek mümkün olduğu gibi yapışkan bant ile küçük bir plastik tüp, koşulmuştur. Boyun sıkıştırılmış olmadığı önemlidir. </li><li> Her arı plastik bir tüp içinde sabit, daha iyi yol tutuşu ve tanımlama için bir raf numaralı kuyu içi içine konur. Klima ya da hafıza alımı için tüp çıkarıldıktan sonra her zaman tam olarak aynı Kuyu döndü. </li></ol> 4. Besleme arı <ol><li> Ilk akşam (4-6 pm), yakalanmadan sonra, arılar, sakkaroz çözeltisi (0,88 M, musluk suyu içinde çözünmüş rafine beyaz ev şeker) ile doyma beslenir. Bir arı beslemek için, PER sukroz solüsyonu ile antenlerine değdirerek ve hayvan sakaroz çözeltisini bir damlacık (4 mcL) harcamasına izin tarafından ortaya. Onların antenleri sakaroz çözeltisini dokunduğu zaman artık hızlı ve güvenilir bir BAŞINA göstermek kadar arı sürekli birbiri ardına beslenir. </li><li> Deney arıların sonraki her akşam (4-6 pm) 1 damlacık sakaroz çözeltisini (4 mcL, 0,88 M, musluk suyunda çözülmüş rafine beyaz şeker) ile başka bir dört kez ardına beslenir. Sakaroz çözeltisini, beslenme sırasında arı antenler veya burnumun ve tüpler, sukroz solüsyonu ile kontamine değildir bulaşmış olduğu önemlidir. Arılar sakaroz stimulus ile eğitim bağlamında ilişkilendirerek olasılığını dışlamak için klima yerinde veya yakınında verilmemelidir. </li></ol> 5. Harnessed arı Gecelik tutmak <ol><li> Arılar oda sıcaklığında bir gece boyunca plastik bir kabın içinde muhafaza edilir. Musluk suyu kase (yaklaşık 0,5-1 cm yüksekliğinde) doldurulur. Harnessed arılar Raflar ELISA plakaları bir platform olarak kullanarak su üstündeki kase yerleştirilir. Son olarak, kase karton ile kaplıdır. </li></ol> 6. Olfaktör İklimlendirme Deneyin ilk sabah (sabah 10), koku alma klima yürütülmektedir. Şartlı uyaran (CS) bir koku, koşulsuz uyaran (US) sakaroz çözümdür. <ol><li> Koku (örneğin karanfil yağı) 4 mcL sonra 20 ml şırınga eklenir yuvarlak filtre kağıdı (1,3 cm çap) üzerine pipetlenir. Koku, bir başlık altında pipetlenebilir ve filtre ipuçları pipet kirlenmesini önlemek için kullanılır. </li><li> Harnessed arılar ile raf Klima sitesi 30 dakika yakın yerleştirilir klima prosedürü başlamadan önce, ama bir mesafeden tek arılar klimalı bir egzoz borusunun önünde yer. </li><li> Şartlandırma 10 dakika arası bir deneme aralığı (ITI) ile üç koku eşleşmeleri (şartlı uyaran, CS) ve sukroz solüsyonu (koşulsuz uyaran, ABD, 1,25 M) oluşur. Bir akustik sinyal ses çalar üzerinden deneyci teslim uyaran başlangıçlı, uyaran ofset, uyaran süresi ve yerleştirme hassas zamanlama sağlar. Bir kazanım deneme hayvanın bir egzoz önünde 10 sn yerleştirme ile başlar. 10 saniye sonunda kısa bir süre önce koku içeren şırınga arı arı Kullanıcı antenler hedef önünde 3 cm yerleştirilir. Daha sonra, koku 20 ml şırınga ile hava basarak, 5 saniye için sunulmuştur. Ilk 3 saniye sonra her iki anten distal kamçı, kürdan ve hayvanlar 4 sn moistend kürdan yalamak için izin çözüm nemlendirilmiş bir sakaroz ile dokundu. 13 saniye CS stimülasyon biter, arılar sonra eğitim bağlamında alınır ve geri rafa yerleştirilir. Toplamda bir eğitim deneme 28 sn sürer. Arı antenleri, ne de burnumun ne Klima sonra sakaroz ile kaplı olduğu önemlidir. Bu nedenle kürdan sadece sukroz solüsyonu ile ve kürdan sakaroz çözeltisini formu herhangi bir damla olduğunu nemlendirilmiş olduğunu sağlanmalıdır. </li><li> Klima sonra rafları kase içinde geri yerleştirilir. </li><li> Deney sırasında hayvanların davranışlarını, yani yerleştirme ve CS ve ABD sunum sırasında BAŞINA oluşumu izlenir ve deneyci tarafından not. </li></ol> 7. Bellek Tutma <ol><li> Tutma testleri, herhangi bir zaman aralığı (gün dak) yapılabilir. Hafıza testi başlamadan önce arılar ile raf Klima sitesi 30 dakika yakın yerleştirilir. </li><li> Bir bellek testinde, ABD sunum olmadan 5 sn CS sunum oluşur. Egzoz önünde 10 sn hayvan yerleştirme testi ile başlar. Daha sonra, yukarıda açıklandığı gibi koku 5 sn sunulmuştur. Hayvan davranışı, yerleştirme sırasında yani BAŞINA oluşumu ve CS sunum, deney sırasında not. </li><li> Deneyin sonunda burnumun genişleme yanıt yine hayvan hala burnumun uzatmak mümkün olduğundan emin olmak için, sukroz solüsyonu ile antenlerine değdirerek tarafından ortaya. </li></ol> 8. Sistemik Enjeksiyon Sistemik enjeksiyon zaman noktası, deneysel tasarım bağlıdır. <ol><li> Küçük bir delik, bir tek derialtı iğne (21 G) kullanarak uçuş kas 17 Yukarıdaki scutal fissür yanında scutum arka kısmının cuticula yapılır . </li><li> Cam bir kapiler tüp kullanarak, 1 mcL çözüm uçuş kas içine cuticula delikten enjekte edilir. Eğitimli deneyciler enjeksiyon ve klima hassas bir zamanlama sağlayan, her 30 saniyede bir arı enjekte etmek mümkün. </li></ol> 9 - Deney sırasında Besleme arı <ol><li> Klima sonra akşam (4-6 pm), arılar sakaroz çözeltisini 1 damlacık (4 mcL, 0,88 M, musluk suyu içinde çözünmüş rafine beyaz şeker) ile başka bir dört kez ardına beslenir. Sakaroz çözeltisini, beslenme sırasında arı antenler veya burnumun ve tüpler, sukroz solüsyonu ile kontamine değildir bulaşmış olduğu önemlidir. Arılar sakaroz stimulus ile eğitim bağlamında ilişkilendirerek olasılığını dışlamak için klima yerinde veya yakınında verilmemelidir. </li></ol> 10 Veri Toplama ve Veri Analizi <ol><li> Deney sırasında probosis uzantısı yanıt oluşumu izlenmektedir. Bu, açık kısaydı bir sanal hattı geçerken, CS ve ABD&#39;nin sunumu (eğitim sırasında) başlangıcı arasındaki veya CS sunum sırasında (test aşamasında) burnumun uzanır bir arı olumlu puan aldı. </li><li> Analiz hayvanlarda dahil olmak için iki kriterin yerine getirilmesi gerekir: tüm deney hayatta gerekir ve bu deney sonunda sakaroz çözeltisini koşulsuz burnumun uzantısı yanıt (PER) göstermek zorundadır. Her CS tanıtımı için satın alma ve saklama testleri sırasında BAŞINA gösteren arıların yüzde çizilir. </li></ol> 11. Temsilcisi Sonuçlar: İki deneyleri burada sunulmaktadır. Ilk deneyde, fosfat tamponlu salin (PBS sistemik enjeksiyonu etkisi bakmak; mM: 137 NaCl, 2,7 KCl, 10,1 Na 2 HPO 4, 1,8 KH 2 PO 4, pH 7 , 2) uzun vadeli öğrenme ve bellek oluşumu. Arıların üç gruba 10 dakika arası bir deneme aralığı ile üç CS-ABD eşleşmeleri ile eğitilmiştir olmayan bir tedavi edilen grup, bir grup eğitim öncesi 1 mcL PBS 30 dakika ile enjekte edildi ve sahte-enjekte edilen grupta tedavi PBS-enjekte edilen bir grup olarak değil, PBS enjekte etmeden aynı şekilde. Eğitim bellek 24 saat sonra her üç grupta da bir CS sunumu ile test edildi. Klima sırasında şartlı tepki gösteren hayvanların yüzde üç eğitim çalışmalar boyunca önemli ölçüde artar (Şekil 1, faktör kez tekrarlanan ölçüm için ANOVA F 2378 = 340.456, p &lt;0.05). PER fark yok (ANOVA faktör grupları F2, 189 = 1,299, p&gt; 0,05 için tekrar ölçümü için) Klima sırasında üç grup arasında gözlenen olabilir. PBS-enjekte edilen ve plasebo-enjekte edilen hayvanların arıtılmamış hayvanlar karşılaştırırken bu 24 saat tutma testi (F2, 187 = 0.752, p&gt; 0,05) için de geçerlidir. Ikinci deneyde üç bellek tutma inhibisyonu ve protein sentezi inhibitörü anisomycin (10 mM) sistemik üç CS-ABD eşleşmeleri 30 dakika sonra enjekte edildi eğitim dört gün sonra göstermektedir. PBS-enjekte edilen bir grup ile bir anisomycin enjekte grubun karşılaştırılması t tutma sırasında gruplar arasında önemli bir fark ortayaest (Şekil 2, faktör grup F1, 94 için tekrar ölçümü için ANOVA = 8,86, p &lt;0.05). Bir önemli fark, günde 3 ve 4. günde hafıza testi görülebilir. Bu Wüstenberg ark sonuçları benzer 18, farklı bir protokol ile de olsa, üç CS-ABD eşleşmeleri arılar klimalı kim. <img src="/files/ftp_upload/2282/2282fig1.jpg" alt="Şekil 1" /> Şekil 1. PBS Cuticula lezyon veya enjeksiyon satın alma ve bellek tutma değiştirmez. Hayvanlar üç CS-ABD eşleşmeleri (satın alma) ile eğitilmiştir. 24 saat sonra, bellek (Memory Tutma) test edildi. Otuz dakika eğitim öncesinde, bir delikten iki grup arasında cuticula yapıldı (lezyon, PBS) ve bu gruplardan birine 1 mcL PBS (PBS) ile enjekte edildi. Üçüncü grup (tedavi) değişmeden kalır. Sunan hayvanların her grup BAŞINA koku sunum yanıt yüzdesi. Satın alma aşamasında gruplar arasında anlamlı farklar ortaya bir ANOVA (F2, 189 = 1,299, p&gt; 0.05) veya bellek saklama (F2, 187 = 0,752, p&gt; 0.05). Değildir <img src="/files/ftp_upload/2282/2282fig2.jpg" alt="Şekil 2" /> Şekil 2. CS-ABD son eşleşme 40 dakika sonra anisomycin enjeksiyon bellek tutma üç gün ve dört gün sonra eğitim azaltır. Hayvanlar üç CS-ABD eşleşmeleri (satın alma) ile eğitimli ve 1 mcL 10 mM anisomycin (Aniso) veya 1 mcL PBS ile enjekte edildi 1 saat sonra ilk eğitim çalışması. Bellek (Hafıza Tutma) 24 saat, 48 saat sonra, 72 saat ve 96 saat test edildi. Sunan bir BAŞINA koku sunum yanıt grup başına hayvanların yüzdesi. Anisomycin enjeksiyon eğitim bellek tutma 72 saat ve 96 saat sonra önemli bir azalma (F1, 94 = 8.86, p &lt;0.05) bir ANOVA ortaya koyduğu gibi yol açar.

<ol>
	<li>Menzel, R., Giurfa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cognitive+architecture+of+a+mini-brain:+the+honeybee.">Cognitive architecture of a mini-brain: the honeybee.</a> Trends Cogn Sci. 5, 62-71 (2001).</li><li>Menzel, R., Leboulle, G., Eisenhardt, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Small+brains,+bright+minds.">Small brains, bright minds.</a> Cell. 124, 237-239 (2006).</li><li>Menzel, R., Kesner, R. P., Olton, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Neurobiology of comparative cognition. , (1990).</li><li>Bitterman, M. E., Menzel, R., Fietz, A., Schafer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Classical-Conditioning+of+Proboscis+Extension+in+Honeybees+(Apis-Mellifera).">Classical-Conditioning of Proboscis Extension in Honeybees (Apis-Mellifera).</a> J. Comp. Psyc. 97, 107-119 (1983).</li><li>Menzel, R., Muller, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Learning+and+memory+in+honeybees:+from+behavior+to+neural+substrates.">Learning and memory in honeybees: from behavior to neural substrates.</a> Annu. Rev. Neurosci. 19, 379-404 (1996).</li><li>Menzel, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Memory+dynamics+in+the+honeybee.">Memory dynamics in the honeybee.</a> Journal of Comparative Physiology A-Neuroethology Sensory Neural and Behavioral Physiology. 185, 323-340 (1999).</li><li>Menzel, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Searching+for+the+memory+trace+in+a+mini-brain,+the+honeybee.">Searching for the memory trace in a mini-brain, the honeybee.</a> Learn. Mem. 8, 53-62 (2001).</li><li>Eisenhardt, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Learning+and+memory+formation+in+the+honeybee+(Apis+mellifera)+and+its+dependency+on+the+cAMP-protein+kinase+A+pathway.">Learning and memory formation in the honeybee (Apis mellifera) and its dependency on the cAMP-protein kinase A pathway.</a> Animal Biology. 56, 259-278 (2006).</li><li>Hourcade, B., Muenz, T. S., Sandoz, J. C., Rossler, W., Devaud, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+memory+leads+to+synaptic+reorganization+in+the+mushroom+bodies:+a+memory+trace+in+the+insect+brain.">Long-term memory leads to synaptic reorganization in the mushroom bodies: a memory trace in the insect brain.</a> J. Neurosci. 30, 6461-6465 (2010).</li><li>Denker, M., Finke, R., Schaupp, F., Grun, S., Menzel, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+correlates+of+odor+learning+in+the+honeybee+antennal+lobe.">Neural correlates of odor learning in the honeybee antennal lobe.</a> Eur. J. Neurosci. 31, 119-133 (2010).</li><li>Szyszka, P., Galkin, A., Menzel, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Associative+and+non-associative+plasticity+in+kenyon+cells+of+the+honeybee+mushroom+body.">Associative and non-associative plasticity in kenyon cells of the honeybee mushroom body.</a> Front Syst. Neurosci. 2, 3-3 (2008).</li><li>Okada, R., Rybak, J., Manz, G., Menzel, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Learning-related+plasticity+in+PE1+and+other+mushroom+body-extrinsic+neurons+in+the+honeybee+brain.">Learning-related plasticity in PE1 and other mushroom body-extrinsic neurons in the honeybee brain.</a> J. Neurosci. 27, 11736-11747 (2007).</li><li>Muller, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prolonged+activation+of+cAMP-dependent+protein+kinase+during+conditioning+induces+long-term+memory+in+honeybees.">Prolonged activation of cAMP-dependent protein kinase during conditioning induces long-term memory in honeybees.</a> Neuron. 27, 159-168 (2000).</li><li>Locatelli, F., Bundrock, G., Muller, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Focal+and+temporal+release+of+glutamate+in+the+mushroom+bodies+improves+olfactory+memory+in+Apis+mellifera.">Focal and temporal release of glutamate in the mushroom bodies improves olfactory memory in Apis mellifera.</a> J. Neurosci. 25, 11614-11618 (2005).</li><li>Stollhoff, N., Menzel, R., Eisenhardt, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spontaneous+recovery+from+extinction+depends+on+the+reconsolidation+of+the+acquisition+memory+in+an+appetitive+learning+paradigm+in+the+honeybee+(Apis+mellifera.">Spontaneous recovery from extinction depends on the reconsolidation of the acquisition memory in an appetitive learning paradigm in the honeybee (Apis mellifera.</a> J. Neurosci. 25, 4485-4492 (2005).</li><li>Stollhoff, N., Eisenhardt, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Consolidation+of+an+extinction+memory+depends+on+the+unconditioned+stimulus+magnitude+previously+experienced+during+training.">Consolidation of an extinction memory depends on the unconditioned stimulus magnitude previously experienced during training.</a> J. Neurosci. 29, 9644-9650 (2009).</li><li>Snodgrass, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Anatomy of the honeybee. , (1956).</li><li>Wustenberg, D., Gerber, B., Menzel, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Short+communication:+long-+but+not+medium-term+retention+of+olfactory+memories+in+honeybees+is+impaired+by+actinomycin+D+and+anisomycin.">Short communication: long- but not medium-term retention of olfactory memories in honeybees is impaired by actinomycin D and anisomycin.</a> Eur. J. Neurosci. 10, 2742-2745 (1998).</li><li>Vollbehr, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zur+Orientierung+junger+Honigbienen+bei+ihrem+1.">Zur Orientierung junger Honigbienen bei ihrem 1.</a> Orientierungsflug. Zool. Jb. Physiol. 79, 33-69 (1975).</li><li>Scheiner, R., Erber, J., Page, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tactile+learning+and+the+individual+evaluation+of+the+reward+in+honey+bees+(Apis+mellifera+L.).">Tactile learning and the individual evaluation of the reward in honey bees (Apis mellifera L.).</a> J. Comp Physiol [A]. 185, 1-10 (1999).</li><li>Sanchez, B. r. i. t. o., G, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behavioral+studies+on+tarsal+gustation+in+honeybees:+sucrose+responsiveness+and+sucrose-mediated+olfactory+conditioning.">Behavioral studies on tarsal gustation in honeybees: sucrose responsiveness and sucrose-mediated olfactory conditioning.</a> J. Comp Physiol A Neuroethol. Sens. Neural Behav. Physiol. 194, 861-869 (2008).</li><li>Menzel, R., Manz, G., Menzel, R., Greggers, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Massed+and+spaced+learning+in+honeybees:+the+role+of+CS,+US,+the+intertrial+interval,+and+the+test+interval.">Massed and spaced learning in honeybees: the role of CS, US, the intertrial interval, and the test interval.</a> Learn. Mem. , 198-208 (2001).</li><li>Friedrich, A., Thomas, U., Muller, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Learning+at+different+satiation+levels+reveals+parallel+functions+for+the+cAMP-protein+kinase+A+cascade+in+formation+of+long-term+memory.">Learning at different satiation levels reveals parallel functions for the cAMP-protein kinase A cascade in formation of long-term memory.</a> J. Neurosci. 24, 4460-4468 (2004).</li></ol>

<ol><li> Yakalamak arılar deneyimli besin arayan arılar toplamak için, arılar genç arıların oryantasyon uçuşlar 19 kez kaçınarak, sabah veya öğleden sonra ya yakalanırlar. Yem makineleri ya da polen ve nektar toplamak. Şeker yanıt verme ve kendi öğrenme yeteneklerine 20 göre polen ve nektar yem arasındaki farklar gözlenmiştir. Sadece nektar yem yakalamak için, sukroz solüsyonu ile dolu yapay bir besin kaynağı kovanı ve hayvanların yanına monte edilebilir orada toplanabilir. Kovana dönen Polen yem ve arka bacaklar 20 polen sepetleri ile tespit edilebilir. </li><li> Tespit ve taşıma: deney sonuna kadar öğrenmek ve hayatta kalmak için yeteneğini etkileyebilir, çünkü buz üzerinde arıların Genişletilmiş soğutma kaçınılmalıdır. Tarsi tüp içinde sakkaroz solüsyonu ile yanlışlıkla uyarılması önlemek için dikkatli bir şekilde sabit olması. Arılar succrose çözüm 3,21 ile tarsal uyarılması öğrenmek için gösterilmiştir, çünkü bu önemlidir. </li><li> Olfaktör klima: klima çalışmaların sayısı arası deneme aralığını ve test süresi noktası 3,22 çalışmanın odak bağlı olarak çeşitli olabilir. </li><li> Beslenme: arıların doyma düzeyi, öğrenme performansı ve bellek tutma 3,23 etkilediği bilinmektedir . Bu deneyler planlama dikkate alınmalıdır. </li><li> Enjeksiyon: Hava keselerinde balarısı toraks 17 bulunmaktadır. Solunum sistemi ile ilgili bu hayati parçaları, hayatta kalmak için gerekli. Böylece bakım, enjeksiyon sırasında hava keseciklerinin zarar vermemeye dikkat edilmelidir. Hava kabarcıkları serbest hava keseciklerinin zarar gösterir. </li></ol>

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Syringe Omnifix 20 ml</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>B.Braun, Melsungen, Germany </td>
<td>4616200 V</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>White refined household sugar</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Kaisers Supermarket, Berlin, Germany</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Clove oil</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Bombastus, Freital, Germany </td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Multipette plus</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Eppendorf, Hamburg, Germany</td>
<td>4981 000.019</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Rack for 30 bee tubes</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Self-made</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Plastic tubes</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Self-made</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>UV light-permeable plexiglass pyramid</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Self-made</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>height = 30cm, 
apex 3.5 x 3.5cm, 
base 18x18cm</td>
</tr>
<tr>
<td>Sticky tape</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Tesa, Hamburg, Germany</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Capillator sticks 1-5&mu;l</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Selzer, Driedorf-Roth, Germany</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Capillator tips 1-5&mu;l</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Selzer, Driedorf-Roth, Germany</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Filter paper 0.16-0.2 mm thick</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Macherey-Nagel, D&uuml;ren, Germany</td>
<td>MN 616 or MN615</td>
<td>Adjusted to circular pieces with a 1.3 cm diameter</td>
</tr>
<tr>
<td>Disposable hypodermic needle</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>B. Braun, Melsungen, Germany</td>
<td>4657683</td>
<td>0.45 mm diameter</td>
</tr>		</tbody>
		</table>
		</div>

behavioural pharmacology in classical conditioning of the proboscis extension response in honeybees (apis mellifera)

Bal arısı (Apis mellifera), iletişim ve yönlendirme becerileri ve etkileyici öğrenme yeteneği 1,2 bilinmektedir. Bir bal arısı kolonisi hayatta gıda kaynaklarının sömürülmesi bağlı olduğundan, toplayıcı arıların öğrenmek ve değişken çiçek sitelerin yanı sıra karlılık ezberlemek. Toplayıcı arılar doğal ortamda kolaylıkla eğitilebilir bir beslenme yerinde yem ve koku veya renk olarak ilgili sinyalleri öğrenmeye. Iştahlı ilişkisel öğrenme klima bireysel harnessed bal arıları 3,4 burnumun uzantısı yanıt (PER) tarafından da laboratuarda kontrollü şartlar altında incelenebilir. Bu öğrenme paradigması, basit ve son derece güvenilir bir şekilde 5-12 öğrenme ve bellek oluşumu altında yatan nöronal ve moleküler mekanizmaların çalışma sağlar. Davranış farmakolojisi yaklaşım moleküler mekanizmaları incelemek için kullanılır. İlaçlar, öğrenme ve bellek oluşumu 13-16 sırasında ya da sonrasında belirli molekülleri fonksiyonu ile müdahale sistemik olarak enjekte edilir . Burada PER klima harnessed bal arıları nasıl eğitmek ve arı uçuş kas içine enjeksiyon yoluyla sistemik ilaçların nasıl uygulanacağını göstermektedir.

Watch this Scientific Journal Video about Behavioural Pharmacology in Classical Conditioning of the Proboscis Extension Response in Honeybees Apis mellifera at JoVE.com

Behavioural Pharmacology in Classical Conditioning of the Proboscis Extension Response in Honeybees Apis mellifera

Biz sistemik ilaç uygulama tarafından bal arıları iştahlı bir koku alma klima paradigma (Apis mellifera) bir davranış farmakoloji yöntemi nasıl uygulanacağını göstermektedir. Bu yöntem, soruşturma mekanizmalarının altında yatan basit ve güvenilir bir şekilde öğrenme ve bellek oluşumu sağlar.

Bal arısı burnumun Extension Tepki Klasik Koşullanma Davranış Farmakoloji ( Apis mellifera)

Honeybees (Apis mellifera) are well known for their communication and orientation skills and for their impressive learning capability1,2. Because the ...

behavioural-pharmacology-classical-conditioning-proboscis-extension

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Behavioural Pharmacology in Classical Conditioning of the Proboscis Extension Response in Honeybees (Apis mellifera)

19.2K Görüntüleme.  Freie Universität Berlin. Biz sistemik ilaç uygulama tarafından bal arıları iştahlı bir koku alma klima paradigma (Apis mellifera) bir davranış farmakoloji yöntemi nasıl uygulanacağını göstermektedir. Bu yöntem, soruşturma mekanizmalarının altında yatan basit ve güvenilir bir şekilde öğrenme ve bellek oluşumu sağlar.

Video: Behavioural Pharmacology in Classical Conditioning of the Proboscis Extension Response in Honeybees Apis mellifera

Recording Large-scale Neuronal Ensembles with Silicon Probes in the Anesthetized Rat

Large scale electrophysiological recordings from neuronal ensembles offer the opportunity to investigate how the brain orchestrates the wide variety of behaviors from the spiking activity of its neurons. One of the most effective methods to monitor spiking activity from a large number of neurons in multiple local neuronal circuits simultaneously is by using silicon electrode arrays1-3.
Action potentials produce large transmembrane voltage changes in the vicinity of cell somata. These output signals can be measured by placing a conductor in close proximity of a neuron. If there are many active (spiking) neurons in the vicinity of the tip, the electrode records combined signal from all of them, where contribution of a single neuron is weighted by its 'electrical distance'. Silicon probes are ideal recording electrodes to monitor multiple neurons because of a large number of recording sites (+64) and a small volume. Furthermore, multiple sites can be arranged over a distance of millimeters, thus allowing for the simultaneous recordings of neuronal activity in the various cortical layers or in multiple cortical columns (Fig. 1). Importantly, the geometrically precise distribution of the recording sites also allows for the determination of the spatial relationship of the isolated single neurons4. Here, we describe an acute, large-scale neuronal recording from the left and right forelimb somatosensory cortex simultaneously in an anesthetized rat with silicon probes (Fig. 2).

Extracellular recordings of neuronal activity using silicon probes in the anesthetized rat will be described. This technique allows information to be obtained across multiple brain areas from more than 100 neurons simultaneously. It provides information with single cell resolution about neuronal ensembles dynamics in multiple local circuits.

Anestezi Rat Silikon Probları Büyük ölçekli Nöronal Toplulukları Kaydı

Large scale electrophysiological recordings from neuronal ensembles offer the opportunity to investigate how the brain orchestrates the wide variety of ...

Nörobilim

Behavioral Determination of Stimulus Pair Discrimination of Auditory Acoustic and Electrical Stimuli Using a Classical Conditioning and Heart-rate Approach

Acute animal preparations have been used in research prospectively investigating electrode designs and stimulation techniques for integration into neural auditory prostheses, such as auditory brainstem implants1-3 and auditory midbrain implants4,5. While acute experiments can give initial insight to the effectiveness of the implant, testing the chronically implanted and awake animals provides the advantage of examining the psychophysical properties of the sensations induced using implanted devices6,7.
Several techniques such as reward-based operant conditioning6-8, conditioned avoidance9-11, or classical fear conditioning12 have been used to provide behavioral confirmation of detection of a relevant stimulus attribute. Selection of a technique involves balancing aspects including time efficiency (often poor in reward-based approaches), the ability to test a plurality of stimulus attributes simultaneously (limited in conditioned avoidance), and measure reliability of repeated stimuli (a potential constraint when physiological measures are employed).
Here, a classical fear conditioning behavioral method is presented which may be used to simultaneously test both detection of a stimulus, and discrimination between two stimuli. Heart-rate is used as a measure of fear response, which reduces or eliminates the requirement for time-consuming video coding for freeze behaviour or other such measures (although such measures could be included to provide convergent evidence). Animals were conditioned using these techniques in three 2-hour conditioning sessions, each providing 48 stimulus trials. Subsequent 48-trial testing sessions were then used to test for detection of each stimulus in presented pairs, and test discrimination between the member stimuli of each pair. 
This behavioral method is presented in the context of its utilisation in auditory prosthetic research. The implantation of electrocardiogram telemetry devices is shown. Subsequent implantation of brain electrodes into the Cochlear Nucleus, guided by the monitoring of neural responses to acoustic stimuli, and the fixation of the electrode into place for chronic use is likewise shown.

The application of a classical fear conditioning behavioral paradigm for auditory prosthetic research in rats is described. This paradigm provides a mechanism for identifying both detection of, and discrimination between, distinct acoustic and electrical stimuli using heart-rate as an outcome measure.

Bir Klasik Koşullanma ve Kalp hızı Yaklaşımı ile İşitsel Akustik ve Elektrik uyarıcı Stimulus Çifti Ayrımcılığın Davranış Belirlenmesi

Acute animal preparations have been used in research prospectively investigating electrode designs and stimulation techniques for integration into neural ...

The Mouse Forced Swim Test

The forced swim test is a rodent behavioral test used for evaluation of antidepressant drugs, antidepressant efficacy of new compounds, and experimental manipulations that are aimed at rendering or preventing depressive-like states. Mice are placed in an inescapable transparent tank that is filled with water and their escape related mobility behavior is measured. The forced swim test is straightforward to conduct reliably and it requires minimal specialized equipment. Successful implementation of the forced swim test requires adherence to certain procedural details and minimization of unwarranted stress to the mice. In the protocol description and the accompanying video, we explain how to conduct the mouse version of this test with emphasis on potential pitfalls that may be detrimental to interpretation of results and how to avoid them. Additionally, we explain how the behaviors manifested in the test are assessed.

The forced swim test is validated as an experimental approach to assess potential antidepressant efficacy in rodents. Experimental animals are placed in a tank of water and escape-related mobility behavior is quantified. The common procedures for the mouse version of this test are described.

Fare Zorla Swim Testi

The forced swim test is a rodent behavioral test used for evaluation of antidepressant drugs, antidepressant efficacy of new compounds, and experimental ...

The Tail Suspension Test

The tail-suspension test is a mouse behavioral test useful in the screening of potential antidepressant drugs, and assessing of other manipulations that are expected to affect depression related behaviors. Mice are suspended by their tails with tape, in such a position that it cannot escape or hold on to nearby surfaces. During this test, typically six minutes in duration, the resulting escape oriented behaviors are quantified. The tail-suspension test is a valuable tool in drug discovery for high-throughput screening of prospective antidepressant compounds. Here, we describe the details required for implementation of this test with additional emphasis on potential problems that may occur and how to avoid them. We also offer a solution to the tail climbing behavior, a common problem that renders this test useless in some mouse strains, such as the widely used C57BL/6. Specifically, we prevent tail climbing behaviors by passing mouse tails through a small plastic cylinder prior to suspension. Finally, we detail how to manually score the behaviors that are manifested in this test.

The tail-suspension test is validated as an experimental procedure to assess antidepressant efficacy of drug treatments in mice. Mice are suspended by their tails for six minutes and escape-related behaviors are assessed. We describe procedures used in conducting the tail suspension test.

Kuyruk Süspansiyon Testi

The tail-suspension test is a mouse behavioral test useful in the screening of potential antidepressant drugs, and assessing of other manipulations that ...

Tactile Conditioning And Movement Analysis Of Antennal Sampling Strategies In Honey Bees (Apis mellifera L.)

Honey bees (Apis mellifera L.) are eusocial insects and well known for their complex division of labor and associative learning capability1, 2. The worker bees spend the first half of their life inside the dark hive, where they are nursing the larvae or building the regular hexagonal combs for food (e.g. pollen or nectar) and brood3. The antennae are extraordinary multisensory feelers and play a pivotal role in various tactile mediated tasks4, including hive building5 and pattern recognition6. Later in life, each single bee leaves the hive to forage for food. Then a bee has to learn to discriminate profitable food sources, memorize their location, and communicate it to its nest mates7. Bees use different floral signals like colors or odors7, 8, but also tactile cues from the petal surface9 to form multisensory memories of the food source. Under laboratory conditions, bees can be trained in an appetitive learning paradigm to discriminate tactile object features, such as edges or grooves with their antennae10, 11, 12, 13. This learning paradigm is closely related to the classical olfactory conditioning of the proboscis extension response (PER) in harnessed bees14. The advantage of the tactile learning paradigm in the laboratory is the possibility of combining behavioral experiments on learning with various physiological measurements, including the analysis of the antennal movement pattern.

Tactile Conditioning And Movement Analysis Of Antennal Sampling Strategies In Honey Bees Apis mellifera L.

In this protocol we show how to condition harnessed honey bees to tactile stimuli and introduce a 2D motion capture technique for analyzing the kinematics of fine-scale antennal sampling pattern.

Dokunsal İklimlendirme Ve Bal Arısı yılında antennal Örnekleme Stratejileri Hareket Analizi (<em&gt; Apis mellifera</em&gt; L.)

Honey bees (Apis mellifera L.) are eusocial insects and well known for their complex division of labor and associative learning capability1, 2. The worker ...

RNAi-mediated Double Gene Knockdown and Gustatory Perception Measurement in Honey Bees (Apis mellifera)

This video demonstrates novel techniques of RNA interference (RNAi) which downregulate two genes simultaneously in honey bees using double-stranded RNA (dsRNA) injections. It also presents a protocol of proboscis extension response (PER) assay for measuring gustatory perception.	
	RNAi-mediated gene knockdown is an effective technique downregulating target gene expression. This technique is usually used for single gene manipulation, but it has limitations to detect interactions and joint effects between genes. In the first part of this video, we present two strategies to simultaneously knock down two genes (called double gene knockdown). We show both strategies are able to effectively suppress two genes, vitellogenin (vg) and ultraspiracle (usp), which are in a regulatory feedback loop. This double gene knockdown approach can be used to dissect interrelationships between genes and can be readily applied in different insect species.	
	The second part of this video is a demonstration of proboscis extension response (PER) assay in honey bees after the treatment of double gene knockdown. The PER assay is a standard test for measuring gustatory perception in honey bees, which is a key predictor for how fast a honey bee's behavioral maturation is. Greater gustatory perception of nest bees indicates increased behavioral development which is often associated with an earlier age at onset of foraging and foraging specialization in pollen. In addition, PER assay can be applied to identify metabolic states of satiation or hunger in honey bees. Finally, PER assay combined with pairing different odor stimuli for conditioning the bees is also widely used for learning and memory studies in honey bees.

RNAi-mediated Double Gene Knockdown and Gustatory Perception Measurement in Honey Bees Apis mellifera

In this protocol, we describe two strategies that simultaneously suppress two genes (double gene knockdown) in honey bees. Then we present how to use the proboscis extension response (PER) assay to study the effect of double gene knockdown on honey bee gustatory perception.

Bal Arısı RNAi-aracılı Çift Gen demonte ve tat Algı Ölçüm (<em&gt; Apis mellifera</em&gt;)

This video demonstrates novel techniques of RNA  interference (RNAi) which downregulate two genes simultaneously in honey bees  using double-stranded RNA ...

A Proboscis Extension Response Protocol for Investigating Behavioral Plasticity in Insects: Application to Basic, Biomedical, and Agricultural Research

Insects modify their responses to stimuli through experience of associating those stimuli with events important for survival (e.g., food, mates, threats). There are several behavioral mechanisms through which an insect learns salient associations and relates them to these events. It is important to understand this behavioral plasticity for programs aimed toward assisting insects that are beneficial for agriculture. This understanding can also be used for discovering solutions to biomedical and agricultural problems created by insects that act as disease vectors and pests. The Proboscis Extension Response (PER) conditioning protocol was developed for honey bees (Apis mellifera) over 50 years ago to study how they perceive and learn about floral odors, which signal the nectar and pollen resources a colony needs for survival. The PER procedure provides a robust and easy-to-employ framework for studying several different ecologically relevant mechanisms of behavioral plasticity. It is easily adaptable for use with several other insect species and other behavioral reflexes. These protocols can be readily employed in conjunction with various means for monitoring neural activity in the CNS via electrophysiology or bioimaging, or for manipulating targeted neuromodulatory pathways. It is a robust assay for rapidly detecting sub-lethal effects on behavior caused by environmental stressors, toxins or pesticides.
We show how the PER protocol is straightforward to implement using two procedures. One is suitable as a laboratory exercise for students or for quick assays of the effect of an experimental treatment. The other provides more thorough control of variables, which is important for studies of behavioral conditioning. We show how several measures for the behavioral response ranging from binary yes/no to more continuous variable like latency and duration of proboscis extension can be used to test hypotheses. And, we discuss some pitfalls that researchers commonly encounter when they use the procedure for the first time.

The Proboscis Extension Response (PER) conditioning protocol, developed for the honey bee (Apis mellifera), provides an ecologically-relevant and easily quantifiable means for studying several different mechanisms of learning in many insect species.

Bir burnumun Extension Tepki Böcekler Davranış Plastisitesi incelenmesi için protokol: Basic, Biyomedikal Uygulama ve Tarımsal Araştırma

Insects modify their responses to stimuli through experience of associating those stimuli with events important for survival (e.g., food, mates, threats). ...

Simultaneous Long-term Recordings at Two Neuronal Processing Stages in Behaving Honeybees

In both mammals and insects neuronal information is processed in different higher and lower order brain centers. These centers are coupled via convergent and divergent anatomical connections including feed forward and feedback wiring. Furthermore, information of the same origin is partially sent via parallel pathways to different and sometimes into the same brain areas. To understand the evolutionary benefits as well as the computational advantages of these wiring strategies and especially their temporal dependencies on each other, it is necessary to have simultaneous access to single neurons of different tracts or neuropiles in the same preparation at high temporal resolution. Here we concentrate on honeybees by demonstrating a unique extracellular long term access to record multi unit activity at two subsequent neuropiles1, the antennal lobe (AL), the first olfactory processing stage and the mushroom body (MB), a higher order integration center involved in learning and memory formation, or two parallel neuronal tracts2 connecting the AL with the MB.&#160;The latter was chosen as an example and will be described in full. In the supporting video the construction and permanent insertion of flexible multi&#160;channel wire electrodes is demonstrated. Pairwise differential amplification of the micro&#160;wire electrode channels drastically reduces the noise and verifies that the source of the signal is closely related to the position of the electrode tip. The mechanical flexibility of the used wire electrodes allows stable invasive long&#160;term recordings over many hours up to days, which is a clear advantage compared to conventional extra&#160;and intracellular in vivo recording techniques.

Simultaneous extracellular long term recordings from two different brain neuropiles or two different anatomical tracts were established in honeybees. These recordings allow the investigation of temporal aspects of neuronal processing across different brain areas at the single neuron as well as at the ensemble level in a behaving animal.

Davranan Bal arısı iki nöronal İşleme Dönemlerinde Eşzamanlı Uzun vadeli Kayıtlar

In both mammals and insects neuronal information is processed in different higher and lower order brain centers. These centers are coupled via convergent ...

Electroretinogram Analysis of the Visual Response in Zebrafish Larvae

The electroretinogram (ERG) is a noninvasive electrophysiological method for determining retinal function. Through the placement of an electrode on the surface of the cornea, electrical activity generated in response to light can be measured and used to assess the activity of retinal cells in vivo. This manuscript describes the use of the ERG to measure visual function in zebrafish. Zebrafish have long been utilized as a model for vertebrate development due to the ease of gene suppression by morpholino oligonucleotides and pharmacological manipulation. At 5-10 dpf, only cones are functional in the larval retina. Therefore, the zebrafish, unlike other animals, is a powerful model system for the study of cone visual function in vivo. This protocol uses standard anesthesia, micromanipulation and stereomicroscopy protocols that are common in laboratories that perform zebrafish research. The outlined methods make use of standard electrophysiology equipment and a low light camera to guide the placement of the recording microelectrode onto the larval cornea. Finally, we demonstrate how a commercially available ERG stimulator/recorder originally designed for use with mice can easily be adapted for use with zebrafish. ERG of larval zebrafish provides an excellent method of assaying cone visual function in animals that have been modified by morpholino oligonucleotide injection as well as newer genome engineering techniques such as Zinc Finger Nucleases (ZFNs), Transcription Activator-Like Effector Nucleases (TALENs), and Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats (CRISPR)/Cas9, all of which have greatly increased the efficiency and efficacy of gene targeting in zebrafish. In addition, we take advantage of the ability of pharmacological agents to penetrate zebrafish larvae to evaluate the molecular components that contribute to the photoresponse. This protocol outlines a setup that can be modified and used by researchers with various experimental goals.

We present a method for the electroretinographic (ERG) analysis of zebrafish larvae utilizing micromanipulation and electroretinography techniques. This is a simple and straightforward method for assaying visual function of zebrafish larvae in vivo.

Zebra balığı Larva Görsel Tepki Elektroetinogram Analizi

The electroretinogram (ERG) is a noninvasive electrophysiological method for determining retinal function. Through the placement of an electrode on the ...

Neuropharmacological Manipulation of Restrained and Free-flying Honey Bees, Apis mellifera

Honey bees demonstrate astonishing learning abilities and advanced social behavior and communication. In addition, their brain is small, easy to visualize and to study. Therefore, bees have long been a favored model amongst neurobiologists and neuroethologists for studying the neural basis of social and natural behavior. It is important, however, that the experimental techniques used to study bees do not interfere with the behaviors being studied. Because of this, it has been necessary to develop a range of techniques for pharmacological manipulation of honey bees. In this paper we demonstrate methods for treating restrained or free-flying honey bees with a wide range of pharmacological agents. These include both noninvasive methods such as oral and topical treatments, as well as more invasive methods that allow for precise drug delivery in either systemic or localized fashion. Finally, we discuss the advantages and disadvantages of each method and&#160;describe common hurdles and how to best overcome them. We conclude with a discussion on the importance of adapting the experimental method to the biological questions rather than the other way around.

Neuropharmacological Manipulation of Restrained and Free-flying Honey Bees, Apis mellifera

This manuscript describes several protocols for administering pharmacological agents to honey bees, including simple noninvasive methods for free-flying bees, as well as more invasive variants that allow precise localized treatment of restrained bees.

Ölçülü ve Serbest uçan Bal Arısı Nörofarmakolojik Manipülasyon,<em&gt; Apis mellifera</em

Honey bees demonstrate astonishing learning abilities and advanced social behavior and communication. In addition, their brain is small, easy to visualize ...