This work is supported by the National Institute for Health Research, Academy of Medical Sciences and the British Society for Surgery of the Hand. We also gratefully acknowledge the continuing supply of GGF-2 from Acorda Therapeutics, USA. The authors would finally like to acknowledge Prof. Giorgio Terenghi for his valuable support and guidance in our group over the past years that led to the development and optimization of this protocol.

NOT: hayvanları kapsayan tüm deneyler İngiltere Hayvanlar (Scientific Usul) Yasası, 1986 uyarınca yapılmıştır. 1. Deney Seti-up <ol><li> Tüm araçlar steril olup olmadığını kontrol edin, doku ve hücre hasat başlatmak için önce. Gerekli olsun, keskin cerrahi makas, çok ince forseps ve ince standart forseps bir çift otoklav. Ayrıca UV sterilizasyon, etanol pozlama veya uygun olarak buhar sterilizasyon kullanarak hücre tohumlama önce her substrat sterilize. </li><li> Kök hücre hasat ve farklılaşması için medya hazırlanması <ol><li> % 10 fetal sığır serumu (FBS), 200 mM L-glutamin ve% 1 penisilin-streptomisin (PS) ile takviye edilmiş minimum temel ortam (α-MEM) içeren, kök hücre büyüme ortamı hazırlar. </li><li> Steril dimetil sülfoksid içinde 2,436 ml forskolin 10 mg çözülmesiyle forskolin 10 mM&#39;lik bir stok çözelti hazırlayın. 14 uM son konsantrasyonda kullanın. &lt;/ Li&gt; <li> Steril dimetil sülfoksid 1.43 ml, 50 mg çözülmesiyle retinoik asit, 35 mg / ml stok çözelti hazırlayın. 350 ng / ml nihai konsantrasyonda kullanın. </li><li> Damıtılmış steril su, 100 ul, liyofilize bir toz, 10 ug çözülmesiyle trombosit türevli büyüme faktörü (PDGF) stokları, (100 ug / ml) hazırlayın. 5 ng / ml nihai konsantrasyonda kullanın. </li><li> Damıtılmış steril su içinde 500 ul, liyofilize bir toz, 50 ug çözündürülmesiyle temel fibroblast büyüme faktörü (bFGF) stokları, (100 ug / ml) hazırlayın. 10 ng / ml nihai konsantrasyonda kullanın. </li><li> 14 uM forskolin, 126 ng / ml arasında glial büyüme faktörü-2 (GCF-2), 5 ng / ml trombosit türevi büyüme faktörü (PDGF) ve 10 ng ile takviye edilmiş kök hücre büyüme ortamı içeren, kök hücre farklılaşması ortamı hazırlayın / ml temel fibroblast büyüme faktörü (bFGF). </li></ol></li><li> Nöron hasadı ve ayrılması için ortam ve stok çözeltilerinin hazırlanması <ol><li> Bottenst hazırlayınein ve Ham&#39;ın F12 ortamı,% 1 PS ve% 1, N2 ek ekleyerek Sato&#39;nun (BS) orta 28. (24-iyi plaka kullanılıyorsa) oyuk başına 500 ul olarak gerekli nihai hacim hesaplanır. </li><li> Ağırlık / hacim olarak% 1.25 konsantrasyonda Ham F12 ortamı içinde kolajenaz IV stokları hazırlayın. 200 ul alikotları olarak -20 ° C&#39;de çözüm ve mağaza Filtre-sterilize. </li><li> ,% 2.5 ağırlık / hacim konsantrasyonunda Ham F12 ortamı içinde sığır pankreatik tripsin stokları Hazırlama 200 ul alikolar -20 ° C&#39;de filtre-sterilize saklayın. </li><li> Sinir büyüme faktörü (NGF), 200 ul -20 ° C sıcaklıkta, bir filtre ile sterilize edilmiş 1 mg F12 ortamında ve mağaza / ml yağ asidi-içermeyen sığır serumu albümini (BSA) solüsyonu içinde 5 ug / ml konsantrasyonda stok çözelti hazırlayın alikotları. Hazırlandıktan sonra NGF filtre etmeyin. </li></ol></li><li> Durumda, herhangi bir yüzey modifikasyonu, oda sıcaklığında 15 dakika karıştırıldı ve kat lamelleri / poli-D-lisin ile plakanın (0.1 mg / ml gerçekleştirilmiştir) Ve / veya laminin (37 ° C &#39;de 2 saat süre ile 2-10 ug / cm2) uygun şekilde nöron eki ve nörit gelişimini desteklemektir. </li><li> Her zaman kullanmadan önce 37 ° C&#39;de su banyosunda medya ısınmak. </li></ol> Bir SC Fenotip içine 2. Yağ kaynaklı Kök Hücre (ASC) Hasat ve Farklılaşma <ol><li> Yetişkin erkek Sprague-Dawley viseral ve kasık yağ ASC hasat <ol><li> Başlatmak Hanks Dengeli Tuz Çözeltisi yağ hasat kadar buz PS çözeltisi ve mağaza% 1 v / v ile takviye (HBSS) içinde 10-15 ml bir tüp hazırlamak için önce. </li><li> Servikal dislokasyon ve başları kesilerek sıçan sonlandırın. Iç organların açığa ve kanama kaçınarak, sıçan Tıraş ve karın deri yoluyla bir kesi yapmak. Mide ve bağırsakları (genellikle yağlı sarı tutarlılık ile karakterize) ve yetişkin bir erkek Sprague-Dawley sıçan testisleri çevreleyen kasık yağ encasing visseral yağ çıkarın. Aktarım inciBuz üzerinde HBSS içeren tüp e yağıdır. </li><li> Biyolojik güvenlik kabini (sınıf II) ince ulaşıldığında bir makas ve ince kıvamına gelene kadar steril bir jilet kullanarak yağ doğrayın ve ağırlık / hacim kollajenaz tip I çözümü taze hazırlanmış% 0.2 15 ml içeren bir tüp içine transfer ve günde filtre ve sterilize edilmiştir. </li><li> 37 ° C sıcaklıkta bir su banyosu içinde tüp aktarın ve sürekli ajitasyon altında 30 dakika-1 saat süre ile, ve enzim mevcudiyetinde sindirimi yağ dokusu bırakın. Yakından sindirim Monitör ve doku tamamen ayrışmış önce, bu hücre canlılığı ve hücre verimi artıracak durdurun. Filtre 100 mikron hücre süzgecinden doku Theun-ayrışmış. NOT: hafifçe bej görünüm elde, tüp dönen zaman iyi doku sindirim gözle görünür yağ, homojen kıvamda neden olacaktır. </li><li> C santrifüj 37 ° C&#39;de fetal sığır serumu içeren, kök hücre büyüme ortamı 15 ml ilave etmek suretiyle enzim nötralizetüpün dibinde, kök hücreler dahil stromal vasküler kısmını toplamak amacıyla 10 dakika için 160 g çözelti. </li><li> Bu aşamada, topak, kırmızı kan hücreleri, 1 ml olarak yeniden süspanse edilebilir kan hücresi neden olduğu kirliliğin çıkarılması için liziz tamponunda. 1 dakika süre ile yeniden süspansiyon haline getirilmesi ve pipetleme sonra, 10 dakika boyunca 160 g taze kök hücre büyüme ortamı ve santrifüj 10 ml ekleyin. </li><li> Dikkatle altta biriken hücre pelet bakımı, tüpten aspire. Kök hücre büyüme ortamı, 10 ml hücrelerin tekrar 75 cm içine 2 şişeler aktarmak ve 37 ° C&#39;de,% 5 CO2 inkübe edin. Her 3 günde orta değiştirerek, geçit 1-2 kadar alt-birleşik düzeyde hücreleri koruyun. </li></ol></li><li> Bir SC fenotipi ASC farklılaşma <ol><li> Geçit 1-2 içinde 75 cm2 şişeye kök hücre büyüme ortamı çıkarın ve Prepa taze 1 mM β-merkaptoetanol ihtiva eden taze ortam, 10 ml ile değiştirinKırmızı ve günde filtre ve sterilize edilmiştir. 24 saat boyunca 37 ° C,% 5 CO2 de hücreleri inkübe edin. Bu aşamada, bu hücrelerin farklılaşmasını başlamadan önce düşük yoğunluklu (% 30) tohumlanır önemlidir. </li><li> Dikkatle HBSS, aspirat hücreleri yıkayın ve 350 ng / ml retinoik asit ihtiva eden bir ortamda 10 ml ile değiştirin. 72 saat için 37 ° C,% 5 CO2 de hücreleri inkübe edin. Işığa hücre orta maruziyetini en aza indirmek için deneyin. </li><li> (Aşama 1.2.6 bakınız) 3 gün sonra, HBSS, aspirat ile dikkatli bir şekilde yıkama hücreleri ve kök hücre farklılaştırma ortamının 10 ml&#39;si ile değiştirin. Her 3 günde bir ortam değiştirilerek, alt konfluent düzeyde hücreleri koruyun. NOT: (. Kingham ark 5 tarafından gösterildiği gibi) inkübasyon 2 hafta sonra, ASC karakteristik fenotip ifade, SC-benzeri ASC ayrılırlar. Daha sonra davranış 29 gözle görülür bir değişiklik olmadan 10 geçişi kadar kullanılabilir. </li></ol></li></ol> &lt;p class = &quot;jove_title&quot;&gt; 3. Hasat ve Dorsal Kök Ganglionlar (DRG) Nöronlar Ayrılma <ol><li> Servikal dislokasyon ve başları kesilerek sıçan sonlandırın. Sıçan Tıraş ve omuriliğe maruz cilt kaldırın. Keskin bir makas kullanarak, sınırlı organ ve kan damarlarının ekstra özen omuriliğe excide. Bir Petri kabı kullanarak biyolojik güvenlik kabini (sınıf II) spinal sütun aktarın ve herhangi bir sırt kısmını kaldırın. </li><li> Kord doku maruz steril ve keskin cerrahi makas kullanarak boyuna ekseni boyunca yarısında omurga bölün. Bu noktada, o kolay DRG nöron hasat sırasında ele yapmak, göğüs kafesinin seviyesinin altında iki küçük segmentlerde omuriliğe kesmek için yararlıdır. Ince forseps kullanarak, hafifçe çekin ve DRG kökleri çıkarmayın dikkat, tüm kord doku kaldırmak. DRG ve kökleri omurga kanallar içinde maruz kalacağı Bu şekilde, hala sütununda kaplı. Beyaz filamentler COMI olarak DRG gözlemleyinkanallarından doğrudan dışarı ng. </li><li> Ganglionlar kökenlerini zarar değil dikkat, çok ince forseps kullanarak vertebra kanallar derinliklerine gidiyor ve ödeme ile omurga kanallarından tüm DRG kök (sadece DRG) çekin. % 1 PS ile desteklenmiş Ham F12 ortamı 3-4 ml ihtiva eden bir küçük bir petri kabı (60 mm 2) içine DRG aktarın. Farklı hayvanlar kullanıyorsanız, ayrı yemekler kullanın. </li><li> Bir mikroskop altında, glial hücre kontaminasyonu azaltmak için steril forseps ve bir neşter kullanılarak ganglionlar çevreleyen sinir köklerinin herhangi bir aşırı DRG temizleyin. Taze F12 ortamı, 1.8 ml küçük bir petri (35mm 2) içine DRG aktarın. </li><li> % 1.25 ağ / h kolajenaz tip IV stok çözeltisi (0.125,% nihai konsantrasyon) 200 ul ilave edin ve 1 saat süre ile 37 ° C,% 5 CO2 de DRG kuluçkalayın. Dikkatlice aspire veya DRG zarar vermemeye dikkat, bir cam pipet ile orta aspire. Taze F12 ortamı esnek EkleDaha önce tarif edildiği gibi,% 0.125 ağırlık / hacim kolajenaz tip IV enzimi ile olmasına ve 1 saat süre ile inkübe edilir. </li><li> Orta aspire yavaşça F12 ortamı ile DRG yıkayın. F12 ortamı, daha sonra 1.8 ml tripsin 200 ul ilave edin (nihai konsantrasyon% 0.25 ağ / h) ve 30 dakika boyunca 37 ° C,% 5 CO2 inkübe edin. </li><li> Tripsin çıkarın ve enzimatik reaksiyonu durdurmak için 500 ul FBS ile takviye edilmiş F12 ortamı içinde 1 ml. Orta aspire ve yavaşça serum izlerini çıkarmak için üç kez F12 ortamı ile DRG yıkayın. </li><li> Taze F12 ortamı içinde 2 ml ilave edilir ve dikkatli bir şekilde bir cam pipet kullanılarak 15 ml&#39;lik bir tüp içine ortam maddesi ile DRG aktarın. Yavaşça (plastik ipuçları alternatif olarak kullanılabilir) cam pipet aşağı (yaklaşık 8-10 kat) kadar pipetleme tarafından DRG nöronlar ayırmak. </li><li> Topak, tüp dibinde biriken ve yeni bir tüp içinde ortam toplanır. Topaklarını içeren tüp taze F12 ortamı içinde 2 ml ilave edilir ve m tekrarcam pipet ile echanical ayrışma. Süspansiyon homojen (yaklaşık 3-4 kat) olana kadar bu adımı tekrarlayın ve yeni tüp bütün ayrışmış DRG toplamak. Bu yöntem, mekanik ayrışmasından kaynaklanan stresi azaltır ve nöron canlılığını artırır. </li><li> Un-ayrışmış nöronlar ve diğer enkaz kaldırmak için 100 mikron hücre süzgeç kullanarak yeni bir 15 ml tüp içine çıkan homojenize süspansiyon Filtre. Bu aşamada, ilk önce bir 50 ml tüp içine hücre süspansiyonu filtre ve bir cam pipet ile daha küçük bir tüp içine çözelti transfer uygun olabilir. 5 dakika boyunca 110 g süspansiyon santrifüjleyin. </li><li> F12 ortamı, 500 ul% 30 BSA çözeltisi 500 ul ilave edilerek% 15 bovin serum albümini (BSA) hazırlayın. Yavaş yavaş kademeli bir protein iz oluşturmak için 15 ml tüp duvarına aşağı çözüm pipetle. Bu aşamada, bu sayılar üzerinde kullanarak BSA 45 ° açıyla tüp tutun ve yavaşça serbest bırakmak için yardımcı oluroluşturan &quot;parça&quot; için bir referans olarak şahin tüp. </li><li> Tüpün alt kısmında 500 ul bırakarak adım 3.10 gelen süpernatan aspire ve aynı ortam içinde hücre pelletini. Yavaş yavaş daha önce 5 dakika boyunca 500 g aşama 3.11 (bir referans olarak tüp üzerindeki numaraları kullanın) ve santrifüj hazırlanan protein yol boyunca süspansiyonu pipetle. </li><li> Aşama 4.5 altında tarif edildiği gibi, süpernatan aspire ve modifiye BS ortamı (veya SC-benzeri ASC / DRG ko-kültür için karma bir orta 1 ml pelletini. Not: DRG nöronlarını yeniden askıya almak için ses tohumlanmış istenen nihai hücre konsantrasyonu ve örneklerin sayısına bağlı olarak, gerekli olan gerçek hacme yapılabilir. Bir hayvan, bir 24 yuvalı plaka deney için yeterli hücre sağlar. </li><li> Hücre bağlantısı oluşturmak için 2 saat boyunca 37 ° C&#39;de,% 5 CO2 seviyesinde tohumlanmış örnekleri inkübe ve son olarak sinir büyüme fa 50 ng / ml ile takviye edilmiş, taze BS orta ekleyinctor (NGF). </li></ol> SC-benzeri ASC ve DRG Nöronlar 4. Doğrudan Co-kültür <ol><li> Aşama 2.2.3 tarif edildiği gibi alt konfluent seviyelerde kültür SC benzeri ASC koruyun. DRG hasat öncesinde Yirmi dört saat, kök hücre farklılaşması orta aspire ve HBSS hücreleri yıkayın. Aspire ve 3 dakika için 37 ° C,% 5 CO2 de tripsin 3 ml inkübe edilir. </li><li> Tüm hücreler şişeden çözülmüş olan bir ışık mikroskobu altında edin. Yavaşça dekolmanı yardım şişeyi dokunun. Tripsin reaksiyonu durdurmak 5 dakika boyunca 110 g&#39;da bir 15 ml tüp ve santrifüj hücre süspansiyonu toplamak için orta 7 ml ilave edilir. </li><li> Süpernatan aspire ve kök hücre farklılaştırma ortamının 5 ml hücre pelletini. Bir hemasitometre kullanarak hücreleri sayın ve istenen nihai konsantrasyonuna göre hücre süspansiyonu seyreltin. İdeal olarak, 20,000 SC benzeri ASC tohum / cm2 hücrelerinin konfluent tabakası garantisi olacaktır. </li><li> SC-benzeri TohumVe alt-tabaka üzerinde ASC hücre bağlantıya olanak vermek üzere, 24 saat boyunca 37 ° C&#39;de,% 5 CO2 inkübe edin. </li><li> 24 saat inkübe edildikten sonra, ortam aspire ve adım 3.14 ve 3.15 de tarif edildiği gibi hücreler üzerine DRG nöronlarını ekleyin. Kök hücre farklılaştırma ortamının% 50 ve BS ortam% 50 ihtiva eden bir karışık ortama orta değiştirin. Buna ek olarak, nihai karışık bir ortam içinde 1-2.5% FBS maddelerin azaltılması DRG ayrışma elde edilen uydu hücreleri, kirletici çoğalmasını önlenmiş olur. </li><li> 37 ° C,% 5 CO2 de birlikte kültüre örnekleri inkübe ve gelecekteki deneyler için gerekli süre boyunca kültür içinde muhafaza. </li></ol>

<ol>
	<li>Wiberg, M., Terenghi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Will+it+be+possible+to+produce+peripheral+nerves.">Will it be possible to produce peripheral nerves.</a> Surg Technol Int. 11, 303-310 (2003).</li><li>Terzis, J. K., Sun, D. D., Thanos, P. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Historical+and+basic+science+review:+past,+present,+and+future+of+nerve+repair.">Historical and basic science review: past, present, and future of nerve repair.</a> J Reconstr Microsurg. 13 (3), 215-225 (1997).</li><li>Bruyns, C. N., Jaquet, J. B., Schreuders, T. A., Kalmijn, S., Kuypers, P. D., Hovius, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Predictors+for+return+to+work+in+patients+with+median+and+ulnar+nerve+injuries.">Predictors for return to work in patients with median and ulnar nerve injuries.</a> J Hand Surg Am. 28 (1), 28-34 (2003).</li><li>Geuna, S., Raimondo, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chapter+3:+Histology+of+the+peripheral+nerve+and+changes+occurring+during+nerve+regeneration.">Chapter 3: Histology of the peripheral nerve and changes occurring during nerve regeneration.</a> Int Rev Neurobiol. 87 (09), 27-46 (2009).</li><li>Kingham, P. J., Kalbermatten, D. F., Mahay, D., Armstrong, S. J., Wiberg, M., Terenghi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adipose-derived+stem+cells+differentiate+into+a+Schwann+cell+phenotype+and+promote+neurite+outgrowth+in+vitro.">Adipose-derived stem cells differentiate into a Schwann cell phenotype and promote neurite outgrowth in vitro.</a> Exp Neurol. 207 (2), 267-274 (2007).</li><li>Stoll, G., Jander, S., Myers, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Degeneration+and+regeneration+of+the+peripheral+nervous+system:+From+Augustus+Waller&#8217;s+observations+to+neuroinflammation.">Degeneration and regeneration of the peripheral nervous system: From Augustus Waller&#8217;s observations to neuroinflammation.</a> J Peripher Nerv Syst. 7 (1), 13-27 (2002).</li><li>Schmidt, C. E., Leach, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+tissue+engineering:+strategies+for+repair+and+regeneration.">Neural tissue engineering: strategies for repair and regeneration.</a> Annu Rev Biomed Eng. 5, 293-347 (2003).</li><li>Johnson, E. O., Zoubos, A. B., Soucacos, P. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regeneration+and+repair+of+peripheral+nerves.">Regeneration and repair of peripheral nerves.</a> Injury. 36S (4), S24-S29 (2005).</li><li>Liu, R., Lin, G., Xu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+efficient+method+for+dorsal+root+ganglia+neurons+purification+with+a+one-time+anti-mitotic+reagent+treatment.">An efficient method for dorsal root ganglia neurons purification with a one-time anti-mitotic reagent treatment.</a> PloS One. 8 (4), e60558 (2013).</li><li>Stettner, M., Wolffram, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+reliable+in+vitro+model+for+studying+peripheral+nerve+myelination+in+mouse.">A reliable in vitro model for studying peripheral nerve myelination in mouse.</a> J Neurosci Meth. 214 (1), 69-79 (2013).</li><li>Kingham, P. J., Mantovani, C., Terenghi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem+cell+and+neuron+co-cultures+for+the+study+of+nerve+regeneration.">Stem cell and neuron co-cultures for the study of nerve regeneration.</a> Method Mol Biol. 695, 115-127 (2011).</li><li>Nissinen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myelination+in+mouse+dorsal+root+ganglion/Schwann+cell+cocultures.">Myelination in mouse dorsal root ganglion/Schwann cell cocultures.</a> Mol Cell Neurosci. 37 (3), 568-578 (2008).</li><li>Daud, M. F. B., Pawar, K. C., Claeyssens, F., Ryan, A. J., Haycock, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+aligned+3D+neuronal-glial+co-culture+model+for+peripheral+nerve+studies.">An aligned 3D neuronal-glial co-culture model for peripheral nerve studies.</a> Biomaterials. 33 (25), 5901-5913 (2012).</li><li>Lewallen, K. a., Aa Shen, Y. -., De la Torre, A. R., Ng, B. K., Meijer, D., Chan, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessing+the+role+of+the+cadherin/catenin+complex+at+the+Schwann+cell-axon+interface+and+in+the+initiation+of+myelination.">Assessing the role of the cadherin/catenin complex at the Schwann cell-axon interface and in the initiation of myelination.</a> J Neurosci. 31 (8), 3032-3043 (2011).</li><li>Evans, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Challenges+to+nerve+regeneration.">Challenges to nerve regeneration.</a> Semin Surg Oncol. 19 (3), 312-318 (2000).</li><li>Webber, C., Zochodne, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+nerve+regenerative+microenvironment:+early+behavior+and+partnership+of+axons+and+Schwann+cells.">The nerve regenerative microenvironment: early behavior and partnership of axons and Schwann cells.</a> Exp Neurol. 223 (1), 51-59 (2010).</li><li>Tobita, M., Orbay, H., Mizuno, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adipose-derived+stem+cells:+current+findings+and+future+persperctives.">Adipose-derived stem cells: current findings and future persperctives.</a> Discov Med. 11 (57), 160-170 (2011).</li><li>Faroni, A., Terenghi, G., Reid, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adipose-derived+stem+cells+and+nerve+regeneration:+promises+and+pitfalls.">Adipose-derived stem cells and nerve regeneration: promises and pitfalls.</a> Int Rev Neurobiol. 108, 121-136 (2013).</li><li>Strem, B. M., Hicok, K. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multipotential+differentiation+of+adipose+tissue-derived+stem+cells.">Multipotential differentiation of adipose tissue-derived stem cells.</a> Keio J Med. 54 (3), 132-141 (2005).</li><li>Xu, Y., Liu, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myelin-forming+ability+of+Schwann+cell-like+cells+induced+from+rat+adipose-derived+stem+cells+in+vitro.">Myelin-forming ability of Schwann cell-like cells induced from rat adipose-derived stem cells in vitro.</a> Brain Res. 1239, 49-55 (2008).</li><li>Tomita, K., Madura, T., Sakai, Y., Yano, K., Terenghi, G., Hosokawa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Glial+differentiation+of+human+adipose-derived+stem+cells:+implications+for+cell-based+transplantation+therapy.">Glial differentiation of human adipose-derived stem cells: implications for cell-based transplantation therapy.</a> Neuroscience. 236, 55-65 (2013).</li><li>Clauser, L., Tieghi, R., Palmieri, A., Carinci, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adipose-derived+stem+cells+secrete+neurotrophic+factors.">Adipose-derived stem cells secrete neurotrophic factors.</a> Annals of Oral and Maxillofacial Surgery. 1 (2), 1-5 (2013).</li><li>Di Summa, P. G., Kingham, P. J., Raffoul, W., Wiberg, M., Terenghi, G., Kalbermatten, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adipose-derived+stem+cells+enhance+peripheral+nerve+regeneration.">Adipose-derived stem cells enhance peripheral nerve regeneration.</a> Journal of Plastic, Reconstructive &amp; Aesthetic Surgery. 63 (9), 1544-1552 (2010).</li><li>Di Summa, P. G., Kalbermatten, D. F., Pralong, E., Raffoul, W., Kingham, P. J., Terenghi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+in+vivo+regeneration+of+peripheral+nerves+through+bioengineered+nerve+grafts.">Long-term in vivo regeneration of peripheral nerves through bioengineered nerve grafts.</a> Neuroscience. 181, 278-291 (2011).</li><li>Sun, F., Zhou, K., Mi, W., Qiu, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combined+use+of+decellularized+allogeneic+artery+conduits+with+autologous+transdifferentiated+adipose-derived+stem+cells+for+facial+nerve+regeneration+in+rats.">Combined use of decellularized allogeneic artery conduits with autologous transdifferentiated adipose-derived stem cells for facial nerve regeneration in rats.</a> Biomaterials. 32 (32), 8118-8128 (2011).</li><li>Zhang, Y., Luo, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+nerve+graft+constructed+with+xenogeneic+acellular+nerve+matrix+and+autologous+adipose-derived+mesenchymal+stem+cells.">A nerve graft constructed with xenogeneic acellular nerve matrix and autologous adipose-derived mesenchymal stem cells.</a> Biomaterials. 31 (20), 5312-5324 (2010).</li><li>Gomillion, C. T., Burg, K. J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem+cells+and+adipose+tissue+engineering.">Stem cells and adipose tissue engineering.</a> Biomaterials. 27 (36), 6052-6063 (2006).</li><li>Bottenstein, J. E., Sato, G. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Growth+of+a+rat+neuroblastoma+cell+line+in+serum-free+supplemented+medium.">Growth of a rat neuroblastoma cell line in serum-free supplemented medium.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 76 (1), 514-517 (1979).</li><li>Mantovani, C., Raimondo, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morphological,+molecular+and+functional+differences+of+adult+bone+marrow-+and+adipose-derived+stem+cells+isolated+from+rats+of+different+ages.">Morphological, molecular and functional differences of adult bone marrow- and adipose-derived stem cells isolated from rats of different ages.</a> Exp Cell Res. 318 (16), 2034-2048 (2012).</li><li>Luca, A. C., Faroni, A., Downes, S., Terenghi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differentiated+adipose-derived+stem+cells+act+synergistically+with+RGD-modi+fi+ed+surfaces+to+improve+neurite+outgrowth+in+a+co-culture+model.">Differentiated adipose-derived stem cells act synergistically with RGD-modi fi ed surfaces to improve neurite outgrowth in a co-culture model.</a> J Tissue Eng Regen Med. , (2013).</li><li>Summa, P. G., Kalbermatten, D., Raffoul, W., Terenghi, G., Kingham, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracellular+Matrix+Molecules+Enhance+the+Neurotrophic+Effect+of+Schwann+Cell-Like+Differentiated.">Extracellular Matrix Molecules Enhance the Neurotrophic Effect of Schwann Cell-Like Differentiated.</a> Tissue Eng. 19 (3-4), 368-379 (2013).</li><li>Fudge, N. J., Mearow, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracellular+matrix-associated+gene+expression+in+adult+sensory+neuron+populations+cultured+on+a+laminin+substrate.">Extracellular matrix-associated gene expression in adult sensory neuron populations cultured on a laminin substrate.</a> BMC Neurosci. 14 (15), 1-19 (2013).</li><li>Stabenfeldt, S. E., LaPlaca, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Variations+in+rigidity+and+ligand+density+influence+neuronal+response+in+methylcellulose-laminin+hydrogels.">Variations in rigidity and ligand density influence neuronal response in methylcellulose-laminin hydrogels.</a> Acta Biomater. 7 (12), 4102-4108 (2011).</li><li>Terenghi, G., Wiberg, M., Kingham, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chapter+21:+Use+of+stem+cells+for+improving+nerve+regeneration.">Chapter 21: Use of stem cells for improving nerve regeneration.</a> Inl Revi Neurobiol. 87 (09), 393-403 (2009).</li><li>Richardson, J. a., Rementer, C. W., Bruder, J. M., Hoffman-Kim, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Guidance+of+dorsal+root+ganglion+neurites+and+Schwann+cells+by+isolated+Schwann+cell+topography+on+poly(dimethyl+siloxane)+conduits+and+films.">Guidance of dorsal root ganglion neurites and Schwann cells by isolated Schwann cell topography on poly(dimethyl siloxane) conduits and films.</a> J Neural Eng. 8 (4), 046015 (2011).</li><li>Seggio, a. M., Narayanaswamy, A., Roysam, B., Thompson, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Self-aligned+Schwann+cell+monolayers+demonstrate+an+inherent+ability+to+direct+neurite+outgrowth.">Self-aligned Schwann cell monolayers demonstrate an inherent ability to direct neurite outgrowth.</a> J Neural Eng. 7 (4), 046001 (2010).</li><li>Xu, F. J., Wang, Z. H., Yang, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surface+functionalization+of+polycaprolactone+films+via+surface-initiated+atom+transfer+radical+polymerization+for+covalently+coupling+cell-adhesive+biomolecules.">Surface functionalization of polycaprolactone films via surface-initiated atom transfer radical polymerization for covalently coupling cell-adhesive biomolecules.</a> Biomaterials. 31 (12), 3139-3147 (2010).</li><li>Armstrong, S. J., Wiberg, M., Terenghi, G., Kingham, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ECM+molecules+mediate+both+Schwann+cell+proliferation+and+activation+to+enhance+neurite+outgrowth.">ECM molecules mediate both Schwann cell proliferation and activation to enhance neurite outgrowth.</a> Tissue Eng. 13 (12), 2863-2870 (2007).</li></ol>

The authors confirm that there are no conflicts of interest associated with this publication.

Birincil kültür in vivo axotomy sonra nöronların rejenerasyon çalışması için DRG nöronlar sıklıkla nöronal hücreleri arasında kullanılır. İşte yetişkin farelerin DRG hasat için doğru bir protokol nöronal hayatta ödün vermeden çevredeki uydu hücrelerinin nüfusu azaltmayı amaçlayan, sunulmuştur. SC-benzeri fenotip ayrışmıştır ASC gibi, hücre terapisi için SC için geçerli bir alternatif, SC-benzeri ASC / DRG ko-kültür sistemi de detaylı bir şekilde tarif edilmektedir. 33 - yaygın laminin (veya laminin türetilmiş peptid dizileri) nöron sağkalım ve nörit oluşumu 31 üzerinde yararlı bir etkiye sahip olduğu bilinmektedir. DRG nöron kültürleri gerçekleştirirken bu nedenle nöronal hücrelerin işlevsellik kaybını önlemek için, önceden kaplanması için laminin ile her alt tabaka, tavsiye edilir. laminin kaplama kavramı da tasarımı için biyomalzeme yüzeylere uygulanırpoli doku mühendisliği yapılan, - kaprolakton (PCL) sık sık sinir boruları 30 üretimi için de kullanılır. Aynı zamanda, önceki eser, fibrin matrisi üç boyutlu 11 nöronal kültürler için uygun malzemeler olduğunu ortaya koymuştur. Protein kaplamasına ek olarak, ko-kültür modelleri DRG nöron sağkalım ve yaralanma sonrası periferik sinir sistemindeki nöronların, SC arasında meydana gelen etkileşimler üzerinde çalışmak için uygun bir ortam için değerli koşulları sağlar. Hücreler ayrıca, yara alanında otolog hücrelerin alım süresini kısaltmak için nöral cihazları kullanarak, in vivo olarak transplante edilebilir. Bu hücre yaşlanması / ölümü ve kas atrofiye neden olabilir ağır yaralanmalar, özellikle önemlidir. SC periferik sinir rejenerasyonu ve miyelinasyonu, sınırlı kullanılabilirlik ve yavaş çoğalması oranı sürecine dahil en önemli glial hücreler olmasına rağmen onları uygun haledoku mühendisliği uygulamaları 34. ASC nedeniyle bolluk ve SC fenotip içine ayırt yeteneği, belirli glial belirteçleri ifade ve yerli SC 19 fonksiyonel benzerlikler gösteren bir geçerli bir alternatif vardır. ASC, aynı zamanda, bir ko-kültür sisteminde DRG nöronlarının formasyon ve nöritlere genişletilmesi için faydalı olabilir proteinleri ve büyüme faktörleri 5 üretebilmektedir. Ancak, iki farklı ko-kültür sistemleri deneysel ihtiyaçları fonksiyonu olarak ayarlanabilir. Bu çalışmada önerilen yöntem laboratuarımızda 11 köklü protokolün gözden geçirilmiş bir versiyonu ve ikinci hücre tipi (DRG nöronlar) numaralı seribaşı olan iki hücre tipleri arasında doğrudan bir temas (doğrudan ko-kültür), içerir diğerleri (SC-benzeri ASC) üstünde. Bu yaklaşım, nöron hücreleri 35 ekim sırasında alt tabaka üzerinde bir glial hücre tabakasının bulunmasının önemini gösterdi önceki bulgulara dayanmaktadır <sup&gt; - 37. Bu etki, kök hücre yüzeyinde ASC ve diğer bilgileri çökeltilen DRG integrinler ile hücre-hücre etkileşimleri ve ECM moleküllerinin nedeniyle olasıdır. Aynı zamanda, ortam maddesi içinde serum bir azalma ASC fonksiyonlarını etkilemeden, DRG nöronlarının ayrışma türetilebilen uydu hücreleri, kirletici proliferasyonunu düşük olduğu gözlenmiştir. Bununla birlikte, SC içeren küçük bir popülasyonda uydu hücreleri, tam da ko-kültür sisteminde mevcut olacaktır DRG nöronlarının ve birkaç diğer hücre kültürlerinden ortadan kaldırmak zordur. Bu küçük alt-popülasyonları da yaralanma sonrası in vivo mevcut olan otolog hücrelerin hatırlatarak, in vitro çalışmalar sırasında miyelinasyonun süreçlerine katılmaları dikkat etmek önemlidir. İkinci yaklaşım (burada sunulmamıştır), iki farklı hücre tipleri arasında doğrudan bir temas (aktarmalı ko-kültür) kaçınarak, hücre kültürü insertlerin kullanımını içerir. Ancak buradaner, sinir rejenerasyonu (uzun nevritlerle geliştirmek için nöronal hücrelerin azalması yeteneği) sırasında in vivo koşullarda temsilcisi değil, ama diğer 38 üzerine belirli bir hücre popülasyonu tarafından ortamda yayımlanan yayılabilir faktörlerin etkisini araştırmak için kullanılır .

Periferik sinir yaralanmaları İngiltere&#39;de yaklaşık 9.000 vaka ağırlıklı olarak genç her yıl meydana gelen ve nüfusu 1 çalışma ile ortaktır. Mikrocerrahi sinir onarım teknikleri rağmen, fonksiyonun normal restorasyon engelli el hissi, azaltılmış motor fonksiyon ve sık ağrı ve soğuk intoleransı 2 ile sonuçlanan ulaşılamaz. Bu tür yaralanmalar derin ve kalıcı bir hasta üzerindeki etkisini ve daha az% 60 3. çalışmak için dönen, günlük yaşam aktivitelerini gerçekleştirmek için yeteneği var. Yaralanma, fenotip ve nöronların morfolojisi ve Schwann hücrelerinin akson filizlenmesini sağlamak için uygun bir ortam yaratmak amacıyla (SC) değişikliğinin ardından. Transeksiyonu durumunda, sinir yakın ve uzak uçlarının ayrıldı; rejeneratif süreç distal güdük iken, yer aldığı noktasıdır olmak proksimal güdük SC kopmakta bunun Wallerian dejenerasyonunu uğraryaralı aksonlar, de-farklılaştırmak ve çoğalırlar gelen. Bu miyelin enkaz kaldırma ve sinir yeniden nesil 4,5&#39;ten için uzak güdük hazırlanıyor yönelik esastır. Akson filizlenmesi distal güdük de SC tarafından yayımlanan nörotrofik faktörlerin ve kemokin üretimi tarafından desteklenen ve Wallerian dejenerasyon 6,7 aşağıdaki geride bazal lamina tarafından yönlendirilir. SC Büngner bantlarını oluşturan rejenere akson, yanında hizaya yardımcı olan endonöral tüp dışında dallanma azaltılması hedef organa doğru akson büyümesi. Reinnervation ardından, Güney Carolina rejenere akson sarma yeni miyelin kılıfını oluşturan, ancak duyusal ve motor fonksiyon sadece kısmen 8 restore edilmiştir. Dorsal kök gangliyon (DRG), duyusal sinir hücreleri, çevresel organlar innerve içeren omurga intervertebral foraminanın bulunan yapılar vardır. Ayrışmış, bunlar, uygun bir in vitro mod olarak kullanılabilirmiyelin oluşumu soruşturma da dahil olmak üzere 11, - sinir rejenerasyonu 9 çalışma için el. Özel olarak, yetişkin DRG nöronlarında, bu hücrelerin in vivo özelliklerini taklit eden ve doku mühendisliği periferik sinir onarımı için yeni stratejiler incelemek için üstün bir araç sağlar. Eş-kültür, in vitro olarak, bir, özellikle iki (veya daha fazla) hücre tiplerinin etkileşimi, in vivo ortamı taklit eden dinamik bir sistemi temsil eder. Bu hücre ko-kültürü modelleri avantajlarından biri, hücre dışı ortama tatbik edilebilir esnekliği ve yüksek kontrolüdür. 14 - DRG nöronlarında çevresel sinir sisteminde 10,12 iki hücre tipleri arasında meydana gelen gerçek etkileşimi taklit eden SC ile ko-kültür sistemlerinde sık sık kullanılmaktadır. Bu SC dışı matriks (ECM) proteinleri ve son derece artırabilir büyüme faktörleri salgılar olduğu gösterilmiştirDRG nöronlar yeteneği hayatta ve neurites 15,16 filiz. Bununla birlikte, SC hücre kültürü tekniği ilerlemelere rağmen, doku mühendisliği uygulamaları için bir hücre, uygun bir sayı üretmek için hala zordur çoğalmaya zaman uzun süre gerektirir ve. Buna ek olarak, sağlıklı bir sinir kurban otolog SC hasat için gerekli olan. Bu nedenle, kaynak SC fark her iki doku mühendisliği için ve sinir rejenerasyonu vitro testler de önemlidir. Bu görünümde, ASC, periferik sinir tamiri 17,18 için kullanılmak üzere, bir doku mühendisliği yapısının geliştirilmesi için önemli bir alternatif olarak kabul edilebilir. Daha önceki çalışmalar, S-100, p75 ve glial fibriler asidik protein (GFAP) 19, hem de miyelin proteini sıfır (P0) gibi karakteristik glial belirteçleri, 20 eksprese eden, Güney Carolina gibi ASC farklılaşırlar, bu hücrelerin yeteneği gösterdi . beyin-türevi nörotrofik faktör olarak glial büyüme faktörlerinin salgılanması (BDNF), sinir gelişme faktörü (NGF) ve glial hücre-türevi nörotropik faktör (GDNF), aynı zamanda 21,22 gözlenmiştir. 26 - in vitro hem de gösterdiği ve in vivo olarak 23 çalışmalar nedenle, Güney Carolina gibi ASC, periferal sinir rejenerasyonu için promoter olarak kullanılabilir. Buna ek olarak, ASC, diğer kök hücre tiplerine göre daha yüksek sayıda minimal invaziv prosedürler aracılığıyla hasat edilebilir; adipoz dokusunda kök hücrelerin sıklığı 100- kemik iliği 27 daha yüksek 1000-kat, ve SK ve kemik iliği mezenkimal kök hücreleri ile karşılaştırıldığında daha yüksek bir proliferasyon oranına sahiptir. Bu eser sırasıyla ayrışmış DRG nöronlar ve ASC yüksek verimli hasat gerçekleştirmek için ayrıntılı bir protokol, ikinci SC-benzeri hücrelere ayırt ediliyor sağlamayı amaçlamaktadır. Bu iki hücre tipi ko-kültür nedenle DRG KD yeteneği gelecekteki çalışmalar için kullanılabilecek bir çok pratik bir sistem temin edecektirurons neurites ve sinir doku mühendisliği için farklı iskele üzerinde miyelin oluşumu mekanizmaları filiz.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="618">
	<tbody>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Name of Reagent/ Equipment</td>
			<td style="width:116px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:216px;">100 &#181;m cell strainer</td>
			<td style="width:116px;">BD Biosciences</td>
			<td style="width:119px;">352360</td>
			<td style="width:167px;">70 &#956;m strainers (ref. 352350) can be used as alternative</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">15 mL plastic tubes</td>
			<td style="width:116px;">Sarstedt</td>
			<td style="width:119px;">62.554.002</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">50 mL plastic tubes</td>
			<td style="width:116px;">Sarstedt</td>
			<td style="width:119px;">62.547.004</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;width:216px;">75 cm2 flasks</td>
			<td style="width:116px;">Corning</td>
			<td style="width:119px;">BC301</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Retinoic Acid &#62;98% HPLC</td>
			<td style="width:116px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">R2625</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">ARA-C supplement</td>
			<td style="width:116px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">C6645</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:216px;">Recombinant Human FGF-basic (154 aa)</td>
			<td style="width:116px;">Peprotech</td>
			<td style="width:119px;">100-18B</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Bovine Serum Albumin (BSA)</td>
			<td style="width:116px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">A9205</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:216px;">Collagenase type I</td>
			<td style="width:116px;">Gibco</td>
			<td style="width:119px;">17100-017</td>
			<td style="width:167px;">Note: this collagenase is only used for fat tissue digestion</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="84" rowspan="2" style="height:84px;width:216px;">Collagenase type IV</td>
			<td rowspan="2" style="width:116px;">Worthington Biochemical</td>
			<td rowspan="2" style="width:119px;">LS004188</td>
			<td rowspan="2" style="width:167px;">Note: this collagenase is only used to dissociate DRG explants</td>
		</tr>
		<tr height="21">
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Foetal Bovine Serum (FBS)</td>
			<td style="width:116px;">Biosera</td>
			<td style="width:119px;">FB-1001</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Forskolin&#160;</td>
			<td style="width:116px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">F3917</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:216px;">Glass pipettes</td>
			<td style="width:116px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">FB50253</td>
			<td style="width:167px;">Sharp material to be disposed accordingly</td>
		</tr>
		<tr height="253">
			<td height="253" style="height:253px;width:216px;">Glial Growth Factor-2 (GGF-2)</td>
			<td style="width:116px;">Acorda Therapeutics</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">GGF-2 was kindly donated by Acorda Therapeutics. For a commercially available alternative, we recommend NRG1-&#946;1 (R &#38; D Systems, Abingdon) for stem cell differentiation to be used at the final concentration of 200ng/ml</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:216px;">Nutrient Mix F12 HAM</td>
			<td style="width:116px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">N6658</td>
			<td style="width:167px;">Warm at 37 &#176;C in a water bath unless specified</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:216px;">Hank&#8217;s Balanced Salt Solution (HBSS)</td>
			<td style="width:116px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">H9394</td>
			<td style="width:167px;">Warm at 37 &#176;C in a water bath unless specified</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">N-2 supplement (100x)</td>
			<td style="width:116px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:119px;">17502</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:216px;">Nerve Growth Factor 2.5s Protein, Mouse Submaxillary Glands&#160; (NGF)</td>
			<td style="width:116px;">Millipore</td>
			<td style="width:119px;">NC011</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Penicillin-Streptomycin (PS)</td>
			<td style="width:116px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">P0781</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Petri dishes</td>
			<td style="width:116px;">Corning</td>
			<td style="width:119px;">430165</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Recombinant Human PDGF-AA</td>
			<td style="width:116px;">Peprotech</td>
			<td style="width:119px;">100-13A</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="106">
			<td height="106" style="height:106px;width:216px;">Trypsin&#160;</td>
			<td style="width:116px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:119px;">25200-056</td>
			<td style="width:167px;">Warm at 37 &#176;C in a water bath. This is used for cell detachment from tissue culture flasks</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:216px;">Trypsin (2x bovine pancreatic)</td>
			<td style="width:116px;">Worthington Biochemical</td>
			<td style="width:119px;">LS003703</td>
			<td style="width:167px;">This is used for DRG dissociation</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:216px;">Minimum Essential Medium Eagle (MEM)</td>
			<td style="width:116px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">M8042</td>
			<td style="width:167px;">Warm at 37 &#176;C in a water bath unless specified</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:216px;">2-mercaptoethanol</td>
			<td style="width:116px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">M3148</td>
			<td style="width:167px;">Prepare the solution in the biological cabinet</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

dorsal root ganglia neurons and differentiated adipose-derived stem cells: an in vitro co-culture model to study peripheral nerve regeneration

Dorsal root ganglia (DRG) neurons, located in the intervertebral foramina of the spinal column, can be used to create an in vitro system facilitating the study of nerve regeneration and myelination. The glial cells of the peripheral nervous system, Schwann cells (SC), are key facilitators of these processes; it is therefore crucial that the interactions of these cellular components are studied together. Direct contact between DRG neurons and glial cells provides additional stimuli sensed by specific membrane receptors, further improving the neuronal response. SC release growth factors and proteins in the culture medium, which enhance neuron survival and stimulate neurite sprouting and extension. However, SC require long proliferation time to be used for tissue engineering applications and the sacrifice of an healthy nerve for their sourcing. Adipose-derived stem cells (ASC) differentiated into SC phenotype are a valid alternative to SC for the set-up of a co-culture model with DRG neurons to study nerve regeneration. The present work presents a detailed and reproducible step-by-step protocol to harvest both DRG neurons and ASC from adult rats; to differentiate ASC towards a SC phenotype; and combines the two cell types in a direct co-culture system to investigate the interplay between neurons and SC in the peripheral nervous system. This tool has great potential in the optimization of tissue-engineered constructs for peripheral nerve repair.

Ayrışmış DRG nöronlarının Kültürleri sinir rejenerasyonu çalışması için bir in vitro model uygun temsil eder. Ancak, işlenmemiş yüzeyler DRG eki ve neurites uzatılması için uygun bir ortam vermeyin. SC-benzeri ASC onlar kültür ortamında yayımlanan zaman neurites filiz DRG nöronların yeteneğini artırabilir büyüme faktörleri ve kemokinleri 19 üretebiliriz. kültür sisteminde SC benzeri ASC varlığı dolayısıyla DRG fonksiyonlarının düzenlenmesinde önemli bir rol oynayabilir. Bu protokol (Şekil 1) nöronal hücrelerin önceden ekilmiş SC-benzeri ASC ile doğrudan temasa sırasında SC-benzeri ASC ve DRG nöronlar, doğrudan ko-kültür gerçekleştirmek için prosedürü gösterir. Bu prosedür ile ilgili ana zorluk farklı hayvanların hasat DRG nöronların sayısının yüksek değişkenlik olduğunu. Bu nedenle, sonuçlar COMPAR bazen zor olabilirE ve belirli bir önem verilmektedir, her deneyde benzer bir hücre yoğunluğu elde etmek üzere tohum işlemi sırasında dikkat edilmelidir. protokol BSA degrade (adım 3.11) kullanılarak DRG nöron ayrışma kalan uydu hücrelerin en azından sayısını azaltmak için optimize edilmiştir. Kingham&#39;deki ve ark. 11 tarafından tarif edildiği gibi ek olarak, sitosin-arabinoz (Ara-C) ek, daha da uydu hücre popülasyonu en aza indirmek için BS ortamına ilave edilebilir. Bununla birlikte, tedavi süresi seçimi aynı zamanda, kültür ortamı içinde ARA-C ek mevcudiyeti ile etkilenmektedir DRG SC benzeri ASC canlılık ile dikkatle dengelenmiş olması gerekir. Bu nedenle, bir uydu hücre serbest sistemini gerçekleştirmek çok zor. Alt-tabakalar olarak kaprolakton (PCL) film - Şekil 2, muamele edilmemiş ve kimyasal olarak modifiye edilmiş poli ile bir ko-kültür modelinde filizlenme DRG akson SC benzeri ASC önemini göstermektedir. DRG nöronlar vardı maiAşama 4.5 de tarif edildiği gibi, BS ortam% 50 ve kök hücre farklılaştırma ortamının% 50 ihtiva eden bir karışık çözeltisi kullanılarak varlığında veya SC-benzeri ASC yokluğunda, 3 gün için kültür içinde ntained. Bu dönemin ardından, hücreler% 4 paraformaldehid içinde sabitlendi ve β-tubulin III (DRG nöronlarında), S100 (SC-benzeri ASC), hücre morfolojisi araştırmak ve nörit çıkıntı yapacak DRG nöronlarının yeteneği çalışma ile boyanmıştır. Nöritlerin oluşumu açık eş-kültür sistemine (Şekil 2C) geliştirilmiş iken Resim nevritler kendilerine SC-benzeri (ASC Şekil 2A) yokluğunda muamele edilmemiş yüzeyler üzerinde gözlenmiştir. Ortalama olarak, hücre gövdesi başına yapılan akson sayısı, önemli ölçüde kök hücrelerin varlığında 0-3 yükselmiştir. Bu sonuçların doğrulanması da Şekil 3 &#39;de gösterilen elektron mikroskobu (SEM) analizi, taramalı verildi. Özellikle, SEM görüntüleri nevritlerle filiz DRG nöronlarının yeteneği bağlantılı olarak, tercihen gerçekleştiğini göstermekSC-benzeri ASC, Şekil 3C&#39;de sarı oklarla gösterilen. Bu nörit oluşumu ve uzantısı ile ilgili kayda değer etkilere sahip olan, DRG nöronlarını içeren kültür sistemleri (laminin türetilmiş peptidler de dahil olmak üzere), laminin ile modifiye edilmiş alt-tabakaların kullanımı ise genellikle nöronal hücre kültürü için uygun bir tıbbi vaziyet olarak tanımlanmaktadır olduğunu belirtmek gerekir 30-32 . Bununla birlikte, Şekil 2 ve Şekil 3D&#39;de gösterilen sonuçlar, kimyasal ve biyolojik ipuçlarının kombinasyonu ayrıca DRG nöronlarının yanıtı arttırmak olduğunu gösterir. <img alt="Şekil 1," src="/files/ftp_upload/52543/52543fig1highres.jpg" /> Doğrudan DRG-SC-benzeri ASC ko-kültür sisteminin Şekil 1. hazırlanması. DRG nöronlar ve ASC spinal kolon ve yetişkin mal viseral ve kasık yağ sırasıyla elde edilire Sprague-Dawley rat. Enzimatik reaksiyon bir çağlayanı içinden adipoz doku sindirilmesinden sonra, ASC SC-benzeri hücrelerin farklılaşmasını ve ihtiyaç duyulana kadar alt konfluent koşullarda muhafaza edilmiştir. SC-benzeri ASC DRG hasat öncesinde her bir taban 24 saat önceden numaralı seribaşı bulunmaktadır. Günde, DRG nöronlarında ekstre edilir ve enzimatik ve mekanik olarak yürütülen bir dizi ile ayrışmış. nöronlar daha önce ekilmiş SC benzeri ASC üzerine ekilmiş ve deneye tabi tutulana kadar kültür içinde muhafaza edilmiştir (karışık ortam: kök hücre farklılaştırma ortamının% 50 ve modifiye BS ortamının% 50 ihtiva eder). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52543/52543fig1large.jpg" target="_blank">Burada tıklayın bir büyük görmek için Bu rakamın sürümü.</a> <img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/52543/52543fig2highres.jpg" /> Farklı kültür koşullarında DRG nöronların Şekil 2. Floresan görüntüleri.(A) muamele edilmemiş PCL filmler (B), RGD modifiye PCL filmler, (C) eş-kültür SC gibi, ham PCL filmler ASC, (D), eş-kültürlenen RGD modifiye PCL filmler SC benzeri ASC. Hücreler, modifiye edilmiş BS ortamı% 50 ve kök hücre farklılaştırma ortamının% 50 ihtiva eden bir karışık çözeltisi kullanılarak, 3 gün için kültür içinde muhafaza edilmiştir. Bu süre geçtikten sonra, hücreler,% 4 paraformaldehid içinde sabitlendi Triton-X-çözeltisi içinde permeabilize ve spesifik olmayan bağlanma bölgeleri,% 1 BSA ile bloke edildi. Ve S-100 karşı SC-benzeri ASC (AlexaFluor568; kırmızı) antikorları; nöronal hücreler daha sonra β-tubulin III (yeşil FITC) karşı boyandı. Son olarak çekirdekleri DAPI (mavi) ile boyanmıştır. Görüntüler, bir floresans mikroskobu (Olympus BX60, Japonya) kullanılarak elde edildi. Izni ile (Re-print de Luca ve ark., 30. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52543/52543fig2large.jpg" target="_blank">büyük bir vers görmek için buraya tıklayınız</a>Bu rakamın iyon. <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/52543/52543fig3highres.jpg" /> Farklı kültür koşullarında DRG nöronlarının Şekil 3. SEM görüntüleri, (A) muamele edilmemiş PCL filmler (B), RGD modifiye PCL filmler. (C), ko-kültürlenmiştir işlenmemiş PCL filmler SC benzeri ASC, (D), eş-kültürlenen RGD modifiye PCL filmler SC-benzeri ASC ile. Sarı oklar ko-kültür sisteminde doğrudan etkileşim teyit SC-benzeri ASC ve DRG arasındaki temas noktalarını gösterir. Hücreler, 3 gün için kültür içinde muhafaza ve% 2.5 glutaraldehid içinde sabitlendi. Dereceli etanol serisi (% 50,% 70,% 90,% 100) dehidrasyon sonra hücreler son olarak heksametildisilazan ile durulanmış ve SEM analizi için püskürtme kütüklerden ve altın monte edilmeden önce kurutulmuştur. Görüntüler hızlanan vol ile SEM (Zeiss EVO60, İngiltere) kullanılarak elde edildi10kV ve tage. (De Luca ve ark., 30 izniyle yeniden baskı. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52543/52543fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Dorsal Root Ganglia Neurons and Differentiated Adipose-derived Stem Cells: An In Vitro Co-culture Model to Study Peripheral Nerve Regeneration at JoVE.com

Dorsal Root Ganglia Neurons and Differentiated Adipose-derived Stem Cells: An In Vitro Co-culture Model to Study Peripheral Nerve Regeneration

Dorsal kök gangliyon (DRG), periferal sinir sisteminin duyusal nöronlar ihtiva eden yapılardır. Ayrışmış zaman, yaralanma yerinde in vivo ortamda taklit in vitro sinir rejenerasyonu ve miyelin incelemek için değerli bir model sağlayan, Güney Carolina gibi yağ elde edilen kök hücreleri (ASC) ile birlikte kültürlenebilir.

Kök Ganglia Nöronlar ve Farklılaştırılmış Yağ-türetilmiş Kök Hücreler Dorsal: bir<em&gt; İn Vitro</em&gt; Co-kültür Modeli Periferik Sinir Rejenerasyon Eğitim

Dorsal root ganglia (DRG) neurons, located in the intervertebral foramina of the spinal column, can be used to create an in vitro system facilitating the ...

dorsal-root-ganglia-neurons-differentiated-adipose-derived-stem-cells

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Dorsal Root Ganglia Neurons and Differentiated Adipose-derived Stem Cells: An In Vitro Co-culture Model to Study Peripheral Nerve Regeneration

21.2K Görüntüleme.  EPFL | STI | IMT/IBI | LSBI.  Dorsal kök gangliyon (DRG), periferal sinir sisteminin duyusal nöronlar ihtiva eden yapılardır. Ayrışmış zaman, yaralanma yerinde in vivo ortamda taklit in vitro sinir rejenerasyonu ve miyelin incelemek için değerli bir model sağlayan, Güney Carolina gibi yağ elde edilen kök hücreleri (ASC) ile birlikte kültürlenebilir. 

Video: Dorsal Root Ganglia Neurons and Differentiated Adipose-derived Stem Cells: An In Vitro Co-culture Model to Study Peripheral Nerve Regeneration

Genetic Study of Axon Regeneration with Cultured Adult Dorsal Root Ganglion Neurons

It is well known that mature neurons in the central nervous system (CNS) cannot regenerate their axons after injuries due to diminished intrinsic ability to support axon growth and a hostile environment in the mature CNS1,2. In contrast, mature neurons in the peripheral nervous system (PNS) regenerate readily after injuries3. Adult dorsal root ganglion (DRG) neurons are well known to regenerate robustly after peripheral nerve injuries. Each DRG neuron grows one axon from the cell soma, which branches into two axonal branches: a peripheral branch innervating peripheral targets and a central branch extending into the spinal cord. Injury of the DRG peripheral axons results in substantial axon regeneration, whereas central axons in the spinal cord regenerate poorly after the injury. However, if the peripheral axonal injury occurs prior to the spinal cord injury (a process called the conditioning lesion), regeneration of central axons is greatly improved4. Moreover, the central axons of DRG neurons share the same hostile environment as descending corticospinal axons in the spinal cord. Together, it is hypothesized that the molecular mechanisms controlling axon regeneration of adult DRG neurons can be harnessed to enhance CNS axon regeneration. As a result, adult DRG neurons are now widely used as a model system to study regenerative axon growth5-7.
Here we describe a method of adult DRG neuron culture that can be used for genetic study of axon regeneration in vitro. In this model adult DRG neurons are genetically manipulated via electroporation-mediated gene transfection6,8. By transfecting neurons with DNA plasmid or si/shRNA, this approach enables both gain- and loss-of-function experiments to investigate the role of any gene-of-interest in axon growth from adult DRG neurons. When neurons are transfected with si/shRNA, the targeted endogenous protein is usually depleted after 3-4 days in culture, during which time robust axon growth has already occurred, making the loss-of-function studies less effective. To solve this problem, the method described here includes a re-suspension and re-plating step after transfection, which allows axons to re-grow from neurons in the absence of the targeted protein. Finally, we provide an example of using this in vitro model to study the role of an axon regeneration-associated gene, c-Jun, in mediating axon growth from adult DRG neurons9.

An in vitro model for genetic study of axon regeneration using cultured adult mouse dorsal root ganglion neurons is described. The method includes a re-suspension/re-plating step to allow axon re-growth from neurons undergoing genetic manipulation. This approach is especially useful for loss-of-function studies of axon regeneration using RNAi-based protein knockdown.

Kültür Yetişkin Dorsal Root Ganglion Nöronlar ile Axon Rejenerasyon Genetik Çalışma

It is well known that mature neurons in the central nervous system (CNS) cannot regenerate their axons after injuries due to diminished intrinsic ability ...

Nörobilim

In Vitro Modeling of Cancerous Neural Invasion: The Dorsal Root Ganglion Model

One way that solid tumors disseminate is through neural invasion. This route is well-known in cancers of the head and neck, prostate, and pancreas. These neurotropic cancer cells have a unique ability to migrate unidirectionally along nerves towards the central nervous system (CNS). The dorsal root ganglia (DRG)/cancer cell model is a three dimensional (3D) in vitro model frequently used for studying the interaction between neural stroma and cancer cells. In this model, mouse or human cancer cell lines are grown in ECM adjacent to preparations of freshly dissociated cultured DRG. In this article, the DRG isolation protocol from mice, and implantation in petri dishes for co-culturing with pancreatic cancer cells are demonstrated. Five days after implantation, the cancer cells made contact with the DRG neurites. Later, these cells formed bridgeheads to facilitate more extensive polarized, neurotropic migration of cancer cells.

In Vitro Modeling of Cancerous Neural Invasion: The Dorsal Root Ganglion Model

This video article shows the use of the dorsal root ganglia (DRG)/cancer cell model in pancreatic ductal adenocarcinoma.

Sırt kök ganglion Modeli: Kanserli Sinir Invasion Vitro Modelleme

One way that solid tumors disseminate is through neural invasion. This route is well-known in cancers of the head and neck, prostate, and pancreas. These ...

An Approach to Enhance Alignment and Myelination of Dorsal Root Ganglion Neurons

Axon regeneration is a chaotic process due largely to unorganized axon alignment. Therefore, in order for a sufficient number of regenerated axons to bridge the lesion site, properly organized axonal alignment is required. Since demyelination after nerve injury strongly impairs the conductive capacity of surviving axons, remyelination is critical for successful functioning of regenerated nerves. Previously, we demonstrated that mesenchymal stem cells (MSCs) aligned on a pre-stretch induced anisotropic surface because the cells can sense a larger effective stiffness in the stretched direction than in the perpendicular direction. We also showed that an anisotropic surface arising from a mechanical pre-stretched surface similarly affects alignment, as well as growth and myelination of axons. Here, we provide a detailed protocol for preparing a pre-stretched anisotropic surface, the isolation and culture of dorsal root ganglion (DRG) neurons on a pre-stretched surface, and show the myelination behavior of a co-culture of DRG neurons with Schwann cells (SCs) on a pre-stretched surface.

This protocol describes the isolation of dorsal root ganglion (DRG) neurons isolated from rats and the culture of DRG neurons on a static pre-stretched cell culture system to enhance axon alignment, with subsequent co-culture of Schwann Cells (SCs) to promote myelination.

Bir Yaklaşım sırt kök ganglion nöronlar hizalama ve myelinizasyondur Artırma

Axon regeneration is a chaotic process due largely to unorganized axon alignment. Therefore, in order for a sufficient number of regenerated axons to ...

Hydraulic Extrusion of the Spinal Cord and Isolation of Dorsal Root Ganglia in Rodents

Traditionally, the spinal cord is isolated by laminectomy, i.e. by breaking open the spinal vertebrae one at a time. This is both time consuming and may result in damage to the spinal cord caused by the dissection process. Here, we show how the spinal cord can be extruded using hydraulic pressure. Handling time is significantly reduced to only a few minutes, likely decreasing protein damage. The low risk of damage to the spinal cord tissue improves subsequent immunohistochemical analysis. By performing hydraulic spinal cord extrusion instead of traditional laminectomy, the rodents can further be used for DRG isolation, thereby lowering the number of animals and allowing analysis across tissues from the same rodent. We demonstrate a consistent method to identify and isolate the DRGs according to their localization relative to the costae. It is, however, important to adjust this method to the particular animal used, as the number of spinal cord segments, both thoracic and lumbar, may vary according to animal type and strain. In addition, we illustrate further processing examples of the isolated tissues.

Here, we present a protocol for hydraulic extrusion of the spinal cord as well as identification and isolation of specific dorsal root ganglia (DRGs) in the same rodent. Compared to standard spinal cord isolation methods, this method is significantly faster and reduces the risk of tissue damage.

Kemirgenler dorsal kök gangliyon Omurilik ve İzolasyon hidrolik eldesi

Traditionally, the spinal cord is isolated by laminectomy, i.e. by breaking open the spinal vertebrae one at a time. This is both time consuming and may ...

Dorsal Root Ganglion Injection and Dorsal Root Crush Injury as a Model for Sensory Axon Regeneration

Achieving axon regeneration after nervous system injury is a challenging task. As different parts of the central nervous system (CNS) differ from each other anatomically, it is important to identify an appropriate model to use for the study of axon regeneration. By using a suitable model, we can formulate a specific treatment based on the severity of injury, the neuronal cell type of interest, and the desired spinal tract for assessing regeneration. Within the sensory pathway, DRG neurons are responsible for relaying sensory information from the periphery to the CNS. We present here a protocol that uses a DRG injection with a viral vector and a concurrent dorsal root crush injury in the lower cervical spinal cord of an adult rat as a model to study sensory axon regeneration. As demonstrated using a control virus, AAV5-GFP, we show the effectiveness of a direct DRG injection in transducing DRG neurons and tracing sensory axons into the spinal cord. We also show the effectiveness of the dorsal root crush injury in denervating the forepaw as an injury model for evaluating axon regeneration. Despite the requirement for specialized training to perform this invasive surgical procedure, the protocol is flexible, and potential users can modify many parts to accommodate their experimental requirements. Importantly, it can serve as a foundation for those in search of a suitable animal model for their studies. We believe that this article will help new users to learn the procedure in a very efficient and effective manner.

This protocol presents the use of a dorsal root ganglion (DRG) injection with a viral vector and a concurrent dorsal root crush injury in an adult rat as a model to study sensory axon regeneration. This model is suitable for investigating the use of gene therapy to promote sensory axon regeneration.

Sırt kök ganglion Enjeksiyon ve Dorsal Kök Duyusal Axon Rejenerasyon Modeli Olarak Ezilme Yaralanması

Achieving axon regeneration after nervous system injury is a challenging task. As different parts of the central nervous system (CNS) differ from each ...

Dorsal Root Ganglia Isolation and Primary Culture to Study Neurotransmitter Release

Dorsal root ganglia (DRG) contain cell bodies of sensory neurons. This type of neuron is pseudo-unipolar, with two axons that innervate peripheral tissues, such as skin, muscle and visceral organs, as well as the spinal dorsal horn of the central nervous system. Sensory neurons transmit somatic sensation, including touch, pain, thermal, and proprioceptive sensations. Therefore, DRG primary cultures are widely used to study the cellular mechanisms of nociception, physiological functions of sensory neurons, and neural development. The cultured neurons can be applied in studies involving electrophysiology, signal transduction, neurotransmitter release, or calcium imaging. With DRG primary cultures, scientists may culture dissociated DRG neurons to monitor biochemical changes in single or multiple cells, overcoming many of the limitations associated with in vivo experiments. Compared to commercially available DRG-hybridoma cell lines or immortalized DRG neuronal cell lines, the composition and properties of the primary cells are much more similar to sensory neurons in tissue. However, due to the limited number of cultured DRG primary cells that can be isolated from a single animal, it is difficult to perform high-throughput screens for drug targeting studies. In the current article, procedures for DRG collection and culture are described. In addition, we demonstrate the treatment of cultured DRG cells with an agonist of neuropeptide FF receptor type 2 (NPFFR2) to induce the release of peptide neurotransmitters (calcitonin gene-related peptide (CRGP) and substance P (SP)).

Dorsal root ganglia (DRG) primary cultures are frequently used to study physiological functions or pathology-related events in sensory neurons. Here, we demonstrate the use of lumbar DRG cultures to detect the release of neurotransmitters after neuropeptide FF receptor type 2 stimulation with a selective agonist.

Dorsal kök gangliyon yalıtım ve birincil kültür nörotransmitter yayın çalışmaya

Dorsal root ganglia (DRG) contain cell bodies of sensory neurons. This type of neuron is pseudo-unipolar, with two axons that innervate peripheral ...

Facial Nerve Surgery in the Rat Model to Study Axonal Inhibition and Regeneration

This protocol describes consistent and reproducible methods to study axonal regeneration and inhibition in a rat facial nerve injury model. The facial nerve can be manipulated along its entire length, from its intracranial segment to its extratemporal course. There are three primary types of nerve injury used for the experimental study of regenerative properties: nerve crush, transection, and nerve gap. The range of possible interventions is vast, including surgical manipulation of the nerve, delivery of neuroactive reagents or cells, and either central or end-organ manipulations. Advantages of this model for studying nerve regeneration include simplicity, reproducibility, interspecies consistency, reliable survival rates of the rat, and an increased anatomic size relative to murine models. Its limitations involve a more limited genetic manipulation versus the mouse model and the superlative regenerative capability of the rat, such that the facial nerve scientist must carefully assess time points for recovery and whether to translate results to higher animals and human studies. The rat model for facial nerve injury allows for functional, electrophysiological, and histomorphometric parameters for the interpretation and comparison of nerve regeneration. It thereby boasts tremendous potential toward furthering the understanding and treatment of the devastating consequences of facial nerve injury in human patients.

This protocol describes a reproducible approach to facial nerve surgery in the rat model, including descriptions of various inducible patterns of injury.

Aksonal İnhibisyon ve Rejenerasyon Çalışması için Sıçan Modelinde Yüz Sinir Cerrahisi

This protocol describes consistent and reproducible methods to study axonal regeneration and inhibition in a rat facial nerve injury model. The facial ...

A Scalable Model to Study the Effects of Blunt-Force Injury in Adult Zebrafish

Blunt-force traumatic brain injuries (TBI) are the most common form of head trauma, which spans a range of severities and results in complex and heterogenous secondary effects. While there is no mechanism to replace or regenerate the lost neurons following a TBI in humans, zebrafish possess the ability to regenerate neurons throughout their body, including the brain. To examine the breadth of pathologies exhibited in zebrafish following a blunt-force TBI and to study the mechanisms underlying the subsequent neuronal regenerative response, we modified the commonly used rodent Marmarou weight drop for the use in adult zebrafish. Our simple blunt-force TBI model is scalable, inducing a mild, moderate, or severe TBI, and recapitulates many of the phenotypes observed following human TBI, such as contact- and post-traumatic seizures, edema, subdural and intracerebral hematomas, and cognitive impairments, each displayed in an injury severity-dependent manner. TBI sequelae, which begin to appear within minutes of the injury, subside and return to near undamaged control levels within 7 days post-injury. The regenerative process begins as early as 48 hours post-injury (hpi), with the peak cell proliferation observed by 60 hpi. Thus, our zebrafish blunt-force TBI model produces characteristic primary and secondary injury TBI pathologies similar to human TBI, which allows for investigating disease onset and progression, along with the mechanisms of neuronal regeneration that is unique to zebrafish.

We modified the Marmarou weight drop model for adult zebrafish to examine a breadth of pathologies following blunt-force traumatic brain injury (TBI) and the mechanisms underlying subsequent neuronal regeneration. This blunt-force TBI model is scalable, induces a mild, moderate, or severe TBI, and recapitulates injury heterogeneity observed in human TBI.

Yetişkin Zebra Balıklarında Künt Kuvvet Yaralanmasının Etkilerini Incelemek İçin Ölçeklenebilir Bir Model

Blunt-force traumatic brain injuries (TBI) are the most common form of head trauma, which spans a range of severities and results in complex and ...

Organotypic Cultures of Adult Human Cortex as an Ex vivo Model for Human Stem Cell Transplantation and Validation

Neurodegenerative disorders are common and heterogeneous in terms of their symptoms and cellular affectation, making their study complicated due to the lack of proper animal models that fully mimic human diseases and the poor availability of post-mortem human brain tissue. Adult human nervous tissue culture offers the possibility to study different aspects of neurological disorders. Molecular, cellular, and biochemical mechanisms could be easily addressed in this system, as well as testing and validating drugs or different treatments, such as cell-based therapies. This method combines long-term organotypic cultures of the adult human cortex, obtained from epileptic patients undergoing resective surgery, and ex vivo intracortical transplantation of induced pluripotent stem cell-derived cortical progenitors. This method will allow the study of cell survival, neuronal differentiation, the formation of synaptic inputs and outputs, and the electrophysiological properties of human-derived cells after transplantation into intact adult human cortical tissue. This approach is an important step prior to the development of a 3D human disease modeling platform that will bring basic research closer to the clinical translation of stem cell-based therapies for patients with different neurological disorders and allow the development of new tools for reconstructing damaged neural circuits.

Organotypic Cultures of Adult Human Cortex as an Ex vivo Model for Human Stem Cell Transplantation and Validation

This protocol describes long-term organotypic cultures of adult human cortex combined with ex vivo intracortical transplantation of induced pluripotent stem cell-derived cortical progenitors, which present a novel methodology to further test stem cell-based therapies for human neurodegenerative disorders.

İnsan Kök Hücre Nakli ve Validasyonu için Ex vivo Model Olarak Yetişkin İnsan Korteksinin Organotipik Kültürleri

Neurodegenerative disorders are common and heterogeneous in terms of their symptoms and cellular affectation, making their study complicated due to the ...

In Vitro Myelination of Peripheral Axons in a Coculture of Rat Dorsal Root Ganglion Explants and Schwann Cells

The process of myelination is essential to enable rapid and sufficient signal transduction in the nervous system. In the peripheral nervous system, neurons and Schwann cells engage in a complex interaction to control the myelination of axons. Disturbances of this interaction and breakdown of the myelin sheath are hallmarks of inflammatory neuropathies and occur secondarily in neurodegenerative disorders. Here, we present a coculture model of dorsal root ganglion explants and Schwann cells, which develops a robust myelination of peripheral axons to investigate the process of myelination in the peripheral nervous system, study axon-Schwann cell interactions, and evaluate the potential effects of therapeutic agents on each cell type separately. Methodologically, dorsal root ganglions of embryonic rats (E13.5) were harvested, dissociated from their surrounding tissue, and cultured as whole explants for 3 days. Schwann cells were isolated from 3-week-old adult rats, and sciatic nerves were enzymatically digested. The resulting Schwann cells were purified by magnetic-activated cell sorting and cultured under neuregulin and forskolin-enriched conditions. After 3 days of dorsal root ganglion explant culture, 30,000 Schwann cells were added to one dorsal root ganglion explant in a medium containing ascorbic acid. The first signs of myelination were detected on day 10 of coculture, through scattered signals for myelin basic protein in immunocytochemical staining. From day 14 onward, myelin sheaths were formed and propagated along the axons. Myelination can be quantified by myelin basic protein staining as a ratio of the myelination area and axon area, to account for the differences in axonal density. This model provides experimental opportunities to study various aspects of peripheral myelination in vitro, which is crucial for understanding the pathology of and possible treatment opportunities for demyelination and neurodegeneration in inflammatory and neurodegenerative diseases of the peripheral nervous system.

In the coculture system of dorsal root ganglia and Schwann cells, myelination of the peripheral nervous system can be studied. This model provides experimental opportunities to observe and quantify peripheral myelination and to study the effects of compounds of interest on the myelin sheath.

Sıçan dorsal kök ganglion eksplantları ve schwann hücrelerinin bir kokültüründe periferik aksonların in vitro miyelinasyonu

The process of myelination is essential to enable rapid and sufficient signal transduction in the nervous system. In the peripheral nervous system, ...