This study was funded by a Mosaic grant (017.009.009) from The Netherlands Organization for Scientific Research (NWO) and a Start grant (S-13-167C) for young investigators from the AO Foundation. Z.Y.R is supported by the National Institutes of Health (grant # AG021566, AG035377, NS090051).

Burada tarif Bütün deneyler Hollandalı yasa ve yönetmeliklere (RU-Aralık 2013-205) uyarınca Radboud Üniversitesi Nijmegen Hayvan Deneyleri Yerel Kurulu tarafından onaylanmıştır. 1. Ekstrasellüler Matriks Jel Spotlar <ol><li> Izolasyon önce aşağıdaki adımları bir gün gerçekleştirin: <ol><li> En az 1.5 saat için 4 ° C&#39;de bir kısım hücre dışı matris jel (100 ul) çözülme. Dulbecco tadil edilmiş Eagle ortamı içinde 1:10 seyreltilir; 4500 mg / L glikoz, 4 mM L-glutamin ve 110 mg / ml sodyum piruvat (DMEM) ile. Her zaman, 4 ° C &#39;de hücre dışı matris jel tutun. Not: ani ısı değişimleri homojen olmayan kaplama ve kristal oluşumu ile sonuçlanacaktır. </li><li> 15 dakika boyunca buz üzerinde seyreltilmiş hücre dışı matris jel çözeltisi tutun. </li><li> 10 dakika boyunca 20 ul mikropipet önceden soğuk. </li><li> 100 mm Petri kabı içine 8 oyuklu odasının slaytlar koyun ve 10 dakika boyunca soğuk bir yüzey (örneğin, bir dondurucu paket) üzerine yemek aktarın.</li><li> Her bir 10 ul hücre dışı matriks jeli bir damla koymak önceden soğutulmuş mikropipet kullanın. En az bir 7 dakika (Şekil 1A) soğuk bir yüzey üzerinde Petri tutun. </li><li> Tamamen geri kalan hücre dışı matris jel (Şekil 1B) kaldırmak ve bir gece boyunca 37 ° C&#39;de kuyu kurutun. </li></ol></li></ol> 2. Diseksiyon Başkanı kasları (Masseter, Digastrik ve levator Veli Palatini) <ol><li> Diseksiyon önce, fosfat tamponlu tuz çözeltisi,% 2 Penisilin-Streptomisin (P / S) ile desteklenmiş (PBS), 50 ml hazırlar. Buz üzerinde tutun. </li><li> CO 2 / O 2 ile bir genç erişkin sıçan (9 hafta) ötanazi sonra, başını başını kesmek ve kafa deri kaldırmak. Buz soğukluğunda PBS kafa aktarın 50 ml&#39;lik bir tüp içinde% 2, P / S ile takviye edilmiştir. </li><li> (1 brankial kemer türetilmiş) masseter kas <ol><li> Bir silikon pad üzerinde bir tarafı yukarı ile baş koyun ve derialtı n düzeltmekeedles (Şekil 2A). </li><li> Parotis bezi ve fasial sinir (Şekil 2A) tanımlayın. Bezi kapsayan derin fasya Açığa. Fasya kesin ve diseksiyon makas kullanılarak bezini çıkarın. Dış kulak yoluna tanımlayın. Stylomastoid foramenden yüz siniri Trace ve dikkatli bir neşter bıçağı sayılı 15, zamansal elmacık ve yanak dalları çıkarın. </li><li> Fasya kaldırarak masseter kas yüzeysel kafasını boşaltın. Masseter kas yüzeysel ve derin hem de kafaları tanımlayın. Maksilla elmacık sürecinde takılı kalın tendon aponeurosis kadar yüzeysel kafa Trace. </li><li> Düz forseps ile elmacık sürecinde kökeninden gelen tendon ayırın. Bir neşter bıçak sayılı 15 veya diseksiyon makas ve dikkatlice hayatın o (Şekil 2B) ile kesin. </li><li> Kendi açıyla yerleştirilmesi ve t alt yarısına kadar masseter yüzeysel kafa teşriho bir neşter bıçağı sayılı 15 (Şekil 2C) ile mandibulanın ramus yüzeyini yanal. Şimdi tamamen kas çıkarın. </li></ol></li><li> (2. brankiyal kemer türetilmiş) digastricus&#39;un arka göbek <ol><li> Silikon pad üzerinde yatar pozisyonda başını yerleştirin ve derialtı iğneler (Şekil 3A) ile sabitleyin. </li><li> Dilaltı ve submandibular bezlerin hem örten cilt altı yağ çıkarın. Sonraki yüzeysel fasya ve diseksiyon makas kullanılarak bezleri kaldırın. Digastrik kas (anterior ve posterior karın) Açığa. </li><li> Düz bir forseps ile arka karın ön tendonu tutun kesti ve timpanik bulla (Şekil 3B) aslına kadar dikkatlice incelemek. Karşı tarafta aynı yapın. </li></ol></li><li> (4th brankial kemer türetilmiş) levator veli palatini kas <ol><li> Digastricus&#39;un arka göbek diseksiyonu sonrasıYanal çekin, Stylohyoid kas lokalize ve dikkatle (Şekil 4A) çıkarın. </li><li> Timpanik bulla (Şekil 4A) de ekler levator veli palatini tendon yerelleştirilmesine. Dikkatle inceleyin ve her iki tarafta kesti. </li><li> Trakea ve arkasında çalışan yemek borusu arayın. Özofagus kaldırın ve yutak, gırtlak ve yumuşak damak maruz kalmaktadır. </li><li> Levator veli palatini takıldığında yumuşak damak alanını lokalize ve gevşek (Şekil 4B) kesti. Not: Doğrudan diseksiyonu sonrası, dikkatlice stereo mikroskop altında her kas tendon ve bağ doku kaldırmak. Etanol% 70 hızlı bir şekilde tüm örnekler daldırın ve buz gibi soğuk PBS aktarmak bir 15 ml tüp içinde% 2, P / S ilave. </li></ol></li></ol> Uydu Hücreleri 3. İzolasyon <ol><li> Kas 3 gruba SC izolasyonu için aşağıdaki hazırlık adımları gerçekleştirin: <ol><li>DMEM içinde% 0.1 Pronaz 7.5 ml hazırlayın. 0.22 um&#39;lik bir filtre ile solüsyon filtre. Izolasyondan önce, 10 dakika için bir su banyosu içinde 37 ° C&#39;da, çözelti önceden ısıtın. </li><li> Hazırlama% 10 at serumu (HS) ve% 1 P / S ile takviye edilmiş DMEM içinde 35 mi. Ayrıca ön-sıcak 37 ° C&#39;de bir su banyosu içinde. </li><li> % 20 fetal sığır serumu (FBS), 10% HS,% 1 P / S ve% 1 tavuk embriyo ekstraktı (CEE) ile desteklenmiş DMEM oluşur 15 ml kültür ortamı hazırlayın. Bir su banyosu içinde 37 ° C &#39;de sıcak bir ön. </li><li> Ön kaplama altı plastik pipetler kullanımdan önce en az 10 dakika boyunca HS ile (10 mi) ve kuru. </li></ol></li><li> Kültür kaput, 6-çukurlu plaka içinde bir kuyu içine, her kas aktarın. Diseksiyon makas kullanılarak, yaklaşık 2 mm küçük parçalar halinde kas kesti. Doku çok kıyma için dikkatli olun. </li><li> Dikkatli bir şekilde her kuyuya% 0.1 Pronaz çözeltisi 2.5 ml ilave edilir ve 60 dakika boyunca 37 ° C&#39;de inkübe edin. Yavaşça 20, 40 ve 60 dakika sonra plaka sallayın. Not: Tam duratioİnkübasyondan n hayvanların yaş ve gerginlik gibi faktörlere bağlıdır. </li><li> Mikroskop altında izleyin. Kas parçaları kontrol edin ve lifler demetleri bir gevşek görünüm (Şekil 5) olsun enzimatik sindirim durdurun. </li><li> DMEM 2.5 mi,% 10 HS ve% 1 P / S ilave ekleyin. 5 dakika boyunca 400 x g&#39;de 15 ml&#39;lik bir tüp ve santrifüj tüpleri aktarın. Dekantasyon yoluyla süpernatant atın. </li><li> % 10 HS ve% 1 P / S ile desteklenmiş 5 ml DMEM ekleyin. Doku homojenize için yukarı ve aşağı bir 10 ml plastik pipet (öğütüldükten) ile en az 20 kez çözüm pipetle. </li><li> 4 dakika boyunca 200 x g&#39;de tüpler santrifüjleyin. Süpernatan toplamak ve 15 ml&#39;lik bir tüp içine aktarılır. </li><li> % 10 HS ve% 1 P / S ile desteklenmiş 5 ml DMEM ekleyin. Pipet tekrar doku parçaları kadar 10 ml plastik pipet pipet aracılığıyla kolayca geçer. </li><li> 4 dakika boyunca 200 x g&#39;de santrifüj tüpleri ve 15 ml bir tüp içinde supernatant toplamak. </li><li> P50 ml&#39;lik bir tüp üzerine hücre süzgeç (40 mikron) ut ve filtre üzerine ayrışmış hücreleri içeren süpernatant aktarın. Maksimal hücre kurtarma için 1 ml DMEM ile yıkayın. </li><li> 10 dakika boyunca 1.000 xg&#39;de tüpler Santrifüj ve bir pipet ile süpernatant atın. </li><li> 300 ul kültür ortamı içinde pelet yeniden süspanse edin ve bir hemositometrede hücreleri sayın. </li></ol> Ekstrasellüler Matriks Jel Spotlar Uydu Hücreleri 4. Farklılaşma <ol><li> Kültür ortamında 10 ml içinde 1.5 x 10 3 hücreleri elde etmek için bir hücre süspansiyonu ile seyreltilir. </li><li> Bantla odaları slaytlar kapakları Güvenli ve nesne camın alt tarafında siyah bir işaretleyici ile noktalar işaretleyin. </li><li> Bir mikropipet kullanarak, hücre dışı matris jel nokta üzerine 10 ul hücre süspansiyonu bir damla koydu. Hücre süspansiyonu damla yerinde doğru yerleştirilmiş olup olmadığını mikroskop altında kontrol edin. 37 ° C&#39;de altı saat boyunca inkübe edin. </li><li> Dikkatlily kültür ortamında (% 20 FBS ile takviye edilmiş DMEM,% 10 HS,% 1 P / S ve% 1 OA) 400 ul ve 37 ° C&#39;de üç gün süre ile inkübe edilir. Not: Bu noktada, taze izole SC kitlesel travma (enzimatik sindirimi ve sert triturasyondan) tabi ve kurtarmak için ihtiyacı vardır. Ilk üç gün 37. Sonraki boyunca hücrelerin rahatsız etme, kültür ortamı, deney tipine bağlı olarak değiştirilebilir. hücre dışı matris jel lekeleri farklılaşma deneyinde yüksek bir hücre yoğunluğuna (1.5-2.5 x 10 3/20 ul) ile tohumlanır edilebilir. Kültür ortamı (DMEM% 20 FBS,% 10 HS,% 1 P / S ve% 1 tavuk embriyo ekstresi ile takviye edilmiş), her üç günde bir ikame edilmiş olabilir. </li><li> Genişleme ve geçen isteniyorsa Alternatif olarak, bir sonraki adımları izleyin: <ol><li> En az 1.5 saat için 4 ° C&#39;de bir kısım hücre dışı matris jel (500 ul) çözülme. DMEM 01:10 seyreltin ve nokta 1.1.1 önerileri uygulayın. </li><li> 4 ve 10 dakika boyunca 10 ml&#39;lik bir pipet önceden soğuk# 176; C. </li><li> 10 dakika boyunca soğuk bir yüzey (örneğin, bir dondurucu paket) üzerine üç adet T75 balonlarına aktarın. </li><li> Her balona 1 ml hücre dışı matriks jel koymak önceden soğutulmuş pipet kullanın. Yüzeyi tamamen kapalı olup olmadığını kontrol edin. En azından başka 7 dk (Şekil 1A) için soğuk yüzey üzerinde şişeler tutun. </li><li> Tamamen 10 ml pipet kalan hücre dışı matris jel kaldırmak ve 1 saat boyunca 37 ° C&#39;de kuyu kurutun. </li><li> Sayılmasından sonra, kültür ortamı önceden kaplanmış T75 şişelerinde tohum (% 20 FBS,% 10 HS,% 1 P / S ve% 1 tavuk embriyo ekstresi ile takviye edilmiş DMEM), 10 ml taze izole edilmiş SC&#39;ler yeniden süspanse edin. </li><li> Üç gün sonra,% 80 izdiham kadar orta (ve her üçüncü gün) değiştirebilirsiniz ulaşılır. Geçirilmesi için PBS ile T75 balonlarına üç kez yıkayın. Sonraki 1 mL% 0.25 tripsin solüsyonu ekleyin ve 37 ° C&#39;de üç dakika boyunca inkübe edin. Kültür ortamının 9 ml içinde süspanse edin (DMEM,% 10 HS,% 1 P / S,% 20 FBS ile takviye edilmişve% 1 tavuk embriyo özü) ve 5 dakika 200 x g&#39;de santrifüje tabi tutun. Süpernatantı atın. Sayılmasından sonra, kültür ortamı 1000 ul içinde 1 x 10 6 hücre tekrar süspansiyon ve hücreler dondurma. </li></ol></li></ol>

The authors have no conflicting interests to disclose.

Farklı branchiomeric kafa kaslardan SC&#39;ler önce genişleme ve Pasajlanması olmadan tek 9 haftalık Wistar sıçan ve hücre dışı matris jel noktalar doğrudan kültüre izole edilmiştir. İzolasyondan sonra, hücreler sayılmış ve aynı hücre yoğunluğunda tohumlanır. Üç farklı kas paralel izolasyonu için, bu yöntem, yaklaşık 4 saat sürer. Kültür kirlenmesini önlemek için, kritik bir adımdır kasların diseksiyonu sonrası alkol% 70 hızlı yıkama olduğunu. SC izolasyonu sırasında küçük parçalar halinde kas dokusu (yaklaşık 2 mm) kesilmiş fakat bu, bir hücre hasarı küçük hücreli verimle sonuçlanacak şekilde çok Kıyma önlemek için önemlidir. Ayrıca, enzimatik sindirim süresi daha fazla zarar görmesini önlemek için mikroskop altında dikkatlice kontrol edilmelidir. sindirim amacı myofibers ayırmak olduğunu. İzole hücrelerin% 90&#39;ından fazlası Pax7 ifade için, başka bir saflaştırma (Şekil 6-8) gereklidir.Bu tür Percoll 39,40 üzerinde kaplanmamış yemekleri 14,37,38 öncesi kaplama, fraksiyon gibi diğer yöntemlerle ekstra arıtma adımlarını önler, fluorescent- veya manyetik veya hücre 41,43 sıralama. Toz haline için, bu SC&#39;ler mekanik serbest bırakılmasına izin doku parçaları ve pipet ucu açıklığı arasında kesme yaratmaması için gereklidir. (İç çapı: 1 mm), 10 ml bir pipet ile toz haline getirme durumunda zor, (İç çapı: 2 mm) 5 ml&#39;lik bir pipetten, ilk kullanılabilir. Seçenek olarak ise, bir cam Pasteur pipet arzu edilen çapta kesilebilir ve kullanılabilir. Bu yöntem, etkili basit ve farklı kas örnekleri SC eş zamanlı izolasyonu sağlar. SC&#39;ler için kültür plakaları da jelatin ya da kolajen ile kaplanmış olabilir, ama daha önceki çalışmalar, hücre dışı matris jel kollajen 38 daha miyojenik potansiyelinin korunması için çok daha iyi olduğunu göstermektedir. hücre dışı matriks jel noktalarmilimetre boyutu (10 ul / Ø 2 mm veya 20 ul / Ø 4 mm) çoğalması ve hücrelerin sınırlı sayıda olan SC&#39;ler farklılaşma çalışma sağlar. Farklılaşma deneyi için yaklaşık 8-20 kat daha az hücre, bir 24 oyuklu plaka (çap 15,6 mm) ile karşılaştırıldığında gereklidir ve daha az yaklaşık 80-200 kat 35 mm Petri kapları (çap: 35 mm) 14,38 ile karşılaştırıldığında. Hücre dışı matris jel pahalı olduğundan, bu yöntem aynı zamanda daha maliyet-etkin olduğunu. Buna ek olarak, bölmeli lamlar plastik örtü ile ikame edilmiş olabilir daha maliyetlerini azaltmak için kayar. Hücre dışı matriks jel hazırlanması için oda slaytlar gecede kurutma esastır görür. Hücre dışı matris jel noktalar saydam olarak, aydınlatma geri kullanılarak alt tarafındaki yeri işaretlemek için gereklidir. odaları slaytlar kolay manipülasyon için bir Petri kabındaki sabittir. Daha fazla hücre kültürü genişletme Smal SCS çalışma imkanı sunduğu gerekli değildir,kasları veya küçük kas örnekleri Ler. Seçenek olarak, PCR ya da kas için, örneğin daha fazla hücre gerekli ise, yukarıda belirtildiği gibi, yeni izole edilmiş SC&#39;ler ilk T75 şişelerinde genişletilebilir oluşturur. SC&#39;ler Bu protokol kullanılarak izole hemen sonra akış sitometrisi ile daha fazla saflaştırılması için uygun değildir izole edilmiştir. Pronaz ile sindirme yüzeyinin geniş sindirimi 14 antijenleri neden olur. Farklı lot numaraları farklı şekilde miyoblastlar proliferasyonunu ve farklılaşmasını etkilenen hücre kültürü için kullanılan at serumu ve fetal inek serumu ilk düzgün, izolasyondan önce, özelliği olmalıdır. Son yıllarda, brankial kemerler ve baş mezoderm (örneğin göz dışı kaslar) 24 türetilen kasların artan bir ilgi var. Açıkça baş ve bacak kasları çok farklı özelliklere sahip olduğu gösterilmiştir. Eski hayvanlardan masseter kası yeniden görünüyorbacak kasları 25,26 ile karşılaştırıldığında onların rejeneratif kapasitesini tain. Göz dışı kaslarının gelen SC&#39;ler kafa kaslardan SC&#39;ler karşılaştırılabilir sağlam bir çoğalma ve farklılaşma kapasitesine sahip ve bacak kas SC&#39;ler 24 daha büyük engraftmınt potansiyeli gösteriyor. lif tipi dağılımı ve miyozin kompozisyonu, kas grupları arasında ve aynı zamanda türler arasında değişmektedir. İnsanlarda ilk branşiyal kemer kaynaklanan Kaslar kalp kası geliştirmek için tipik yavaş ve hızlı hem de lifler (alt tiplerini IIA ve IIX), yenidoğan miyosinler ve miyosinler içerirler. Kemirgenlerde bu kaslar yaklaşık% 95 hızlı lifler miyozin IIA ve IIb) 44-46 içerirler. Kuş kaslar üzerinde yapılan çalışmalar, farklı kas lifi türlerinden SC&#39;ler farklılaşma kapasitesi değişir olduğunu göstermektedir. Yavaş liflerden SC&#39;ler hem elyaf türleri 47 ayırt süre hızlı lifler SC&#39;ler sadece hızlı kas lifleri ayırt. Buna ek olarak, hızlı bir kas SC&#39;ler yüzdesilifler, düşük kas lifleri 48,49 daha düşüktür. Bu lif tipi dağılımı kraniofasyal alanda kasları üzerinde çalışmalar için dikkate alınması gerektiğini göstermektedir. Yarık damak kasları benzer kemirgenlerde LVP hızlı optikleri 50 neredeyse sadece içerir. Bu nedenle, LVP gelen SC&#39;ler yarık damak alanı içindeki ön-klinik çalışmalar için uygundur. Bu protokol branchiomeric baş kas veya diğer küçük kaslar veya daha küçük kaslar örneklerinden elde edilen SC&#39;ler incelemek için yeni imkanlar sunuyor. Bu tür yarık damak olarak değil, aynı zamanda daha küçük kasları etkileyen diğer koşullarda şartlarda maksillofasiyal bölgedeki kasların yenilenmesini artırmak için yeni tedavilerin geliştirilmesini kolaylaştıracaktır.

An erratum was issue for <a href="http://www.jove.com/video/52802">Isolation and Characterization of Satellite Cells from Rat Head Branchiomeric Muscles</a>. The fourth figure was updated to explain the isolation of the LVP better.

Erratum: Isolation and Characterization of Satellite Cells from Rat Head Branchiomeric Muscles

Yaklaşık 1: 500-1: 1000 yenidoğan dudak ve / veya damak (CLP) içeren yarık gösterirler; Böylece bu insanlarda 1 en sık doğumsal anomalidir. yumuşak damak kasları konuşma, yutma ve emme sırasında yumuşak damak işleyişi için kritik öneme sahiptir. Yumuşak damak yarık varsa, bu kaslar anormal damak kemiğinin arka ucuna yerleştirilir. yumuşak damak burundan kaçmak için havanın önlenmesi, konuşması sırasında yukarı ve aşağı hareket eder. Damakta bir yarık olan çocuklar velofaringeal disfonksiyonu 2,3 olarak bilinen bir fenomen sonuçlanan bu kontrol fonksiyonu yoktur. Tedavi protokolleri değişken olmasına rağmen, yumuşak damağın cerrahi onarımı erken çocukluk (yaş 6-36 ay) 4 gerçekleşir. yumuşak damak anormal eklenen kasları cerrahi 5-7 düzeltilebilir, ancak velofaringeal disfonksiyon% 30% 7 devamHastaların 2,3,8-10 evi. Uydu hücreleri (SCS) aksiyonu sayesinde yeniden oluşturmak için iskelet kası kabiliyeti de 11,12 kurulur. Kas hasarı üzerine, SCs aktive edilir ve yaralanma yerinde göç ederler. Daha sonra, çoğalırlar farklılaştırmak ve yeni myofibers veya onarım hasarlı olanları 13 oluşturmak için sigorta. Onların soyu, çoğalan miyoblastlar, ayrıca miyojenik belirleme faktörü 1 (MyoD) 16 ifade ederken hareketsiz SC&#39;ler, transkripsiyon faktörü Pax7 14,15 ifade eder. Farklılaşan miyoblastlar 17 (MyoG) myogenin ifade başlar. miyoblastların terminal farklılaşma myofibers oluşumu ve bu miyozin ağır zincir (MyHC) 16,18 kas özel proteinlerin ekspresyonu ile işaretlenir. Son zamanlarda, çeşitli stratejiler bacak kasları 19-23 kas rejenerasyonu arttırmak için rejeneratif tıpta kullanılmaktadır. Üzerine özel çalışmalarSon zamanlarda onlar çeşitli yönleriyle 24 diğer kasların farklı olduğu gösterilmiştir çünkü branchiomeric baş kasları da önemlidir. Bacak kaslarının aksine, bu branchiomeric kası az SC&#39;ler 25 içeren yavaş yeniden, daha lifli bir bağ dokusu, aynı zamanda, diğer transkripsiyon faktörlerini ifade branchiomeric kafası kaslardan SC&#39;ler çoğalan Buna ek olarak, yaralanma 26 sonrası meydana geldiği önerilmiştir. Örneğin, Tcf21 kraniofasiyel kas oluşumu için bir transkripsiyon faktörü kuvvetli baş kasları rejenere ancak pek bacak kasları 25 yenileyici olarak ifade edilir. CLP hastaların yumuşak damak kasları genellikle daha küçük ve daha az normal bir damak kasları 27,28 oranla iyi organize bulunmaktadır. Yavaş ve hızlı lifler hem yumuşak damak kasları mevcut ama yavaş lifler daha boldur. Buna karşılık, yarık kaslar da daha yüksek bir hızla liflerin oranı ve azaltılmış kılcal kaynağı ihtivaNormal yumuşak damak kasları 29-31 ile karşılaştırıldığında. Hızlı lifler daralma kaynaklı yaralanma 31-33 daha yatkındır. Ekteki kötü kılcal kaynağı da fibrozis 34,35 teşvik edebilir. Bütün bu yönleriyle cerrahi yarık kapatılması 36 sonra yumuşak damak kaslarının zayıf rejenerasyon katkıda bulunabilir. Bu göz önüne alındığında, branchiomeric baş kas SC&#39;ler izolasyonu ve karakterizasyonu için bir protokol önemlidir. Bu branchiomeric baş kasların SC biyolojisi okumak için imkanı sağlar. Buna ek olarak, doku mühendisliği dayalı yeni tedaviler CLP ve kraniofasial alanı ödün diğer koşullarda ameliyat sonrası kas rejenerasyonu teşvik etmek geliştirilebilir. Genel olarak, SCs kas dokusunun 14 ayırmadan sonra elde edilebilir. Kıyma, enzimatik sindirim, ve toz haline getirme genellikle niş SC&#39;ler serbest bırakmak için gereklidir. SC&#39;ler FR, kaplanmamış yemekler 14,37,38 ilgili ön plaka ile saflaştırılabiliractionation Percoll 39,40 tarihinde, fluorescent- veya manyetik veya hücre 41-43 sıralama. Burada genç erişkin sıçanların branchiomeric baş kasları uydu hücrelerin izolasyonu için yeni bir ekonomik ve hızlı bir protokol mevcut. Bu protokol daha önce el yazması 14 ve özellikle de küçük bir doku örnekleri için uyarlanmış dayanır. 1 st, 2 nci ve 4. branşiyal kemerlerin kaynaklanan temsili kaslar SC&#39;ler izolasyonu açıklanmıştır. İzolasyondan sonra, uydu hücreleri düşük sayıda kendi farklılaşma çalışma milimetre büyüklüğü hücre dışı matris jel noktalar üzerinde kültürlenmiştir. Bu yaklaşım, SC&#39;ler genişlemesi ve geçiş için gereksinimi ortadan kaldırır.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Hypodermic Needle 25G 0,5x25m</td>
			<td>BD Microlance</td>
			<td>300400</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting scissors</td>
			<td>Braun</td>
			<td>BC154R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro forceps straight</td>
			<td>Braun</td>
			<td>BD330R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Scalpel Blade No.15</td>
			<td>Swann-Morton</td>
			<td>0205</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alcohol 70%</td>
			<td>Denteck</td>
			<td>2,010,005</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Permanox Slide, 8 Chamber</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>177445</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6 well cell culture plate</td>
			<td>Greiner bio-one</td>
			<td>657160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell Culture Dishes (100 x 20 mm)</td>
			<td>Greiner bio-one</td>
			<td>664160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15 ml sterile conical centrifuge tube</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>352097</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 ml sterile conical centrifuge tube</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>352098</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell strainer (40 &#956;m)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>431750</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 mL serological pipette</td>
			<td>Greiner bio-one</td>
			<td>607180</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20&#181;L FT20</td>
			<td>Greiner bio-one</td>
			<td>774288</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Matrigel, Phenol-Red Free</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>356237</td>
			<td>10 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pronase</td>
			<td>Calbiochem</td>
			<td>53702</td>
			<td>10KU</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffered Saline</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>14190-144</td>
			<td>500 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#39;s Modified Eagle Medium, high glucose, GlutaMAX Supplement, pyruvate&#160;</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10569-010</td>
			<td>500 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum&#160;&#160;</td>
			<td>Fisher Scientific&#160;</td>
			<td>3600511</td>
			<td>500 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Horse Serum</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>26050088</td>
			<td>500 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15140-122</td>
			<td>100 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chicken Embryo Extract</td>
			<td>MP Biomedicals</td>
			<td>2850145</td>
			<td>20 mL</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

isolation and characterization of satellite cells from rat head branchiomeric muscles

Fibrosis and defective muscle regeneration can hamper the functional recovery of the soft palate muscles after cleft palate repair. This causes persistent problems in speech, swallowing, and sucking. In vitro culture systems that allow the study of satellite cells (myogenic stem cells) from head muscles are crucial to develop new therapies based on tissue engineering to promote muscle regeneration after surgery. These systems will offer new perspectives for the treatment of cleft palate patients. A protocol for the isolation, culture and differentiation of satellite cells from head muscles is presented. The isolation is based on enzymatic digestion and trituration to release the satellite cells. In addition, this protocol comprises an innovative method using extracellular matrix gel coatings of millimeter size, which requires only low numbers of satellite cells for differentiation assays.

Bu protokolü kullanarak, masseter kası (tek taraf) 0.8-1 x 10 6 hücre, digastrik kas (arka göbek) 1.5-2 x 10 5 hücre verimleri ve levator veli palatini kas verimi 1-1.5 x 10 5 hücre verir. Hücre verimleri hayvanın kas tipi, zorlanma ve yaş bağlıdır. Üç kas grupları arasında karşılaştırma için, yeni izole edilmiş SC&#39;ler aynı hücre yoğunluğu (1.5 x 10 3/10 ul) tohumlanmıştır. Doğrudan izolasyonundan sonra, yeni izole edilmiş hücrelerin% 90&#39;ından fazlası Pax7 (Şekil 6) ifade etmektedir. Gün 4, 7 ve 10 kültürleri Pax7, MyoD, MyoG ve MyHC immün karşı antikorlar ile boyandı. Beş rasgele alanları bir 20x objektif kullanarak kültür başına sayılmıştır. 4. günde Pax 7 ve Myo D tüm kas grupları olarak ifade edilir (Şekil 6 ve 7 ve 8), masseter ve digastrik kaslardan SATC nin ancak döl Expres başlarmyogenin önce levator veli palatini kası (Şekil 9) daha şarkı. 10. günde, MyoG sentezlenmesi güçlü Tüm gruplarda (Şekil 9) azalır. Birkaç gün hücre dışı matris jel noktalar üzerinde tohumlama sonra, hızla çoğalan hücreleri sigorta ve miyozin ağır zincir ifade eden çok çekirdekli miyotüpler, oluşmaya başlar. Küçük miyotüpleri günde 7 (Şekil 10) açıkça görebilir. 10. günde, miyotüplerinin seğirmesi (video 1) görülebilir. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/52802/52802fig1.jpg" /> Şekil 1:. Bir oda slayt Ekstraselüler matriks jel noktalar (A) kolay manipülasyon için, 100 mm Petri kabı içine 8-iyi odasının slayt yerleştirin. Pipet 10 ul hücre dışı matriks her odasında jel ve soğuk bir yüzeye (7 dk) üzerine koydu. (B) aşırı hücre dışı matris g sonrasında Odası slaytEl kaldırılır. <img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/52802/52802fig2.jpg" /> Şekil 2:. Lateral görünümde hayvanın maseter kası Diseksiyon (A) Baş. Kulak (E), parotis bezi (P) ve fasial sinir (VII). (B) maseter kası (Ms) ve temporal kas (T) yüzeysel kafasının tendineae aponevrozu (Te). Bir forseps ile ekleme gelen tendon ayırın. (C) dikkatlice mandibula ramus onun ekleme kadar kas teşrih. E: kulak, P: parotis, VII: fasial sinir, T: Temporal kas, Ms: masseter kas, Te yüzeysel başkanı: tendon, Mp: masseter kas derin başkanı. <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/52802/52802fig3.jpg" /> Şekil 3: digastricus&#39;un arka karın diseksiyonu (.Bir yatar pozisyonda hayvanın A) Başkanı. Submandibular bezi (Tr), masseter kası (M), fasial sinir (VII) ve SKM kas (SCM) yerelleştirilmesine. Submandibular bezi çıkarın. (B) digastrik kas anterior (AD) ve posterior karın (PD) yerelleştirilmesine. Düz forseps ile, arka karnının ön tendonu almak onu kesmek ve timpanik bulla (ty), aslına kadar dikkatlice incelemek. E: kulak, Sg: submandibular bez, VII: fasial sinir, M: masseter kası, SMC: sternocleidomastoid kas, AD: ön göbek digastrik kas, PD: arka göbek digastrik kas, Ty: Kulak bül. <img alt="Şekil 4," src="/files/ftp_upload/52802/52802fig4.jpg" /> Şekil 4:. Levator veli palatini kas diseksiyonu (A) digastricus&#39;un (arka göbek) diseksiyonu sonrası genel görünümü. Stylohyoid kası (St) ve levator tendonveli palatini lokalize edilebilir. Bunun arkasında çalışan trakea (T) ve yemek borusu (Es) unutmayın. Trakea ve farenks (P) maruz yemek borusu kaldırılmasından sonra (B). yumuşak damak içine levator veli palatini sokulması artık görünür. ok her iki tarafta levator veli palatini kasları ile disseke yumuşak damak gösterir. E: kulak, St: Stylohyoid kas, VII: fasial sinir, M: masseter kası, AD: ön göbek digastrik kas, PD: arka göbek digastrik kas, T: trakea, Es: özofagus, P: Yutak, * levator veli palatini kası . <img alt="Şekil 5," src="/files/ftp_upload/52802/52802fig5.jpg" /> Şekil 5: Pronaz ile enzimatik sindirme önce sonra kas dokusunda (A) Görüntü ve (B). Kas demetleri enzimatik sindirimi sonra gevşetti gibi göründüğüne dikkat edin. Şekil 6: Pax 7 immün izolasyon sonunda hücre dışı matris jel tatbik Taze izole SC&#39;ler (yaklaşık 6 saat, ilk doku sindirilmesinden sonra).. Beş rasgele alanları alan başına 210 hücre ortalama 10X objektif kullanılarak sayıldı. Hücrelerin yaklaşık% 90 pozitif Pax 7 vardır. DAPI: mavi, Pax7: Kırmızı. Ölçek çubuğu, 100 mikron. <img alt="Şekil 7," src="/files/ftp_upload/52802/52802fig7highres.jpg" width="700" /> Şekil 7:. Pax 7, MyoD immün Gün 4, 7 ve 10 kültürleri Pax7 karşı antikorlar ve MyoD immün boyandı. (A - C) ve (D - F) 4 gün arasında Temsil edici fotomikrografikler ve maseter kası 7 kültürleri. (G ve H </strong&gt;) Pax7 + ve MyoD + mikroskobik alan başına çekirdek sayısı sayılmış ve çekirdeklerin sayısı (DAPI) bir yüzdesi olarak ifade edildi. DAPI: mavi, Pax7: kırmızı, ve MyoD: yeşil. Ölçekler bar, 100 mikron. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52802/52802fig7highres.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 8," src="/files/ftp_upload/52802/52802fig8highres.jpg" width="700" /> Şekil 8:. Masseter, digastrik ve levator veli palatin kas kültürlerde tek çekirdekli hücrelerden kültürlerinde Pax7 ± / MyoD ± dağılımı (A - C) Gün 4, 7 ve 10 kültürleri Pax7 karşı antikorlar ve MyoD immün boyandı. Toplam hücre sayısı, çekirdeklerin sayısı (DAPI) dayanmaktadır. (D) cel ± Pax7 ± / myod Veri ölçümüls. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52802/52802fig8highres.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 9," src="/files/ftp_upload/52802/52802fig9highres.jpg" width="700" /> Şekil 9:. Myogenin immün Gün 4, 7 ve 10 kültürleri Myogenin karşı antikorlar ile boyandı. (A - D) Temsili günde 4 fotomikrografları ve levator veli palatin kası 7 kültürler. (E) MyoG + mikroskobik alan başına çekirdek sayısı sayılmış ve çekirdeklerin sayısı (DAPI) bir yüzdesi olarak ifade edildi. MyoG + hücreleri (F) veri miktar. DAPI: mavi, Myogenin: yeşil. Ölçekler bar, 100 mikron. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52802/52802fig9highres.jpg" target="_blank">Bu figur büyük halini görmek için tıklayınız</a>e. <img alt="Şekil 10," src="/files/ftp_upload/52802/52802fig10.jpg" /> Şekil 10:. Miyozin ağır zincir immün Gün 4, 7 ve 10 kültürleri miyozin ağır zincir (MyHC) karşı antikorlar ile boyandı. Temsili günde 4, 7 fotomikrografları ve digastrik (DIG) kas 10 kültürler. Günde 10 uzun ve iyi organize miyotüpleri belirgin iken 7. günde, küçük miyotüpleri mevcuttur. Ölçekler bar, 200 mikron. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52802/52802fig10large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> Video 1.:. Miyotüp seğirmesi seğirmesi miyotüplerinin iki temsilci alanların örnekleri günü için digastricus&#39;un 10 kültürleri gösterilir <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52802/Video1.mpg" target="_blank">Bu videoyu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Isolation and Characterization of Satellite Cells from Rat Head Branchiomeric Muscles at JoVE.com

Isolation and Characterization of Satellite Cells from Rat Head Branchiomeric Muscles

Bu protokol, 9 haftalık farenin branchiomeric merkez kas uydu hücreleri izolasyonunu anlatmaktadır. kaslar, farklı brankiyal kemerlerin kaynaklanmaktadır. Daha sonra, uydu hücreleri farklılaşma çalışma milimetre boyutta bir Noktası kaplama üzerinde kültürlenmiştir. Bu yaklaşım, uydu hücrelerinin genişleme ve pasajlanmasını önler.

Sıçan Başkanı Branchiomeric Kaslar gelen İzolasyon ve Uydu Hücrelerinin Karakterizasyonu

Fibrosis and defective muscle regeneration can hamper the functional recovery of the soft palate muscles after cleft palate repair. This causes persistent ...

isolation-characterization-satellite-cells-from-rat-head

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

10.8K Görüntüleme.  Radboud University Medical Center.  Bu protokol, 9 haftalık farenin branchiomeric merkez kas uydu hücreleri izolasyonunu anlatmaktadır. kaslar, farklı brankiyal kemerlerin kaynaklanmaktadır. Daha sonra, uydu hücreleri farklılaşma çalışma milimetre boyutta bir Noktası kaplama üzerinde kültürlenmiştir. Bu yaklaşım, uydu hücrelerinin genişleme ve pasajlanmasını önler. 

Video: Isolation and Characterization of Satellite Cells from Rat Head Branchiomeric Muscles

Isolation and Quantitative Immunocytochemical Characterization of Primary Myogenic Cells and Fibroblasts from Human Skeletal Muscle

The repair and regeneration of skeletal muscle requires the action of satellite cells, which are the resident muscle stem cells. These can be isolated from human muscle biopsy samples using enzymatic digestion and their myogenic properties studied in culture. Quantitatively, the two main adherent cell types obtained from enzymatic digestion are: (i) the satellite cells (termed myogenic cells or muscle precursor cells), identified initially as CD56+ and later as CD56+/desmin+ cells and (ii) muscle-derived fibroblasts, identified as CD56&#8211; and TE-7+. Fibroblasts proliferate very efficiently in culture and in mixed cell populations these cells may overrun myogenic cells to dominate the culture. The isolation and purification of different cell types from human muscle is thus an important methodological consideration when trying to investigate the innate behavior of either cell type in culture. Here we describe a system of sorting based on the gentle enzymatic digestion of cells using collagenase and dispase followed by magnetic activated cell sorting (MACS) which gives both a high purity (&#62;95% myogenic cells) and good yield (~2.8 x 106 &#177; 8.87 x 105 cells/g tissue after 7 days in vitro) for experiments in culture. This approach is based on incubating the mixed muscle-derived cell population with magnetic microbeads beads conjugated to an antibody against CD56 and then passing cells though a magnetic field. CD56+ cells bound to microbeads are retained by the field whereas CD56&#8211; cells pass unimpeded through the column. Cell suspensions from any stage of the sorting process can be plated and cultured. Following a given intervention, cell morphology, and the expression and localization of proteins including nuclear transcription factors can be quantified using immunofluorescent labeling with specific antibodies and an image processing and analysis package.

The main adherent cell types derived from human muscle are myogenic cells and fibroblasts. Here, cell populations are enriched using magnetic-activated cell sorting based on the CD56 antigen. Subsequent immunolabelling with specific antibodies and use of image analysis techniques allows quantification of cytoplasmic and nuclear characteristics in individual cells.

İnsan İskelet Kası İlköğretim andMyogenic Hücreleri ve Fibroblast İzolasyon ve Kantitatif İmmünositokimyasal Karakterizasyonu

The repair and regeneration of skeletal muscle requires the action of satellite cells, which are the resident muscle stem cells. These can be isolated ...

Gelişim Biyolojisi

Isolation of Neural Stem/Progenitor Cells from the Periventricular Region of the Adult Rat and Human Spinal Cord

Adult rat and human spinal cord neural stem/progenitor cells (NSPCs) cultured in growth factor-enriched medium allows for the proliferation of multipotent, self-renewing, and expandable neural stem cells. In serum conditions, these multipotent NSPCs will differentiate, generating neurons, astrocytes, and oligodendrocytes. The harvested tissue is enzymatically dissociated in a papain-EDTA solution and then mechanically dissociated and separated through a discontinuous density gradient to yield a single cell suspension which is plated in neurobasal medium supplemented with epidermal growth factor (EGF), basic fibroblast growth factor (bFGF), and heparin. Adult rat spinal cord NSPCs are cultured as free-floating neurospheres and adult human spinal cord NSPCs are grown as adherent cultures. Under these conditions, adult spinal cord NSPCs proliferate, express markers of precursor cells, and can be continuously expanded upon passage. These cells can be studied in vitro in response to various stimuli, and exogenous factors may be used to promote lineage restriction to examine neural stem cell differentiation. Multipotent NSPCs or their progeny can also be transplanted into various animal models to assess regenerative repair.

The adult mammalian spinal cord contains neural stem/progenitor cells (NSPCs) that can be isolated and expanded in culture. This protocol describes the harvesting, isolation, culture, and passaging of NSPCs generated from the periventricular region of the adult spinal cord from the rat and from human organ transplant donors.

Periventriküler Yetişkin Rat Bölgesinde ve İnsan Omurilik gelen Nöral Kök / Progenitör Hücreler izolasyonu

Adult rat and human spinal cord neural stem/progenitor cells (NSPCs) cultured in growth factor-enriched medium allows for the proliferation of ...

Isolation and Characterization of Single Cells from Zebrafish Embryos

The zebrafish (Danio rerio) is a powerful model organism to study vertebrate development. Though many aspects of zebrafish embryonic development have been described at the morphological level, little is known about the molecular basis of cellular changes that occur as the organism develops. With recent advancements in microfluidics and multiplexing technologies, it is now possible to characterize gene expression in single cells. This allows for investigation of heterogeneity between individual cells of specific cell populations to identify and classify cell subtypes, characterize intermediate states that occur during cell differentiation, and explore differential cellular responses to stimuli. This study describes a protocol to isolate viable, single cells from zebrafish embryos for high throughput multiplexing assays. This method may be rapidly applied to any zebrafish embryonic cell type with fluorescent markers. An extension of this method may also be used in combination with high throughput sequencing technologies to fully characterize the transcriptome of single cells. As proof of principle, the relative abundance of cardiac differentiation markers was assessed in isolated, single cells derived from nkx2.5 positive cardiac progenitors. By evaluation of gene expression at the single cell level and at a single time point, the data support a model in which cardiac progenitors coexist with differentiating progeny. The method and work flow described here is broadly applicable to the zebrafish research community, requiring only a labeled transgenic fish line and access to microfluidics technologies.

This protocol describes a method for isolating single cells from zebrafish embryos, enriching for cells of interest, capturing zebrafish cells in microfluidic based single cell multiplex systems, and assessing gene expression from single cells.

İzolasyon ve Zebra balığı Embriyolar gelen Tek Hücre Karakterizasyonu

The zebrafish (Danio rerio) is a powerful model organism to study vertebrate development. Though many aspects of zebrafish embryonic development have been ...

Isolation and Characterization of Mesenchymal Stromal Cells from Human Umbilical Cord and Fetal Placenta

The human umbilical cord (UC) and placenta are non-invasive, primitive and abundant sources of mesenchymal stromal cells (MSCs) that have increasingly gained attention because they do not pose any ethical or moral concerns. Current methods to isolate MSCs from UC yield low amounts of cells with variable proliferation potentials. Since UC is an anatomically-complex organ, differences in MSC properties may be due to the differences in the anatomical regions of their isolation. In this study, we first dissected the cord/placenta samples into three discrete anatomical regions: UC, cord-placenta junction (CPJ), and fetal placenta (FP). Second, two distinct zones, cord lining (CL) and Wharton&#39;s jelly (WJ), were separated. The explant culture technique was then used to isolate cells from the four sources. The time required for the primary culture of cells from the explants varied depending on the source of the tissue. Outgrowth of the cells occurred within 3 - 4 days of the CPJ explants, whereas growth was observed after 7 - 10 days and 11 - 14 days from CL/WJ and FP explants, respectively. The isolated cells were adherent to plastic and displayed fibroblastoid morphology and surface markers, such as CD29, CD44, CD73, CD90, and CD105, similarly to bone marrow (BM)-derived MSCs. However, the colony-forming efficiency of the cells varied, with CPJ-MSCs and WJ-MSCs showing higher efficiency than BM-MSCs. MSCs from all four sources differentiated into adipogenic, chondrogenic, and osteogenic lineages, indicating that they were multipotent. CPJ-MSCs differentiated more efficiently in comparison to other MSC sources. These results suggest that the CPJ is the most potent anatomical region and yields a higher number of cells, with greater proliferation and self-renewal capacities in vitro. In conclusion, the comparative analysis of the MSCs from the four sources indicated that CPJ is a more promising source of MSCs for cell therapy, regenerative medicine, and tissue engineering.

Here, we present a protocol for the dissection of human umbilical cord (UC) and fetal placenta sample into cord lining (CL), Wharton&#39;s jelly (WJ), cord-placenta junction (CPJ), and fetal placenta (FP) for the isolation and characterization of mesenchymal stromal cells (MSCs) using the explant culture technique.

İnsan göbek bağı ve fetal plasentadan Mezenkimal Stromal Hücre İzolasyonu ve Vasıflandırılması

The human umbilical cord (UC) and placenta are non-invasive, primitive and abundant sources of mesenchymal stromal cells (MSCs) that have increasingly ...

Isolation of Type I and Type II Pericytes from Mouse Skeletal Muscles

Pericytes are perivascular multipotent cells that show heterogeneity in different organs or even within the same tissue. In skeletal muscles, there are at least two pericyte subpopulations (called type I and type II), which express different molecular markers and have distinct differentiation capabilities. Using NG2-DsRed and Nestin-GFP double-transgenic mice, type I (NG2-DsRed+Nestin-GFP-) and type II (NG2-DsRed+Nestin-GFP+) pericytes have been successfully isolated. However, the availability of these double-transgenic mice prevents the widespread use of this purification method. This work describes an alternative protocol that allows for the easy and simultaneous isolation of type I and type II pericytes from skeletal muscles. This protocol utilizes the fluorescence-activated cell sorting (FACS) technique and targets PDGFR&#946;, rather than NG2, together with the Nestin-GFP signal. Following isolation, type I and type II pericytes show distinct morphologies. In addition, type I and type II pericytes isolated with this new method, like those isolated from the double-transgenic mice, are adipogenic and myogenic, respectively. These results suggest that this protocol can be used to isolate pericyte subpopulations from skeletal muscles and possibly from other tissues.

This work describes a FACS-based protocol that allows for easy and simultaneous isolation of type I and type II pericytes from skeletal muscles.

Fare İskelet Kasılarından Tip I ve Tip II Perisitlerin İzolasyonu

Pericytes are perivascular multipotent cells that show heterogeneity in different organs or even within the same tissue. In skeletal muscles, there are at ...

Isolation and Characterization of Primary Rat Valve Interstitial Cells: A New Model to Study Aortic Valve Calcification

Calcific aortic valve disease (CAVD) is characterized by the progressive thickening of the aortic valve leaflets. It is a condition frequently found in the elderly and end-stage renal disease (ESRD) patients, who commonly suffer from hyperphosphatemia and hypercalcemia. At present, there are no medication therapies that can stop its progression. The mechanisms that underlie this pathological process remain unclear. The aortic valve leaflet is composed of a thin layer of valve endothelial cells (VECs) on the outer surfaces of the aortic cusps, with valve interstitial cells (VICs) sandwiched between the VECs. The use of a rat model enables the in vitro study of ectopic calcification based on the in vivo physiopathological serum phosphate (Pi) and calcium (Ca) levels of patients who suffer from hyperphosphatemia and hypercalcemia. The described protocol details the isolation of a pure rat VIC population as shown by the expression of VIC markers: alpha-smooth muscle actin (&#945;-SMA) vimentin and tissue growth factor beta (TGF&#946;) 1 and 2, and the absence of cluster of differentiation (CD) 31, a VEC marker. By expanding these VICs, biochemical, genetic, and imaging studies can be performed to study and unravel the key mediators underpinning CAVD.

This protocol describes the isolation, culture, and calcification of rat-derived valve interstitial cells, a highly physiological in vitro model of calcific aortic valve disease (CAVD). Exploitation of this rat model facilitates CAVD research in exploring the cell and molecular mechanisms that underlie this complex pathological process.

Birincil fare malzemelerin yalıtım ve Vana interstisyel hücreleri: Aort Kapak kalsifikasyon eğitim için yeni bir Model

Calcific aortic valve disease (CAVD) is characterized by the progressive thickening of the aortic valve leaflets. It is a condition frequently found in ...

Identification of Skeletal Muscle Satellite Cells by Immunofluorescence with Pax7 and Laminin Antibodies

Immunofluorescence is an effective method that helps to identify different cell types on tissue sections. In order to study the desired cell population, antibodies for specific cell markers are applied on tissue sections. In adult skeletal muscle, satellite cells (SCs) are stem cells that contribute to muscle repair and regeneration. Therefore, it is important to visualize and trace the satellite cell population under different physiological conditions. In resting skeletal muscle, SCs reside between the basal lamina and myofiber plasma membrane. A commonly used marker for identifying SCs on the myofibers or in cell culture is the paired box protein Pax7. In this article, an optimized Pax7 immunofluorescence protocol on skeletal muscle sections is presented that minimizes non-specific staining and background. Another antibody that recognizes a protein (laminin) of the basal lamina was also added to help identify SCs. Similar protocols can also be used to perform double or triple labeling with Pax7 and antibodies for additional proteins of interest.

The precise identification of satellite cells is essential for studying their functions under various physiological and pathological conditions. This article presents a protocol to identify satellite cells on adult skeletal muscle sections by immunofluorescence-based staining.

Kas iskelet uydu hücreleri tarafından Pax7 ve Laminin antikorlar ile ayirt tanımlaması

Immunofluorescence is an effective method that helps to identify different cell types on tissue sections. In order to study the desired cell population, ...

Isolation and Characterization of Cardiac Mesenchymal Stromal Cells from Endomyocardial Bioptic Samples of Arrhythmogenic Cardiomyopathy Patients

A normal adult heart is composed of several different cell types, among which cardiac mesenchymal stromal cells represent an abundant population. The isolation of these cells offers the possibility of studying their involvement in cardiac diseases, and, in addition, provides a useful primary cell model to investigate biological mechanisms.
Here, the method for the isolation of C-MSC from arrhythmogenic cardiomyopathy patients&#39; bioptic samples is described. The endomyocardial biopsy sampling is guided in the right ventricular areas adjacent to the scar visualized by electro-anatomical mapping. The digestion of the biopsies in collagenase and their plating on a plastic dish in culture medium to allow C-MSC growth is described. The isolated cells can be expanded in culture for several passages. To confirm their mesenchymal phenotype, the description of immuno-phenotypical characterization is provided. C-MSC are able to differentiate into several cell types like adipocytes, chondrocytes, and osteoblasts: in the context of ACM, characterized by adipocyte deposits in patients&#39; hearts, the protocols for the adipogenic differentiation of C-MSC and the characterization of lipid droplet accumulation are described.

In this article, a method to isolate cardiac mesenchymal stromal cells from endomyocardial bioptic samples of arrhythmogenic cardiomyopathy patients is provided. Their characterization and the protocol to boost their adipogenic differentiation are described.

Yalıtım ve Endomyocardial Bioptic örnekleri Aritmojenik kardiyomiyopati hasta kardiyak Mezenkimal Stromal hücrelerden karakterizasyonu

A normal adult heart is composed of several different cell types, among which cardiac mesenchymal stromal cells represent an abundant population. The ...

Isolation and Characterization of Human Umbilical Cord-derived Mesenchymal Stem Cells from Preterm and Term Infants

Mesenchymal stem cells (MSCs) have considerable therapeutic potential and attract increasing interest in the biomedical field. MSCs are originally isolated and characterized from bone marrow (BM), then acquired from tissues including adipose tissue, synovium, skin, dental pulp, and fetal appendages such as placenta, umbilical cord blood (UCB), and umbilical cord (UC). MSCs are a heterogeneous cell population with the capacity for (1) adherence to plastic in standard culture conditions, (2) surface marker expression of CD73+/CD90+/CD105+/CD45-/CD34-/CD14-/CD19-/HLA-DR- phenotypes, and (3) trilineage differentiation into adipocytes, osteocytes, and chondrocytes, as currently defined by the International Society for Cellular Therapy (ISCT). Although BM is the most widely used source of MSCs, the invasive nature of BM aspiration ethically limits its accessibility. Proliferation and differentiation capacity of MSCs obtained from BM generally decline with the age of the donor. In contrast, fetal MSCs obtained from UC have advantages such as vigorous proliferation and differentiation capacity. There is no ethical concern for UC sampling, as it is typically regarded as medical waste. Human UC starts to develop with continuing growth of the amniotic cavity at 4-8 weeks of gestation and keeps growing until reaching 50-60 cm in length, and it can be isolated during the whole newborn delivery period. To gain insight into the pathophysiology of intractable diseases, we have used UC-derived MSCs (UC-MSCs) from infants delivered at various gestational ages. In this protocol, we describe the isolation and characterization of UC-MSCs from fetuses/infants at 19-40 weeks of gestation.

Human umbilical cord (UC) can be obtained during the perinatal period as a result of preterm, term, and postterm delivery. In this protocol, we describe the isolation and characterization of UC-derived mesenchymal stem cells (UC-MSCs) from fetuses/infants at 19-40 weeks of gestation.

Yalıtım ve insan göbek kordonu kaynaklı mezenkimal kök hücre erken Doğum ve terim bebekler karakterizasyonu

Mesenchymal stem cells (MSCs) have considerable therapeutic potential and attract increasing interest in the biomedical field. MSCs are originally ...

In Vitro Generation of Somite Derivatives from Human Induced Pluripotent Stem Cells

In response to signals such as WNTs, bone morphogenetic proteins (BMPs), and sonic hedgehog (SHH) secreted from surrounding tissues, somites (SMs) give rise to multiple cell types, including the myotome (MYO), sclerotome (SCL), dermatome (D), and syndetome (SYN), which in turn develop into skeletal muscle, axial skeleton, dorsal dermis, and axial tendon/ligament, respectively. Therefore, the generation of SMs and their derivatives from human induced pluripotent stem cells (iPSCs) is critical to obtain pluripotent stem cells (PSCs) for application in regenerative medicine and for disease research in the field of orthopedic surgery. Although the induction protocols for MYO and SCL from PSCs have been previously reported by several researchers, no study has yet demonstrated the induction of SYN and D from iPSCs. Therefore, efficient induction of fully competent SMs remains a major challenge. Here, we recapitulate human SM patterning with human iPSCs in vitro by mimicking the signaling environment during chick/mouse SM development, and report on methods of systematic induction of SM derivatives (MYO, SCL, D, and SYN) from human iPSCs under chemically defined conditions through the presomitic mesoderm (PSM) and SM states. Knowledge regarding chick/mouse&#160;SM development was successfully applied to the induction of SMs with human iPSCs. This method could be a novel tool for studying human somitogenesis and patterning without the use of embryos and for cell-based therapy and disease modeling.

We present here a protocol for the differentiation of human induced pluripotent stem cells into each somite derivative (myotome, sclerotome, dermatome, and syndetome) in chemically defined conditions, which has applications in future disease modeling and cell-based therapies in orthopedic surgery.

Somite türevleri indüklenen insan nesil Vitro Pluripotent kök hücreler

In response to signals such as WNTs, bone morphogenetic proteins (BMPs), and sonic hedgehog (SHH) secreted from surrounding tissues, somites (SMs) give ...