Name: a murine orthotopic bladder tumor model and tumor detection system
Uploaded: 2017-01-12T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 23 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Murine Orthotopic Bladder Tumor Model and Tumor Detection System at JoVE.com

This work was funded by a grant from the National Medical Research Council of Singapore (NMRC/CIRG/1335/2012) awarded to Professor Kesavan Esuvaranathan.

Singapur Ulusal Üniversitesi hayvan kullanımı ve (Protokol numarası 084/12) kullanımına ilişkin Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) yönergelerine uyulması tüm hayvan çalışmaları. 1. İn Vitro MB49-PSA Hücreleri Büyüyen ve PSA salgılanmasına Ölçme <ol><li> Bakım tamamlandı Dulbecco Modifiye Eagle Ortamı,% 10 fetal sığır serumu (FBS) ile desteklenmiş (DMEM), 2 mmol / L L-glutamin, mesane kanseri hücreleri MB49-PSA 15, murin ve bir kuluçka makinesi içinde 0.05 mg / ml Penisilin-Streptomisin 37 ° C&#39;de ° C ve% 5 CO2. 200 ug / ml Higromisin B, PSA salgılayan hücrelerin seçimi basıncını korumak için ekleyin. </li><li> PSA salgısını, plaka 6 oyuklu bir kültür plakasına 1 x 10 6 hücre tespit etmek ve 48 saat boyunca% 5 CO2 varlığında 37 ° C&#39;de inkübe etmek. </li><li> İki gün sonra, PSA ölçümleri için supernatant toplamak. <ol><li> Pasteur pipeti kullanarak, sup aktarmak15 ml bir santrifüj tüpüne ernatant. </li><li> yüzen hücreleri ve enkaz kaldırmak için 250 xg&#39;de 5 dakika santrifüj. 1.5 mL bir mikrosantrfuj tübünde 30 ° C - PSA deney farklı bir günde gerçekleştirilir ise, süpernatan saklayın. Değilse, hemen bir sonraki adıma geçin. </li><li> Insan-serbest PSA ELISA kiti 7 kullanarak PSA konsantrasyonunu belirleyin. </li></ol></li><li> kaplama hücreleri numaralandırmak. <ol><li> Pasteur pipeti kullanarak, yavaşça DMEM 1 mL yıkama hücreleri. Aspire ve tamamen ortamı çıkarın. </li><li> taze medya 1 ml ekleyin ve iyice hücreleri çıkarmak için bir hücre kazıyıcı ile hafifçe kazıyın. </li><li> Bir mikrosantrifüj tüp hücreleri aktarmak ve bir tek hücre süspansiyonu sağlamak için iyice yeniden askıya. </li><li> Hücre süspansiyonu ve% 0.4 tripan mavisi çözeltisi eşit hacimlerde karıştırın. hemasitometre kullanarak (boya kadar yapmayız) canlı hücreleri saymak. </li></ol></li><li> ng olarak PSA ifadesini hesaplamakPSA / ml ortam / 10 6 hücre. 120 ng / ml / 10 6 hücre - farelerde implantasyon için MB49-PSA hücrelerinin PSA ifadesi 80&#39;dir. </li></ol> 2. ELISA ve Real-time PCR analizi ile PSA Ölçümleri Hassasiyet belirlenmesi <ol><li> Oyuk başına 1 x 10 6 hücre (yani, 10 0, 10 1, 10 2, 10 maksimum olduğu şekilde ebeveyn MB49 hücrelerin farklı miktarları ile 6 oyuklu bir kültür plakasına tam DMEM ortamında plaka MB49-PSA hücreleri 3, 10 4, 10 5, veya 10 6 MB49-PSA hücreleri) 10 5, 10 4, 10 3, 10 2, 10 1, ya da 10 0 MB49 hücreleri, sırasıyla 10, 6 kültürlenir. </li><li> aşama 1.3 &#39;de tarif edildiği gibi, bir gün sonra, PSA ölçümleri için supernatant toplamak. Insan-serbest PSA ELISA kiti 7 kullanarak PSA konsantrasyonunu belirleyin. </li><li> hücrelerinden RNA ekstrakte edin. <ol><li> LyseRNA ekstraksiyonu, reaktif 1 mL eklenerek doğrudan plaka hücreleri. </li><li> Oda sıcaklığında 5 dakika inkübe bir mikrosantrifüj tüpüne hücre lizat aktarın. kloroform 0,2 ml ilave edilir ve 15 saniye boyunca kuvvetli bir şekilde numuneler girdap. Oda sıcaklığında 3 dakika boyunca inkübe. </li><li> 4 ° C&#39;de 15 dakika boyunca 12,000 x g&#39;de santrifüjleyin örnekleri. Dikkatlice interfaz bozmadan yeni bir tüp üst akıcı faz (0.5 mi) aktarın. </li><li> izopropil alkol, 0.5 mL ekleyin. Oda sıcaklığında 10 dakika boyunca inkübe edin. 4 ° C&#39;de 10 dakika boyunca 12,000 x g&#39;de santrifüjleyin örnekleri. tüpün alt RNA çökelti bozmadan, tamamen süpernatantı. </li><li> % 75 etanol içinde bir kez 1 mL pelet yıkayın. 4 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 7500 x g&#39;de santrifüjleyin. Tüm etanol çıkarın ve 10 dakika için havayla kurumaya pelet sağlar. </li><li> nükleaz içermeyen su 30 uL RNA çözülür. bu nedenle geliştirmek için 60 ° C sıcaklıkta 5 dakika boyunca inkübelubility. </li><li> 260 nm&#39;de (A260) ultraviyole (UV) spektroskopisi kullanılarak absorbans ölçülerek RNA miktarını belirler. RNA saflık değerlendirmek için, 280 nm (A280) absorbans ölçmek ve 1.6 üzerinde olmalıdır A260 / A280 oranı hesaplanır. </li></ol></li><li> RNA 2 ug cDNA Ters yazıya. <ol><li> buz üzerinde reaksiyon karışımı hazırlayın ve 0.2 ml tüpler aktarmak. </li><li> Kısaca içeriğini aşağı doğru döndürün ve hava kabarcıklarını yok etmek için tüpler santrifüj. </li><li> aşağıdaki şartlarda termal döngü tüpleri yükleyin ve ters transkripsiyon yerine 95 ° C de 5 dakika süre ile 37 ° C&#39;de 60 dak. çalışma tamamlandığında, 4 ° C&#39;de cDNA örnekleri tutmak. </li><li> Uzun süreli depolama için 30 ° C - Örnekleri saklayın. </li></ol></li><li> PSA ve sitoplazmik P aktin için gerçek zamanlı PCR analizi gerçekleştirmek. Beta aktin örnekleri normalize etmek için kullanılır. 96 oyuklu bir pla ters transkribe RNA 100 ng ile tahlil gerçekleştirmete. üç kez tüm örnekleri deneyi. aşağıdaki parametrelerle 40 döngü yapın: 2 dk 50 ° C, 95 ° C de 10 dakika da, denatürasyon için 95 ° C &#39;de 15 saniye ve 60 ° C&#39;de 1 dakika. Bir döngü eşik 35 (BT) de algılama en düşük sınırını ayarlayın; böylece, 35 ötesinde bir CT değeri ile herhangi bir örnek algılanamaz olarak kabul edilir. </li></ol> 3. MB49-PSA Hücre Hattı tümörigenikliğini bakımı Not: in vitro uzun süreli büyüme tümöre neden olması arasında bir kaybına yol açar. tümörigenisite korumak için, MB49-PSA hücre hattı 2 yılda en az bir kez fare ile pasajlanır edilir. <ol><li> Hücreler. <ol><li> Hasat katlanarak steril bir hücre kazıyıcı ile onları hafifçe kazıyarak hücreleri büyüyor. Hücre süspansiyonu ve% 0.4 tripan mavisi çözeltisi eşit hacimlerde karıştırın. Bir hemasitometre kullanarak canlı hücre sayımı. Hücrelerin% 20&#39;den fazla ölü olup olmadığını implante etmeyin. </li><li> (1 x 10 gerekli canlı hücre miktarını hesaplayın7 hücre / ml) ve 15 ml bir santrifüj tüpüne transfer edin. 4 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 250 x g&#39;de santrifüj ve süpernatant atılır. DMEM boş medya hücre pelletini yeniden askıya. implantasyon öncesi FBS tüm izlerini silmek için yıkama üç kez tekrarlayın. </li><li> Fareler implantasyon için hazır olana kadar buz üzerinde hücre süspansiyonu tutun. </li></ol></li><li> subkutan dorsal kanadında farelerde tümör hücrelerini implant. <ol><li> Vücut ağırlığı 10 g başına 0.1 mL periton içine enjekte edilen bir anestezik ketamin karışımını medetomidini (75 mg / kg ve 1 mg / kg, sırası ile) ile 4 ila 6 haftalık C57BL6 / J fareleri, anestezisi. </li><li> Cildi ortaya çıkarmak için sağ kanadına tıraş. </li><li> Forseps bir çift kullanarak, subkutan 24 G iğne ile altta yatan kas ayırın ve hücre süspansiyonu (1 x 10 6 hücre) 0.1 mL enjekte cilt kaldırın. iğne çıkartılırken, tümör hücreleri yapmak, böylece 5 ila 10 saniye boyunca enjeksiyon bölgesini tutamenjeksiyon yerinde dışarı sızmasını. </li><li> Vücut ağırlığı 10 g 0.1 mL atipamezol (1 mg / kg) deri altından enjeksiyonu ile fare canlandırmak. </li></ol></li><li> kaliperler kullanarak tümör çapının ölçülmesiyle her iki günde bir tümör büyümesini izleyin. Tümör hacmi, &quot;a&quot; mm, hem en büyük boyutu ve &quot;B&quot; dik genişliği olduğu formül V = (AB 2) / 2, kullanılarak hesaplanır. </li><li> Tümör hacmi en az 50 mm 3 (yaklaşık 7 gün) olduğunda, CO 2 ile fare euthanize. DMEM bir aseptik koşullarda steril forseps ve makas çifti ve yeri ile tümör kitlesi tüketim. </li><li> 6-çukurlu bir kültür plakasına steril neşter kullanılarak küçük parçalar halinde tümör kıyma. ayrıca tümörü parçalara ayırma için &quot;havan&quot; olarak 1 ml şırınga pistonu kullanın. </li><li> Tam DMEM 3 ml ilave edilir ve muhafaza hücreleri bir kuluçka makinesi içinde 37 ° C&#39;de ve% 5 CO2. </li><li> Hücreler plat uymak keze (bir iki gün arasında), steril bir Pasteur pipeti ile yavaşça aspire ortamı, enkaz ve yapışmayan hücreler çıkarıldı. DMEM ile iki kez yıkanır. Hücreleri rahatsız özen gösterin. </li><li> DMEM 1 ml ekleyin ve bir hücre kazıyıcı ile onları kazıma hücreleri hasat. 96 oyuklu bir kültür plakasına oyuk başına bir hemasitometre ve plaka 1 hücre kullanarak hücreleri sayın seçmek ve tek koloniler genişletmek için. Kültür, 37 ° C&#39;de 200 ug / ml Higromisin B DMEM hücre ve% 5 CO2. </li><li> ortamı değiştirmek ve her 4 antibiyotik - 5 gün. Onlar yaklaşık% 80-90 konfluent olana kadar hücreleri izleyin. Yeniden plaka pipetleme ile 24 oyuklu kültür plakası üzerine hücreler, hücreleri çıkarmak için. </li><li> 24 oyuklu bir kültür plakasına hücreler konfluent olduğunda, bir hücre kazıyıcı ile ovalama ile onları çıkarmak ve 6 oyuklu bir kültür plakasına bunları plaka. </li><li> PSA salgılanması için farklı klonları taramak, adım 1&#39;de açıklandığı gibi yüksek PSA ile gizli klonu Cryo-korumakiyon ve gelecekteki fare deneyleri için kullanabilirsiniz. </li></ol> 4. Tümör implante NOT: Her fare mesane 50 uL DMEM boş medya 1 x 10 5 MB49-PSA hücreleri ile implante edilir. Nedeniyle kateter ölü boşluğa, her zaman ekstra hacim (fare başına ilave en az 100 ul) hazırlamak. Alternatif bir yaklaşım, Kasman ve arkadaşları tarafından tarif edildiği gibi bir hava dolu şırınga kullanmak olacaktır. 5 yerine şırınga daha. <ol><li> Hücreler. <ol><li> Hücreler, yaklaşık% 80 konfluent geçit tam DMEM ortamında MB49-PSA, tümör hücreleri Bir gün implantasyondan önce, (% 10 FBS, 2 mmol / L L-glutamin, 0.05 mg ile takviye / ml Penisilin-Streptomisin ve 200 1 &#39;lik bir ayırma oranı ile 37 ° C&#39; de ug / ml Higromisin B) ve% 5 CO2: 2&#39;dir. </li><li> Prosedürün gününde, steril bir hücre kazıyıcı ile onları hafifçe kazıyarak hücreler hasat. Hücre süspansiyonu, eşit hacimleri birleştirilir ve% 0.4 tripan mavi çözelti. Bir hemasitometre kullanarak canlı hücre sayımı. Hücrelerin% 20&#39;den fazla ölü olup olmadığını implante etmeyin. </li><li> (2 x 10 6 hücre / ml) gerekli olan canlı hücre miktarını hesaplayın ve bir 15 mL santrifüj tüpüne transfer edin. 4 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 250 x g&#39;de santrifüj ve süpernatant atılır. DMEM boş medya hücre pelletini yeniden askıya. implantasyon öncesi FBS tüm izlerini silmek için yıkama üç kez tekrarlayın. </li><li> Fareler implantasyon için hazır olana kadar buz üzerinde hücre süspansiyonu tutun. </li></ol></li><li> 4- ila 6-haftalık dişi C57BL / 6J fareleri işlem öncesi bir hafta süreyle ortama alışmaları için izin verin. Tüm hayvan çalışmaları steril koşulları sağlamak için bir biyolojik güvenlik kabini yapılmalıdır. <ol><li> Her bir fare tartın ve vücut ağırlığı 10 g başına 0.1 mL intraperitoneal anestezi (75 mg / kg ketamin ve 1 mg / kg medetomidini) enjekte edilir. Canlı ağırlıkları 17 ve 22 g arasında olmalıdır. Hiçbir RESPO gözlemleyerek anesthetization onaylayınnse bir ayak tutam sonra. </li><li> tanımlama, bir kulak yumruk kullanarak kulak işaretleyin. </li><li> Hidrasyon için 2 saat - vücut ağırlığı 10 g, her 1 için 0.1 mL periton içine Hartmann&#39;ın çözeltisi ya da bileşik, sodyum laktat enjekte edilir. </li><li> Yanıp sönen refleks anestezi altında kayıp ve gözleri kurumasına olduğundan, steril pamuk ampul kullanarak her iki göze steril oftalmik merhem sürün. gerektiğinde yeniden uygulayın. </li><li> vücut ısısını korumak için (havayla temas ile aktive) bir ısı paketi üzerinde kağıt havlu üzerine yatar pozisyonda fareler yatırın ve aşağı arka ayakları bantlayın. </li></ol></li><li> bir parmak ile, alt karın bölgesinde hafif bir basınç uygulanır ve 1.5 mL mikrosantrifüj tüpe mesaneden idrarı toplamak. Bu örnek idrar PSA bazal değer olarak hizmet vermektedir. </li><li> 1 ml şırınganın içine steril poli-L-lizin (PLL) çekiniz ve çıkarılmış iğne stile ile, 24 ayar IV kateter takın. kateter ve ins ucuna kadar yağ sürünkateterizasyonu rehberlik forseps kullanarak mesane içine üretra yoluyla kateteri ert. direnç hissedilir zaman durdurun. NOT: Araştırmacılar uygulanan intravezikal için anestezik ve işlem sonrası analjezik kullanımı ile yağlama jel kullanımı için ihtiyacı konusunda kendi veteriner kadrosu ile tartışmak gerekir. </li><li> Veziko-üreteral geri akış 18 önlemek için, 10 ul her 20 saniyede bir oranda yavaş yavaş PLL 50 uL aşılamak. dışarı akışını önlemek için bir tıpa ile 20 dakika için idrar torbasında kateter bırakın. </li><li> 20 dakika sonra, kateter kaldırmak ve nazikçe alt karın bölgesinde basarak herhangi bir içeriğin mesaneyi boşaltmak. Boş 1 ml şırınga kullanarak, kateter dışarı kalan içeriğini yıkayın. </li><li> pipetle iyice MB49-PSA hücreleri karıştırın ve 1 ml şırınga içine çekin. kateter takın ve kayganlaştırıcı uygulayın. 10 uL her 20 saniyede bir düşük hızda 1 x 10 5 hücre 50 uL aşılamak. tıpa DeğiştirKateter. Kontrol farelere tuzlu 50 uL verin. </li><li> 1 saat sonra, sonda ve bir içerik mesane boşaltmak. arka ayakları üzerinde bandını çıkarın ve ventral tarafta fareler yerleştirin. Vücut ağırlığı 10 g 0.1 mL ters ilaç (1 mg / kg atipamezol) enjekte deri altından fareler canlandırmak. </li><li> motilite görülmektedir kadar fareler izleyin. kafeslerine fareler dönün. </li><li> Tümör tespiti protokolü (Bölüm 5, 7 ya da 8), CO2 kullanılarak fareler euthanize tamamlanmasından sonra. Post-mortem tümör tespiti 6. bölümde tarif edilmektedir. </li></ol> ELISA ile 5. İzleme Tümör Büyüme NOT: Tümör varlığı ve büyüme idrar PSA salgısını ölçülerek farelerde izlenir. Araştırmacılar hayvan sağlığı ve refahı sonrası tümör implantasyonu ve insancıl uç noktaları izleme kendi veteriner kadrosu ile danışmalısınız. <ol><li> farelerin idrar toplamak için iki yöntem vardır. <ol><li> dışkı malzemeden idrar ayırmak için tasarlanmış bireysel metabolik kafeste tek bir fare koyarak idrar gecede toplayın. ayar soğutma sahip değilse, bir gece boyunca PSA bozulmasını önlemek için, idrar toplama tüpüne bir proteaz inhibitörü (100 uL) ilave edilir. Bununla birlikte mevcut metabolik kafesler sayısı idrar toplama bu yöntemin kullanımını sınırlar. </li><li> o (örneğin ABSL2 odalarında gibi) metabolik kafesleri kullanmak için lojistik imkansız olduğu durumlarda, aşama 4.2.1 anlatıldığı gibi fareler anestezi ise alt karın bölgesinde nazik baskı için parmağını kullanarak nokta idrar toplamak. Terapi telkin önce bu genellikle yapılır. Bizim deneyim, idrar en az 150 ul anestezi sonrası 1 saat alınabilir. </li></ol></li><li> Hemen buz üzerine toplanan idrar yerleştirin. Hematüri tümör implantasyonu sonrası ikinci haftasından itibaren görülebilir. Son derece hemolize numuneler ELISA analizini etkileyebilir. Bu nedenle, idrarbuz üzerine yerleştirilmiş ve toplandıktan sonra hızlı bir şekilde işlenmesi gerekir. </li><li> hücreler veya artıkları çıkarmak için 4 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 6,700 x g&#39;de idrar tüpleri santrifüjleyin. </li><li> Yeni tüpler içine idrar idrar fareler arasındaki çıktı, kısım farkı normalleştirmek ve bir deney seti 7 kullanarak bir ELISA kiti 7 kullanarak PSA ve kreatinin analizler gerçekleştirerek kadar -30 ° C&#39;de bunları saklamak için. farenin PSA üretmeyen da, ELISA kullanılarak saptandı spesifik olmayan bağlanma düşük seviyelerde mevcuttur. Numune pozitif kabul edilebilir olması için, bir eşik, normal farelere + 3 standart sapma (SD) 15 daha yüksek değerlerde ayarlanmalıdır. </li></ol> Gerçek zamanlı PCR ile 6. algılama Tümör Varlığı <ol><li> bitiminde, fare karın boşluğuna incelemek ve mesane bulun. mesane tüketim ve cryovial içine yerleştirin. sıvı nitrojen içinde hemen dondurun. </li><li> bir RNA extr dokuların homojenize RNA ekstrakteaksiyon reajanı. </li><li> Bölüm 2&#39;de tarif edildiği gibi, PSA ters transkripsiyon ve gerçek zamanlı PCR analizi gerçekleştirmek. </li></ol> Floresans Görüntüleme 7. İzleme Tümör Büyüme <ol><li> Yakın-kızılötesi floresan boya 19 1 x 10 7 MB49-PSA hücreleri etiketleyin. </li><li> Hücreler 20 flow sitometri canlılığı ve floresan korumak if-Re plaka ve gün 4, 7, 11, 14, 18 etiketli hücreleri hasat ve 21 kontrol etmek için. </li><li> bölümünde 4 yukarıda tarif edildiği gibi, farenin mesane etiketli MB49-PSA hücreleri implante. </li><li> her iki günde bir floresan görüntüleme sistemi kullanılarak tümör büyümesini izleyin. </li><li> görüntüleme günde, ağır ve vücut ağırlığı 10 g başına 0.1 mL periton içine enjekte edilen bir anestezik ketamin karışımını medetomidini (75 mg / kg ve 1 mg / kg, sırası ile) kullanılarak fareler anestezi. </li><li> Cildi ortaya çıkarmak için karın bölgesini tıraş. </li><li> görüntüleme odasında fareler yerleştirin ve kazanmakgörüntüleme sistemi ile sağlanan yazılımı kullanarak mesanelerin görüntüler. </li><li> Vücut ağırlığı 10 g başına 0.1 mL bir ters ilaç (1 mg / kg atipamezol) enjekte deri altından fareler canlandırmak. </li></ol> Yüksek frekanslı ultrason Görüntüleme 8. İzleme Tümör Büyüme <ol><li> bölümünde 4 yukarıda tarif edildiği gibi farelerde implant tümörler. </li><li> Her iki gün, ultrason görüntüleme kullanılarak tümör büyümesini izlemek. </li><li> görüntüleme günde, ağır ve vücut ağırlığı 10 g başına 0.1 mL periton içine enjekte edilen bir anestezik ketamin karışımını medetomidini (75 mg / kg ve 1 mg / kg, sırası ile) kullanılarak fareler anestezi. </li><li> Cildi ortaya çıkarmak için karın bölgesini tıraş. </li><li> 24 ayar IV kateter kullanılarak mesane içine steril% 0,9 tuz 100 uL aşılamak. tuzlu mesaneyi gerilmek ve ultrason görüntüleme sırasında görünürlüğünü artırmak olacaktır. </li><li> ultrason platformu üzerinde fare yerleştirin ve l iletken jel uygulayınower karın. </li><li> Cilde el probu indirin ve görüntüleme platformu 21 mesanenin B-mod görüntü kazanır. </li><li> Vücut ağırlığı 10 g başına 0.1 mL miktarında deri altından enjekte ters ilaç (1 mg / kg atipamezol) fareler canlandırmak. </li></ol>

<ol>
	<li>Gunther, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimizing+syngeneic+orthotopic+murine+bladder+cancer+(MB49).">Optimizing syngeneic orthotopic murine bladder cancer (MB49).</a> Cancer Res. 59, 2834-2837 (1999).</li><li>Dobek, G. L., Godbey, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+orthotopic+model+of+murine+bladder+cancer.">An orthotopic model of murine bladder cancer.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , (2011).</li><li>Chade, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Histopathological+characterization+of+a+syngeneic+orthotopic+murine+bladder+cancer+model.">Histopathological characterization of a syngeneic orthotopic murine bladder cancer model.</a> Int Braz J Urol. 34, 220-226 (2008).</li><li>Chan, E. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimizing+orthotopic+bladder+tumor+implantation+in+a+syngeneic+mouse+model.">Optimizing orthotopic bladder tumor implantation in a syngeneic mouse model.</a> J Urol. 182, 2926-2931 (2009).</li><li>Kasman, L., Voelkel-Johnson, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+orthotopic+bladder+cancer+model+for+gene+delivery+studies.">An orthotopic bladder cancer model for gene delivery studies.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , e50181 (2013).</li><li>Ninalga, C., Loskog, A., Klevenfeldt, M., Essand, M., Totterman, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CpG+oligonucleotide+therapy+cures+subcutaneous+and+orthotopic+tumors+and+evokes+protective+immunity+in+murine+bladder+cancer.">CpG oligonucleotide therapy cures subcutaneous and orthotopic tumors and evokes protective immunity in murine bladder cancer.</a> J Immunother. 28, 20-27 (2005).</li><li>Tham, S. M., Ng, K. H., Pook, S. H., Esuvaranathan, K., Mahendran, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tumor+and+Microenvironment+Modification+during+Progression+of+Murine+Orthotopic+Bladder+Cancer.">Tumor and Microenvironment Modification during Progression of Murine Orthotopic Bladder Cancer.</a> Clin Dev Immunol. , 865684 (2011).</li><li>Chin, J., Kadhim, S., Garcia, B., Kim, Y. S., Karlik, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Magnetic+resonance+imaging+for+detecting+and+treatment+monitoring+of+orthotopic+murine+bladder+tumor+implants.">Magnetic resonance imaging for detecting and treatment monitoring of orthotopic murine bladder tumor implants.</a> J Urol. 145, 1297-1301 (1991).</li><li>Kikuchi, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Detection+and+quantitative+analysis+of+early+stage+orthotopic+murine+bladder+tumor+using+in+vivo+magnetic+resonance+imaging.">Detection and quantitative analysis of early stage orthotopic murine bladder tumor using in vivo magnetic resonance imaging.</a> J Urol. 170, 1375-1378 (2003).</li><li>Sweeney, S. K., Luo, Y., O'Donnell, M. A., Assouline, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nanotechnology+and+cancer:+improving+real-time+monitoring+and+staging+of+bladder+cancer+with+multimodal+mesoporous+silica+nanoparticles.">Nanotechnology and cancer: improving real-time monitoring and staging of bladder cancer with multimodal mesoporous silica nanoparticles.</a> Cancer nanotechnology. 7, 3 (2016).</li><li>Tanaka, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Noninvasive+detection+of+bladder+cancer+in+an+orthotopic+murine+model+with+green+fluorescence+protein+cytology.">Noninvasive detection of bladder cancer in an orthotopic murine model with green fluorescence protein cytology.</a> J Urol. 170, 975-978 (2003).</li><li>Jurczok, A., Fornara, P., Soling, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bioluminescence+imaging+to+monitor+bladder+cancer+cell+adhesion+in+vivo:+a+new+approach+to+optimize+a+syngeneic,+orthotopic,+murine+bladder+cancer+model.">Bioluminescence imaging to monitor bladder cancer cell adhesion in vivo: a new approach to optimize a syngeneic, orthotopic, murine bladder cancer model.</a> BJU Int. 101, 120-124 (2008).</li><li>Newton, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anti-interleukin-10R1+monoclonal+antibody+in+combination+with+bacillus+Calmette--Guerin+is+protective+against+bladder+cancer+metastasis+in+a+murine+orthotopic+tumour+model+and+demonstrates+systemic+specific+anti-tumour+immunity.">Anti-interleukin-10R1 monoclonal antibody in combination with bacillus Calmette--Guerin is protective against bladder cancer metastasis in a murine orthotopic tumour model and demonstrates systemic specific anti-tumour immunity.</a> Clin Exp Immunol. 177, 261-268 (2014).</li><li>Patel, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transabdominal+micro-ultrasound+imaging+of+bladder+cancer+in+a+mouse+model:+a+validation+study.">Transabdominal micro-ultrasound imaging of bladder cancer in a mouse model: a validation study.</a> Urology. 75, 799-804 (2010).</li><li>Wu, Q., Esuvaranathan, K., Mahendran, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monitoring+the+response+of+orthotopic+bladder+tumors+to+granulocyte+macrophage+colony-stimulating+factor+therapy+using+the+prostate-specific+antigen+gene+as+a+reporter.">Monitoring the response of orthotopic bladder tumors to granulocyte macrophage colony-stimulating factor therapy using the prostate-specific antigen gene as a reporter.</a> Clin Cancer Res. 10, 6977-6984 (2004).</li><li>Luo, Y., Chen, X., O'Donnell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+prostate+specific+antigen+to+measure+bladder+tumor+growth+in+a+mouse+orthotopic+model.">Use of prostate specific antigen to measure bladder tumor growth in a mouse orthotopic model.</a> J Urol. 172, 2414-2420 (2004).</li><li>Coralli, C., Cemazar, M., Kanthou, C., Tozer, G. M., Dachs, G. U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Limitations+of+the+reporter+green+fluorescent+protein+under+simulated+tumor+conditions.">Limitations of the reporter green fluorescent protein under simulated tumor conditions.</a> Cancer Res. 61, 4784-4790 (2001).</li><li>Biot, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preexisting+BCG-specific+T+cells+improve+intravesical+immunotherapy+for+bladder+cancer.">Preexisting BCG-specific T cells improve intravesical immunotherapy for bladder cancer.</a> Sci Transl Med. 4 (137), 137ra172 (2012).</li><li>Swirski, F. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+near-infrared+cell+tracker+reagent+for+multiscopic+in+vivo+imaging+and+quantification+of+leukocyte+immune+responses.">A near-infrared cell tracker reagent for multiscopic in vivo imaging and quantification of leukocyte immune responses.</a> PLoS One. 2, 1075 (2007).</li><li>Jozwicki, W., Brozyna, A. A., Siekiera, J., Slominski, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Frequency+of+CD4+CD25+Foxp3++cells+in+peripheral+blood+in+relation+to+urinary+bladder+cancer+malignancy+indicators+before+and+after+surgical+removal.">Frequency of CD4+CD25+Foxp3+ cells in peripheral blood in relation to urinary bladder cancer malignancy indicators before and after surgical removal.</a> Oncotarget. , (2016).</li><li>Walk, E. L., McLaughlin, S. L., Weed, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-frequency+Ultrasound+Imaging+of+Mouse+Cervical+Lymph+Nodes.">High-frequency Ultrasound Imaging of Mouse Cervical Lymph Nodes.</a> J Vis Exp. , e52718 (2015).</li><li>Rooks, V., Beecken, W. D., Iordanescu, I., Taylor, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sonographic+evaluation+of+orthotopic+bladder+tumors+in+mice+treated+with+TNP-470,+an+angiogenic+inhibitor.">Sonographic evaluation of orthotopic bladder tumors in mice treated with TNP-470, an angiogenic inhibitor.</a> Academic radiology. 8, 121-127 (2001).</li><li>Folin, O., Morris, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+the+determination+of+creatinine+and+creatine+in+urine.">On the determination of creatinine and creatine in urine.</a> JBC. 17, 469-473 (1914).</li><li>Dykman, L. A., Bogatyrev, V. A., Khlebtsov, B. N., Khlebtsov, N. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+protein+assay+based+on+colloidal+gold+conjugates+with+trypsin.">A protein assay based on colloidal gold conjugates with trypsin.</a> Anal Biochem. 341, 16-21 (2005).</li><li>Shi, H. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Joint+enhancement+strategy+applied+in+ECL+biosensor+based+on+closed+bipolar+electrodes+for+the+detection+of+PSA.">Joint enhancement strategy applied in ECL biosensor based on closed bipolar electrodes for the detection of PSA.</a> Talanta. 154, 169-174 (2016).</li><li>Ma, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrochemiluminescent+immunosensing+of+prostate-specific+antigen+based+on+silver+nanoparticles-doped+Pb+(II)+metal-organic+framework.">Electrochemiluminescent immunosensing of prostate-specific antigen based on silver nanoparticles-doped Pb (II) metal-organic framework.</a> Biosensors &amp; bioelectronics. 79, 379-385 (2016).</li><li>Kavosi, B., Salimi, A., Hallaj, R., Moradi, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrasensitive+electrochemical+immunosensor+for+PSA+biomarker+detection+in+prostate+cancer+cells+using+gold+nanoparticles/PAMAM+dendrimer+loaded+with+enzyme+linked+aptamer+as+integrated+triple+signal+amplification+strategy.">Ultrasensitive electrochemical immunosensor for PSA biomarker detection in prostate cancer cells using gold nanoparticles/PAMAM dendrimer loaded with enzyme linked aptamer as integrated triple signal amplification strategy.</a> Biosensors &amp; bioelectronics. 74, 915-923 (2015).</li><li>Lu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cross-species+comparison+of+orthologous+gene+expression+in+human+bladder+cancer+and+carcinogen-induced+rodent+models.">Cross-species comparison of orthologous gene expression in human bladder cancer and carcinogen-induced rodent models.</a> Am J Transl Res. 3, 8-27 (2010).</li><li>Gong, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+of+a+Novel+Bladder+Cancer+Xenograft+Model+in+Humanized+Immunodeficient+Mice.">Establishment of a Novel Bladder Cancer Xenograft Model in Humanized Immunodeficient Mice.</a> Cellular physiology and biochemistry : international journal of experimental cellular physiology, biochemistry, and pharmacology. 37, 1355-1368 (2015).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Protokolde en kritik adımlar 1) başarıyla hücre hattı tümörigenikliğini bakımını yapmak; 2) farelerde, tümör hücresi implantasyonundan önce ölçülebilir PSA salgısını sağlanması; Tümör büyüklüğünün değişik azaltacak şekilde 3), implantasyon için tek bir hücre süspansiyonu üretilmesi; ve 4) böbrekte tümör hücre implantasyonu ile sonuçlanır veziko-üreteral reflü önlemek için yavaş bir hızda hücrelere aşılamak. In vitro olarak uzun süreli bir geçişten sonra, MB49 / MB49-PSA hücreleri farelerde tümörler elde etmek yetersizlik ile gösterildiği gibi, tümör gelişimini kaybedebilir. Fareler tedaviden sonra tedavi edilir olsun veya olmasın bu bir karıştırıcı faktör olabilir. Tümörlerin yokluğunda, hücre hattı, tümörlerin oluşturmak için mümkün olduğu için bütün bağlı herhangi bir tümörü olan bir immünojenik tümör ya da farelerde kendiliğinden tedavi farelerden tedavi ile tedavi fareler ayırt etmek mümkün değildir. Bu karşı bir yolu yeniden geçişine farelerde hücrelerin SU üreterek olduğunub- deri tümörleri. Bu yeniden pasajlama çok sık yapılırsa, aşırı agresif tümörler oluşturulur. Ince bir denge hücreler yeniden geçişli olması gerekir belirlemek için gereklidir. Genel olarak, deneyler önemli bir dizi önce hücre hattı canlanır ve deri altından tümör oluşturmak üzere yeteneğini doğrulamak için farelere implante. tümörler spontan bir tedavi yoktur sağlamak için birkaç hafta süre ile izlenir. kendiliğinden tedaviler gözlenir Ancak, aşama 3&#39;te sonra protokol yapılmalıdır. hücreleri, tümör implantasyonu için kullanılmadan önce Benzer şekilde, PSA üretmek için MB49-PSA hücrelerinin yeteneği her zaman tespit edilmelidir. İdrar PSA MB49-PSA hücreleri kullanılarak oluşturulan mesane tümörlerinin büyümesini izlemek için de kullanılabilir. Ancak, &quot;normal&quot; bir olumsuz ya da idrar PSA değeri mutlaka tümör hücrelerinin yokluğu anlamına gelmez, ama en az 1 x 10 5 hücre mevcut sadece olduğunu. üriner PSA 4. günde yaklaşık belirlenir zamandaGün 7, normal bir farenin + 3 SD değerine göre tümör sahip gibi görünmektedir fareler deney çıkarılabilir. Bu farelerin bazıları daha sonraki bir tarihte bir tümör gelişebilir. Hiçbir tümörlü farelerin Çıkarma tümörler herhangi bir tedavi başlamadan önce boyutu çok benzer olmasını sağlar. Bu tedaviye tepki olarak tümör büyüklüğü nedeniyle varyasyonu azaltır. Tümör boyutu değişim önemli bir nedeni implantasyon öncesi hücrelerin topaklanma, bu nedenle çaba implantasyon öncesi yeniden askıya hücreleri yapılmalıdır. farelerin az sayıda kullanıldığında Ancak, tümörler gün 4 ile ölçülebilir olmasa bile, çalışmadaki tüm fareler tutmak için gerekli olabilir - Günün 11 PSA izleyerek 7., hala bu sınıflandırmak mümkün olabilir küçük tümörleri sahip olan ve son-nokta analizi (- 11. günde karşılık 7 gün 4 ölçülebilir üriner PSA&#39;nın mevcudiyetinde göre) başlangıç tümör boyutu ile ilgili olarak yapılabilir fareler. tümörleri ölçmek mümkün olmanın avantajıFarklı PSA değerleri tüm fareler dahil edilebilir, ve tedaviye yanıt özgün tümör boyutu ile ilgili PSA / kreatinin değerlerine göre belirlenebilir olmasıdır. endişe bir başka nokta veziko-üreteral reflü olduğunu. Bu böbreklerde tümör gelişiminde sebep olabilir. 50 uL 100 uL dan telkin edilecek hacmini azaltmak ve damlatma yapmadan yavaşça bu oluşma olasılığını azaltır. İdrar bazlı deneylerde ile bağlantılı bir problem, ortotopik tümörleri mesanede büyüdükçe gözlenen az idrar koleksiyonudur. idrar kolayca implantasyon sonrası ilk birkaç hafta boyunca farelerin alınabilir olurken zamanla, PSA ve kreatinin ölçümleri için yeterli olmayabilir toplanan idrar hacmi. gerekli idrar minimum hacim 110 ul, ama daha iyidir. Bu nedenle PSA okuma sonraki zaman noktalarında tüm fareler için uygun olmayabilir. Ayrıca, idrarda kırmızı kan hücrelerinin lizisi yanlış verirPSA ELISA yüksek okuma. Olmayan bir idrar bazlı analiz bu sorunun üstesinden gelebilir. floresan görüntüleme kullanımı basit olmasına rağmen ne yazık ki, biz fare yemi yanı sıra kırmızı floresan olduğunu buldu. Bu mesane kolaylıkla görülebilir edemediği karşı yüksek bir arka plan verdi. Sweeney ve arkadaşları tarafından tarif edildiği gibi, bir yeşil fluoresan boya ya da protein kullanılarak, bu sorunun üstesinden mümkündür. 10 floresans ve ultrason hem de, fareler ventral yüzeyi üzerinde traş edilmesi gerekir. Ultrason görüntüleri tümörler yerini PSA gen ifadesi olarak iyi olduğu görülmektedir. Bununla birlikte, ultrason görüntüleme dezavantajı, mesane, üstün tümör görselleştirme için görüntüleme sırasında gerilecektir olmasıdır. mesane tümörü büyük olduğunda görüntüler net olmakla birlikte, tümörlerin yokluğu farelerde küçük tümörleri ayırt etmek zordur. Ultrason çapı 22 yaklaşık 1.5 mm tümörleri tespit ama 4. günde olabilir bildirilmiştirimplantasyon sonrası, tümörler bu daha küçüktür. Böylece, bu yöntem gününde tümörlerin tespiti için iyi olmayabilir 4. Tablo 1, 3 farklı tümör izleme sistemleri karşılaştırır; PSA ELISA kullanmak en basit ve tüm hayvan tesislerinde mevcut olmayabilir küçük hayvan görüntüleme sistemleri, gerektirmez. PSA gen ifadesinin gerçek zamanlı PCR analizi artan hassasiyeti nedeniyle, deney sonlandırıldı Fareler tedavi olup olmadığını teyit etmek için immünohistokimya yerine kullanılabilir. İmmünohistokimya ile 0.2 arasında, bir tümör - 0.3 mm implantasyondan 15 gün sonra 4 ile fark edilebilir. Bununla birlikte, bu, tümör implantasyonu izlemek için kullanılamaz bir son nokta analizi yöntemidir. Bu çalışmada, MR değerlendirilmez, fakat, implantasyon 8 gün sonra 10 tümörlerin varlığını tespit edebilmek için rapor edilmiştir. Yeşil floresan proteininin (GFP), bu i ifade hücreleri değiştirerekfesih tümör implantasyonu ve gerçek zamanlı PCR analizi, farklı tedavi grupları arasında tümör implantasyonu ve terapötik etkinlik onay sağlar algılamak için günde 7 erken idrar PSA birleşimi tümör implantasyonu onaylamak mümkün. Protokolde bir dezavantajı, bu hücrelerin sayısı en az 10 5 hücre olduğu zaman ELISA deneyi tümörleri onaylayamıyor esas olmasıdır. Böylece daha hassas analizler, PSA tespiti için gerekli süreyi azaltmak için daha hızlı tahliller hem de geliştirilmesi gerekmektedir. ELISA gerçekleştirmek için birkaç saat sürer. Jaffe yöntemi 23 dayanan ve büyük ölçüde tümör büyümesinin izlenmesini kolaylaştıracaktır gerçekleştirmek için yaklaşık 5 dakika sürer kreatinin tahlil gibi hızlı bir yöntem. Bu amaçla, PSA aktivitesi tespit etmek için, bir enzim-bazlı yöntem değerlendirildi, ancak başarılı değildi. kolloidal altın ve nanopartikül bazlı analiz sistemlerinin kullanılması deney A gerçekleştirmek için harcanan zamanı azaltabileceknd duyarlılığı 24 arttırır. Bu bağlamda, elektrod göre sensör ve nano-tanecikleri kullanılarak elektrokimyasal göre sensör insan PSA 25-27 analiz etmek için geliştirilmiş ve ekonomik bir hayvan modeli için geçerli olabilir uygun ise. Deney sistemi aynı zamanda deney yerine doku oksijenleşmesi bağlıdır in vivo görüntüleme bağlı olarak daha in vitro en uygun koşullar altında gerçekleştirilir GFP veya lusiferaz gibi farklı bir protein salgılama sistemi kullanılarak geliştirilebilir. Farelerde kimyasal karsinojenleri mutasyonlar 28 açısından insan kanserleri olan benzerlikle tümörlerin oluşturur olsa da, deney maliyetini arttırır farelerin daha fazla sayıda gerektiren uzun sürer ve hayvanlar arasındaki boyut olarak karşılaştırılabilir değildir. değerlendirilecek insan proteinleri tanıyan maddeler hedeflerken, insan ksenogratflardır çıplak veya Ağır kombine immün yetmezlik deri altından implante(SCID) farelere tek seçenektir. Bu modeller antikor tanıma kavramının kanıtı olsa da, sağlam bir bağışıklık sistemi eksikliği immün aktivasyon değerlendirilmesini engellemektedir. İnsan zenograftlarını 29 kullanılarak mesane kanseri için insancıllaştırılmış bir fare modeli son gelişme, bazı bağışıklık anlayış sağlamak, ama hücreler implante olarak deri altına aslında insan hastalık ortamı özetlemek değil. Bağışıklık eksikliği olan farelerde ortotopik tümörleri üretmek teknik olarak zordur. klinik durum ve konak immün hücrelerin etkisini değerlendirmek için yeteneği modelleme tedaviye kontrollü pozlama sağlayan doğru doku konum sağlar, böylece onun sınırlamalara rağmen singeneik ortotopik modeli hala mesane kanseri için değerlendirilmesi ve tedavinin geliştirilmesi için iyi bir modeldir kanser tedavisi sırasında. Tüm bunlar, hızlı tümör farelerde gelişimi ve maliyet-etkin bir modelinde tümör büyüme sonuçlarını izlemek yeteneği ile birlikte.

Bu yöntemin amacı, fare ortotopik mesane tümörleri üretmek ve tümör implantasyonu olmadan fareler uç noktası analizinde tedavi sanılan değildir bu yüzden, mümkün olduğu kadar doğru implante tümörleri izlemektir. Genel olarak, yöntem deneysel analiz için farelerin çok sayıda ihtiyacını azaltmak ve tedavi sonuçlarını belirlemede büyük doğruluğunu sağlayacaktır gösterilen. implante tümör hücreleri deri altına klinik hastalığın çevreyi özetlemek veya tedavi stratejilerinin geliştirilmesini sağlamak değil gibi kanser için ortotopik bir model geliştirilmesi önemlidir. Mesanenin mimarisi doğrudan minimal sistemik etkileri ile mesane içine mesane kanseri tedavilerinin damlatma izin verir. Bu durumda, bu ortotopik bir model olarak, bu ortam özetlemek hayvan modelleri, yeni tedavilerin değerlendirilmesi için önemlidir. herhangi bir deneysel set-up çıkarılan sonuçlar bağımlı hazırlık vardırModelin sınırlamalar üzerine t. Çeşitli teknikler farelerde ortotopik mesane tümörlerinin üretimi için geliştirilmiştir. Bunlar, mesanenin glikozaminoglikan tabakası zarar implante edilecek tümör hücrelerinin sağlayan güveniyor. Kullanılan teknikler mesane 1,2 tek bir sitede tümör gelişimine yol açan, mesane duvarı hasar tek bir noktada sonuçlanır elektrokotere içerir. Bununla birlikte, elektrokoter kullanılarak tümör implantasyonu başarı oranı operatöre bağlıdır 10 arasında değişen bir -% 90, ve periton boşluğu içinde gelişen tümörlerin neden mesane duvarı delinmiş olan tehlikesini içerir. Kimyasal koter gümüş nitrat, zarar mesane duvarı 3 kullanılarak gerçekleştirilir. Benzer şekilde, asit, mesane duvarı 4 zarar kullanılmıştır. Tripsin da iyi 5 ile mesane zarar kullanılmıştır. Bu yöntemler, mesane birden fazla tümör oluşmasına da neden olabilir.kimyasallar çok uzun süre mesane duvarı ile temas halinde bırakılırsa Ayrıca, mesane ciddi hasar tehlikesi vardır. Ninalga ve arkadaşları tarafından geliştirilen bir yöntem. pozitif yüklü poli-L-lisin (PLL), kat mesane duvarı 6 molekülleri kullanır; Bu mesane glikozaminoglikan tabakası sadık negatif yüklü tümör hücreleri sağlar. Bu yöntem, genel olarak mesanede geliştirme birden fazla tümör ile sonuçlanır, ancak tümör implantasyonu 80 olan -% 100 4,7. Teknik olarak, bunu gerçekleştirmek için en kolay prosedür aynı zamanda. geliştirilmesi tümörler da boyutu oldukça emin olmak için, tümör hücreleri implantasyondan önce, büyük yığınlar halinde gruplanmaz önemlidir. terapötik etkinliğini değerlendirmek amacıyla, oldukça benzer boyutlu tümörleri olan fareler bu çalışma yapmak için uygundur. Böylece, implantasyon hemen sonra tümör boyutu ölçmek için iyi bir algılama sistemi çok önemlidir. Çeşitli stratejiler arıN tümörleri değerlendirmek için kullanılabilir. Bu manyetik rezonans görüntüleme (MRI), 8-10, floresan 11 biyoluminesans 12,13, ultrason 14 ve enzim bağlı immünosorbent deneyi (ELISA), 15,16 bulunmaktadır. MR ve ultrason tümör hücrelerinin değişiklik gerektirmeyen birlikte, MRI hassas ekipman ve kontrast maddeleri için bir ihtiyaç vardır. lüminesans, Floresan-, ELISA bazlı deneyler, bu yöntemler ile saptanabilir işaretleyici proteinleri ifade etmek için, tümör hücrelerinin değişiklik gerektirir. lüminesans, bir alt-tabaka lusiferaz aktivitesinin saptanması için gereklidir; Bu şekilde, ilave bir aşama ve artan maliyeti vardır. Hem parlaklık ve floresan özel ekipman gerektirir. floresan üretmek için moleküler oksijen ile katalize edilir, yeşil flüoresan proteini (GFP) siklizasyon, gereklidir. Böylece, GFP ifade bu oldukça güvenilmez işaretleyici yaparak, oksijen erişimi bağlı bir tümör kitlesi içinde değişken olabilir <sup&gt; 17. Bir belirteç Başka bir strateji olarak murin mesane kanseri hücre çizgisi MB49 modifikasyonu insan prostat spesifik antijen (PSA) 15,16 salgılamaya. Bu belirteçler, deneyin sonunda tümör varlığını teyit olanağına immünohistokimyasal alternatif yapma için alternatif yollar sağlar. Bu çalışma, ortotopik tümör implantasyonundan PLL metodu bildirir ve tümör algılama sistemleri, yani ELISA, floresan ve ultrason görüntüleme bir karşılaştırmasını göstermektedir.

<table><tbody><tr><td>MB49-PSA cells</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>ref (Wu QH, 2004)</td></tr><tr><td>RPMI 1640 media</td><td>HyClone</td><td>SH30027.01&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco&#039;s Modified Eagle&#039;s Medium (DMEM) media</td><td>Biowest</td><td>L0102</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum (FBS) South American</td><td>Biowest</td><td>S1810</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum (FBS) South American, Premium</td><td>Biowest</td><td>S181B</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum (FBS)</td><td>HyClone</td><td>SH30088.03&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>L-glutamine</td><td>Biowest</td><td>X0550</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin</td><td>Biowest</td><td>L0022</td><td></td></tr><tr><td>Hygromycin B</td><td>Invitrogen</td><td>10687-010</td><td></td></tr><tr><td>free PSA (Human) ELISA kit</td><td>Abnova</td><td>KA0209</td><td></td></tr><tr><td>TRIzol Reagent for RNA extraction&amp;nbsp;</td><td>Ambion</td><td>15596026</td><td></td></tr><tr><td>High Capacity cDNA Reverse Transcription Kit with RNase Inhibitor</td><td>Applied Biosystems</td><td>4374967</td><td></td></tr><tr><td>TaqMan Universal PCR Master Mix</td><td>Applied Biosystems</td><td>4304437</td><td></td></tr><tr><td>TaqMan Gene Expression Assay &amp;ndash; Mouse Actb</td><td>Applied Biosystems</td><td>4331182</td><td>Mm00607939_s1</td></tr><tr><td>TaqMan Gene Expression Assay &amp;ndash; Human KLK3</td><td>Applied Biosystems</td><td>4331182</td><td>Hs00426859_g1</td></tr><tr><td>C57BL/6J female mice</td><td>In Vivos</td><td></td><td>4 - 6 wk old</td></tr><tr><td>Anesthesia (75 mg/kg Ketamine and 1 mg/kg Medetomidine)</td><td>Local pharmacy</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Reversal drug (1 mg/kg Atipamezole)</td><td>Local pharmacy</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ear punch</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>72893-01</td><td></td></tr><tr><td>Hartmann&#039;s solution or Compound sodium lactate</td><td>B Braun</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ophthalmic ointment - Duratears sterile ocular lubricant ointment</td><td>Alcon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heat pack - HotHands handwarmers</td><td>Heatmax Inc</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Introcan Certo IV catheter</td><td>B Braun</td><td>4251300</td><td>24 G x 3/4&amp;Prime;</td></tr><tr><td>Aquagel Lubricating jelly</td><td>Local pharmacy</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Poly-L-lysine solution, 0.01%,</td><td>Sigma</td><td>P4707</td><td></td></tr><tr><td>cOmplete, Mini, EDTA-free Protease Inhibitor Cocktail</td><td>Roche</td><td>4693159001</td><td></td></tr><tr><td>Quantichrom Creatinine Assay Kit</td><td>BioAssay Systems</td><td>DICT-50&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Fluorescent dye - VivoTrack 680</td><td>Perkin Elmer</td><td>NEV12000&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>RNAlater-ICE Frozen Tissue Transition Solution</td><td>Ambion</td><td>4427575</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Name&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Catalog number&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Comments&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Equipment and Software&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>7500 Realtime PCR System</td><td>Applied Biosystems</td><td></td><td></td></tr><tr><td>7500 Software v2.3</td><td>Applied Biosystems</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Metabolic Cage</td><td>Tecniplast&amp;nbsp;</td><td>Vertical type rack for 12 cages</td><td></td></tr><tr><td>BD FACSCanto I system&amp;nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BD FACSDiva software v7</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>IVIS SpectrumCT &lt;em&gt;in vivo&lt;/em&gt; imaging system&amp;nbsp;</td><td>Caliper Life Sciences&amp;nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Living Image Software v3.1</td><td>Caliper Life Sciences&amp;nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vevo 2100 imaging system&amp;nbsp;</td><td>VisualSonics&amp;nbsp;</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

a murine orthotopic bladder tumor model and tumor detection system

Bu protokol, insan prostat spesifik antijen (PSA) salgılar üzere tadil edilmiş olan murin mesane kanseri hücre çizgisi MB49 kullanılarak dişi C57BL / 6J farelerde mesane tümörlerine üretimini tarif eder, ve tümör implantasyonundan teyidi için prosedür. Kısaca, fareler enjektabl ilaçlar kullanılarak anestezi uygulanır ve dorsal pozisyonda yatıyordu yapılır. İdrar mesaneden boşalan ve poli-L-lisin (PLL), 50 uL yavaş yavaş 24 g, IV, kateter kullanılarak 10 mL / 20 s bir hızda damlatılır. Bu kateter tapayla kapatılması ile 20 dakika için idrar torbasında bırakılır. Sonda çıkarılır ve PLL mesane hafif basınç boşalan edilir. Bu murin mesane kanseri hücre çizgisi 10 uL / 20 s bir hızda (1 x 10 5 hücre / 50 uL) bir damlatma izlemektedir. Kateter erken tahliye önlemek için kapatılmakta. 1 saat sonra, fareler bir ters ilaç ile yeniden canlandırılması ve mesane boşalması. Yavaş instilasyon oranı, önemli olanbu tümörler, üst idrar yollarında ve böbreklerde oluşmasına neden olabilir veziko-üreteral reflü, azaltır. hücre hattı da bu implantasyondan sonra düzensiz tümör boyutları yol gibi, hücre topaklanma azaltmak için yeniden askıya alınmalıdır. Bu teknik, yüksek verimlilik ile tümörleri neden olmaktadır. Tümör büyümesi, üriner PSA salgılama ile izlenir. PSA markör izleme mesane tümör varlığının tespiti için ultrason veya floresan görüntüleme daha güvenilirdir. tedavi edilmediği takdirde 4 hafta - farelerde tümörler genellikle yaklaşık 3 ile maksimum boyutu olumsuz etkiler sağlık ulaşır. tümör büyümesini izleyerek, başarılı tümörlerinin implante değil olanlardan tedavi fareler ayırt etmek mümkündür. Sadece uç nokta analizi ile, ikincisi yanlışlıkla terapi ile tedavi edilmiş kabul edilebilir.

MB49 hücrelerinden PSA salgılama büyüme ortamı ile değişir bulunmuştur. Bu artan PSA salgılama (Şekil 1A) ile sonuçlanır, çünkü MB49-PSA DMEM ortamında yetiştirilir. PSA ELISA ve gerçek zamanlı PCR duyarlılığını tespit etmek için, MB49-PSA salgılayan hücrelerin farklı sayıda MB49 ebeveyn hücre ile karıştırıldı. Gerçek zamanlı PCR analizi, 100, PSA salgılayan hücre / 1 x 10 6 hücre (Şekil 1C) tespit ederken, PSA ELISA, 1 x 10 5, PSA salgılayan hücre / 1 x 10 6 hücre (Şekil 1B), en az olarak algılar. Böylece, real-time PCR ELISA daha duyarlıdır, ancak yalnızca tüm mesane yapılabilir. Bu uç-nokta analizi faydasını sınırlar. Mesane gelişen çoklu tümörler (Şekil 2A) içine tümör yerleştirilmesinden sonuçlarının PLL yöntemi. Idrar kullanarak metabolik kafeslere Her iki gecede toplama (Şekil 2B </stRong&gt;, üst panel) ve spot idrar örneği (Şekil 2B, alt panel) ELISA ile PSA ölçmek için kullanılabilir. Tüm hayvan çalışmaları, fare ağırlığı, sağlık (Şekil 2C, üst levha) ve bir ölçü olarak not edilir ve idrar PSA, tümör büyümesinin bir ölçüsü olarak, haftalık olarak (Şekil 2C, alt panel) ile izlenir. PSA tarafından ölçülen fare ağırlığı ve tümör boyutu arasında iyi bir korelasyon yapılamamıştır. Büyük tümörler ile Fare (Şekil 2C, fareler 3 ve 5) kilo vermeye başlar. Şekil 2C gözlenen bazı fareler büyük bir tümör var ama yine de normal vücut ağırlığı görüntüleyebilir. Bu nedenle, tek başına vücut ağırlığı, tümör büyümesinin yeterli bir göstergesi değildir. PSA, tümör büyümesi (Şekil 3A-D), iyi bir belirteç olarak görev yapar. Fareler, yaklaşık 3 ötenazi - 14. gün PSA 5 gün idrar analizi sonra, mesane kesitlerinin görüntüleri tümör boyutu ve karşılık gelen gün 14 PSA / kreatinin x 10 6 rea göstermektedirding. Tümör büyüklüğünün değişik farenin uygulanan muamele ile ilgilidir. Şekil 3, paneller AD 3 farklı tedavi kollarından fareler temsil etmektedir. Hücrelerin PSA modifikasyonu için alternatif bir strateji, bir boya ile hücrelerin etiketlenmesi olup. Bu strateji, hücre dönüşüm ve seçim için gereksinimi ortadan kaldırır. Bir floresan boya ile MB49-PSA hücrelerinin etiketlenmesi (Şekil 4A), gerçekleştirilmesi kolaydır ve in vitro izleme hücre replikasyonu (Şekil 4B ve C) rağmen, sinyal hayatta kalma açısından söz gösterdi. Fare besleme ayrıca karın bölgesinde spesifik olmayan floresan sonuçlandı doğal kırmızı floresan (Şekil 4D), çünkü Ancak, in vivo görüntüleme, başarılı olamadı. Bir karşılaştırma ultrason görüntüleme, PSA idrar salgılanması ve PSA uç-nokta analizinin arasında gerçekleştirildi. Mesane (Şekil 5A-H) Ultrason görüntüleme belirlenmesi için iyi olduBüyük tümörler, ama küçük tümörleri ile çok başarılı olamadı. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/55078/55078fig1.jpg" /> Şekil 1. PSA MB49-PSA Hücreleri salgılanması ve ELISA ve real-time PCR Analizi Kullanılarak Tespiti Sınırları belirlenmesi. (A), 1 x 10 6 hücre yüzer farklı büyütme ortamı, PSA salgılama yetiştirildi MB49-PSA 2 gün sonra ELISA ile tespit edilmiştir. Büyüme ortamı edildi: RPMI FBS ile FBS- (RPMI), alternatif FBS Premium FBS (RPMI (p)), RPMI (RPMI (H)) ile RPMI ve DMEM (DMEM) ile. DMEM ortamında yetiştirilen MB49-PSA hücreleri yüksek PSA salgısını vardı. (B) MB49-PSA hücreleri (1 hücre 10 6 hücre) ebeveyn MB49 hücreleri (10 6 hücre 1 hücre) ile karıştırılmış ve 24 saat için kaplanmıştır. PSA ELISA süpernatan üzerinde gerçekleştirilmiştir, ve RNA hücrelerinden ekstre edilmiştir. 1 x 10 en az 5 </sup&gt; PSA salgılayan hücre / 1 x 10 6 hücre ELISA ile tespit edildi. (C), 100, PSA salgılayan hücre / 1 x 10 6 hücre gerçek zamanlı PCR analizi ile tespit edildi. y ekseni değerleri, ortalama RQ (bağıl miktar) standart sapmayı ± temsil etmektedir. RQ değerleri, beta aktin genine PSA&#39;nın C T değerlerinin normale elde ve 1 olarak ayarlanmış bir kontrol mesane ile karşılaştırıldığında göreli kat değişiklikler vardır <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55078/55078fig1large.jpg" target="_blank">bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="şekil 2" src="/files/ftp_upload/55078/55078fig2.jpg" /> Şekil 2. Mesane Tümörü Büyüme ve Algılama. (A) 13 gün tümör implantasyonu sonrası mesane histolojik incelemesi. parafine gömülü mesane kesitli ve hematoksilen (koyu mavi), sta ile boyanmıştırçekirdekleri ins ve kalan hücresel bileşenleri lekeleri eosin (pembe). Gün 5 ve 13 bu mesanenin PSA / kreatinin x 10 6 değeri 7/2688 olarak gösterilmiştir. büyütme 44.8X yer almaktadır. Ölçek çubuğu 1 mm temsil eder. (B) idrar gece boyunca metabolik kafesler ya yerleştirilmesi fareler ile toplanmış ve 2 ml tüpler (üst panel) ya da, toplama tüpünden idrar transfer edildi tarafından yerinde 1.5 ml tüpler içinde, anestezi uygulanmış farelerde (alt panel) için idrar toplama , bu daha sonra 0.6 ml tüplere transfer edilmiştir. Tümör implantasyonundan sonra (C), farenin ağırlığı haftada iki kez (üst panel) izlenmiştir. İdrar PSA, tümör implantasyonu farede büyümeyi (alt panel) izlemek için ölçülmüştür. Y ekseni PSA / Crea kreatinin x 10 6 normalize idrar PSA temsil eder. Fareler kez sonlandırıldı vücut ağırlığı% 20&#39;den fazla bir kayıp oldu. Not: termi iken PSA gen ifadesi, günde 40 fare 2 mesane saptandı<html> erer, düşük idrar PSA bile. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55078/55078fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/55078/55078fig3.jpg" /> Şekil 3. PSA ve Mesane Tümörü Büyüme. (AD) fareler 19. günde (A ve B) hasat mesane, gün 17 (C) ve Tümör implantasyonu sonrası 13. günde (D) histolojik bölümler. Her mesane gün 4 ve gün 13 veya 14 gün idrar PSA / kreatinin x 10 6 değerler biçiminde günde her resmin sağ tarafında gösterilir 4 / gün 13 veya 14 kreatinin değerleri tümör boyutu artar / idrar PSA . görüntüleri AD fareler tümör boyutu farklılıkları muhasebe farklı terapiler aldı. büyütme 41.4X yer almaktadır. Ölçek çubuğu 1 mm temsil eder.&quot;Http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55078/55078fig3large.jpg&quot; target = &quot;_ blank&quot;&gt; bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız. <img alt="Şekil 4," src="/files/ftp_upload/55078/55078fig4.jpg" /> Bir Floresan Boya ile Etiketli MB49-PSA Hücreleri 4. Profili Şekil. (A) boyalı hücrelerin sitometrisi kaplama önce akış sitometrisi ile analiz edilmiştir. Etiketli hücreler floresan boya yoğunluğunu analiz etmek için birkaç günde hasat edilmiştir. Belirtilen gün sonrası etiketleme de (A) dan P2 kapısı içinde etiketlenmiş MB49-PSA hücrelerinin (B) yüzdesi. Sinyalin ortalama florasan yoğunluğu (MFI) ile ölçülen floresan boya (C) Yoğunluk. 10 gün bir in vivo görüntüleme sistemi kullanılarak işaretli MB49-PSA hücreleri implantasyonundan sonra fareler (D) Çıkan karın bölgesinde spesifik olmayan floresan göstermiştir.<a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55078/55078fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 5," src="/files/ftp_upload/55078/55078fig5.jpg" /> Fare mesanelerin 5. Ultrason Görüntüleri Şekil. Tümör implantasyonundan 8 gün, tümör implantasyonundan sonra (B) daha önce fareler mesaneler (A). (H) (C) farelerin ultrason görüntüleri implantasyonu sonrası iki hafta Bladders vardır. PSA / Crea: kreatinin normalize idrar PSA (10 6). PSA gen: mesanesi (RQ log) PSA gen ifadesi, her mesane için gösterilmiştir. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55078/55078fig5large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td></td&gt; <td> idrar PSA </td><td> floresan Görüntüleme </td><td> Ultrason Görüntüleme </td></tr><tr><td> Adımlar (zaman gerekli) </td><td> fareler anestezi. 110 uL idrar toplayın. (~ 1 saat) PSA ELISA (toplam inkübasyon süresi: 2 saat 30 dk) gerçekleştirin Kreatinin deneyi (inkübasyon süresi: 5 dakika) </td><td> fareler anestezi. karın bölgesi üzerinde kürk tıraş. görüntüleme gerçekleştirin. </td><td> fareler anestezi. karın bölgesi üzerinde kürk tıraş. Kateterize ve mesane içine serum fizyolojik 100 uL aşılamak. karın alt ve ultrason görüntüleri elde etmek için iletken jel uygulayın. </td></tr><tr><td> özel ekipman </td><td> ELISA plaka okuyucusu (450 nm ve 510 nm dalga uzunluğunda) </td><td> Görüntüleme Sistemi </td><td> Ultrason Görüntüleme Sistemi </td></tr><tr><td> Tümör hücrelerinin modifikasyonu </td><td> requirEd (ifade PSA) </td><td> Gerekli (floresan) </td><td> Gerekli değil </td></tr><tr><td> Avantajları </td><td> Güvenilir </td><td> Basit ve hızlı </td><td> Büyük tümörler tespit edebilir </td></tr><tr><td> Sınırlamalar </td><td> Yeterince idrar alamayabilirsiniz Negatif bir değer tümörün yokluğu (PSA gen ekspresyon analizi hassasiyetini artırır ama sonuna nokta analiz sınırlıdır) anlamına gelmez </td><td> floresan boya dikkatli seçimi, yüksek arka önlemek için gereklidir. </td><td> küçük tümörleri tespit edemez. Bir seferde bir fare. </td></tr></tbody></table> Fare Bladders Tümör Büyüme İzleme Yöntemlerinin Tablo 1. karşılaştırılması.

Watch this Scientific Journal Video about A Murine Orthotopic Bladder Tumor Model and Tumor Detection System at JoVE.com

A Murine Orthotopic Bladder Tumor Model and Tumor Detection System

Bu protokol, dişi C57BL / 6J fareler, tümör büyümesi izlenmesinde sıçangil ortotopik mesane tümörlerinin üretimini tarif eder.

Bir Fare Ortotopik Mesane Tümör Modeli ve Tümör Tespit Sistemi

This protocol describes the generation of bladder tumors in female C57BL/6J mice using the murine bladder cancer cell line MB49, which has been modified ...

a-murine-orthotopic-bladder-tumor-model-and-tumor-detection-system

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Cancer Research

14.6K Görüntüleme.  National University of Singapore, National University Health System.  Bu protokol, dişi C57BL / 6J fareler, tümör büyümesi izlenmesinde sıçangil ortotopik mesane tümörlerinin üretimini tarif eder. 

Video: A Murine Orthotopic Bladder Tumor Model and Tumor Detection System

Murine Experimental Model of Original Tumor Development and Peritoneal Metastasis via Orthotopic Inoculation with Ovarian Carcinoma Cells

Epithelial ovarian carcinoma (EOC) is associated with a poor prognosis because it shows peritoneal dissemination. To improve the prognosis, it is important to control peritoneal dissemination. However, it is still unclear how tumor cells detach from primary lesions and attach to the mesothelium. The establishment of an appropriate animal model is needed to gain an understanding of the mechanism of peritoneal dissemination in vivo. In the current study, we introduce the process from the local injection of EOC cells into the murine ovarian surface to the development of metastasis, including the peritoneum and distant organs. Female nude mice (BALB/c nu/nu) at 8 weeks of age were used. Under a microscopic field of view, EOC cells (1 x 105 cells/&#181;l of medium-extracellular matrix (ECM)-based hydrogel/unilateral ovary/mouse) were injected into murine ovaries through a retroperitoneal approach from the dorsal flank. This proposed method is a less invasive procedure for the mouse and minimizes damage to the ovary. Here, we describe the methodological steps in the development of the original and metastatic tumor formation of EOC.

Murine Experimental Model of Original Tumor Development and Peritoneal Metastasis via Orthotopic Inoculation with Ovarian Carcinoma Cells

To clarify the multistep process of peritoneal dissemination of ovarian carcinoma, the current study presents a murine experimental model of original tumor development and peritoneal metastasis via orthotopic inoculation with these tumor cells.

Orijinal Tümör Geliştirme Murin Deneysel Modeli ve Periton Metastaz<em&gt; yoluyla</emYumurtalık Kanseri Hücreleri ile&gt; Ortotopik aşılama

Epithelial ovarian carcinoma (EOC) is associated with a poor prognosis because it shows peritoneal dissemination. To improve the prognosis, it is ...

Kanser Araştırmaları

An Orthotopic Model of Murine Bladder Cancer

In this straightforward procedure, bladder tumors are established in female C57 mice through the use of catheterization, local cauterization, and subsequent cell adhesion. After their bladders are transurethrally catheterized and drained, animals are again catheterized to permit insertion of a platinum wire into bladders without damaging the urethra or bladder. The catheters are made of Teflon to serve as an insulator for the wire, which will conduct electrical current into the bladder to create a burn injury. An electrocautery unit is used to deliver 2.5W to the exposed end of the wire, burning away extracellular layers and providing attachment sites for carcinoma cells that are delivered in suspension to the bladder through a subsequent catheterization. Cells remain in the bladder for 90 minutes, after which the catheters are removed and the bladders allowed to drain naturally. The development of tumor is monitored via ultrasound. Specific attention is paid to the catheterization technique in the accompanying video.

Bladder tumors are established in female mice in a minimally invasive fashion through catheterization, local cauterization, and subsequent adhesion of carcinoma cells to the burn sites.

Murin Mesane Kanseri bir Ortotopik Model

In this straightforward procedure, bladder tumors are established in female C57 mice through the use of catheterization, local cauterization, and ...

Tıp

Magnetic Resonance Imaging Assessment of Carcinogen-induced Murine Bladder Tumors

Murine bladder tumor models are critical for the evaluation of new therapeutic options. Bladder tumors induced with the N-butyl-N-(4-hydroxybutyl) nitrosamine (BBN) carcinogen are advantageous over cell line-based models because they closely replicate the genomic profiles of human tumors, and, unlike cell models and xenografts, they provide a good opportunity for the study of immunotherapies. However, bladder tumor generation is heterogeneous; therefore, an accurate assessment of tumor burden is needed before randomization to experimental treatment. Described here is a BBN mouse model and protocol to evaluate bladder cancer tumor burden in vivo using a fast and reliable magnetic resonance (MR) sequence (true FISP). This method is simple and reliable because, unlike ultrasound, MR is operator-independent and allows for the straightforward post-acquisition image processing and review. Using axial images of the bladder, analysis of regions of interest along the bladder wall and tumor allow for the calculation of bladder wall and tumor area. This measurement correlates with ex vivo bladder weight (rs= 0.37, p = 0.009) and tumor stage (p = 0.0003). In conclusion, BBN generates heterogeneous tumors that are ideal for evaluation of immunotherapies, and MRI can quickly and reliably assess tumor burden prior to randomization to experimental treatment arms.

Murine bladder tumors are induced with the N-butyl-N-(4-hydroxybutyl) nitrosamine carcinogen (BBN). Bladder tumor generation is heterogeneous; therefore, an accurate assessment of tumor burden is needed before randomization to experimental treatment. Here we present a fast, reliable MRI protocol to assess tumor size and stage.

Manyetik rezonans görüntüleme değerlendirme kanserojen kaynaklı fare mesane Tümörlerinin

Murine bladder tumor models are critical for the evaluation of new therapeutic options. Bladder tumors induced with the N-butyl-N-(4-hydroxybutyl) ...

An Orthotopic Bladder Tumor Model and the Evaluation of Intravesical saRNA Treatment

We present a novel method for treating bladder cancer with intravesically delivered small activating RNA (saRNA) in an orthotopic xenograft mouse bladder tumor model. The mouse model is established by urethral catheterization under inhaled general anesthetic. Chemical burn is then introduced to the bladder mucosa using intravesical silver nitrate solution to disrupt the bladder glycosaminoglycan layer and allows cells to attach. Following several washes with sterile water, human bladder cancer KU-7-luc2-GFP cells are instilled through the catheter into the bladder to dwell for 2 hours. Subsequent growth of bladder tumors is confirmed and monitored by in vivo bladder ultrasound and bioluminescent imaging. The tumors are then treated intravesically with saRNA formulated in lipid nanoparticles (LNPs). Tumor growth is monitored with ultrasound and bioluminescence. All steps of this procedure are demonstrated in the accompanying video.

Establishing an orthotopic bladder tumor model to evaluate antitumor effects of intravesically delivered saRNA and monitoring tumor growth by ultrasound and bioluminescent imaging.

Bir Ortotopik Mesane Tümörü Model ve intravezikal Sarna Tedavisinin Değerlendirilmesi

We present a novel method for treating bladder cancer with intravesically delivered small activating RNA (saRNA) in an orthotopic xenograft mouse bladder ...

Culture, Manipulation, and Orthotopic Transplantation of Mouse Bladder Tumor Organoids

The development of advanced tumor models has long been encouraged because current cancer models have shown limitations such as lack of three-dimensional (3D) tumor architecture and low relevance to human cancer. Researchers have recently developed a 3D in vitro cancer model referred to as tumor organoids that can mimic the characteristics of a native tumor in a culture dish. Here, experimental procedures are described in detail for the establishment of bladder tumor organoids from a carcinogen-induced murine bladder tumor, including culture, passage, and maintenance of the resulting 3D tumor organoids in vitro. In addition, protocols to manipulate the established bladder tumor organoid lines for genetic engineering using lentivirus-mediated transduction are described, including optimized conditions for the efficient introduction of new genetic elements into tumor organoids. Finally, the procedure for orthotopic transplantation of bladder tumor organoids into the wall of the murine bladder for further analysis is laid out. The methods described in this article can facilitate the establishment of an in vitro model for bladder cancer for the development of better therapeutic options.

This protocol provides detailed experimental steps to establish a three-dimensional in vitro culture of bladder tumor organoids derived from carcinogen-induced murine bladder cancer. Culture methods including passaging, genetic engineering, and orthotopic transplantation of tumor organoids are described.

Fare Mesane Tümörü Organoidlerinin Kültürü, Manipülasyonu ve Ortotopik Transplantasyonu

The development of advanced tumor models has long been encouraged because current cancer models have shown limitations such as lack of three-dimensional ...

An Orthotopic Bladder Cancer Model for Gene Delivery Studies

Bladder cancer is the second most common cancer of the urogenital tract and novel therapeutic approaches that can reduce recurrence and progression are needed. The tumor microenvironment can significantly influence tumor development and therapy response. It is therefore often desirable to grow tumor cells in the organ from which they originated. This protocol describes an orthotopic model of bladder cancer, in which MB49 murine bladder carcinoma cells are instilled into the bladder via catheterization. Successful tumor cell implantation in this model requires disruption of the protective glycosaminoglycan layer, which can be accomplished by physical or chemical means. In our protocol the bladder is treated with trypsin prior to cell instillation. Catheterization of the bladder can also be used to deliver therapeutics once the tumors are established. This protocol describes the delivery of an adenoviral construct that expresses a luciferase reporter gene. While our protocol has been optimized for short-term studies and focuses on gene delivery, the methodology of mouse bladder catheterization has broad applications.

Implantation of cancer cells into the organ of origin can serve as a useful preclinical model to evaluate novel therapies. MB49 bladder carcinoma cells can be grown within the bladder following intravesical instillation. This protocol demonstrates catheterization of the mouse bladder for the purpose of tumor implantation and adenoviral delivery.

Gene Teslim Çalışmaları Ortotopik Mesane Kanseri Modeli

Bladder cancer is the second most common cancer of the urogenital tract and novel therapeutic approaches that can reduce recurrence and progression are ...

Minimally Invasive Establishment of Murine Orthotopic Bladder Xenografts

Orthotopic bladder cancer xenografts are the gold standard to study molecular cellular manipulations and new therapeutic agents&#160;in vivo. Suitable cell lines are inoculated either by intravesical instillation (model of nonmuscle invasive growth) or intramural injection into the bladder wall (model of invasive growth). Both procedures are complex and highly time-consuming. Additionally, the superficial model has its shortcomings due to the lack of cell lines that are tumorigenic following instillation. Intramural injection, on the other hand, is marred by the invasiveness of the procedure and the associated morbidity for the host mouse.
With these shortcomings in mind, we modified previous methods to develop a minimally invasive approach for creating orthotopic bladder cancer xenografts. Using ultrasound guidance we have successfully performed percutaneous inoculation of the bladder cancer cell lines UM-UC1, UM-UC3 and UM-UC13 into 50 athymic nude. We have been able to demonstrate that this approach is time efficient, precise and safe. With this technique, initially a space is created under the bladder mucosa with PBS, and tumor cells are then injected into this space in a second step. Tumor growth is monitored at regular intervals with bioluminescence imaging and ultrasound. The average tumor volumes increased steadily in in all but one of our 50 mice over the study period.
In our institution, this novel approach, which allows bladder cancer xenograft inoculation in a minimally-invasive, rapid and highly precise way, has replaced the traditional model.

The established technique to inoculate primary invasive orthotopic bladder cancer xenografts requires laparotomy and mobilization of the bladder. This procedure inflicts significant morbidity on the mice, is technically challenging and time-consuming. We therefore developed a high-precision, percutaneous approach utilizing ultrasound guidance.

Kemirgen Ortotopik Mesane ksenogratflarının Minimal İnvaziv kurulması

Orthotopic bladder cancer xenografts are the gold standard to study molecular cellular manipulations and new therapeutic agents&#160;in vivo. Suitable ...

Establishing a Murine Superficial Bladder Cancer Model via an Intravesical Cell Administration Technique

This study presents an innovative method for establishing an orthotopic murine bladder tumor model with high efficiency and precise tumor localization. After anesthetizing female C57BL/6J mice in a supine position, a 24 G intravenous needle is inserted into the bladder to evacuate its contents. A 34 G dispensing needle is then introduced through the catheter, rotated five times to create a focal injury to the bladder dome mucosa, and subsequently removed. The MB49 cell suspension is aspirated and connected to a 30 G dispensing needle, which is inserted into the bladder via the catheter. Tumor cells are injected submucosally into the bladder under pressure. This technique results in minimal trauma to the mice, a high tumor take rate, and a fixed tumor location. It is characterized by simplicity and excellent reproducibility. This model provides an ideal experimental platform for developing intravesical therapies for bladder cancer, facilitating the advancement and optimization of treatment strategies for this malignancy.

This protocol describes a unique method for constructing an orthotopic model of superficial bladder cancer.

This study presents an innovative method for establishing an orthotopic murine bladder tumor model with high efficiency and precise tumor localization. ...

Bladder Tumor Organoid Model: A Method for Orthotopic Transplantation of Bladder Organoids into Recipient Murine Bladder

Source: Kim, Y. et al. <a href="https://www.jove.com/video/60469" target="_blank">Culture, Manipulation, and Orthotopic Transplantation of Mouse Bladder Tumor Organoids.</a>&#160;J. Vis. Exp.&#160;(2020)
In this video, we describe the orthotopic transplantation of cultured bladder tumor organoids into the murine bladder to study the role of the organ environment on developing tumors.

Mesane Tümörü Organoid Modeli: Mesane Organoidlerinin Alıcı Murin Mesanesine Ortotopik Transplantasyonu İçin Bir Yöntem

Source: Kim, Y. et al. Culture, Manipulation, and Orthotopic Transplantation of Mouse Bladder Tumor Organoids.&#160;J. Vis. Exp.&#160;(2020)
In this ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

İdrar Yolu Kanseri

İn vivo çalışmalar

Modeling Orthotopic Bladder Tumor in Mouse Model: A Procedure for Intravesical Administration of Cancer Cells into Murine Bladder

Source: Tham, S. M. et al. <a href="https://www.jove.com/video/55078" target="_blank">A Murine Orthotopic Bladder Tumor Model and Tumor Detection System.</a>&#160;J. Vis. Exp.&#160;(2017)
In this video, we describe the intravesical procedure of delivering cancer cells into the bladder of a mouse model. This procedure helps generate an orthotopic bladder tumor model that can be used to develop therapeutic strategies.

Ortotopik Mesane Tümörünün Fare Modelinde Modellenmesi: Kanser Hücrelerinin Murin Mesanesine İntravezikal Uygulanması İçin Bir Prosedür

Source: Tham, S. M. et al. A Murine Orthotopic Bladder Tumor Model and Tumor Detection System.&#160;J. Vis. Exp.&#160;(2017)
In this video, we describe ...