Yazarlar Marcia Boulina yardım için çekirdek özelliği mikroskoplar sayesinde görüntüleme DRI dan teşekkür ederiz. Bu eser NIH hibe 1K01DK111757-01 tarafından (JA), F31668418 (MM), R01 DK111538, R33 ES025673 ve R56 DK084321 (AC) destek verdi.

University of Miami hayvan Etik Komitesi tüm deneylerin onayladı.
 1. viral enfeksiyon, bozulmamış izole insan veya fare pankreas adacıkları <ol><li>adacık kültür: adacık kültür ortamı hazırlamak: Connaught tıbbi araştırma laboratuvarları (CMRL) 1066, % 10 (v/v) FBS ve 2 mM L-glutamin.
	<ol><li>İnsan pankreas adacıkları entegre adacık dağıtım programından (NIDDK, NIH) elde edilir. Elimize adacıkları transfer (~ 500 adacık eşdeğerleri) için 35-mm sigara doku kültürü Petri yemekler ile 2 mL CMRL kültür medya 37 ° c, % %5/95 CO 2 /O 2 24 saat önce viral enfeksiyon için tedavi.</li>
		<li>Fare pankreas adacıkları daha önce kurulan protokolleri 16 aşağıdaki ayrılmış olabilir. Yalıtım, kültür ~ 200 adacık eşdeğerleri olarak 35-mm sigara doku kültürü Petri yemekler ile 2 mL CMRL kültür medya 37 ° c, % %5/95 CO 2 /O 2 24 saat önce viral enfeksiyon için tedavi. 
		Not: transgenik fareler adacıkları üzerinde ifade GFP veya YFP muhabirlerle NPY-pHluorin floresan çakışma önlemek için kullanmaktan kaçının.</li>
	</ol></li> <li>Virüs hazırlık Not: NPY-pHluorin fusion pcDNA3 vektör 10 kopyalanmış ve adenoviral üretimi için adenoviral bir vektör içine subcloned [adenovirus serotip 5 (DE1/E3)] rekombinant adenovirus tarafından üretim şirketi. Virüs bölünmemeli ve-80 ° C'de saklı Viral stok titreleri 10 şirketi tarafından sağlanan 12-10 13 viral parçacıkların (~ 3 x 10 10 - 3 x 10 11 PFU).
	<ol><li>In vitro adacık enfeksiyon, kullanın 10 6 PFU/mL, kaynaklanan enfeksiyon (MOI) yaklaşık bir çeşitlilik içinde yaklaşık 2 (bkz: tartışma Ayrıntılar için) için</li></ol></li>
	<li>Pankreas adacıkları viral enfeksiyon 
	Dikkat: Seviye 2 (BSL2) yordamlar ve sertifika adenovirüse bakın ile çalışma gerektirir. Kurumsal Biyogüvenlik memur rehberlik ve eğitim BSL2 prosedürler ile kontrol edin.
	<ol><li>İnsan/fare adacıkları yukarıda açıklandığı şekilde hazırlayın.</li>
		<li>2 ml (%10 FBS ve 2 mM L-glutamin ile) CMRL kültür ortamının insan/fare adacıkları içeren her 35-mm Petri kabına için 5-10 µL hisse senedi şunun ekleyin. 
		Not: şirket veri sayfası tarafından sağlanan viral titresi göre kullanılan virüs seviyesini ayarlamak.</li>
		<li>Kültür adacıkları, virüs içeren medya 37 °C/5% CO 2 24 h için</li>
		<li>24 saat sonra virüs içeren medya Aspire edin ve 2 mL CMRL kültür medya (%10 FBS ve 2 mM L-glutamin ile) yerine.</li>
		<li>Medya 3 günde yerine 37 °C/5% CO 2, 4-6 gün için adacıkları kültür.</li>
		<li>Sonra 4 - kültür, 6 gün civarında adacık hücreleri bulaşması için % 30'u bekliyoruz. Adacıkları-ebilmek o zaman var olmak kullanılmış canlı görüntüleme deneyler için.</li>
	</ol></li></ol> 2. Confocal görüntüleme, enfekte adacıkları Not: Malzemeler tablo confocal görüntüleme için gerekli ekipman ve malzemeler için başvurmak.
<ol><li>Reaktif hazırlık ve deneysel kurulum <ol><li>hazırlamak ekstraselüler çözüm: 125 mM NaCl, 5.9 mM KCl, 2.56 mM CaCl 2, 1 mM MgCl 2, 25 mM HEPES, % 0,1 BSA, eklemek filtre pH 7.4, steril. 
		Not: Bu tampon normal glikoz hazırlanır ve 4 ° C'de 1 ay boyunca saklanabilir. Glikoz istenen son toplama ulaşmak için deneme günü eklenir.
		<ol><li>Hazırla Bazal glikoz (3 mM) orta: hücre dışı çözüm için 50 mL 2 M glikoz stokunun 75 µL ekleyin.</li>
			<li>Hyperglycemic (16 mM) orta: hücre dışı çözüm için 50 mL 2 M glikoz stokunun 400 µL ekleyin</li></ol>
		</li> <li>Herhangi bir ek uyarıcı (örneğin, KCl veya adenozin trifosfat (ATP)) 3 mM glikoz içeren hücre dışı çözümde sulandırmak.</li>
		<li>Bir deney başlamadan önce Poli-D-lizin çözüm (1 mg/mL) 30 µL için 1 h için coverslip ekleyip iyice H 2 ile O. durulama Poli-D-lisin ile coverslips pretreat 
		Not: Poli-lizin kaplı coverslips 6 aya kadar oda sıcaklığında saklanabilir.</li>
		<li>En az 1 saat önce 1 mL pipet kullanarak deney, adacıkları ile 3 mM glikoz hücre dışı solüsyon içeren 35-mm Petri kabına aktarın. Adacıkları 37 ° C ve % 5 CO 2 ' de devam. 
		Not: gerekirse, bu adımda plazma zarı etiketli. Plazma zarı etiketlemek için 2 µM di-8-ANEPP boya ile 3 mM glikoz hücre dışı çözüm ekleyin. 37 °C/5% CO 2 1 h için boya çözümde adacıkları kuluçkaya. Plazma zarı boya 488 heyecanlı nm ve 620 nm.</li>
		bir deney başlamadan önce <li>min vakum silikon gres ile sızdırmazlık tarafından coverslip görüntüleme odasına iliştirin. Görüntüleme platformu görüntüleme odasına düzeltmek. Bir pipet kullanarak adacıkları uygun 20 dakika süreyle yüzeye coverslip ve poli-D-lizin-tedavi alan üzerinde 20-30 adacıklar yer 
		Not: Kurumasını adacık zarar görmemesi için coverslip izin önemlidir.</li>
		Adacıkları coverslip için uygun iken <li>iyice su ile durulama tarafından perfüzyon sistemi hazırlamak. Her çözüm için başka bir kanal eklemek: 3 mM glikoz (Kanal 1), 16 mM glikoz (2 kanal), 100 µM 3-İzobütil-1-methylxanthine (IBMX) ve 10 µM forskolin (Kanal 3), 25 mM KCl 3 mM glikoz (Kanal 4), 3 mM glikoz (10 µM ATP ile 16 mM glukoz Kanal 5). Tüm kabarcıklar her kanalı ayrı ayrı açarak ve çözüm akışı için bir kaç dakika izin sistemden kaldırmak ve akışını tutarlı (0.5 mL/dak) ve tüp değil sızdırıyor emin olun.</li>
		<li>Tek satır içi çözüm ısıtıcı perfüzyon çıkış tüp bağlamak ve 37 outflowing arabellek sıcaklığını ayarlamak ° C.</li>
		<li>Emme pompası hazırlayın. Tüm kabarcıklar sistemden kaldırmak ve akışını tutarlı ve tüp değil sızdırıyor emin olun.</li>
		Coverslip yüzeye adacıkları uygun bir kez <li>yavaşça görüntüleme odasını 3 mM glikoz içeren hücre dışı çözüm ile doldurun. Coverslip yüzey uzak adacıkları yıkama kaçının.</li>
		<li>Görüntüleme platformu mikroskop Sahne Alanı'na adacıkları ile yere takıp perfüzyon sistemi ve emme pompası bağlayın.</li>
		<li>Dönüş akışını ve sürekli adacıkları ile 3 G ekstraselüler eriyik sıvı. Sistem confocal görüntüleme için hazırdır.</li>
	</ol></li> <li>Confocal görüntüleme <ol><li>alt büyütme ile mikroskop alanındaki adacıkları bulun. Sonra adacıkları üzerinde duruldu, daha yüksek büyütme hedefleri için geçiş (örneğin, 63 X su daldırma amaç (63 X / 0.9 NA)).</li>
		<li>Yazılımı (Tablo reçetesi) kullanarak edinme açın ve rezonans tarayıcı kipi etkin kılın.</li>
		<li>XYZT görüntüleme modu seçin ve aşağıdaki gibi satın alma ayarlarını yapılandırın: <ol><li>çevirmek Argon lazer ve 488 nm lazer çizgi ve lazer güç pHluorin uyarma için % 50'ye ayarlayın.</li>
			<li>Toplamak emisyon, 505-555 nm.</li>
			<li>, 512 x 512 piksel çözünürlüğü seçin. Basın &#34; Live &#34; görüntüleme başlatın ve (tipik kazanç ise yaklaşık 600 V) kazanç düzeylerini ayarlamak için düğmesini.</li>
			<li>Ayarla BEGIN ve end z yığının: odak üstünde adacık ve seçin &#34; başlangıç &#34; ve son odaklı olabilir ve Seç uçak gitme &#34; son &#34;. 5 mikron z-adım boyutunu kullanın. Yazılım otomatik olarak confocal uçak sayısını hesaplar.</li>
			<li>Her z-yığın 1.5-2 s yakın edinimi için zaman aralığı ayarlarken ve seçeneği &#34; durdurulana kadar elde &#34; için sürekli düşsel.</li>
			<li>Basın &#34; başlangıç &#34; ini düğmetialize.</li>
		</ol></li> <li>Granül ekzositozu adacıkları ile istenen uyaranlara Ventriküler tarafından ikna etmek için çeşitli stimülasyon iletişim kurallarını kullanır. Stimulasyon protokolleri istenen bilimsel amaç (aşağıya bakın) uyacak şekilde özelleştirilebilir.</li>
	</ol></li> <li>Stimulasyon protokolleri Not: adacık arka plan etkinliği en az 2 dakika sürekli perfüzyon 3 mM glikoz içeren hücre dışı çözüm ile kaydederek her stimülasyon Protokolü başlatın. Bir uyarıcı ile istenen süre için sıvı. Uyarıcılar sırasını, stimülasyon süresi yanı sıra kayıtları süresi istenen bilimsel amaçlar uyacak şekilde özelleştirilebilir. Yeni bir stimülasyon başlamadan önce 3 mM glikoz içeren hücre dışı çözüm adacıkları iyice yıkayın emin olun. Aşağıda yöntemi yetenekleri göstermek için kullanılan örnek stimulasyon protokolleri bulabilirsiniz.
	<ol><li>Teşvik pHluorin pH duyarlılık ve viral enfeksiyon verimliliği ( şekil 3) pozitif kontrol olarak amonyum klorür (NH 4 Cl) ile: 3 mM glikoz (2 dk) &#8594; 50 mM NH 4 Cl (2 dk) 3 mM glikoz &#8594; 3 mM glikoz (2 dk) Not: ın NH 4 Cl çözüm, eski yerine koymak NaCl ekimolar bazda.</li>
		<li>Stimulate insülin granül ekzositozu glikoz konsantrasyonu ( şekil 5 ve şekil 6) artırarak: 3 mM glikoz (2 dk) &#8594; 16 mM glikoz (15-30 dakika) &#8594; 3 mM glikoz (2 dk 
		Not: etkinlik birkaç patlamaları görmek için en az 15 dakika süreyle 16 G Çözümle sürekli adacıkları sıvı 
		Not: salgı yanıt-e doğru 17 tutarlılığını artırmak için kullanıcıları kampı yükselterek ajanlar (100 µM IBMX ve 10 µM forskolin) 16 G ve 3 G çözüm ekleyebilirsiniz. Bu granül sekresyonunu zamansal şekillerinin değiştirmez. Ayrıntılar 15 ve tartışma için bkz.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol>
	<li>Roder, P. V., Wong, X., Hong, W., Han, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+regulation+of+insulin+granule+biogenesis+and+exocytosis.">Molecular regulation of insulin granule biogenesis and exocytosis.</a> Biochem J. 473 (18), 2737-2756 (2016).</li><li>Rutter, G. A., Pullen, T. J., Hodson, D. J., Martinez-Sanchez, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pancreatic+beta-cell+identity,+glucose+sensing+and+the+control+of+insulin+secretion.">Pancreatic beta-cell identity, glucose sensing and the control of insulin secretion.</a> Biochem J. 466 (2), 203-218 (2015).</li><li>Rorsman, P., Renstrom, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insulin+granule+dynamics+in+pancreatic+beta+cells.">Insulin granule dynamics in pancreatic beta cells.</a> Diabetologia. 46 (8), 1029-1045 (2003).</li><li>Takahashi, N., Kishimoto, T., Nemoto, T., Kadowaki, T., Kasai, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fusion+pore+dynamics+and+insulin+granule+exocytosis+in+the+pancreatic+islet.">Fusion pore dynamics and insulin granule exocytosis in the pancreatic islet.</a> Science. 297 (5585), 1349-1352 (2002).</li><li>Ramirez, D. M., Khvotchev, M., Trauterman, B., Kavalali, E. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vti1a+identifies+a+vesicle+pool+that+preferentially+recycles+at+rest+and+maintains+spontaneous+neurotransmission.">Vti1a identifies a vesicle pool that preferentially recycles at rest and maintains spontaneous neurotransmission.</a> Neuron. 73 (1), 121-134 (2012).</li><li>Michael, D. J., Xiong, W., Geng, X., Drain, P., Chow, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+insulin+vesicle+dynamics+during+pulsatile+secretion.">Human insulin vesicle dynamics during pulsatile secretion.</a> Diabetes. 56 (5), 1277-1288 (2007).</li><li>Ohara-Imaizumi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monitoring+of+exocytosis+and+endocytosis+of+insulin+secretory+granules+in+the+pancreatic+beta-cell+line+MIN6+using+pH-sensitive+green+fluorescent+protein+(pHluorin)+and+confocal+laser+microscopy.">Monitoring of exocytosis and endocytosis of insulin secretory granules in the pancreatic beta-cell line MIN6 using pH-sensitive green fluorescent protein (pHluorin) and confocal laser microscopy.</a> Biochem J. 363 (Pt 1), 73-80 (2002).</li><li>Whim, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pancreatic+beta+cells+synthesize+neuropeptide+Y+and+can+rapidly+release+peptide+co-transmitters.">Pancreatic beta cells synthesize neuropeptide Y and can rapidly release peptide co-transmitters.</a> PLoS One. 6 (4), e19478 (2011).</li><li>Tsuboi, T., Rutter, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiple+forms+of+&amp;#34;kiss-and-run&amp;#34;+exocytosis+revealed+by+evanescent+wave+microscopy.">Multiple forms of &amp;#34;kiss-and-run&amp;#34; exocytosis revealed by evanescent wave microscopy.</a> Curr Biol. 13 (7), 563-567 (2003).</li><li>Zhu, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synaptotagmin+I+and+IX+function+redundantly+in+controlling+fusion+pore+of+large+dense+core+vesicles.">Synaptotagmin I and IX function redundantly in controlling fusion pore of large dense core vesicles.</a> Biochem Biophys Res Commun. 361 (4), 922-927 (2007).</li><li>Aoki, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Duration+of+fusion+pore+opening+and+the+amount+of+hormone+released+are+regulated+by+myosin+II+during+kiss-and-run+exocytosis.">Duration of fusion pore opening and the amount of hormone released are regulated by myosin II during kiss-and-run exocytosis.</a> Biochem J. 429 (3), 497-504 (2010).</li><li>Felmy, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modulation+of+cargo+release+from+dense+core+granules+by+size+and+actin+network.">Modulation of cargo release from dense core granules by size and actin network.</a> Traffic. 8 (8), 983-997 (2007).</li><li>Miesenbock, G., De Angelis, D. A., Rothman, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visualizing+secretion+and+synaptic+transmission+with+pH-sensitive+green+fluorescent+proteins.">Visualizing secretion and synaptic transmission with pH-sensitive green fluorescent proteins.</a> Nature. 394 (6689), 192-195 (1998).</li><li>Gandasi, N. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Survey+of+Red+Fluorescence+Proteins+as+Markers+for+Secretory+Granule+Exocytosis.">Survey of Red Fluorescence Proteins as Markers for Secretory Granule Exocytosis.</a> PLoS One. 10 (6), e0127801 (2015).</li><li>Almaca, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spatial+and+temporal+coordination+of+insulin+granule+exocytosis+in+intact+human+pancreatic+islets.">Spatial and temporal coordination of insulin granule exocytosis in intact human pancreatic islets.</a> Diabetologia. 58 (12), 2810-2818 (2015).</li><li>Do, O. H., Low, J. T., Thorn, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lepr(db)+mouse+model+of+type+2+diabetes:+pancreatic+islet+isolation+and+live-cell+2-photon+imaging+of+intact+islets.">Lepr(db) mouse model of type 2 diabetes: pancreatic islet isolation and live-cell 2-photon imaging of intact islets.</a> J Vis Exp. (99), e52632 (2015).</li><li>Hanna, S. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Kiss-and-run+exocytosis+and+fusion+pores+of+secretory+vesicles+in+human+beta-cells.">Kiss-and-run exocytosis and fusion pores of secretory vesicles in human beta-cells.</a> Pflugers Arch. 457 (6), 1343-1350 (2009).</li><li>Carter, J. D., Dula, S. B., Corbin, K. L., Wu, R., Nunemaker, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+practical+guide+to+rodent+islet+isolation+and+assessment.">A practical guide to rodent islet isolation and assessment.</a> Biol Proced Online. 11, 3-31 (2009).</li><li>Weber, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adenoviral+transfection+of+isolated+pancreatic+islets:+a+study+of+programmed+cell+death+(apoptosis)+and+islet+function.">Adenoviral transfection of isolated pancreatic islets: a study of programmed cell death (apoptosis) and islet function.</a> J Surg Res. 69 (1), 23-32 (1997).</li><li>Michael, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fluorescent+cargo+proteins+in+pancreatic+beta-cells:+design+determines+secretion+kinetics+at+exocytosis.">Fluorescent cargo proteins in pancreatic beta-cells: design determines secretion kinetics at exocytosis.</a> Biophys J. 87 (6), L03-L05 (2004).</li><li>Serre-Beinier, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cx36+makes+channels+coupling+human+pancreatic+beta-cells,+and+correlates+with+insulin+expression.">Cx36 makes channels coupling human pancreatic beta-cells, and correlates with insulin expression.</a> Hum Mol Genet. 18 (3), 428-439 (2009).</li><li>Rutter, G. A., Hodson, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Beta+cell+connectivity+in+pancreatic+islets:+a+type+2+diabetes+target?.">Beta cell connectivity in pancreatic islets: a type 2 diabetes target?.</a> Cell Mol Life Sci. 72 (3), 453-467 (2015).</li><li>Shen, Y., Rosendale, M., Campbell, R. E., Perrais, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=pHuji,+a+pH-sensitive+red+fluorescent+protein+for+imaging+of+exo-+and+endocytosis.">pHuji, a pH-sensitive red fluorescent protein for imaging of exo- and endocytosis.</a> J Cell Biol. 207 (3), 419-432 (2014).</li><li>Speier, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Noninvasive+in+vivo+imaging+of+pancreatic+islet+cell+biology.">Noninvasive in vivo imaging of pancreatic islet cell biology.</a> Nat Med. 14 (5), 574-578 (2008).</li><li>Low, J. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insulin+secretion+from+beta+cells+in+intact+mouse+islets+is+targeted+towards+the+vasculature.">Insulin secretion from beta cells in intact mouse islets is targeted towards the vasculature.</a> Diabetologia. 57 (8), 1655-1663 (2014).</li></ol>

Yazarlar onlar rakip hiçbir mali çıkarları var bildirin.

Bu el yazması tarafından confocal mikroskobu sağlam pankreas adacıkları içinde beta hücrelerindeki insülin granülleri ekzositozu görselleştirmek için kullanılabilir bir teknik anlatılmaktadır. Bu NPY-pHluorin adenovirus klonlanmış floresan muhabir olarak yüksek transfection verimliliği sağlamak için kullanılır.
Yöntem bizim ellerimizde yüksek verimli olmasına rağmen öncelikle iki parametre bağlı bazı değişiklikler gerektirebilir: 1) adacık hazırlık ve viral ...

İnsülin pankreas adacık beta hücreleri tarafından üretilen ve glukoz metabolizma1anahtar bir düzenleyicisidir. Ölüm ya da beta hücre fonksiyon bozukluğu glikoz homeostazı rahatsız ediyor ve diyabet2' ye götürür. İnsülin bir Ca2 +içinde yayımlanan çekirdek yoğun granüller içinde paketlenmiştir-bağımlı bir şekilde3. İnsülin granül ekzositozu nasıl düzenlenir elucidating tam olarak ne insülin salgılanması belirler ve diyabet tedavisi için yeni tedavi hedefleri tanımlaması için yeni yollar açar anlamak önemlidir.
İnsülin ekzositozu kapsamlı floresan molekülleri ile birlikte membran kapasitans ölçümleri ve mikroskobik yaklaşımlar gibi Elektrofizyolojik yaklaşımları kullanarak çalışılmıştır. Membran kapasitans ölçümleri iyi temporal çözünürlüğe sahip ve tek hücre kayıtları sağlar. Ancak, kapasite değişimler hücrenin net yüzey değişikliği yansıtmak ve bireysel füzyon olayları yakalamak veya insülin granül füzyon diğer sigara insülin salgı veziküller3ayırt. İki fotonlu veya toplam iç yansıma floresan (TIRF) mikroskopi, floresan problar ve vezikül kargo proteinler, birlikte gibi mikroskobik yaklaşımlar ek ayrıntı sağlar. Bu teknikler tek exocytotic olayları ve ayrıca öncesi ve sonrası exocytotic aşamaları yakalamak ve nüfus hücreleri3exocytotic desen eğitimi için kullanılabilir.
Floresan gazetecilere üç tür olabilir: 1) hücre dışı, 2) sitoplazmik veya 3) veziküler. 1) hücre dışı gazetecilere ekstraselüler ortamın4ten kutup tarayıcıları (örneğin, dextrans, sulforhodamine B (SRB), lucifer sarı, pyranine) vardır. Polar verici kullanımı bir nüfus hücre füzyon gözenek incelenmesi için izin verir ve kan damarları gibi çeşitli hücreler arası yapıları yakalar. Ancak, vezikül kargo davranış bildirmez. 2) sitoplazmik gazetecilere floresan problar sitoplazma yüz ve rıhtım ve ekzositozu dahil membran ilişkili proteinler için birleştiğinde vardır. Örnekler nörotransmitter sürüm5çalışmak için nörolojik başarıyla kullanılan çözünür N- ethylmaleimide-duyarlı faktör ek protein reseptörü (tuzak) aile üyeleri. Bu proteinler birden çok bağlayıcı ortak ve insülin-granül değildir belirli. 3) veziküler gazetecilere floresan problar kargo özel vezikül davranış soruşturma için izin veziküler kargo proteinlere erimiş vardır. İnsülin-granül özel kargo proteinler insülin, c-peptid, adacık amiloid polipeptid ve NPY diğerleri arasında içerir6,7. NPY sadece insülin granülleri içeren mevcuttur ve insülin ile ortak yapım o bir floresan muhabir8için mükemmel bir partner yayımlanır.
Füzyon NPY için farklı floresan proteinlerin daha önce ekzositozu nöroendokrin hücrelerinde, belirli synaptotagmin izoformlarının9,10 şartı gibi çeşitli yönlerini incelemek için istihdam edilmiştir ve nasıl zaman-yayın tabii aktin sitoiskeleti üzerindeki ve myosin II11,12bağlıdır. Bu çalışmada, floresan olmayan değiştirilmiş bir GFP olan flüoresan muhabir pHluorin seçtik yoğun çekirdek içinde asidik pH granül ama olur maruz nötr ekstrasellüler pH13üzerine parlak floresan. Olgun insülin granülleri bir asidik pH 5.5 aşağıda var. Bir kez plazma zarı ve açar ile granül sigortalar, taşıdığı 7.4,7,14muhabir olarak pH duyarlı proteinler pHluorin kullanımına izin nötr ekstrasellüler pH için yararlanılır.
PHluorin pH hassas doğası ve insülin granülleri NPY seçici ifade içinde görüş-in NPY-pHluorin füzyon yapı insülin granül ekzositozu çeşitli özelliklerini incelemek için kullanılabilir. Füzyon yapı viral teslim yüksek transfection verimlilik sağlar ve birincil beta hücreleri veya hücre hatları yanı sıra izole adacıkları üzerinde çalışır. Bu yöntem, bir kılavuz olarak ekzositozu hücreye herhangi bir diğer NPY içeren veziküller ile çalışmak için de kullanılabilir. Ayrıca ekzositozu üzerinde belirli koşullar (nakavtlar, overexpression, vb) etkilerini incelemek için herhangi bir transgenik fare modeli ile birleştirilebilir. Bu teknik daha önce insülin granül sekresyonunu beta hücre popülasyonlarının insan adacıkları15içinde kayma ve temporal desenlerini tanımlamak için kullanılmıştır.

<table><tbody><tr><td>Upright laser-scanning confocal microscope</td><td>Leica Microsystems, Wetzlar, Germany</td><td>TCS-SP5</td><td>includes LAS AF, the image acquisition software</td></tr><tr><td>Imaging chamber</td><td>Warner instruments</td><td>RC-26</td><td></td></tr><tr><td>Imaging chamber platform</td><td>Warner instruments</td><td>PH-1</td><td></td></tr><tr><td>22 x 40 glass coverslips</td><td>Daiggerbrand</td><td>G15972H</td><td></td></tr><tr><td>Vacuum silicone grease</td><td>Sigma</td><td>Z273554-1EA</td><td></td></tr><tr><td>Multichannel perfusion system</td><td>Warner instruments</td><td>VC-8</td><td></td></tr><tr><td>Single inline solution heater</td><td>Warner instruments</td><td>SH-27B</td><td></td></tr><tr><td>Temperature controller</td><td>Warner instruments</td><td>TC-324C</td><td></td></tr><tr><td>Peristaltic Suction pump</td><td>Pharmacia</td><td>P-1</td><td></td></tr><tr><td>35 mm Petri dish, non-tissue culture treated</td><td>VWR</td><td>10861-586</td><td></td></tr><tr><td>CMRL Medium, no glutamine</td><td>ThermoFisher</td><td>11530037</td><td></td></tr><tr><td>FBS, heat inactivated</td><td>ThermoFisher</td><td>16140071</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamine 200 mM</td><td>ThermoFisher</td><td>25030081</td><td></td></tr><tr><td>5 M NaCl solution</td><td>Sigma</td><td>S5150</td><td></td></tr><tr><td>3 M KCl solution</td><td>Sigma</td><td>60135</td><td></td></tr><tr><td>1 M CaCl&lt;sub&gt;2 &lt;/sub&gt;solution</td><td>Sigma</td><td>21115</td><td></td></tr><tr><td>1 M MgCl&lt;sub&gt;2 &lt;/sub&gt;solution</td><td>Sigma</td><td>M1028</td><td></td></tr><tr><td>Bovine Serum Albumin</td><td>Sigma</td><td>A2153</td><td></td></tr><tr><td>1 M HEPES solution</td><td>Sigma</td><td>H0887</td><td></td></tr><tr><td>Vacuum filter</td><td>VWR</td><td>431098</td><td></td></tr><tr><td>D-Glucose</td><td>Sigma</td><td>G8270</td><td></td></tr><tr><td>Poly-D-lysine hydrobromide</td><td>Sigma-aldrich</td><td>P6407</td><td></td></tr><tr><td>Di-8-ANNEP</td><td>ThermoFisher</td><td>D3167</td><td></td></tr><tr><td>3-isobutyl-1-methylxanthine (IBMX)</td><td>Sigma</td><td>I5879</td><td></td></tr><tr><td>Forskolin</td><td>Sigma</td><td>F3917</td><td></td></tr></tbody></table>

confocal imaging of neuropeptide y-phluorin: a technique to visualize insulin granule exocytosis in intact murine and human islets

İnsülin salgılanması glikoz homeostazı normal şartlarda fizyolojik de olduğu gibi hastalığı merkezi bir rol oynar. İnsülin granül ekzositozu Elektrofizyoloji veya floresan gazetecilere ifade için birleştiğinde mikroskobu kullanın eğitim için geçerli yaklaşımlar. Ancak bu tekniklerin çoğu klonal hücre hatları için optimize edilmiş veya pankreas adacıkları dissociating gerektirir. Buna ek olarak, burada sunulan yöntemi insülin granül ekzositozu sağlam pankreas adacıkları içinde gerçek zamanlı görselleştirme olanak sağlar. Bu protokol için ilk viral enfeksiyon peptit Y (NPY) birleştiğinde bir pH duyarlı yeşil flüoresan protein (GFP), pHluorin, kodlar adenovirus ile izole pankreas adacıkları tarif. İkinci olarak, confocal adacıkları beş gün sonra viral enfeksiyon ve insülin granül sekresyonunu izlemek nasıl görüntüleme açıklar. Kısaca, virüslü adacıkları bir coverslip bir görüntüleme odası üzerinde yerleştirilir ve bir dik lazer tarama confocal mikroskop altında sürekli olarak çeşitli uyaranlara içeren hücre dışı çözüm ile periosteum süre görüntüsü. Confocal görüntüleri adacık 50 µm kapsayan bir hızlı rezonans tarayıcı kullanarak hızlandırılmış kayıtları elde edilir. İnsülin granülleri plazma zarı ile füzyon zaman içinde izlenebilir. Bu yordamı Ayrıca tek bir deneyde bir pil uyaranların test etmek için izin verir, fare ve insan adacıkları ile uyumludur ve fonksiyonel görüntüleme (örneğin, membran potansiyeli veya sitozolik kalsiyum boyalar) için çeşitli boyalari ile kombine edilebilir.

Tüm iş akışı tekniği Resim 1' de gösterilen. Kısaca, fare veya insan adacıkları olabilir NPY-pHluorin kodlama adenovirus ile enfekte ve yansıma, kültür, confocal mikroskop altında birkaç gün sonra. Granül sigorta plazma zarı ve açık olarak, floresan bir artış görülmektedir ve sayısal (şekil 1). NPY-pHluorin gerçekten de insülin granül dynamics izlemek için uygun bir araç olup olmadığını belirlem...

Watch this Scientific Journal Video about Confocal Imaging of Neuropeptide Y-pHluorin: A Technique to Visualize Insulin Granule Exocytosis in Intact Murine and Human Islets at JoVE.com

Confocal Imaging of Neuropeptide Y-pHluorin: A Technique to Visualize Insulin Granule Exocytosis in Intact Murine and Human Islets

Biz pHluorin, pH-duyarlı yeşil flüoresan protein kullanarak bozulmamış adacıkları insülin ekzositozu görselleştirme için bir iletişim kuralı tanımlamak. İzole adacıkları adenovirus pHluorin vezikül kargo peptit Y birleştiğinde kodlama ile bulaşmış. Bu confocal mikroskobu tarafından insülin granül füzyon olayları algılama için sağlar.

Confocal peptit Y-pHluorin, görüntüleme: insülin granül ekzositozu olduğu gibi fare ve insan adacıkları görselleştirmek için bir teknik

Insulin secretion plays a central role in glucose homeostasis under normal physiological conditions as well as in disease. Current approaches to study ...

confocal-imaging-neuropeptide-y-phluorin-technique-to-visualize

Research

JoVE Journal

Biology

9.1K Görüntüleme.  University of Miami. Biz pHluorin, pH-duyarlı yeşil flüoresan protein kullanarak bozulmamış adacıkları insülin ekzositozu görselleştirme için bir iletişim kuralı tanımlamak. İzole adacıkları adenovirus pHluorin vezikül kargo peptit Y birleştiğinde kodlama ile bulaşmış. Bu confocal mikroskobu tarafından insülin granül füzyon olayları algılama için sağlar.

Video: Confocal Imaging of Neuropeptide Y-pHluorin: A Technique to Visualize Insulin Granule Exocytosis in Intact Murine and Human Islets

Leprdb Mouse Model of Type 2 Diabetes: Pancreatic Islet Isolation and Live-cell 2-Photon Imaging Of Intact Islets

Type 2 diabetes is a chronic disease affecting 382 million people in 2013, and is expected to rise to 592 million by 2035 1. During the past 2 decades, the role of beta-cell dysfunction in type 2 diabetes has been clearly established 2. Research progress has required methods for the isolation of pancreatic islets. The protocol of the islet isolation presented here shares many common steps with protocols from other groups, with some modifications to improve the yield and quality of isolated islets from both the wild type and diabetic Leprdb (db/db) mice. A live-cell 2-photon imaging method is then presented that can be used to investigate the control of insulin secretion within islets.

Leprdb Mouse Model of Type 2 Diabetes: Pancreatic Islet Isolation and Live-cell 2-Photon Imaging Of Intact Islets

We present here a protocol for the isolation of islets from the mouse model of type 2 diabetes, Leprdb and details of a live-cell assay for measurement of insulin secretion from intact islets that utilizes 2 photon microscopy.

Lepr<sup&gt; Db</sup&gt; Tip 2 Diyabet Fare Modeli: Bozulmamış Islets Of Pankreas Adacık İzolasyonu ve Canlı hücre 2-Foton Görüntüleme

Type 2 diabetes is a chronic disease affecting 382 million people in 2013, and is expected to rise to 592 million by 2035 1. During the past 2 decades, ...

Tıp

High Resolution 3D Imaging of the Human Pancreas Neuro-insular Network

Using traditional histological methods, researchers are hampered in their ability to image whole tissues or organs in large-scale 3D. Histological sections are generally limited to &#60;20 &#181;m as formalin fixed paraffin section on glass slides or &#60;500 &#181;m for free-floating fixed sections. Therefore, extensive efforts are required for serial sectioning and large-scale image reconstruction methods to recreate 3D for samples &#62;500 &#181;m using traditional methods. In addition, light scatters from macromolecules within tissues, particularly lipids, prevents imaging to a depth &#62;150 &#181;m with most confocal microscopes. To reduce light scatter and to allow for deep tissue imaging using simple confocal microscopy, various optical clearing methods have been developed that are relevant for rodent and human tissue samples fixed by immersion. Several methods are related and use protein crosslinking with acrylamide and tissue clearing with sodium dodecyl sulfate (SDS). Other optical clearing techniques used various solvents though each modification had various advantages and disadvantages. Here, an optimized passive optical clearing method is described for studies of the human pancreas innervation and specifically for interrogation of the innervation of human islets.

Here, we present a protocol to image human pancreas sections in three dimensions (3D) using optimized passive clearing methods. This manuscript demonstrates these procedures for passive optical clearing followed by multiple immunofluorescence staining to identify key elements of the autonomic and sensory neural networks innervating human islets.

İnsan pankreas nöro-ada ağının yüksek çözünürlükte 3D görüntüleme

Using traditional histological methods, researchers are hampered in their ability to image whole tissues or organs in large-scale 3D. Histological ...

Biyomühendislik

Observing Islet Function and Islet-Immune Cell Interactions in Live Pancreatic Tissue Slices

Live pancreatic tissue slices allow for the study of islet physiology and function in the context of an intact islet microenvironment. Slices are prepared from live human and mouse pancreatic tissue embedded in agarose and cut using a vibratome. This method allows for the tissue to maintain viability and function in addition to preserving underlying pathologies such as type 1 (T1D) and type 2 diabetes (T2D). The slice method enables new directions in the study of the pancreas through the maintenance of the complex structures and various intercellular interactions that comprise the endocrine and exocrine tissues of the pancreas. This protocol demonstrates how to perform staining and time-lapse microscopy of live endogenous immune cells within pancreatic slices along with assessments of islet physiology. Further, this approach can be refined to discern immune cell populations specific for islet cell antigens using major histocompatibility complex-multimer reagents.

This study presents the application of live pancreatic tissue slices to the study of islet physiology and islet-immune cell interactions.

Canlı Pankreas Doku Dilimlerinde Adacık fonksiyonu ve Adacık-İmmün Hücre Etkileşimlerinin Gözlemlenmesi

Live pancreatic tissue slices allow for the study of islet physiology and function in the context of an intact islet microenvironment. Slices are prepared ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Visualization of Endogenous Mitophagy Complexes In Situ in Human Pancreatic Beta Cells Utilizing Proximity Ligation Assay

Mitophagy is an essential mitochondrial quality control pathway, which is crucial for pancreatic islet beta cell bioenergetics to fuel glucose-stimulated insulin release. Assessment of mitophagy is challenging and often requires genetic reporters or multiple complementary techniques not easily utilized in tissue samples, such as primary human pancreatic islets. Here we demonstrate a robust approach to visualize and quantify formation of key endogenous mitophagy complexes in primary human pancreatic islets. Utilizing the sensitive proximity ligation assay technique to detect interaction of the mitophagy regulators NRDP1 and USP8, we are able to specifically quantify formation of essential mitophagy complexes in situ. By coupling this approach to counterstaining for the transcription factor PDX1, we can quantify mitophagy complexes, and the factors that can impair mitophagy, specifically within beta cells. The methodology we describe overcomes the need for large quantities of cellular extracts required for other protein-protein interaction studies, such as immunoprecipitation (IP) or mass spectrometry, and is ideal for precious human islet&#160;samples generally not available in sufficient quantities for these approaches. Further, this methodology obviates the need for flow sorting techniques to purify beta cells from a heterogeneous islet population for downstream protein applications. Thus, we describe a valuable protocol for visualization of mitophagy highly compatible for use in heterogeneous and limited cell populations.

This protocol outlines a method for quantitative analysis of mitophagy protein complex formation specifically in beta cells from primary human islet samples. This technique thus allows analysis of mitophagy from limited biological material, which are crucial in precious human pancreatic beta cell samples.

Yakınlık ligasyon assay kullanarak ınsan pankreatik Beta hücrelerinde situ Içinde endojen Mitophagy kompleksleri görselleştirme

Mitophagy is an essential mitochondrial quality control pathway, which is crucial for pancreatic islet beta cell bioenergetics to fuel glucose-stimulated ...

Pancreatic Islet Embedding for Paraffin Sections

Experiments using isolated pancreatic islets are important for diabetes research, but islets are expensive and of limited abundance. Islets contain a mixed cell population in a structured architecture that impacts function, and human islets are widely variable in cell type composition. Current frequently used methods to study cultured islets include molecular studies performed on whole islets, lumping disparate islet cell types together, or microscopy or molecular studies on dispersed islet cells, disrupting islet architecture. For in vivo islet studies, paraffin-embedded pancreas sectioning is a powerful technique to assess cell-specific outcomes in the native pancreatic environment. Studying post-culture islets by paraffin sectioning would offer several advantages: detection of multiple outcomes on the same islets (potentially even the exact-same islets, using serial sections), cell-type-specific measurements, and maintaining native islet cell-cell and cell-substratum interactions both during experimental exposure and for analysis. However, existing techniques for embedding isolated islets post-culture are inefficient, time consuming, prone to loss of material, and generally produce sections with inadequate islet numbers to be useful for quantifying outcomes. Clinical pathology laboratory cell block preparation facilities are inaccessible and impractical for basic research laboratories. We have developed an improved, simplified bench-top method that generates sections with robust yield and distribution of islets. Fixed islets are resuspended in warm histological agarose gel and pipetted into a flat disc on a standard glass slide, such that the islets are distributed in a plane. After standard dehydration and embedding, multiple (10+) 4 - 5 &#181;m sections can be cut from the same islet block. Using this method, histological&#160;and immunofluorescent analyses can be performed on mouse, rat, and human islets. This is an effective, inexpensive, time-saving approach to assess cell-type-specific, intact-architecture outcomes from cultured islets.

Ex vivo pancreatic islet studies are important for diabetes research. Existing techniques to study cultured islets in their native 3-dimensional architecture are time consuming, inefficient, and infrequently used. This work describes a new, simple, and efficient method for generating high-quality paraffin sections of whole cultured islets.

Pankreas adacık parafin kesitler için katıştırma

Experiments using isolated pancreatic islets are important for diabetes research, but islets are expensive and of limited abundance. Islets contain a ...

Biyoloji

Imaging Calcium Dynamics in Subpopulations of Mouse Pancreatic Islet Cells

Pancreatic islet hormones regulate blood glucose homeostasis. Changes in blood glucose induce oscillations of cytosolic calcium in pancreatic islet cells that trigger secretion of three main hormones: insulin (from &#946;-cells), glucagon (&#945;-cells) and somatostatin (&#948;-cells). &#946;-Cells, which make up the majority of islet cells and are electrically coupled to each other, respond to the glucose stimulus as one single entity. The excitability of the minor subpopulations, &#945;-cells and &#948;-cells (making up around 20% (30%) and 4% (10%) of the total rodent1 (human2) islet cell numbers, respectively) is less predictable and is therefore of special interest.
Calcium sensors are delivered into the peripheral layer of cells within the isolated islet. The islet or a group of islets is then immobilized and imaged using a fluorescence microscope. The choice of the imaging mode is between higher throughput (wide-field) and better spatial resolution (confocal). Conventionally, laser scanning confocal microscopy is used for imaging tissue, as it provides the best separation of the signal between the neighboring cells. A wide-field system can be utilized too, if the contaminating signal from the dominating population of &#946;-cells is minimized.
Once calcium dynamics in response to specific stimuli have been recorded, data are expressed in numerical form as fluorescence intensity vs. time, normalized to the initial fluorescence and baseline-corrected, to remove the effects linked to bleaching of the fluorophore. Changes in the spike frequency or partial area under the curve (pAUC) are computed vs. time, to quantify the observed effects. pAUC is more sensitive and quite robust whereas spiking frequency provides more information on the mechanism of calcium increase.
Minor cell subpopulations can be identified using functional responses to marker compounds, such as adrenaline and ghrelin, that induce changes in cytosolic calcium in a specific populations of islet cells.

Here, we present a protocol for imaging and quantifying calcium dynamics in heterogeneous cell populations, such as pancreatic islet cells. Fluorescent reporters are delivered into the peripheral layer of cells within the islet, which is then immobilized and imaged, and per-cell analysis of the dynamics of fluorescence intensity is performed.

Fare Pankreas Adacık Hücrelerinin Alt Popülasyonlarında Görüntüleme Kalsiyum Dinamiği

Pancreatic islet hormones regulate blood glucose homeostasis. Changes in blood glucose induce oscillations of cytosolic calcium in pancreatic islet cells ...

İnsan Psödoisletlerinde Hücre İçi Sinyalleşme Olayları ve Hormon Salgılanması

Human Pseudoislet System for Synchronous Assessment of Fluorescent Biosensor Dynamics and Hormone Secretory Profiles

The pancreatic islets of Langerhans, which are small 3D collections of specialized endocrine and supporting cells interspersed throughout the pancreas, have a central role in the control of glucose homeostasis through the secretion of insulin by beta cells, which lowers blood glucose, and glucagon by alpha cells, which raises blood glucose. Intracellular signaling pathways, including those mediated by cAMP, are key for regulated alpha and beta cell hormone secretion. The 3D islet structure, while essential for coordinated islet function, presents experimental challenges for mechanistic studies of the intracellular signaling pathways in primary human islet cells. To overcome these challenges and limitations, this protocol describes an integrated live-cell imaging and microfluidic platform using primary human pseudoislets generated from donors without diabetes that resemble native islets in their morphology, composition, and function. These pseudoislets are size-controlled through the dispersion and reaggregation process of primary human islet cells. In the dispersed state, islet cell gene expression can be manipulated; for example, biosensors such as the genetically encoded cAMP biosensor, cADDis, can be introduced. Once formed, pseudoislets expressing a genetically encoded biosensor, in combination with confocal microscopy and a microperifusion platform, allow for the synchronous assessment of fluorescent biosensor dynamics and alpha and beta cell hormone secretory profiles to provide more insight into cellular processes and function.

Yazar Spotlight: Pseudoislet Protokolü ile Adacık Anormalliklerinin ve İşlevinin Araştırılması 

This protocol describes a method for the synchronous acquisition and co-registration of intracellular signaling events and the secretion of insulin and glucagon by primary human pseudoislets using the adenoviral delivery of a cyclic adenosine monophosphate (cAMP) biosensor, a cAMP difference detector in situ (cADDis), and a microperifusion system.

Floresan Biyosensör Dinamiğinin ve Hormon Salgı Profillerinin Senkron Değerlendirmesi için İnsan Psödoislet Sistemi

The pancreatic islets of Langerhans, which are small 3D collections of specialized endocrine and supporting cells interspersed throughout the pancreas, ...

Adacık Fonksiyon Araştırması için İnsan Pankreasının Dilimlenmesi

Generating Human Pancreatic Tissue Slices to Study Endocrine and Exocrine Pancreas Physiology

It is crucial to study the human pancreas to understand the pathophysiological mechanisms associated with type 1 (T1D) and 2 diabetes (T2D) as well as the pancreas endocrine and exocrine physiology and interplay. Much has been learned from the study of isolated pancreatic islets, but this prevents examining their function and interactions in the context of the whole tissue. Pancreas slices provide a unique opportunity to explore the physiology of normal, inflamed, and structurally damaged islets within their native environment, in turn allowing the study of interactions between endocrine and exocrine compartments to better investigate the complex dynamics of pancreatic tissue. Thus, the adoption of the living pancreas slice platform represents a significant advancement in the field. This protocol describes how to generate living tissue slices from deceased organ donors by tissue embedding in agarose and vibratome slicing as well as their utilization to assess functional readouts such as dynamic secretion and live cell imaging.

Yazar Spotlight: Yenilikçi Pankreas Dilimi Platformlarını Kullanarak Tip 1 Diyabet Araştırmalarını İlerletmek

This protocol describes how to generate human pancreas slices from deceased organ donors to study cell function under near-physiological conditions. This innovative approach enables the investigation of normal and structurally damaged islets and the intricate interplay between endocrine and exocrine compartments.

Endokrin ve Ekzokrin Pankreas Fizyolojisini İncelemek için İnsan Pankreas Dokusu Dilimlerinin Oluşturulması

It is crucial to study the human pancreas to understand the pathophysiological mechanisms associated with type 1 (T1D) and 2 diabetes (T2D) as well as the ...

Confocal peptit Y-pHluorin, görüntüleme: insülin granül ekzositozu olduğu gibi fare ve insan adacıkları görselleştirmek için bir teknik

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Lepr

İnsan pankreas nöro-ada ağının yüksek çözünürlükte 3D görüntüleme

Canlı Pankreas Doku Dilimlerinde Adacık fonksiyonu ve Adacık-İmmün Hücre Etkileşimlerinin Gözlemlenmesi

Yakınlık ligasyon assay kullanarak ınsan pankreatik Beta hücrelerinde situ Içinde endojen Mitophagy kompleksleri görselleştirme

Pankreas adacık parafin kesitler için katıştırma

Fare Pankreas Adacık Hücrelerinin Alt Popülasyonlarında Görüntüleme Kalsiyum Dinamiği

Floresan Biyosensör Dinamiğinin ve Hormon Salgı Profillerinin Senkron Değerlendirmesi için İnsan Psödoislet Sistemi

Floresan Biyosensör Dinamiğinin ve Hormon Salgı Profillerinin Senkron Değerlendirmesi için İnsan Psödoislet Sistemi

Floresan Biyosensör Dinamiğinin ve Hormon Salgı Profillerinin Senkron Değerlendirmesi için İnsan Psödoislet Sistemi

Endokrin ve Ekzokrin Pankreas Fizyolojisini İncelemek için İnsan Pankreas Dokusu Dilimlerinin Oluşturulması