Bu eser Ulusal Bilim Vakfı (NSF) tarafından desteklenen hayır vermek. IOS 1354956. Dr Andrew D. Warren (Lepidoptera ve biyolojik çeşitlilik, Florida doğa tarihi Müzesi ', University of Florida merkezi McGuire) kelebek resimleri kullanmak için izin için teşekkür ederiz.

1. böcek türleri, çözümleri ve istasyonu kurulumu besleme hazırlanması
Not: Bunlar sıvı alımını yetenekleri ve mouthpart Morfoloji22,23önceki çalışmalarda kullanılmıştır çünkü lahana kelebekler (Pieris rapae L., Pieridae) temsilcisi Lepidoptera tür olarak seçilir. Çünkü onlar sık sık gözenekli yüzeyler13tarihinde besleme gözlenir evi sinekler (sinek domestica L., Muscidae) ve mavi şişe sinekler (Calliphora vomitoria L., Calliphoridae) kullanılır.
<ol>
	<li>Sipariş P. rapae larva bir böcek tedarikçi ve arka YavruIar ve çevre odasında bir yetişkin olarak ortaya kadar üzerlerine yapay ( Tablo malzemelerigörmek) diyet olarak 23 ° C ve 18 L: 6D photoperiod için ayarlayın. Sipariş M. domestica ve C. vomitoria olarak pupa ve onları P. rapaeolarak aynı çevre koşulları, arka. Onlar önce besleme deneyler pupa ortaya sonra Yetişkin kelebekler ve sinekler yem yok.</li>
	<li>Bir % 20 Sükroz çözüm (kontrol) ve sıvı alımı için test etmek için % 20 Sükroz nanopartikül çözüm hazırlamak. Floresan manyetik nano tanecikleri ekleyerek nanopartikül çözüm hazırlamak (demir oksit polyacrylic asit kaplama, yaklaşık 20 nm çapında)24 -% 20 Sükroz çözüm (1 mg/mL dH2O nano tanecikleri ile % 20 sükroz Çözüm 1:1). Fosfat tamponlu tuz (PBS) 1 x çözeltisi hazırlamak (10 x 1 x dH2O, pH 7.4 seyreltilmiş), hangi gruptakiler için kullanılır.</li>
	<li>Bir kelepçe ve ayrı bir beslenme sahne (düz platformu) el ile bir manipülatör oluşan bir beslenme merkezi kurmak (şekil 1). İçbükey bir slayt besleme sahnesinde yerini ve naylon net filtreleri gözenekleri boyutu çapı 1, 5, 8, 11, 20, 30, 41 veya 60 µm ve membran filtreleri gözenek boyutu çapı veya besleme deneyler için yakın 10 µm.</li>
</ol>
2. besleme protokolü
<ol>
	<li>Böceğin organları, bacaklar ve kanatları katlanmış bir kağıt mendil sarın. Sadece baş ve ağız maruz böcek konumlandırın. Böcek böcek besleme sahne (şekil 1) bekletilir hangi birlikte manipülatör üzerinde kelepçe tarafından tutulan iki slayda mikroskop, wings yerleştirin.</li>
	<li>% 20 Sükroz çözüm veya % 20 Sükroz nanopartikül çözüm bir micropipette ile 30 µL damlacık içbükey slayt merkezi için yönetmek. Filtre kağıdı ortasına nanopartikül çözüm damlacık ile hizalanır içbükey slayda belirli gözenek boyutu tek bir filtre kağıt yerleştirin. (Şekil 1) gözenekleri doldurarak filtre kağıdı yayılan çözüm damlacığı ve filtre kağıdı arasındaki temas sonuçlanır. Not: Filtre kağıdı nano tanecikleri nerede yem böcekler filtre kağıdı üzerine olası varlığı en aza indirmek için tam tersi, yerine damlacığı üstüne yerleştirilir.</li>
	<li>Ağız sadece distal bölgelerinde ıslak filtre kağıt besleme Sahne Alanı'nda (şekil 1) iletişim kurabilirsiniz manipülatör ile böcek konumlandırın. Ağız filtre kağıdı üzerine genişletmek ve böcek için 45 beslemek izin vermek için bir böcek PIN kullanmak s.</li>
	<li>Pozisyon ağız filtre kağıdı yüzeyinde mevcut olabilecek sıvı filmlerde besleme böcekler olasılığını en aza indirmek için böylece slayt (i.e. düz parçası dokunmadan filtre kağıdı, bir parçası ile temas doğrudan slayt içbükey parçası yukarıda). Böcek besleme bir ilgi ifade değil Eğer, ağız için filtre kağıdı böcek iğne ile besleme saat süresince tutulamaz.</li>
</ol>
3. diseksiyonlar
<ol>
	<li>Böylece böceğin beden karşılamak için yeterli bir çözüm PBS çözüm bir 50 mm izle cam yer. İzle cam ekipman (makas, böcek pimleri, para cezası nokta forseps anatomi anatomi bahar mikro) stereoscope yanında anatomi bir stereoscope ve pozisyon böcek altında yerleştirin.</li>
	<li>Besleme sonra böcek doku kağıt kaldır ve kanatları kapalı tutun. Baş, bacaklar ve böcek kanatları bahar mikro diseksiyon makası ile kaldırmak ve izle cam (Şekil 2) PBS çözümde böcek yer.</li>
	<li>Gerekirse, böcekler diseksiyonlarının önce anestezi. Forseps karın distal bölge yakınındaki kütikül tarafından böcek tutmak için kullanın. Dominant el ile manikür bir anterior yönde Toraks ulaşılana kadar arka sonunda başlayan karın yan tarafındaki kesmek için makas dissekan bahar mikro kullanın. Sadece manikür kesilir ve kurbanın kanal böcek içinde değil zarar (Şekil 2) sağlamak için özel dikkat.</li>
	<li>Kurbanın kanal (Şekil 2) içinde ortaya çıkarmak için karın açmak için diseksiyon makası ile manikür ek kesim yapmak. Böcek iğneler yardımı ile karın kütikül, yağ vücut ve diğer yapıları kaldırmak ve onları sadece göğüs ve kurbanın kanal izle cam bırakarak sonraki bertarafı için İzle cam dışında yerini değiştirin. Not: Göğüs ve karın dönemde bulunan bir kese benzeri yapı (kurbanın kanalı'nın bir uzantısı) kırpma, diseksiyon ortaya çıkaracaktır.</li>
	<li>Kırpma maruz kalmaz, ürün ortaya kadar Toraks içine ek kesiler makasla olun. Ürün görünür olduğunda, sadece kurbanın kanal izle cam (Şekil 2) kırpma bırakarak böcek kalan bölümlerini Kes gitsin. Not: Lepidoptera kırpma neredeyse şeffaf ve selofan benzeri bu değil sıvı ile dolu ve genişletilmiş Eğer tanımak zor olabilir doğa veya bu diseksiyon sırasında kesilir.</li>
	<li>İyi noktası forseps dissekan sonraki görüntüleme (Şekil 2) bir coverslip (24 x 24 mm) üzerine kırpma eklemenizi sağlar.</li>
</ol>
4. alınan nano tanecikleri tespiti
<ol>
	<li>Ürün üzerinde para cezası nokta diseksiyon forseps kullanarak coverslip bakım ürün parçalanma önlemek pozisyon. CY3 kanal (veya faz kontrast) bir ters confocal mikroskop düşsel vasıl 20 X büyütme için kullanın. Sonra hemen diseksiyon kurumasını önlemek için kırpma görüntü.</li>
	<li>Bar (41,3 mm uzunluğunda ve 8 mm çapında) manyetik bir heyecan mikroskop çalışma aşamasında kontrolünü kaybediyor elinde tut.</li></ol>Böylece her ileri geri hareket yaklaşık bir saniye (Şekil 2) alır ve geriye kırpma (yaklaşık 10 mm mesafe kırpma) yanında manyetik heyecan bar el salla.
	<li>Manyetik heyecan bar el salladı iken, nano tanecikleri için ürün bakarak kontrol edin. Yavaş yavaş çalışma sahne nanopartikül hareketi içinde hemen hemen saydam kırpma için mikroskop oküler lens aracılığıyla bakarken ileri geri hareket. Nano tanecikleri ürün varsa, pozitif besleme, belirten onlar cevap verecektir ve hep bir ağızdan ile manyetik dalga çubuk (Şekil 2) ilave edin.</li>

<ol>
	<li>Vijaysegaran, S., Walter, G. H., Drew, R. A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouthpart+structure,+feeding+mechanisms,+and+natural+food+sources+of+adult+Bactrocera+(Diptera:+Tephritidae).">Mouthpart structure, feeding mechanisms, and natural food sources of adult Bactrocera (Diptera: Tephritidae).</a> Ann Entomol Soc Am. 90, 184-201 (1997).</li><li>Lehnert, M. S., Monaenkova, D., Andrukh, T., Beard, C. E., Adler, P. H., Kornev, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hydrophobic-hydrophilic+dichotomy+of+the+butterfly+proboscis.">Hydrophobic-hydrophilic dichotomy of the butterfly proboscis.</a> J R Soc Interface. 10, 1-10 (2013).</li><li>Zhao, J., Wu, J., Yan, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Erection+mechanism+of+glossal+hairs+during+honeybee+feeding.">Erection mechanism of glossal hairs during honeybee feeding.</a> J Theor biol. 386, 62-68 (2015).</li><li>Redak, R. A., Purcell, A. H., Lopes, J. R. S., Blua, M. J., Mizell, R. F., Andersen, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+biology+of+xylem+fluid-feeding+insect+vectors+of+Xylella+fastidiosa+and+their+relation+to+disease+epidemiology.">The biology of xylem fluid-feeding insect vectors of Xylella fastidiosa and their relation to disease epidemiology.</a> Ann. Review Entomol. 49, 243-270 (2004).</li><li>B&#252;ttiker, W., Krenn, H. W., Putterill, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+proboscis+of+eye-frequenting+and+piercing+Lepidoptera+(Insecta).">The proboscis of eye-frequenting and piercing Lepidoptera (Insecta).</a> Zoomorphology. 116, 77-83 (1996).</li><li>Light, J. E., Smith, V. S., Allen, J. M., Durden, L. A., Reed, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evolutionary+history+of+mammalian+sucking+lice+(Phthiraptera:+Anoplura).">Evolutionary history of mammalian sucking lice (Phthiraptera: Anoplura).</a> BMC Evol Biol. 10, (2010).</li><li>Krenn, H. W., Aspock, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Form,+function+and+evolution+of+the+mouthparts+of+blood-feeding+Arthropoda.">Form, function and evolution of the mouthparts of blood-feeding Arthropoda.</a> Arthropod Struct Dev. 41, 101-118 (2012).</li><li>Lehnert, M. P., Pereira, R. M., Koehler, P. G., Walker, W., Lehnert, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Control+of+Cimex+lectularius+using+heat+combined+with+dichlorvos+resin+strips.">Control of Cimex lectularius using heat combined with dichlorvos resin strips.</a> Med Vet Entomol. 25, 460-464 (2011).</li><li>Zaspel, J. M., Kononenko, V. S., Goldstein, P. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Another+blood+feeder?+Experimental+feeding+of+a+fruit-piercing+moth+species+on+human+blood+in+the+Primorye+Territory+of+far+eastern+Russia+(Lepidoptera:+Noctuidae:+Calpinae).">Another blood feeder? Experimental feeding of a fruit-piercing moth species on human blood in the Primorye Territory of far eastern Russia (Lepidoptera: Noctuidae: Calpinae).</a> J Insect Behav. 20, 437-451 (2007).</li><li>Barth, F. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Insects and flowers: the biology of a partnership. , (1991).</li><li>Foil, L. D., Adams, W. V., McManus, J. M., Issel, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bloodmeal+residues+on+mouthparts+of+Tabanus+fuscicostatus+(Diptera:+Tabanidae)+and+the+potential+for+mechanical+transmission+of+pathogens.">Bloodmeal residues on mouthparts of Tabanus fuscicostatus (Diptera: Tabanidae) and the potential for mechanical transmission of pathogens.</a> J Med Entomol. 24, 613-616 (1987).</li><li>Monaenkova, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Butterfly+proboscis:+combining+a+drinking+straw+with+a+nanosponge+facilitated+diversification+of+feeding+habits.">Butterfly proboscis: combining a drinking straw with a nanosponge facilitated diversification of feeding habits.</a> J R Soc Interface. 9, 720-726 (2012).</li><li>Lehnert, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouthpart+conduit+sizes+of+fluid-feeding+insects+determine+the+ability+to+feed+from+pores.">Mouthpart conduit sizes of fluid-feeding insects determine the ability to feed from pores.</a> Proc. R. Soc. B. 284, (2017).</li><li>Grimaldi, D., Engel, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Evolution of the insects. , (2005).</li><li>Adler, P. H., Foottit, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Insect biodiversity: science and society. , (2009).</li><li>Tsai, C. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nanoporous+artificial+proboscis+for+probing+minute+amount+of+liquids.">Nanoporous artificial proboscis for probing minute amount of liquids.</a> Nanoscale. 3, (2011).</li><li>Krenn, H. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proboscis+sensilla+in+Vanessa+cardui+(Nympahlidae,+Lepidoptera):+Functional+morphology+and+significance+of+flower-probing.">Proboscis sensilla in Vanessa cardui (Nympahlidae, Lepidoptera): Functional morphology and significance of flower-probing.</a> Zoomorphology. 118, 23-30 (1998).</li><li>Plateau, J. A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+and+theoretical+researches+on+the+figures+of+equilibrium+of+liquid+mass+withdrawn+from+the+action+of+gravity.+(Transl).">Experimental and theoretical researches on the figures of equilibrium of liquid mass withdrawn from the action of gravity. (Transl).</a> Annual Report of the Board Regents Smithsonian Institution. , 207-285 (1863).</li><li>Socha, J. J., Westneat, M. W., Harrison, J. F., Waters, J. S., Lee, W. -. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Real-time+phase-contrast+x-ray+imaging:+a+new+technique+for+the+study+of+animal+form+and+function.">Real-time phase-contrast x-ray imaging: a new technique for the study of animal form and function.</a> BMC Biol. 5, 6 (2007).</li><li>Westneat, M. W., Socha, J. J., Lee, W. -. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Advances+in+biological+structure,+function+and+physiology+using+synchrotron+x-ray+imaging.">Advances in biological structure, function and physiology using synchrotron x-ray imaging.</a> Annu Rev Physiol. 70, 119-142 (2008).</li><li>Lee, W. -. K., Socha, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+visualization+of+hemolymph+flow+in+the+heart+of+a+grasshopper+(Schistocerca+americana).">Direct visualization of hemolymph flow in the heart of a grasshopper (Schistocerca americana).</a> BMC Physiology. 9, 2 (2009).</li><li>Lehnert, M. S., Mulvane, C. P., Brother, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouthpart+separation+does+not+impede+butterfly+feeding.">Mouthpart separation does not impede butterfly feeding.</a> Arthropod Struct Dev. 43, 97-102 (2014).</li><li>Lehnert, M. S., Beard, C. E., Gerard, P. D., Kornev, K. G., Adler, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structure+of+the+lepidopteran+proboscis+in+relation+to+feeding+guild.">Structure of the lepidopteran proboscis in relation to feeding guild.</a> J Morphol. 277, 167-182 (2016).</li><li>Yan, H., Sung, B., Kim, M. -. H., Kim, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+strategy+for+functionalizable+photoluminescent+magnetic+nanoparticles.">A novel strategy for functionalizable photoluminescent magnetic nanoparticles.</a> Mater. Res. Express. 1, 045032 (2014).</li><li>Kingsolver, J. G., Daniel, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+the+mechanics+and+energetics+of+nectar+feeding+in+butterflies.">On the mechanics and energetics of nectar feeding in butterflies.</a> J Theor Biol. 76, 167-179 (1979).</li><li>Krenn, H. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Feeding+mechanisms+of+adult+Lepidoptera:+Structure,+function,+and+evolution+of+the+mouthparts.">Feeding mechanisms of adult Lepidoptera: Structure, function, and evolution of the mouthparts.</a> Ann Rev Entomol. 55, 307-327 (2010).</li><li>Tsai, C. -. C., Monaenkova, D., Beard, C. E., Adler, P. H., Kornev, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Paradox+of+the+drinking-straw+model+of+the+butterfly+proboscis.">Paradox of the drinking-straw model of the butterfly proboscis.</a> J Exp Biol. 217, 2130-2138 (2014).</li><li>Bauder, J. A. S., Handschuh, S., Metscher, B. D., Krenn, H. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+morphology+of+the+feeding+apparatus+and+evolution+of+proboscis+length+in+metalmark+butterflies+(Lepidoptera:+Riodinidae).">Functional morphology of the feeding apparatus and evolution of proboscis length in metalmark butterflies (Lepidoptera: Riodinidae).</a> Biol J Linn Soc. 110, 291-304 (2013).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Böcek mouthpart işlevselliği tarihsel olarak brüt Morfoloji çalışmalardan anlaşılmaktadır (örn., Lepidoptera hortum işlevi ilgili bir içme saman25,-26); Ancak, deneysel kanıt dahil son yıllarda yapılan çalışmalarda bir paradigma kayması böcek ağız ve yapı-fonksiyon ilişkileri2,12,13 karmaşıklığı anlayışımız içinde sonuçlandı ...

Birçok böcek ağız (proboscises) gruplarınız sıvılar üzerinde beslenmesi için uyarlanmış, meyve, çürüyen nektar gibi su akar (örneğin Diptera1, Lepidoptera2, Hymenoptera3), xylem (Hemiptera4), gözyaşları (Lepidoptera 5) ve kan (Phthiraptera6, sinek7, yani7, Hemiptera8, Lepidoptera9). Böcekler üzerinde sıvı besleme yeteneği ekosistem Sağlığı (örneğin tozlaşma10), hastalık iletim4,11, biodiversification2,12ve çalışmalar için uygundur yakınsak evrim13. Çeşitli gıda kaynaklarına rağmen bazı sıvı besleme böcekler arasında bir tema mikro veya nano boyutlu damlacıkları, sıvı Filmler veya gözenekli yüzeyler için sınırlı sıvı az miktarda elde etmek için yeteneğidir.
Böcekler (% 20 tüm hayvan türlerinin14,15) sıvı beslenme ve gıda kaynakları çeşitli üzerinde beslemek için yeteneklerini geniş çeşitliliği göz önüne alındığında, onların beslenme anlama davranışları ve sıvı alımını mekanizmaları çok alanda önemli. Böcek mouthpart işlevi, örneğin, biomimetic teknoloji, örneğin, küçük miktarlarda sıvı istihdam benzer yöntemlerle kazanılması gibi görevleri gerçekleştirebilirsiniz mikrosıvısal cihazlar gelişiminde bir rol oynamıştır böcekler tarafından16. Sıvı alımını mekanizmaları, ancak, çalışmalarda temel bir sorun sadece nasıl böcekler üzerinde sıvı besleme belirleme ama mekanizmasını destekler deneysel kanıt alınıyor. Sadece davranış kullanarak (örneğin, hortum12,17ile sondalama) beslenme için bir gösterge çünkü başarılı sıvı alımını onaylamak değil, ne de rota belirlemek için bir yol sağlamaz yetersiz olduğu gibi bu Onlar böcek geçerken sıvıları seyahat. Buna ek olarak, deneyler ile az miktarda sıvı daha iyi performans sıvı bir sınırlayıcı kaynak2,12nerede doğal beslenme senaryoları temsil eder.
Faz kontrast görüntüleme Monarch kelebek (Danaus plexippus L.) ile nasıl kelebekler gözenekli yüzeyler12den küçük miktarlarda sıvı besleme değerlendirmek için kullanılan x-ışını. Monarch kelebek için küçük gözenekleri yemek kanalı içine sınırlı sıvıları getirmek için hortum cuticular projeksiyonlar (dorsal legulae) arasında boşluk üzerinden kılcal eylemini kullanın. Gelen sıvı büyür ve sonra kelebeğin gut için eylem başından emme pompası tarafından taşınır Yaylası istikrarsızlık12,18tarafından sıvı bir köprü çöker gıda kanal duvarda bir film oluşturur. X-ışını faz kontrast görüntüleme böcekler12,19,20,21içinde sıvı akış görüntülenmesi için en uygun bir araç olsa da, teknik hazır değil ve daha kolay yöntemi hızlı alımı sıvıları yeteneği bir böceğin değerlendirilmesi için gerekli değildir ve onları yemek.
D. plexippus için besleme mekanizması diğer Lepidoptera ve sinekler (Diptera) (her iki grup sıvılar üzerinde gözenekli yüzeyler arasında besleme) için geçerli olup olmadığını belirlemek için anıldı vd. 13 burada ayrıntılı rapor gözenekli yüzeyler arasında küçük miktarlarda sıvı beslemeye bir böceğin yeteneği değerlendirmek için bir teknik uygulanır. Burada özetlenen protokolü kullanan çalışmalar ıslak ve gözenekli yüzeyler için olsa da, bu havuzu besleme mekanizmaları adresleme gibi diğer çalışmalar için yöntemler değiştirilebilir. Buna ek olarak, uygulamaları havacilik ve bioinspired teknolojisi de dahil olmak üzere diğer alanlarına genişletmek.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>20% sucrose solution</td>
			<td>Domino Sugar</td>
			<td></td>
			<td>Sugar needed to produce the sucrose solution with dH2O</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffered Saline (PBS)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P5493</td>
			<td>10X concentration diluted to 1X in dH2O for insect dissections</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Single depression concave slide</td>
			<td>AmScope</td>
			<td>BS-C6</td>
			<td>Slide is necessary for feeding stage setup</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter paper</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>NY6004700 (60 &#181;m)</td>
			<td>Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter paper</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>NY4104700 (41 &#181;m)</td>
			<td>Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter paper</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>NY3004700 (30 &#181;m)</td>
			<td>Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter paper</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>NY2004700 (20 &#181;m)</td>
			<td>Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter paper</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>NY1104700 (11 &#181;m)</td>
			<td>Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter paper</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>TCTP04700 (10 &#181;m)</td>
			<td>Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter paper</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>TETP04700 (8 &#181;m)</td>
			<td>Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter paper</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>TMTP04700 (5 &#181;m)</td>
			<td>Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter paper</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>RTTP04700 (1 &#181;m)</td>
			<td>Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iris microdissecting scissors</td>
			<td>Carolina Biological Supply Company</td>
			<td>623555</td>
			<td>Scissors used for dissections</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insect pins (#1)</td>
			<td>Bioquip Products</td>
			<td>1208B1</td>
			<td>Pins used during dissections and feeding trials</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Extra-fine point dissecting forceps</td>
			<td>Carolina Biological Supply Company</td>
			<td>624684</td>
			<td>Dissecting equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leica M205 C Stereoscope</td>
			<td>Leica Microsystems</td>
			<td>M205 C</td>
			<td>Stereoscope used for dissections</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted confocal microscope</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>IX81</td>
			<td>Fluorescent microscope used to detect magnetic nanoparticles</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisherbrand PTFE Disposable Stir Bar</td>
			<td>Fisherscientific</td>
			<td>S68067</td>
			<td>Magnet used to detect nanoparticles</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kimtech Science Kimwipes</td>
			<td>Kimberly-Clark Professional</td>
			<td>34155</td>
			<td>Tissues used to secure insects during feeding trials</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>House fly (Musca domestica) pupae</td>
			<td>Mantisplace.com</td>
			<td></td>
			<td>insects for experiments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blue bottle fly (Calliphora vomitoria) pupae</td>
			<td>Mantisplace.com</td>
			<td></td>
			<td>insects for experiments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cabbage butterfly (Pieris rapae) larvae</td>
			<td>Carolina Biological Supply Company</td>
			<td>144102</td>
			<td>insects for experiments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Finnpipette F1&#160;</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>4641080N</td>
			<td>micropipette for dispensing liquids</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Finntip 250 pipette tips</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>9400250</td>
			<td>micropipette tips</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope Glass cover slides (=coverslips) (24 x 24 mm)</td>
			<td>AmScope</td>
			<td>CS-S24-100</td>
			<td>coverslips for viewing the insect&#39;s crop on confocal microscope</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

the ingestion of fluorescent, magnetic nanoparticles for determining fluid-uptake abilities in insects

Sıvı besleme böcekler havuzları, Filmler, ortamda mevcut olan veya küçük gözenekleri için sınırlı sıvılar, çeşitli yemek. Sıvı Alım çalışmaları mouthpart yapısı ve fonksiyonu ilişkileri değerlendirme gerektirir; Ancak, sıvı alımını mekanizmaları tarihsel olarak yapısal mimarisi, deneysel kanıtlar ile bazen refakatsiz gözlemleri değişkenden. Burada, kelebekler (Lepidoptera) ve az miktarda sıvı kullanarak sinekler (Diptera) ile sıvı alımını yeteneklerini değerlendirmek için bir roman yöntemi raporu. Böcekler belirli gözenek boyutları filtre kağıtları üzerinden Floresan, manyetik nano tanecikleri ile karışık bir % 20 Sükroz çözüm ile beslenir. Kırpma (sıvılar depolamak için kullanılan iç yapısı) böcek kaldırılır ve üzerinde confocal mikroskop yer. Bir mıknatıs böcekler sıvıları yemek mümkün olup olmadığını gösteren nano tanecikleri, varlığını belirlemek için ürün tarafından el salladı. Bu yöntem, Lepidoptera ve solucanlar arasında gözenekli yüzeyler arasında beslenirken paylaşılan potansiyel bir yaygın besleme mekanizması (kılcal eylem ve sıvı köprü oluşumu) ortaya çıkarmak için kullanılır. Buna ek olarak, bu yöntem mekanizmaları arasında sıvı besleme böcekler önemli hastalık iletim ve Biyomimetik ve nano veya mikro ölçekli kanalları dahil olabilecek diğer çalışmalarda da dahil olmak üzere çeşitli beslenme çalışmaları için kullanılabilir nerede sıvı taşıma doğrulama gerektirir.

Desen sıvı alımını yeteneklerine sıvı besleme böcekler arasında çalışma oluştuğunda besleme belirlenmesi gerekir. Burada özetlenen protokolü13Lepidoptera ve solucanlar arasında sınırlayıcı gözenek boyutu varsayımını sınamak için kullanılır. Sınırlayıcı gözenek boyutu hipotez gözenek boyutu çapı besleme kanallarını12çapı daha küçükse, sıvı besleme böcekler sıvı dolu gözenekleri yem olamaz devl...

Watch this Scientific Journal Video about The Ingestion of Fluorescent, Magnetic Nanoparticles for Determining Fluid-uptake Abilities in Insects at JoVE.com

The Ingestion of Fluorescent, Magnetic Nanoparticles for Determining Fluid-uptake Abilities in Insects

Sıvı besleme böcekler dakika miktarlarda sıvı gözenekli yüzeyler elde etmek için yeteneği var. Bu iletişim kuralı doğrudan sıvılar gözenekli yüzeyler Floresan, manyetik nano tanecikleri ile besleme çözümleri kullanarak yemek böcek için yetenek belirlemek için bir yöntem açıklanır.

Floresan, sindirim böceklerde sıvı alımını yeteneklerini belirlemek için manyetik nano tanecikleri

Fluid-feeding insects ingest a variety of liquids, which are present in the environment as pools, films, or confined to small pores. Studies of liquid ...

the-ingestion-fluorescent-magnetic-nanoparticles-for-determining

Research

JoVE Journal

Biology

6.3K Görüntüleme.  Kent State University at Stark. Sıvı besleme böcekler dakika miktarlarda sıvı gözenekli yüzeyler elde etmek için yeteneği var. Bu iletişim kuralı doğrudan sıvılar gözenekli yüzeyler Floresan, manyetik nano tanecikleri ile besleme çözümleri kullanarak yemek böcek için yetenek belirlemek için bir yöntem açıklanır.

Video: The Ingestion of Fluorescent, Magnetic Nanoparticles for Determining Fluid-uptake Abilities in Insects

Choice and No-Choice Assays for Testing the Resistance of A. thaliana to Chewing Insects

Larvae of the small white cabbage butterfly are a pest in agricultural settings. This caterpillar species feeds from plants in the cabbage family, which include many crops such as cabbage, broccoli, Brussel sprouts etc. Rearing of the insects takes place on cabbage plants in the greenhouse. At least two cages are needed for the rearing of Pieris rapae. One for the larvae and the other to contain the adults, the butterflies. In order to investigate the role of plant hormones and toxic plant chemicals in resistance to this insect pest, we demonstrate two experiments. First, determination of the role of jasmonic acid (JA - a plant hormone often indicated in resistance to insects) in resistance to the chewing insect Pieris rapae. Caterpillar growth can be compared on wild-type and mutant plants impaired in production of JA. This experiment is considered "No Choice", because larvae are forced to subsist on a single plant which synthesizes or is deficient in JA. Second, we demonstrate an experiment that investigates the role of glucosinolates, which are used as oviposition (egg-laying) signals. Here, we use WT and mutant Arabidopsis impaired in glucosinolate production in a "Choice" experiment in which female butterflies are allowed to choose to lay their eggs on plants of either genotype. This video demonstrates the experimental setup for both assays as well as representative results.

Plant resistance to chewing insect herbivores can be tested in several ways. Here, we demonstrate how to set-up a choice and a no-choice experiment with the model plant Arabidopsis thaliana to identify resistance against the pest species Pieris rapae.

Çiğneme Böcekler A. thaliana Direnç Test seçimi ve No-Choice Tahliller

Larvae of the small white cabbage butterfly are a pest in agricultural settings. This caterpillar species feeds from plants in the cabbage family, which ...

Biyoloji

Labeling hESCs and hMSCs with Iron Oxide Nanoparticles for Non-Invasive in vivo Tracking with MR Imaging

In recent years, stem cell research has led to a better understanding of developmental biology, various diseases and its potential impact on regenerative medicine. A non-invasive method to monitor the transplanted stem cells repeatedly in vivo would greatly enhance our ability to understand the mechanisms that control stem cell death and identify trophic factors and signaling pathways that improve stem cell engraftment. MR imaging has been proven to be an effective tool for the in vivo depiction of stem cells with near microscopic anatomical resolution. In order to detect stem cells with MR, the cells have to be labeled with cell specific MR contrast agents. For this purpose, iron oxide nanoparticles, such as superparamagnetic iron oxide particles (SPIO), are applied, because of their high sensitivity for cell detection and their excellent biocompatibility. SPIO particles are composed of an iron oxide core and a dextran, carboxydextran or starch coat, and function by creating local field inhomogeneities, that cause a decreased signal on T2-weighted MR images. This presentation will demonstrate techniques for labeling of stem cells with clinically applicable MR contrast agents for subsequent non-invasive in vivo tracking of the labeled cells with MR imaging.

For the evaluation of new stem cell therapies it is important to non-invasively track the injected cells in vivo. This video will show you how to label human mesenchymal and embryonic stem cells with iron oxide based contrast agents in vivo for subsequent MR imaging in vivo.

Demir Oksit hESC ve hMSCs Etiketleme MR Görüntüleme in vivo Takip Non-Invasive Nanopartiküller

In recent years, stem cell research has led to a better understanding of developmental biology, various diseases and its potential impact on regenerative ...

Counting and Determining the Viability of Cultured Cells

Determining the number of cells in culture is important in standardization of culture conditions and in performing accurate quantitation experiments. A hemacytometer is a thick glass slide with a central area designed as a counting chamber. Cell suspension is applied to a defined area and counted so cell density can be calculated. 

Determining the number of cells in culture is important in standardization of culture conditions and in performing accurate quantitation experiments. In this video, we demonstrate how cells are counted using a hemacytometer.

Doku ve Hücre Sayım ve Canlılık Belirlenmesi

Determining the number of cells in culture is important in standardization of culture conditions and in performing accurate quantitation experiments. A ...

Fluorescent Labeling of Drosophila Heart Structures

The Drosophila melanogaster dorsal vessel, or heart, is a tubular structure comprised of a single layer of contractile cardiomyocytes, pericardial cells that align along each side of the heart wall, supportive alary muscles and, in adults, a layer of ventral longitudinal muscle cells. The contractile fibers house conserved constituents of the muscle cytoarchitecture including densely packed bundles of myofibrils and cytoskeletal/submembranous protein complexes, which interact with homologous components of the extracellular matrix. Here we describe a protocol for the fixation and the fluorescent labeling of particular myocardial elements from the hearts of dissected larvae and semi-intact adult Drosophila. Specifically, we demonstrate the labeling of sarcomeric F-actin and of &alpha;-actinin in larval hearts. Additionally, we perform labeling of F-actin and &alpha;-actinin in myosin-GFP expressing adult flies and of &alpha;-actinin and pericardin, a type IV extracellular matrix collagen, in wild type adult hearts. Particular attention is given to a mounting strategy for semi-intact adult hearts that minimizes handling and optimizes the opportunity for maintaining the integrity of the cardiac tubes and the associated tissues. These preparations are suitable for imaging via fluorescent and confocal microscopy. Overall, this procedure allows for careful and detailed analysis of the structural characteristics of the heart from a powerful genetically tractable model system.

Fluorescent Labeling of Drosophila Heart Structures

Here we describe a basic protocol for fluorescent labeling of different elements of heart tubes from larva and adult Drosophila melanogaster. These specimens are well-suited for imaging via fluorescent or confocal microscopy. This technique permits detailed structural analysis of the features of the hearts from a powerful model organism.

VE Floresan Etiketleme Drosophila Kalp Yapıları

The Drosophila melanogaster dorsal vessel, or heart, is a tubular structure comprised of a single layer of contractile cardiomyocytes, pericardial cells ...

Purification of the M. magneticum Strain AMB-1 Magnetosome Associated Protein MamA&Delta;41

Magnetotactic bacteria comprise a diverse group of aquatic microorganisms that are able to orientate themselves along geomagnetic fields. This behavior is believed to aid their search for suitable environments (1). This capability is conferred by the magnetosome, a subcellular organelle that consists of a linear-chain assembly of lipid vesicles each able to biomineralize and enclose a ~50-nm crystal of magnetite or greigite. A principle component of the magnetosome that was shown to be required for the formation of functional vesicles is MamA. MamA is a highly abundant magnetosome-associated protein which is one of the most characterized magnetosome-associated proteins in vivo (2-6). This article focuses on the purification of MamA, which despite being studied in vivo, no clear functional or structural details have been identified for it. Bioinformatics analysis suggested that MamA is a tetra-tricopeptide repeat (TPR) containing protein. TPR is a structural motif found as such or forming part of a bigger fold in a wide range of proteins, it serves as a template for protein-protein interactions and mediates multi-protein complexes (7). TPRs are involved in many crucial tasks in eukaryotic cell organelle processes and many bacterial pathways (8-14). In order to understand MamA, a unique TPR containing protein, highly purified protein is required as a first step. In this article, we present the purification protocol for a stable MamA deletion mutant (MamA&Delta;41) from M. magneticum AMB-1.

MamA is a unique Magnetosome associated protein which was shown to be involved in magnetosome activation. Here we present the purification protocol of MamA deletion mutant (MamA&Delta;41) from M. magneticum AMB-1.

Saflaştırılması M. magneticum Deformasyon AMB-1 Magnetosome İlişkili Protein MamAΔ41

Magnetotactic bacteria comprise a diverse group of aquatic microorganisms that are able to orientate themselves along geomagnetic fields. This behavior is ...

Determining the Contribution of the Energy Systems During Exercise

One of the most important aspects of the metabolic demand is the relative contribution of the energy systems to the total energy required for a given physical activity. Although some sports are relatively easy to be reproduced in a laboratory (e.g., running and cycling), a number of sports are much more difficult to be reproduced and studied in controlled situations. This method presents how to assess the differential contribution of the energy systems in sports that are difficult to mimic in controlled laboratory conditions. The concepts shown here can be adapted to virtually any sport.
The following physiologic variables will be needed: rest oxygen consumption, exercise oxygen consumption, post-exercise oxygen consumption, rest plasma lactate concentration and post-exercise plasma peak lactate. To calculate the contribution of the aerobic metabolism, you will need the oxygen consumption at rest and during the exercise. By using the trapezoidal method, calculate the area under the curve of oxygen consumption during exercise, subtracting the area corresponding to the rest oxygen consumption. To calculate the contribution of the alactic anaerobic metabolism, the post-exercise oxygen consumption curve has to be adjusted to a mono or a bi-exponential model (chosen by the one that best fits). Then, use the terms of the fitted equation to calculate anaerobic alactic metabolism, as follows: ATP-CP metabolism = A1 (mL . s-1) x t1 (s). Finally, to calculate the contribution of the lactic anaerobic system, multiply peak plasma lactate by 3 and by the athlete&#x2019;s body mass (the result in mL is then converted to L and into kJ).
The method can be used for both continuous and intermittent exercise. This is a very interesting approach as it can be adapted to exercises and sports that are difficult to be mimicked in controlled environments. Also, this is the only available method capable of distinguishing the contribution of three different energy systems. Thus, the method allows the study of sports with great similarity to real situations, providing desirable ecological validity to the study.

This protocol allows researchers focused on exercise and sports sciences to determine the relative contribution of three different energy systems to the total energy expenditure during a large variety of exercises.

Egzersiz sırasında Enerji Sistemlerinin Katkısı Belirlenmesi

One of the most important aspects of the metabolic demand is the relative contribution of the energy systems to the total energy required for a given ...

Simultaneous Measurement of Mitochondrial Calcium and Mitochondrial Membrane Potential in Live Cells by Fluorescent Microscopy

Apart from their essential role in generating ATP, mitochondria also act as local calcium (Ca2+) buffers to tightly regulate intracellular Ca2+ concentration. To do this, mitochondria utilize the electrochemical potential across their inner membrane (&#916;&#936;m) to sequester Ca2+. The influx of Ca2+ into the mitochondria stimulates three rate-limiting dehydrogenases of the citric acid cycle, increasing electron transfer through the oxidative phosphorylation (OXPHOS) complexes. This stimulation maintains &#916;&#936;m, which is temporarily dissipated as the positive calcium ions cross the mitochondrial inner membrane into the mitochondrial matrix.
We describe here a method for simultaneously measuring mitochondria Ca2+ uptake and &#916;&#936;m in live cells using confocal microscopy. By permeabilizing the cells, mitochondrial Ca2+ can be measured using the fluorescent Ca2+ indicator Fluo-4, AM, with measurement of &#916;&#936;m using the fluorescent dye tetramethylrhodamine, methyl ester, perchlorate (TMRM). The benefit of this system is that there is very little spectral overlap between the fluorescent dyes, allowing accurate measurement of mitochondrial Ca2+ and &#916;&#936;m simultaneously. Using the sequential addition of Ca2+ aliquots, mitochondrial Ca2+ uptake can be monitored, and the concentration at which Ca2+ induces mitochondrial membrane permeability transition and the loss of &#916;&#936;m determined.

Mitochondria can utilize the electrochemical potential across their inner membrane (&#916;&#936;m) to sequester calcium (Ca2+), allowing them to shape cytosolic Ca2+ signaling within the cell. We describe a method for simultaneously measuring mitochondria Ca2+ uptake and &#916;&#936;m in live cells using fluorescent dyes and confocal microscopy.

Floresan Mikroskopi Canlı hücreler Potansiyel Mitokondriyal Kalsiyum ve Mitokondriyal Membran Eşzamanlı Ölçümü

Apart from their essential role in generating ATP, mitochondria also act as local calcium (Ca2+) buffers to tightly regulate intracellular Ca2+ ...

Methods for the Extraction of Endosymbionts from the Whitefly Bemisia tabaci

Bacterial symbionts form an intimate relationship with their hosts and confer advantages to the hosts in most cases. Genomic information is critical to study the functions and evolution of bacterial symbionts in their host. As most symbionts cannot be cultured in vitro, methods to isolate an adequate quantity of bacteria for genome sequencing are very important. In the whitefly Bemisia tabaci, a number of endosymbionts have been identified and are predicted to be of importance in the development and reproduction of the pests through multiple approaches. However, the mechanism underpinning the associations remains largely unknown. The obstacle partially comes from the fact that the endosymbionts in whitefly, mostly restrained in bacteriocytes, are hard to separate from the host cells. Here we report a step-by-step protocol for the identification, extraction and purification of endosymbionts from the whitefly B. tabaci mainly by dissection and filtration. Endosymbiont samples prepared by this method, although still a mixture of different endosymbiont species, are suitable for subsequent genome sequencing and analysis of the possible roles of endosymbionts in B. tabaci. This method may also be used to isolate endosymbionts from other insects.

Methods for the Extraction of Endosymbionts from the Whitefly Bemisia tabaci

Here, we present a protocol to isolate endosymbionts from the whitefly Bemisia tabaci through dissection and filtration. After amplification, the DNA samples are suitable for subsequent sequencing and study of the mutualism between endosymbionts and whitefly.

Beyaz sinekten Endosimbonların Çıkarılması İçin Yöntemler<em&gt; Bemisia tabaci</em

Bacterial symbionts form an intimate relationship with their hosts and confer advantages to the hosts in most cases. Genomic information is critical to ...

Synthesis of 68Ga Core-doped Iron Oxide Nanoparticles for Dual Positron Emission Tomography /(T1)Magnetic Resonance Imaging

Here, we describe a microwave synthesis to obtain iron oxide nanoparticles core-doped with 68Ga. Microwave technology enables fast and reproducible synthetic procedures. In this case, starting from FeCl3 and citrate trisodium salt, iron oxide nanoparticles coated with citric acid are obtained in 10 min in the microwave. These nanoparticles present a small core size of 4.2 &#177; 1.1 nm and a hydrodynamic size of 7.5 &#177; 2.1 nm. Moreover, they have a high longitudinal relaxivity (r1) value of 11.9 mM-1&#183;s-1 and a modest transversal relaxivity value (r2) of 22.9 mM-1&#183;s-1, which results in a low r2/r1 ratio of 1.9. These values enable positive contrast generation in magnetic resonance imaging (MRI) instead of negative contrast, commonly used with iron oxide nanoparticles. In addition, if a 68GaCl3 elution from a 68Ge/68Ga generator is added to the starting materials, a nano-radiotracer doped with 68Ga is obtained. The product is obtained with a high radiolabeling yield (&#62; 90%), regardless of the initial activity used. Furthermore, a single purification step renders the nano-radiomaterial ready to be used in vivo.

Synthesis of 68Ga Core-doped Iron Oxide Nanoparticles for Dual Positron Emission Tomography /T1Magnetic Resonance Imaging

Here, we present a protocol to obtain 68Ga core-doped iron oxide nanoparticles via fast microwave-driven synthesis. The methodology renders PET/(T1)MRI nanoparticles with radiolabeling efficiencies higher than 90% and radiochemical purity of 99% in a 20-min synthesis.

68Ga çekirdek katkılı demir oksit nano tanecikleri çift pozitron emisyon tomografi için sentezi / (TRT1) manyetik rezonans görüntüleme

Here, we describe a microwave synthesis to obtain iron oxide nanoparticles core-doped with 68Ga. Microwave technology enables fast and reproducible ...

High-Throughput Assays of Critical Thermal Limits in Insects

Upper and lower thermal limits of plants and animals are important predictors of their performance, survival, and geographic distributions, and are essential for predicting responses to climate change. This work describes two high-throughput protocols for measuring insect thermal limits: one for assessing critical thermal minima (CTmin), and the other for assessing heat knock down time (KDT) in response to a static heat stressor. In the CTmin assay, individuals are placed in an acrylic-jacketed column, subjected to a decreasing temperature ramp, and counted as they fall from their perches using an infrared sensor. In the heat KDT assay, individuals are contained in a 96 well plate, placed in an incubator set to a stressful, hot temperature, and video recorded to determine the time at which they can no longer remain upright and move. These protocols offer advantages over commonly used techniques. Both assays are low cost and can be completed relatively quickly (~2 h). The CTmin assay reduces experimenter error and can measure a large number of individuals at once. The heat KDT protocol generates a video record of each assay and thus removes experimenter bias and the need to continuously monitor individuals in real time.

Thermal limits can predict the environments organisms tolerate, which is valuable information in the face of rapid climate change. Described here are high-throughput protocols to assess critical thermal minima and heat knockdown time in insects. Both protocols maximize the throughput and minimize the cost of the assays.

Böceklerde Kritik Termal Limitlerin Yüksek İş Gücü Tahlilleri

Upper and lower thermal limits of plants and animals are important predictors of their performance, survival, and geographic distributions, and are ...