Bu eser Bakanlığı Eğitim yenilik takım geliştirme programı, Çin (No gelen hibe tarafından desteklenmiştir IRT16R57), Çin (No. 81470896) ve bir araştırma Ulusal Doğa Bilimleri vakıf fonu genç yetenek işe alma planları, Xi'an Jiaotong Üniversitesi (RW için).

Protokol kılavuzlarınıza uygun olarak bakım ve kullanım laboratuvar hayvanları için yapılmıştır ve etik hayvan deneyleri, Xi'an Jiaotong Üniversitesi, Xi'an, Shaanxi Eyaleti, Çin Komitesi tarafından kabul edildi.
Not: Bu protokol yordamlarda hiçbiri cerrahi mikroskop altında gerçekleştirildi.
1. ameliyat öncesi hazırlık
<ol><li>Tasarım ve manyetik yüzük (şekil 1) şeklinde<ol>
<li>Manyetik anastomoz aygıt Neodim-demir-Bor manyetik yüzük çiftinin eşleştirerek topla.</li>
		<li>Yüzüklerin fare SHVC bir Binbaşı eksen çapı, ikincil eksen çapı, kalınlık ve 8 mm, 5.5 mm, 1 mm, 0.5 g ağırlığı ile parametrelere göre sırasıyla tasarım.</li>
		<li>Yüzüklerin istediğiniz şekli için bir tel elektrot kesme tekniği ile eğri ve elde edilen Yüzüklerin ile titanyum oksit airbrush ceket ve 6 h 55-60 ° c 500 mg/L etilen oksit ile sterilize.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Kelepçeleri (Şekil 2)<ol>
<li>Manşet polietilen boru kesim tarafından IHVC ve PV anastomoz için hazır olun. Manşet vücut 5 mm olması uzun ile 2 mm kol uzatma. Not: Bu IHVC manşet 2.6 ve 2.8 mm, sırasıyla PV kol iç ve dış çapları 1.8 ve 2.1 mm, vardır.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Stent (Şekil 2)<ol>
<li>Stent BD anastomoz için kesme 24-G intravenöz kanül 5 mm uzunluğu ile eğim her iki ucunda üretmek için hazırlayın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Deneysel hayvan<ol>
<li>250 ve 280 g olarak bağış ve alıcıların arasında ağırlığında erkek Sprague Dawley rats kullanın. Donör alıcı aynı ağırlık veya biraz daha ağır (< 10 g) olduğundan emin olun.</li>
		<li>Fareler ücretsiz erişimi olan klimalı odalar gıda ve su ameliyattan önce tutmak.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. donör işlemi
<ol><li>Buprenorfin (0,05 mg/kg) subkutan işleminden önce 1 saat bir analjezik enjekte et.</li>
	<li>Donör sıçan tarafından isoflurane inhalasyon anestezi. Kullanım 5 vol % isoflurane 1, 5 L/min bir pleksiglas kutu indüksiyon için anestezi ve 2 vol % isoflurane bir akış hızı 0,6-0,8, akış hızında L/dk bir koni üzerinde anestezi bakımı için maske. Anestezi derinliği bir ayak çimdik ve bir cilt çimdik gerçekleştirerek onaylayın.</li>
	<li>Tüm karın deri temizleyici pozlama için izin vermek için bir Elektrikli tıraş makinesi kullanarak fare tıraş. Povidone-iyot solüsyonu ile ilgili cilt dezenfekte.</li>
	<li>Karın boşluğu ile 1 cm yukarıda xiphisternum uzanan penis kökünden Cerrahi makas kullanarak bir haç kesi açık linea alba, midaxillary hattına uzanan orta boyuna kesme noktası üzerinden. Soldaki gastrointestinal sistem exteriorize ve ıslak gazlı bez ile kaplayın.</li>
	<li>Kelepçe ve xiphisternum bir kan durdurucu sargı forseps kullanarak kafa doğru çekin. Falciform bağ ve bağ dokusu karaciğer çevresinde incelemek. İzole ve 6-0 ipek sütür ile sol inferior frenik ven ligate.</li>
	<li>Stent safra kanalını yerleştirin.<ol>
<li>BD gastroduodenal ven portal ven ile birleştiği nokta yukarıda Klamp ve küçük bir gerilim bir microforceps kullanarak korumak için çekin. Sonra bir "V" kesi 1 mm uzunlukta ön Duvardaki 5 mm için safra izdiham proksimal tarafından mikro bir makas gerçekleştirin.</li>
		<li>Stent eğri bir microforceps kullanarak safra kanalını Lümen yerleştirin. En az bir buçuk safra kanalını dışında stent yalanların emin olun.</li>
		<li>Stent 6-0 ipek sütür ile güvenli. Dikişi bir ucunu kesti. Diğeri sırasında daha sonra anastomoz tutmaya devam et. Safra kanalını stent aşağıda transect ve safra stent dışarı gelebilir emin olun.</li>
	</ol>
</li>
	<li>IHVC sol renal ven düzeyine kadar izole et. IHVC Iskeletlenmiş kadar IHVC anterior ve yanal çevre dokular gelen pamuk bud diseksiyon tarafından ücretsiz. Ayrı ve şu suprarenal ven ve 6-0 ipek sütür ile sağ renal ven ligate.</li>
	<li>2 mL penisin dorsal ven yoluyla normal tuzlu su çözeltisi içinde seyreltilmiş heparin enjekte 50 U tarafından fare heparinize.</li>
	<li>Karaciğer sıvı.<ol>
<li>Aşağıda sol renal ven abdominal aort yalıtmak. 22-G katater aort yerleştirin.</li>
		<li>Torakotomi gerçekleştirmek, bir microforceps kullanarak torasik aortada kelepçe.</li>
		<li>20 mL 25 U / heparin (4 ° C) içeren normal tuz çözeltisi ile aort kateter aracılığıyla bağış karaciğer 3 mL/dk hızında bir infüzyon pompası sıvı. Bu arada, vena cava perfüzyon çözüm karaciğer dışarı akışı için izin vermek için sağ renal ven aşağıda kesti.</li>
		<li>Donör karaciğer boz olunca diyafram parçası ile birlikte SHVC ve IHVC sol renal ven düzeyinde transect.</li>
	</ol>
</li>
	<li>PV tarafından iki mikro forseps çevreleyen bağ dokusu incelemek. Ligate ve bir 8-0 prolene sütür ile Pilor damarlar bölün. Splenik ven düzeyinde PV transect. Donör karaciğer tüketim ve soğuk normal tuzlu çözüm ile durulayın. Yer soğuk bir serum fizyolojik içinde banyo 4 ° C.</li>
</ol>3. greft hazırlanması
Not: Tüm yordamlar için karaciğer nakli hazırlık soğuk tuzlu banyo 4 ° C'de gerçekleştirilir
<ol><li>Eline kelepçe bağışçının IHVC (şekil 3) takın.<ol>
<li>IHVC karaciğer doğru işaret kol uzantısı ile onun kol yerleştirin. Kol uzantısı IHVC posterior duvarda getirin. Kol uzatma ve IHVC bir eğri microforceps kendisi banyo kapsayıcı dosya klibine kullanarak bağlı ile sabitleyin.</li>
		<li>Distal IHVC sonuna iki mikro forseps kullanarak manşet cesedin çıkar.</li>
		<li>6-0 ipek sütür ile kenar güvenli. IHVC işlemi sırasında bükülmüş değil emin olun.</li>
	</ol>
</li>
	<li>3.1 vericinin PV için eline kelepçe takmak için PV tarih arasındaki adımları yineleyin.</li>
	<li>Manyetik yüzük bağışçının SHVC (şekil 4) takın.<ol>
<li>Diyafram dört forseps çekin ve SHVC döşeme.</li>
		<li>Titanyum alaşımlı mikro forseps kullanarak manyetik yüzük aracılığıyla SHVC geçmek.</li>
		<li>Distal SHVC sonuna halka üzerinde çıkar.</li>
		<li>6-0 ipek sütür ile halka güvenli. SHVC işlemi sırasında bükülmüş değil emin olun.</li>
		<li>Karaciğer çevresinde aşırı diyafram kaldırın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Soğuk normal tuzlu banyo donör karaciğerde sokmak ve 4 ° C'de depolayın</li>
</ol>4. alıcı işlemi
Not: Alıcı fare greft implantasyonu şeması şekil 5' te gösterilmiştir.
<ol><li>Buprenorfin (0,05 mg/kg) subkutan işleminden önce 1 saat bir analjezik enjekte et. Donör sıçan tarafından isoflurane inhalasyon anestezi. Kullanım 5 vol % isoflurane 1, 5 L/min bir pleksiglas kutu indüksiyon için anestezi ve 2 vol % isoflurane bir akış hızı 0,6-0,8, akış hızında L/dk bir koni üzerinde anestezi bakımı için maske.</li>
	<li>Tüm karın deri farenin tıraş. Povidone-iyot solüsyonu ile ilgili cilt dezenfekte.</li>
	<li>Karın boşluğu ile 4 cm Ensizyon açın. Karın ekartör yerleştirin. Kaburga kadar ayrı orta hat üzerinden mümkün olduğunca çek.</li>
	<li>Kelepçe ve xiphisternum bir kan durdurucu sargı forseps kullanarak kafa doğru çekin. Bağ doku ve kasları karaciğer çevresinde incelemek. Ligate ve hepato-özofagus bağ bölün. Ligate ve bir 8-0 prolene sütür ile hepatik arter bölün.</li>
	<li>Ortak safra kanalını ilk karaciğer portal üzerinden ayırma. 6-0 ipek sütür ortak safra kanalını hemen altında kendi bölümü çevresinde koyun ve ortak safra kanalını ligate.</li>
	<li>Aşağı Sağ renal ven IHVC incelemek. Ligate ve şu adrenal ven bölün. Bir kayış karaciğer SHVC içinde yerleştirin.</li>
	<li>IHVC hemen üstünde Sağ renal ven microvessel kliplerle kelepçe. PV microvessel kliplerle Pilor ven düzeyinde kelepçe.<ol>
<li>Karaciğer kanı temizlemek için yavaş yavaş normal salin ile PV 2 mL enjekte et. Daha önce yerleştirilmiş kayışı çekerek karaciğer sürükleyin. SHVC ve diyafram parçası bir Satinsky kıskacı ile kelepçe.</li>
		<li>Parankimi yakın IHVC ve porta hepatis, PV transect. Karaciğer SHVC karaciğer üzerinde de transecting tarafından tüketim. Alıcı karaciğer hızlı bir şekilde kaldırın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Manyetik yüzük için alıcının SHVC ekleyin.<ol>
<li>Alıcının kalan SHVC manyetik bir halka içine yerleştirin.</li>
		<li>Manyetik yüzük manyetik çekim tarafından bir Satinsky kıskacı düzeltmek.</li>
		<li>Kadar geminin kenarına yüzüğü kapsar SHVC manyetik halka üzerinde çıkar.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Donör karaciğer nakli orthotopically yerleştirin ve bir soğuk ıslak gazlı bez ile kapağı.</li>
	<li>Donör ve alıcı SHVCs Lümen normal tuzlu çözüm ile doldurun. Hava kabarcıkları iyice hava embolisi önlemek için kaldırın. SHVC imar donör ve alıcı'nın SHVC Manyetik kuvvet yoluyla birlikte gömülü Yüzüklerin manyetik kaplin tarafından bitirmek.</li>
	<li>PV yeniden.<ol>
<li>Yolu PV gerginlik korumak için bir 8-0 prolene sütür çekerek alıcının PV sağ ve sol kolu.</li>
		<li>Alıcının PV kelepçe taşıma mide damar splenik ven damar tam olarak ortaya çıkarmak için.</li>
		<li>Alıcının ön duvarına deşmek. PV Lümen normal tuzlu çözüm ile doldurun.</li>
		<li>Vericinin PV kol uzantısı bir eğri Forseps ile tutun.</li>
		<li>Vericinin PV kaf gövdesi alıcının PV PV Lümen normal salin ile kızarma devam ederken takın.</li>
		<li>6-0 ipek ip sirkumferansiyel ile güvenli. Greft karaciğer kan akımını PV ve SHVC kıskaç serbest bırakarak yeniden kurun.</li>
	</ol>
</li>
	<li>4.11 IHVC yeniden IHVC tarih arasındaki adımları yineleyin.</li>
	<li>Safra kanalını stent tekniği ile yeniden.<ol>
<li>Alıcı ortak safra kanalını ön duvarında "V" deşmek.</li>
		<li>Donör stent alıcının BD Lümen yerleştirin ve 6-0 ipek sirkumferansiyel dikiş ile düzeltebilirim. Dikiş iki safra kanalları üzerinde topla ve BD birbirlerine yakın getirmek için dikiş kravat.</li>
		<li>Omentumun doku safra sızıntısı önlemek için anastomoz sitenin etrafına sarın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Karın boşluğu sıcak normal serum fizyolojik solüsyonu ile sulamak. Belgili tanımlık karın kesme ile sürekli iki katmanlar halinde 3-0 absorbe olmayan cerrahi sütür kapatın.</li>
	<li>16 mg/kg sefuroksim (antibiyotik) ve 0,05 mg/kg buprenorfin (ağrı kesici) ameliyat sonrası subkutan enjeksiyon tarafından hemen yönetmek.</li>
	<li>Fareyi temiz bir kafese koyun ve gıda izin ve ad libitumsu.</li>
	<li>Sefuroksim (16 mg/kg) ve buprenorfin (0,05 mg/kg) karın boşluğuna 12 saatte 3 gündür enjekte et.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Aller, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+half+century+(1961-2011)+of+applying+microsurgery+to+experimental+liver+research.">A half century (1961-2011) of applying microsurgery to experimental liver research.</a> World journal of hepatology. 4, 199-208 (2012).</li><li>Aller, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+value+of+microsurgery+in+liver+research.">The value of microsurgery in liver research.</a> Liver international : official journal of the International Association for the Study of the Liver. 29, 1132-1140 (2009).</li><li>Lee, S., Charters, A. C., Chandler, J. G., Orloff, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technique+for+orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.">A technique for orthotopic liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 16, 664-669 (1973).</li><li>Kamada, N., Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.+Technique+using+cuff+for+portal+vein+anastomosis+and+biliary+drainage.">Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage.</a> Transplantation. 28, 47-50 (1979).</li><li>Oldani, G., Lacotte, S., Morel, P., Mentha, G., Toso, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+transplantation+in+rats.">Orthotopic liver transplantation in rats.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , (2012).</li><li>Nagai, K., Yagi, S., Uemoto, S., Tolba, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+procedures+for+a+rat+model+of+partial+orthotopic+liver+transplantation+with+hepatic+arterial+reconstruction.">Surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , e4376 (2013).</li><li>Liu, X., He, C., Huang, T., Gu, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+a+New+Technique+for+Reconstruction+of+Hepatic+Artery+during+Liver+Transplantation+in+Sprague-Dawley+Rat.">Development of a New Technique for Reconstruction of Hepatic Artery during Liver Transplantation in Sprague-Dawley Rat.</a> PloS one. 10, e0145662 (2015).</li><li>Jamshidi, R., Stephenson, J. T., Clay, J. G., Pichakron, K. O., Harrison, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Magnamosis:+magnetic+compression+anastomosis+with+comparison+to+suture+and+staple+techniques.">Magnamosis: magnetic compression anastomosis with comparison to suture and staple techniques.</a> Journal of pediatric surgery. 44, 222-228 (2009).</li><li>Pichakron, K. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Magnamosis+II:+Magnetic+compression+anastomosis+for+minimally+invasive+gastrojejunostomy+and+jejunojejunostomy.">Magnamosis II: Magnetic compression anastomosis for minimally invasive gastrojejunostomy and jejunojejunostomy.</a> Journal of the American College of Surgeons. 212, 42-49 (2011).</li><li>Gonzales, K. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Magnamosis+III:+delivery+of+a+magnetic+compression+anastomosis+device+using+minimally+invasive+endoscopic+techniques.">Magnamosis III: delivery of a magnetic compression anastomosis device using minimally invasive endoscopic techniques.</a> Journal of pediatric surgery. 47, 1291-1295 (2012).</li><li>Wall, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MAGNAMOSIS+IV:+magnetic+compression+anastomosis+for+minimally+invasive+colorectal+surgery.">MAGNAMOSIS IV: magnetic compression anastomosis for minimally invasive colorectal surgery.</a> Endoscopy. 45, 643-648 (2013).</li><li>Xue, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Choledochojejunostomy+with+an+innovative+magnetic+compressive+anastomosis:+How+to+determine+optimal+pressure?.">Choledochojejunostomy with an innovative magnetic compressive anastomosis: How to determine optimal pressure?.</a> World journal of gastroenterology. 22, 2326-2335 (2016).</li><li>Yan, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Portacaval+shunt+established+in+six+dogs+using+magnetic+compression+technique.">Portacaval shunt established in six dogs using magnetic compression technique.</a> PloS one. 8, e76873 (2013).</li><li>Dorman, R. M., Vali, K., Harmon, C. M., Zaritzky, M., Bass, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Repair+of+esophageal+atresia+with+proximal+fistula+using+endoscopic+magnetic+compression+anastomosis+(magnamosis)+after+staged+lengthening.">Repair of esophageal atresia with proximal fistula using endoscopic magnetic compression anastomosis (magnamosis) after staged lengthening.</a> Pediatric surgery international. 32, 525-528 (2016).</li><li>Russell, K. W., Rollins, M. D., Feola, G. P., Scaife, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Magnamosis:+a+novel+technique+for+the+management+of+rectal+atresia.">Magnamosis: a novel technique for the management of rectal atresia.</a> BMJ case reports. , (2014).</li><li>Shi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Magnetic+ring+anastomosis+of+suprahepatic+vena+cava:+novel+technique+for+liver+transplantation+in+rat.">Magnetic ring anastomosis of suprahepatic vena cava: novel technique for liver transplantation in rat.</a> Transplant international : official journal of the European Society for Organ Transplantation. 28, 89-94 (2015).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Karaciğer transplantasyonu birçok klinik ilerledikçe hayvan çalışmaları için bağlanabilir. Sıçan OLT organ korunması, organ nakli İmmünoloji, Fizyoloji ve patoloji araştırmalarda yaygın olarak kullanılan ve de kabul edilen bir modeldir. Ancak, aynı zamanda çok karmaşık bir işlemdir ve gelişmiş mikrocerrahi beceri gerektirir. Sıçan OLT yordamda birçok gelişmeler rağmen SHVC anastomoz zorlu bir adım kaldı. Bu makalede, biz SHVC imar sıçan OLT içinde bir roman manyetik anastomoz tekniği t...

Orthotopic karaciğer nakli (OLT) fare modeli nakli araştırma1,2için esastır. İlk fare OLT Lee ve ark. 19733tarafından tanımlanmıştır. Bu modelde, el-dikiş tekniği ile tüm gemileri yeniden. El-dikiş tekniği gelişmiş mikrocerrahi becerileri, hangi önemli ölçüde sınırlar onun kullanımı gerektirir. O zamandan beri sıçan OLT çeşitli değişiklikler özgün protokolüne bildirilmiştir. Önemli ölçüde yeniden yapılandırma yordamları4 Basitleştirilmiş olarak bunlar arasında anastomoz portal ven (PV) ve infrahepatic vena kava (IHVC) Kamada ve ark. tarafından 1979 yılında rapor için manşet tekniği bu model için önemli bir gelişme olarak kabul edilir . Ancak, kısa ön duvarına alıcıların suprahepatic vena kava (SHVC) nedeniyle, manşet tekniği SHVC yeniden inşası için kullanmak çok zordur. Bu alanda çoğu araştırmacı hala sıçan OLT5,6,7performans sorunu adım yapar SHVC yeniden inşası için el-dikiş tekniği kullanın.
Manyetik anastomoz tekniği (örneğin, magnamosis) iki gemi veya diğer yapılar iki mıknatıslar8,9,10,11arasında çekici güç kullanarak bağlanma yöntemidir. Manyetik kuvvet yavaş yavaş sıkıştırır ve doku güçlü, sutureless anastomoz12,13remodels. Bu sıkıştırma anastomoz insanlar14,15dakika içinde etkili olduğu kanıtlanmıştır. Biz bir çift manyetik yüzük Sıçanlarda SHVC anastomoz için özel olarak tasarladık. Bizim çalışmada manyetik anastomoz tekniği sıçan OLT16SHVC imar için el-dikiş tekniği daha üstün olduğunu göstermiştir. Bu makalenin amacı roman manyetik anastomoz tekniği kullanarak Sıçanlarda SHVC yeniden inşası için ayrıntılı, adım adım Protokolü sağlamaktır.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1148">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">Anesthesia Machine</td>
			<td style="width:377px;">Harvard</td>
			<td style="width:119px;">&#160;tabletop</td>
			<td style="width:353px;">Animal anaesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:299px;">PLX7000B HF Mobile Digital C-arm System</td>
			<td style="width:377px;">Perlong Medical</td>
			<td style="width:119px;">PLX7000B</td>
			<td>It is mainly used for the angiography and photography of various operations</td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:299px;">Syringe Pump</td>
			<td style="width:377px;">Mindray</td>
			<td style="width:119px;">BeneFusion SP5</td>
			<td>intravenous infusion</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">Isoflurane</td>
			<td style="width:377px;">RWD life Science Co.</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>anesthetic:for the induction and maintenanceof anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">iohexol</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai General Pharmaceutical Co</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>&#160;intravascular contrast media&#160;&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:299px;">heparin sodium injection</td>
			<td style="width:377px;">SPH No.1 Biochemical &#38; Pharmaceutical Co., LTD&#160;</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>&#160;prevent the formation of thrombosis&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">cefuroxime&#160;</td>
			<td style="width:377px;">Glaxo Operations UK Limited&#160;</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>an antibiotic</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">buprenorphine&#160;</td>
			<td style="width:377px;">TIPR Pharmaceutical Responsible Co.,Ltd</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>an analgesic</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">curved microforceps</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">W40350</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">hemostatic forceps(straight)</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">J31010</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">hemostatic forceps(curved)</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">J31020</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">Satinsky clamp</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">XEC050</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">needle holder</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">J32010</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">microneedle holder</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">WBA040</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">notched forceps</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">J42010</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">tissue forceps(with hook)</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">J41010</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">tissue scissor</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">Y00040</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">surgical scissors</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">Y00030</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">micro scissors</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">MR-S121T</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">microvessel clips</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">XEC240</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">straight microforceps(titanium alloy)</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">WCC010</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">curved microforceps&#160; (titanium alloy)</td>
			<td style="width:377px;">Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp.</td>
			<td style="width:119px;">WCC020</td>
			<td>surgical tool</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a rat model of orthotopic liver transplantation using a novel magnetic anastomosis technique for suprahepatic vena cava reconstruction

Orthotopic karaciğer nakli (OLT) fare modeli nakli araştırma için esastır. Bu çok gelişmiş bir hayvan modeli ve dik bir öğrenme eğrisi gerektirir. Anastomoz portal ven (PV) ve infrahepatic vena kava (IHVC) için manşet tekniği getirilmesi önemli ölçüde fareler nakli yordamda basitleştirdi. Ancak, kısa ön duvarına alıcıların suprahepatic vena kava (SHVC) nedeniyle, manşet tekniği SHVC yeniden inşası için kullanmak çok zordur. Bu alanda çoğu araştırmacı hala sıçan orthotopic karaciğer nakli performans sorunu adım yapar SHVC yeniden inşası için el-dikiş tekniği kullanın. Manyetik anastomoz tekniği (örneğin, magnamosis) iki gemi iki mıknatıs arasında çekici güç kullanarak bağlanma yöntemidir. Bizim çalışmada manyetik anastomoz tekniği Sıçanlarda SHVC yeniden inşası için el-dikiş tekniği daha üstün olduğunu göstermiştir. Bu makalede, yeni manyetik anastomoz tekniği kullanarak Sıçanlarda SHVC yeniden inşası için adım adım bir protokol gösteriyoruz. Safra kanalını (BD) yeniden inşası stent tekniği ile gerçekleştirilen iken bu modelde standart manşet tekniği ile PV ve IHVC yeniden inşası gerçekleştirildi. Hepatik yeniden arterialization gerçekleştirilmedi. Manyetik anastomoz tekniği önemli ölçüde anphepatic faz kısaltılmış ve SHVC yeniden yapılanma daha kolay yaptı. Makul bir öğrenme eğrisi sonra Gelişmiş mikrocerrahi bilgisi olmayan hatta araştırmacılar OLT bu fare modelini kullanma güvenilir ve tekrarlanabilir sonuçlar verebilir.

Yaklaşık 10 denemeden sonra SHVC yeniden inşası için manyetik anastomoz tekniği başarıyla hiçbir önceki mikrocerrahi eğitimi almış bir araştırmacı tarafından hakim olmuş oldu. SHVC yeniden inşası az 2 dk sürdü. Anhepatic faz alıcı fareler için yaklaşık 10 dakika oldu. Hiçbir kan pıhtılaşması, kanama veya angiostegnosis SHVC anastomoz sitesinde, 1, 5 ve 30 gün sonra reperfüzyon gözlendi. İnferior vena cavography 2 hafta sonra nakli gerçekleştirildi. <s...

Watch this Scientific Journal Video about A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction at JoVE.com

A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

Suprahepatic vena kava (SHVC) yeniden inşası sıçan orthotopic karaciğer nakli zor bir adım kalır. Bu makalede, bir roman manyetik anastomoz tekniği kullanarak Sıçanlarda SHVC yeniden inşası için adım adım bir protokol gösteriyoruz.

Orthotopic fare modeli bir roman manyetik anastomoz teknik Suprahepatic Vena kava imar için kullanılarak karaciğer nakli

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep ...

a-rat-model-orthotopic-liver-transplantation-using-novel-magnetic

Research

JoVE Journal

Medicine

9.8K Görüntüleme.  First Affiliated Hospital, Xi'an Jiaotong University. Suprahepatic vena kava (SHVC) yeniden inşası sıçan orthotopic karaciğer nakli zor bir adım kalır. Bu makalede, bir roman manyetik anastomoz tekniği kullanarak Sıçanlarda SHVC yeniden inşası için adım adım bir protokol gösteriyoruz.

Video: A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

Orthotopic Aortic Transplantation: A Rat Model to Study the Development of Chronic Vasculopathy

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant vasculopathy (TVP).
The commonly used animal model for cardiovascular chronic rejection studies is the heterotopic heart transplant model performed in laboratory rodents. This model is used widely in experiments since Ono and Lindsey (3) published their technique. To analyze the findings in the blood vessels, the heart has to be sectioned and all vessels have to be measured.
Another method to investigate chronic rejection in cardiovascular questionings is the aortic transplant model (1, 2). In the orthotopic aortic transplant model, the aorta can easily be histologically evaluated (2). The PVG-to-ACI model is especially useful for CAV studies, since acute vascular rejection is not a major confounding factor and Cyclosporin A (CsA) treatment does not prevent the development of CAV, similar to what we find in the clinical setting (4). A7-day period of CsA is required in this model to prevent acute rejection and to achieve long-term survival with the development of TVP.
This model can also be used to investigate acute cellular rejection and media necrosis in xenogeneic models (5).

This video demonstrates the orthotopic aortic transplant model as a simple model to study the development of transplant vasculopathy (TVP) in rats.

Ortotopik Aort Nakli: Rat Modeli Kronik Vaskülopati Geliştirme Çalışması

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant ...

Tıp

Electrolytic Inferior Vena Cava Model (EIM) of Venous Thrombosis

Animal models serve a vital role in deep venous thrombosis (DVT) research in order to study thrombus formation, thrombus resolution and to test potential therapeutic compounds (1). New compounds to be utilized in the treatment and prevention of DVT are currently being developed. The delivery of potential therapeutic antagonist compounds to an affected thrombosed vein has been problematic. In the context of therapeutic applications, a model that uses partial stasis and consistently generates thrombi within a major vein has been recently established. The Electrolytic Inferior vena cava Model (EIM) is mouse model of DVT that permits thrombus formation in the presence of continuous blood flow. This model allows therapeutic agents to be in contact with the thrombus in a dynamic fashion, and is more sensitive than other models of DVT (1). In addition, this thrombosis model closely simulates clinical situations of thrombus formation and is ideal to study venous endothelial cell activation, leukocyte migration, venous thrombogenesis, and to test therapeutic applications (1). The EIM model is technically simple, easily reproducible, creates consistent thrombi sizes and allows for a large sample (i.e. thrombus and vein wall) which is required for analytical purposes.

Electrolytic Inferior Vena Cava Model EIM of Venous Thrombosis

The electrolytic induction of endothelial activation to the internal surface of the Inferior Vena Cava results in venous type thrombus formation due to endothelial activation and partial blood stasis, two components of Virchow's triad.

Ven Trombozu Elektrolitik inferior vena kava Modeli (EIM)

Animal models serve a vital role in deep venous thrombosis (DVT) research in order to study thrombus formation, thrombus resolution and to test potential ...

Mouse Complete Stasis Model of Inferior Vena Cava Thrombosis

Venous thromboembolism (VTE) includes both deep vein thrombosis (DVT) and pulmonary embolism (PE). In the United States (U.S.), the high morbidity and mortality rates make VTE a serious health concern 1-2. After heart disease and stroke, VTE is the third most common vascular disease 3. In the U.S. alone, there is an estimated 900,000 people affected each year, with 300,000 deaths occurring annually 3. A reliable in vivo animal model to study the mechanisms of this disease is necessary.
The advantages of using the mouse complete stasis model of inferior vena cava thrombosis are several. The mouse model allows for the administration of very small volumes of limited availability test agents, reducing costs dramatically. Most promising is the potential for mice with gene knockouts that allow specific inflammatory and coagulation factor functions to be delineated. Current molecular assays allow for the quantitation of vein wall, thrombus, whole blood, and plasma for assays. However, a major concern involving this model is the operative size constraints and the friability of the vessels. Also, due to the small IVC sample weight (mean 0.005 grams) it is necessary to increase animal numbers for accurate statistical analysis for tissue, thrombus, and blood assays such as real-time polymerase chain reaction (RT-PCR), western blot, enzyme-linked immunosorbent (ELISA), zymography, vein wall and thrombus cellular analysis, and whole blood and plasma assays 4-8.
The major disadvantage with the stasis model is that the lack of blood flow inhibits the maximal effect of administered systemic therapeutic agents on the thrombus and vein wall.

The mouse complete stasis model of inferior vena cava thrombosis yields quantifiable amounts of vein wall tissue and thrombus. It has proven useful for evaluating interactions between the vein wall and the occlusive thrombus and in assessing the progression from acute to chronic inflammation.

İnferior Vena Kava Trombozu Fare Komple Durağanlık Model

Venous thromboembolism (VTE) includes both deep vein thrombosis (DVT) and pulmonary embolism (PE).  In the United States (U.S.), the high morbidity and ...

Orthotopic Liver Transplantation in Rats

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat liver transplantation in 1979 by Kamada et al.3, this model has remained the gold standard despite various proposed alternative techniques4. Nevertheless, its broader use is limited by its steep learning curve5.
In this video paper, we show a simple and easy-to-establish revision of Kamada's two-cuff technique. The suprahepatic vena cava anastomosis is performed manually with a running suture, and the vena porta and infrahepatic vena cava anastomoses are performed utilizing a quick-linker cuff system6. Manufacturing the quick-linker kit is shown in a separate video paper.

We present an easy-to-establish revision of the classical two-cuff technique for orthotopic liver transplantation in rat.

Sıçanlarda Ortotopik Karaciğer Nakli

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat ...

Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as studies on graft preservation and ischemia-reperfusion injury 1,2, immunological responses 3,4, hemodynamics 5,6, and small-for-size syndrome 7. The rat OLT is among the most difficult animal models in experimental surgery and demands advanced microsurgical skills that take a long time to learn. Consequently, the use of this model has been limited. Since the reliability and reproducibility of results are key components of the experiments in which such complex animal models are used, it is essential for surgeons who are involved in rat OLT to be trained in well-standardized and sophisticated procedures for this model.
While various techniques and modifications of OLT in rats have been reported 8 since the first model was described by Lee et al. 9 in 1973, the elimination of the hepatic arterial reconstruction 10 and the introduction of the cuff anastomosis technique by Kamada et al. 11 were a major advancement in this model, because they simplified the reconstruction procedures to a great degree. In the model by Kamada et al., the hepatic rearterialization was also eliminated. Since rats could survive without hepatic arterial flow after liver transplantation, there was considerable controversy over the value of hepatic arterialization. However, the physiological superiority of the arterialized model has been increasingly acknowledged, especially in terms of preserving the bile duct system 8,12 and the liver integrity 8,13,14.
In this article, we present detailed surgical procedures for a rat model of OLT with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft after ex vivo liver resection. The reconstruction procedures for each vessel and the bile duct are performed by the following methods: a 7-0 polypropylene continuous suture for the supra- and infrahepatic vena cava; a cuff technique for the portal vein; and a stent technique for the hepatic artery and the bile duct.

Orthotopic liver transplantation in rats is an indispensable experimental model for biomedical research. Here we present our surgical procedures for orthotopic rat liver transplantation with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft.

Hepatik Arter İmar Kısmi Ortotopik Karaciğer Nakli Bir Rat Modeli Cerrahi İşlemleri

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as ...

Implantation of Inferior Vena Cava Interposition Graft in Mouse Model

Biodegradable scaffolds seeded with bone marrow mononuclear cells (BMCs) are often used for reconstructive surgery to treat congenital cardiac anomalies. The long-term clinical results showed excellent patency rates, however, with significant incidence of stenosis. To investigate the cellular and molecular mechanisms of vascular neotissue formation and prevent stenosis development in tissue engineered vascular grafts (TEVGs), we developed a mouse model of the graft with approximately 1 mm internal diameter. First, the TEVGs were assembled from biodegradable tubular scaffolds fabricated from a polyglycolic acid nonwoven felt mesh coated with &#949;-caprolactone and L-lactide copolymer. The scaffolds were then placed in a lyophilizer, vacuumed for 24 hr, and stored in a desiccator until cell seeding. Second, bone marrow was collected from donor mice and mononuclear cells were isolated by density gradient centrifugation. Third, approximately one million cells were seeded on a scaffold and incubated O/N. Finally, the seeded scaffolds were then implanted as infrarenal vena cava interposition grafts in C57BL/6 mice. The implanted grafts demonstrated excellent patency (&#62;90%) without evidence of thromboembolic complications or aneurysmal formation. This murine model will aid us in understanding and quantifying the cellular and molecular mechanisms of neotissue formation in the TEVG.

To improve our knowledge of cellular and molecular neotissue formation, a murine model of the TEVG was recently developed. The grafts were implanted as infrarenal vena cava interposition grafts in C57BL/6 mice. This model achieves similar results to those achieved in our clinical investigation, but over a far shortened time-course.

Fare Modeli Inferior Vena Cava İnterpozisyon Greft İmplantasyonu

Biodegradable scaffolds seeded with bone marrow mononuclear cells (BMCs) are often used for reconstructive surgery to treat congenital cardiac anomalies. ...

Technique of Porcine Liver Procurement and Orthotopic Transplantation using an Active Porto-Caval Shunt

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. Each year, a considerable number of patients on the liver transplantation waiting list die without receiving an organ transplant or are delisted due to disease progression. Even after a successful transplantation, rejection and side effects of immunosuppression remain major concerns for graft survival and patient morbidity. 
Experimental animal research has been essential to the success of liver transplantation and still plays a pivotal role in the development of clinical transplantation practice. In particular, the porcine orthotopic liver transplantation model (OLTx) is optimal for clinically oriented research for its close resemblance to human size, anatomy, and physiology. 
Decompression of intestinal congestion during the anhepatic phase of porcine OLTx is important to guarantee reliable animal survival. The use of an active porto-caval-jugular shunt achieves excellent intestinal decompression. The system can be used for short-term as well as long-term survival experiments. The following protocol contains all technical information for a stable and reproducible liver transplantation model in pigs including post-operative animal care.

Experimental animal research plays a pivotal role in the development of clinical transplantation practice. The porcine orthotopic liver transplantation model (OLTx) closely resembles human conditions and is frequently used in clinically oriented research. The following protocol contains all information for a reliable porcine OLTx model using an active porto-caval-jugular shunt.

Active Porto-Caval Shunt kullanarak Domuz Karaciğer Tedarik ve Ortotopik Nakli Tekniği

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. Each year, a considerable number of patients on the liver transplantation ...

Mouse Model for Pancreas Transplantation Using a Modified Cuff Technique

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the availability of the widest range of molecular probes and reagents to perform in vivo as well as in vitro studies. Based on our experience with various murine transplantation models, we developed a heterotopic pancreas transplantation model in mice with the intent to analyze mechanisms underlying severe ischemia reperfusion injury-associated early graft damage. In contrast to previously described techniques using suture techniques, herein we describe a new procedure using a non-suture cuff technique. 
In recent years, we have performed more than 300 pancreas transplantations in mice with an overall success rate of &gt;90%, a success rate never described before in mouse pancreas transplantation. The backbone of this non-suture cuff technique for graft revascularization consists of two major steps: (I) pulling the recipient vessel over a polyethylene/polyamide cuff and fixing it with a circumferential ligature, and (II) placing the donor vessel over the everted recipient vessel and fixing it with a second circumferential ligature. The resultant continuity of the endothelial layer results in less thrombogenic lesions with high patency rates and, finally, high success rates.
In this model, arterial anastomosis is achieved by pulling the abdominal aorta of the donor graft over the everted common carotid artery of the recipient animal. Venous drainage of the graft is achieved by pulling the portal vein of the graft over the everted external jugular vein of the recipient. This manuscript provides details and crucial steps of the organ recovery and organ implantation procedures, which will allow researchers with microsurgical skills to perform the transplantation successfully in their laboratories.

Among abdominal solid organ transplantation, pancreatic grafts are prone to develop severe ischemia reperfusion injury-associated graft damage, leading eventually to early graft loss. This protocol describes a model of murine pancreas transplantation using a non-suture cuff technique, ideally suited for analyzing these early, deleterious damages.

Fare modeli değiştirilmiş manşet tekniği kullanarak pankreas nakli için

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the ...

Patch Angioplasty in the Rat Aorta or Inferior Vena Cava

Pericardial patches are commonly used in vascular surgery to close vessels. To facilitate studies of the neointimal hyperplasia that forms on the patch, we developed a rat model of patch angioplasty that can be used in either a vein or an artery, creating a patch venoplasty or a patch arterioplasty, respectively. Technical aspects of this model are discussed. The infra-renal IVC or aorta are dissected and then clamped proximally and distally. A 3 mm venotomy or arteriotomy is performed in the infrarenal inferior vena cava or aorta of 6 to 8 week-old Wistar rats. A bovine pericardial patch (3 mm x 1.5 mm x 0.6 mm) is then used to close the site using a 10-0 nylon suture. Compared to arterial patches, venous patches show increased neointimal thickness on postoperative day 7. This novel model of pericardial patch angioplasty can be used to examine neointimal hyperplasia on vascular biomaterials, as well as to compare the differences between the arterial and venous environments.

We have established a model of pericardial patch angioplasty that can be used in either small-diameter veins or arteries. This model can be used to compare venous and arterial neointimal hyperplasia formation.

Sıçan Aort veya İnferior Vena Cava de Anjiyoplasti Patch

Pericardial patches are commonly used in vascular surgery to close vessels. To facilitate studies of the neointimal hyperplasia that forms on the patch, ...

Orthotopic Rat Kidney Transplantation: A Novel and Simplified Surgical Approach

Kidney transplantation offers increased survival rates and improved quality of life for patients with end-stage renal disease, as compared to any type of renal replacement therapy. Over the past few decades, the rat kidney transplantation model has been used to study the immunological phenomena of rejection and tolerance. This model has become an indispensable tool to test new immunomodulatory pharmaceuticals and regimens prior to proceeding with expensive preclinical large animal studies.
This protocol provides a detailed overview of how to reliably perform orthotopic kidney transplantation in rats. This protocol includes three distinctive steps that increase the probability of success: perfusion of the donor kidney by flushing through the portal vein and the use of a cuff system to anastomose the renal veins and ureters, thereby decreasing cold and warm ischemia times. Using this technique, we have achieved survival rates beyond 6 months with normal serum creatinine in animals with syngeneic or tolerant kidney transplants. Depending on the aim of the study, this model can be modified by pre- or posttransplant treatments to study the acute, chronic, cellular, or antibody-mediated rejection. It is a reproducible, reliable, and cost-effective animal model to study different aspects of kidney transplantation.

The purpose of this manuscript and protocol is to explain and demonstrate in detail the surgical procedure of orthotopic kidney transplantation in rats. This method is simplified to achieve the correct perfusion of the donor kidney and shorten the reperfusion time by using the venous and ureteral cuff anastomosis technique.

Ortootopik Rat böbrek nakli: bir roman ve Basitleştirilmiş cerrahi yaklaşım

Kidney transplantation offers increased survival rates and improved quality of life for patients with end-stage renal disease, as compared to any type of ...