Yazarlar kendi teknik yardım Pascal Paschenda ve Mareike Schulz ederim.

1. Temel Teknikleri ve Genel Yordamlar <ol><li> Tüm prosedürler temiz ama steril olmayan koşullarda yapılmaktadır. </li><li> Sıçan karın açıldıktan sonra, bütün işlemler bir 16x büyütmede bir ameliyat mikroskobu altında gerçekleştirilir. Safra yolları ve hepatik artere stent yerleştirilmesi ve hepatik arter rekonstrüksiyonu, infrahepatic vena kava: İstisnalar 10x hızında gerçekleştirilir ex vivo karaciğer rezeksiyonu, ve aşağıdaki yordamları, 25x yapılmaktadır vardır (IHVC) ve safra kanalı. </li><li> Pamuklu bezler organların yumuşak manipülasyonu, dokuların diseksiyon, hemostaz ve sıkıştırma için kullanılır. Laktatlanmış Ringer çözeltisi ile ıslatılır gazlı bezlerden (5 x 5 cm) karaciğer ya da bağırsaklar ile geri çekmek ve organların nemli tutmak için kullanılır. Satinsky kelepçe sola ya da IHVC etrafında cerrahi alanına genişletmek için sıçanın kuyruk doğru gazlı bez kaplı bağırsak geri çekilmesi için kullanılabilir. </li><li> Tüm ligasyonu 4-0 ipek ipliği kullanılır ex vivo karaciğer rezeksiyonu sırasında karaciğer lob pedikülleri haricinde 6-0 ipek ipliği ile yapılır. Bağ ikinci bağ ilk bir mesafe de yapılabilir, ve bağlanan iki nokta arasındaki bölünme uygun bir şekilde yapılabilir, böylece bağlanan noktasına yeterli gerilim sağlamak için bir DeBakey Bulldog kelepçe ya da diğer araçlar ile çekilebilir. </li><li> Tüm intravenöz enjeksiyonlar penil ven yoluyla yapılır. </li><li> Suprahepatik vena kava (SHVC), portal ven, hepatik arter ve safra yolları, petrol bazlı kil küçük bir yumru için rekonstrüksiyon girişimleri sırasında periferik vasküler klemp veya sivrisinek forseps bir parmak yüzük tutmak için kullanılır pozisyonda onları sabit tutmak için. </li></ol> 2. Preoperatif Hazırlık <ol><li> 230 ve 250 g ağırlığında erkek Lewis fareleri karaciğer nakli için alıcı ve verici olarak kullanılır. Sıçanlar hepsiAnestezi indüksiyonundan kadar su ve yiyecek ücretsiz erişim borçluydu. </li><li> Portal ven (Şekil 1) Kolluk: mikroskop altında No 11 Bistüri ile 14 gauge kateter keserek portal ven için manşet hazırlayın. Manşon bir gövde ve bir uzantı, 2 mm&#39;lik bir uzunluğa sahip her oluşur. Bir iplik kaymasını olmadan manşet üzerine sıkıca bağlanır, böylece bir sivrisinek forseps ile çepeçevre adım manşet adım duvar sıkma tarafından Manşeti çevresel oluklar olun. </li><li> Safra kanalı ve hepatik arter (Şekil 1) için stentler: safra kanalı için bir hepatik arter 4 mm uzunluğunda ve 5 mm olan kateterin iki ucunda eğim üretmek için mikroskop altında bir bisturi ile kesilmiş 24-gauge kateter . </li></ol> 3. Donör Operasyonu Donör sıçan karaciğer kaldırılması şeması Şekil 2 &#39;de gösterilmiştir. Bu işlem yaklimately 30-35 dk. <ol><li> Bakım için 2 L / dak anestezi indüksiyonu için 4 L / dak akış hızında% 100 oksijen, ve 1.5% hacim izofluran 4 hacimce% solunması ile sıçan uyuştur. Bir analjezik olarak subkutan buprenorfin (0.1 mg / kg) enjekte edilir. Bir ısıtma yastığı sıçan yerleştirin ve manyetik fiksatör retraksiyon sistemi (Şekil 3a) kullanarak üst kol düzeltmek. Sıçan tüm karın bölgesinden kürk Tıraş ve povidon-iyot çözeltisi ile ilgili cilt sterilize. </li><li> Ikili uzantıları ile bir orta hat kesi ile karın açın. SHVC ventral yükselir, böylece sıçan arka altında, 5 ml şırınga yerleştirin. Bir sivrisinek forseps kullanma, kelepçe ve baş doğru ksifoid süreci çekin ve cerrahi alan (Şekil 3a) açmak için subkostal Retraktörler geçerlidir. </li><li> Orak şeklinde ligaman ve sol üçgen bağ teşrih. Daha sonra, bağlanır ve sol frenik damar bölün. </li><li> Retrıslak bir gazlı bezle yukarı medyan ve sol lateral lob hareket. Bipolar forseps kullanarak, koagüle ve sol lateral ve anterior kaudat lob arasındaki para-özofageal gemiler bölün. </li><li> Sıçan sol tarafına takılır karın dışında bağırsak taşıyın ve ıslak bir gazlı bez ile bunları kapatın. Islak bir gazlı bezle yukarı sağ lateral lob katlayınız. Retroperitoneal dokudan IHVC ayırın, ve sadece greft kaldırma önce, daha sonra bölünecektir sağ adrenal ven, Arter. </li><li> Safra kanalı (Şekil 3b) içine stent takmak için: <ol class="lalpha"><li> Gastroduodenal arter dallanma düzeyinde safra kanalı Arter. Safra kanalı çevreleyen yumuşak dokuların mümkün olduğunca korunması gerekir ve hepatik arter kanalı safra ayrılması koledok yeterli arteriyel kan akımı sağlamak için kaçınılmalıdır. </li><li> Düz mikro makas ile, anterior küçük bir kesi yaparveya bağlanan noktasına proksimal koledok duvar. Sol elinde bir düz mikro forseps ile kesi ön duvar tutarken, sağ elinde bir eğri mikro forseps kullanarak kanal içine stent takın ve 6-0 ipek iplik ile sabitleyin. Iplik daha sonra anastomoz boyunca tutulabilir, böylece kesik bir safra kanalı üzerinde iplik uçlarının 4 mm arasında bir uzunluk tutulur. </li></ol></li><li> Ligating ve onları bölerek pilorik ve splenik damarlar portal ven Özgürleştirin. </li><li> Gastroduodenal arter bağlanır ve bölmek, sonra da kök pankreas baş ortak hepatik arter (CHA) izole. Pamuklu çubukla sağ karaciğer döndürün ve karaciğer ve yemek borusu arka etrafında bağ teşrih. </li><li> Karaciğer ekskizyonu için hazırlıklar tamamlandığında, retraktörlerin, kılıç şeklinde olan işlem için forseps sivrisinek ve sıçan arka altında 5 ml&#39;lik şırınga çıkarın. ABDOMİNAL için bağırsak Dönüşl boşluğu. </li><li> Penil ven yoluyla normal salin solüsyonu 2 ml Heparin-Natrium 500 IU enjekte edilir. Yaklaşık 3 dakika sonra, 5 ml şırınga, sivrisinek forseps ve retraktörler sıfırlayın. Kendi kök proksimalinde CHA Arter. Kesim tutun uzun bir CHA için bağlandı iplik biter. </li><li> Bir sivrisinek forseps ile sağ renal ven IHVC yakın sıkma sonra splenik ven güdük altında bir tek mikro damar klempi ile portal ven kelepçe. Portal ven ön duvar kesilirken ve portal ven içine 18&#39;lik bir kateter yerleştirin. </li><li> 20 cm H 2 O. bir hidrostatik basınçta soğuk histidine-triptofan-ketoglutarat (HTK) çözeltisi ile 60 ml ile in situ karaciğer serpmek Hemen sonra, diyafram kesip intratorasik vena kava transeksiyonu ve perfüzyon çözüm karaciğer (Şekil 3c) dışarı durulanır izin IHVC açık ön duvar kesti. </li><li> Bir di ile IHVC kelepçesposable mikro gemi sadece karaciğer altında kelepçe. Hafif karaciğer ve sağ renal ven arasındaki orta noktasının altında IHVC diseksiyon tarafından ÖTV karaciğer, dalak damar güdük aşağıdaki portal ven, diyafram, karaciğer arkasında kalan ligamentler, sağ adrenal ven, ve kökünden CHA. Ezilmiş buz dolu bir plastik kutu içinde monte edilen bir metal kap içinde soğuk HTK çözelti içinde çıkarıldı karaciğer yerleştirin. </li></ol> 4. Ex vivo Greft Hazırlanması Karaciğer aşı için tüm işlemler buz gibi soğuk HTK çözeltisi ile doldurulmuş metal kap içinde gerçekleştirilir. Ex vivo olarak aşı hazırlama yaklaşık 30 dakika gerektirir. <ol><li> Portal ven (Şekil 4) için bir manşet eki için: Bir DeBakey Bulldog kelepçe ile portal venöz gövde Kelepçe. Fincan (Şekil 4a, b) üzerindeki bir köprü konumda kıskaç yerleştirin. Manşet yoluyla portal ven koyun ve kelepçetekrar birlikte 12 pozisyonunu (Şekil 4c) de manşet uzantısı ile portal ven. 7 pozisyonunda (Şekil 4d) de manşet dışında splenik ven güdük konumlandırmak için manşet üzerinde portal ven duvarı Evert ve 6-0 ipek iplik (Şekil 4e) ile portal ven sabitlemek . </li><li> Hepatik arter (Şekil 5) içine stent takmak için: Forseps ile diyaframın her iki kenarları sıkma ile karaciğer Fix ve düz DeBakey Bulldog kelepçe (Şekil 5a) ile bağlanan iplik tutarak CHA çekin. Düz mikro makas ile CHA ön duvarında küçük bir kesi yapmak. Sol el ile, düz bir mikro forseps ile kesi ön duvar tutun ve sağ eli ile, kavisli bir mikro forseps kullanarak CHA içine stent yerleştirin. Stent önceden Heparine Sodyum çözeltisi (100 IU / ml) (Şekil 5b-d) ile yıkanır. Secure 6-0 ipek iplik ile stent ve kesim birini tutmak 4 mm uzunluğunda iplik biter. HTK soğuk çözelti 5 ml arteriyel kateter vasıtasıyla karaciğer yıkayın. </li><li> :% 50 karaciğer rezeksiyonu (Şekil 6) için <ol class="lalpha"><li> Yerde bunu düzeltmek için bir sivrisinek forseps ile posterior kaudat lob Kelepçe. 4-0 ipek iplik (Şekil 7a) ile pedikül bağlanmasından sonra lob rezeksiyonu. Aynı şekilde, ön lop kaudat çıkarın. </li><li> Plastik kutu 90 derece döndürün. Diyafram ve medyan lob sol kısmının sağ kenarına sıkıştırın. Medyan lob ikili bölümlerini sınır üst kenarında küçük bir kesi yapın ve sonra ligasyon sonrası sol bölümünü (Şekil 7b) çıkarın. 4-0 ipek iplik ile pedikül bağlanmasından sonra sol lateral lob çıkarın. Bipolar forseps ile dikkatlice rezeke karaciğer yüzeyi Dağlamak. Bunun sonucu olarak, karaciğer bir kütle ile azaltılırpproximately 50% 15 (7c Şekil, d). </li></ol></li><li> : SHVC of plasti (Şekil 8) için Bir sivrisinek forseps (Şekil 8a) ile diyaframın her iki kenarları sıkma tarafından karaciğer konumunu saptamak. Karşılık gelen diyafram kaldırarak SHVC ön duvar kesin. Daha sonra anastomoz (Şekil 8b) için sütür olarak her iki köşe dışarıdan içeriye doğru iki 7-0 polipropilen dikiş takın. Sonra SHVC ve arka duvar kırpın. </li><li> 4 de karaciğer aşı depolayın ° bir soğuk su banyosu içinde HTK çözelti C &#39;dir. </li></ol> 5. Alıcı Operasyonu Alıcı sıçan içinde greft bir şema, Şekil 9&#39;da gösterilmiştir. Alıcı, işlem anhepatic süresinin 10-11 dakika ve IHVC sıkıştırma süresi yaklaşık 23-24 dakika içerir 60-70 dakika gerektirir. <ol><li> Do aynı prosedürleri gerçekleştirinikili uzantıları (Şekil 10a) olmadan bir orta hat kesi ile karın açılması, dışında ne operasyonu (3,1-3,4). </li><li> IHVC etrafında bir cerrahi alan elde etmek için duodenum ve tüm bağırsak sağ tarafında üzerinde ıslak bir gazlı bezi yerleştirin. Sol subfrenik boşluğuna sol lateral ve median lobu koyun ve ıslak bir gazlı bezle yukarı sağ lateral lob geri çekin. Retroperitoneal dokudan IHVC ayırın. Arter ve sağ adrenal ven (Şekil 10b) bölün. Islak bir gazlı bez ve pamuk bezlerden ile sola karaciğer döndürmek ve karaciğer arka etrafında bağ teşrih. </li><li> Anatomik pozisyona sağ lateral lob dönün. Yukarı medyan ve sol lateral lob kapak ve geri çekmek için ıslak bir gazlı bezi yerleştirin. Sadece kaudat lob dalı altında koledok transeksiyonu. Safra kanalı çevreleyen yumuşak dokuların mümkün olduğunca korunması gerekir. Kesim tutun biri inci biteruzun 4 mm safra kanalı için bağlandı okuyun. </li><li> Arter ve CHA dallanma için 3 mm mesafeden gastroduodenal arter ve proper hepatik arter bölün. Daha sonra, CHA sonunda arterin bir Y-yapı yapmak. Kesim tutun uzun bir 4-mm proper hepatik arter ligasyonu iplik biter. Pamuklu çubukla sağ karaciğer döndürün ve sol taraftan karaciğerin arka etrafında bağ teşrih. </li><li> Laktatlı Ringer solüsyonu 2 ml intravenöz enjeksiyonundan sonra, sadece sağ renal venin üzerinde bir metal mikro damar klempi ile IHVC kelepçe. Sıçan sol tarafında bir sivrisinek forseps ile karaciğer hilusu kendi çatallanma seviyesinde portal damar kelepçe. Bir periferik vasküler klemp ile sağ taraftan diyafram ile birlikte SHVC Kelepçe ve yağ bazlı kil bir yumru olarak kelepçenin parmak yüzük düzeltmek. </li><li> (Süresi anhepatic süresinde 0,4% hacim için izofluran ile anestezi azaltınarasında) portal ven çapraz sıkma. Vergi SHVC, portal ven ve aşağıdaki seviyelerde IHVC diseksiyon tarafından alıcının yerli karaciğer: SHVC, SHVC ve karaciğer arasındaki sınırda, sadece sivrisinek forseps çene yukarıda, ve portal ven ve hafif karaciğer ve sağ renal ven (Şekil 10c) arasındaki orta noktanın altında IHVC. Orthotopically karaciğer greft yerleştirin. </li><li> : Sürekli bir sütür (Şekil 11) tarafından SHVC arasında anastomoz için <ol class="lalpha"><li> Damar duvarı tutarak veya dikilmesi iğne tutan dikilmesi işlemi sırasında sol kavisli bir mikro forseps kullanın. İlk olarak, bir düğüm (veya tüm dikilmesi işlemleri tamamlandıktan sonra bu kravat) bağlayarak ardından greft sağ köşesinde ekli 7-0 polipropilen kullanılarak içeriden dışarıya alıcı SHVC üzerinde kalmak sütür koyun. Ardından, sol mısır de aynı şekilde ikinci kalmak dikiş yerleştirmekdevamlı bir dikiş başlangıç ​​dikiş olacak er,. Anastomoz genişletmek için, kavramak ve superiolaterally nazik traksiyon (Şekil 11a, b) Her iki köşelerinde DeBakey buldog kelepçeler kullanarak sütürler korumak. </li><li> Pierce yakından düğüm dışında içeriye dışarıdan greft tarafındaki duvardan sol köşesinde dikiş ve sağ köşesinde (Şekil 11c) için 7 ila 8 dikiş ile intrelüminal SHVC ise posterior satır dikiş. Dikkatle böylece iç lümen birbirlerine karşı karşıya olduğu ilk birkaç dikiş olun. Dışarıya greft tarafta damar yoluyla sağ köşesinde, delmek 7-0 polipropilen. </li><li> Sonra, yaklaşık 10 dikiş (Şekil 11d) ile, sağdan sola, dışarıdan ön satır dikiş. Ön sıranın tamamlanmasından önce, hava kabarcıklarını çıkarmak için laktatlanmış Ringer çözeltisi ile iç yıkayın. Yakın olarak ön satırdaki son dikiş yapınfiyatının sol köşede dikiş, ve sonra onları bir araya bağlamak mümkündür. </li></ol></li><li> : Bir manşet tekniği (Şekil 12) ile portal ven rekonstrüksiyonu için <ol class="lalpha"><li> Islak bir gazlı bezle yukarı medyan ve sol lateral lob katlayınız. Doğru bir tek mikro damar kelepçe kullanarak pilorik ven ile birleştiği noktada alıcı portal ven Kelepçe. Sivrisinek forseps o kelepçeler kil portal ven Fix ve karaciğer hilus (Şekil 12a, b) doğru forseps ucu çekin. </li><li> Sadece sivrisinek forseps çene altındaki portal ven ön duvar kesilirken. Alıcı portal ven ve Laktatlı Ringer solüsyonu ile manşet içini yıkayın. Sol elinde bir düz mikro forseps ve sağ elinde bir eğri mikro forseps ile manşet bir uzantısı ile kesi ön duvar tutun. Derinden alıcı portal ven içine manşet yerleştirin ve sabitleyinçevresel 6-0 ipek iplik (Şekil 12c-f). </li><li> Portal ven ve SHVC ve kelepçeler bırakın ve daha sonra karaciğer reperfüzyonu. Sıçan arkasından 5 ml şırınga çıkarın ve 0.8% hacim için izofluran konsantrasyonu artırır. </li></ol></li><li> Bir stent teknik 16 (Şekil 13) ile hepatik arterin yeniden için: <ol class="lalpha"><li> İlk olarak, sol taraftan bir sivrisinek forseps ile alıcının proper hepatik arter ipliği tutun ve karaciğer hilus doğru çekin ve sonra pankreas sağ tarafına yakın (Şekil 13a) dan alıcı CHA kelepçe. </li><li> Düz bir mikro forseps ile bir huni-şekilli açıklık sağlamak için alıcı CHA sonunda Y-yapısının bir çatallanma küçük bir kesi yapmak. Kavisli bir mikro forseps ile greft CHA yerleştirilen stent tutun. Heparin-Sodyum çözeltisi (100 IU / ml), her bir lümen ile yıkama işleminden sonra, yeniden içine stent slaytcipient CHA ve 6-0 ipek iplik ile sabitleyin. Birlikte çok hem Chas birbirine yakın anastomoz (Şekil 13b) azaltılmış gerilim ile almak istediğiniz bir alıcı CHA bu thread sonu ve greft CHA üzerine 4 mm diş bağla. Bundan sonra, kelepçe bırakın. </li></ol></li><li> : Sürekli bir sütür (Şekil 14) tarafından IHVC arasında anastomoz için SHVC için aynı şekilde anastomoz, ama ince lokma ile daha dikiş (Şekil 14a-d) kullanın. Son dikiş de dikiş Bağlama bertaraf edilebilir, ya da bağlama çok sıkı bir şekilde bağlayarak neden anastomoz darlığı önlemek için bir büyüme faktörü ile gerçekleştirilebilir. Klempin alınması sonrası, 1.0 vol% anestezi konsantrasyonu artırır. Anastomoz stenotik görünüyorsa, ikili kalmak sütürler çekerek veya anastomoz genişletmek için hafifçe ön satır genişleterek anastomoz genişler. </li><li> % 8.4 sodyum bikarbonat eriyik 0.5 ml Yönetn intravenöz laktatlanmış Ringer çözeltisi, 1.0 ml. </li><li> Kanama ve safra kaçağının önlenmesi için rezeke karaciğer yüzeyi mühür Tachosil küçük parçaları sürün. </li><li> Stent tekniği ile koledok rekonstrüksiyonu için: <ol class="lalpha"><li> Sol taraftan bir sivrisinek forseps ile alıcının koledok parçacığı tutun. Kil sivrisinek forseps Fix ve karaciğer hilus doğru forseps ucu çekin. </li><li> Yeniden safra kanalı çok uzun olmaz, böylece uygun düzeyde safra kanalı küçük bir kesi olun. Bir büküm önlemek için dikkat ile alıcının kanal içine greft safra kanalı yerleştirilen stent yerleştirin ve 6-0 ipek iplik ile sabitleyin. Greft kanal üzerine alıcı kanalı ve 4 mm diş bu thread Tie birlikte böylece hem kanalların anastomoz azaltılmış gerilim ile birbirine yakın olsun. </li></ol></li><li> Yeniden prosedürler tamamlandığında, 1 m enjekte% 5 glikoz çözeltisi l intravenöz (Şekil 15). </li><li> Yeterli hemostaz onaylayın ve sonra iki kat sürekli 4-0 Vicryl dikiş ile abdominal insizyon kapatın. </li></ol> 6. Postoperatif Tedavi ve Takip Ameliyattan hemen sonra, normal salin solüsyonu, 1.5 ml &#39;lik bir toplam bir subkutan enjeksiyon sefuroksim sodyum (16 mg / kg) ve buprenorfin (0.1 mg / kg) ile alıcı sıçan tedavi. Sıçan ısındı hava (30-35 ° C) ve bir oksijen kaynağı ile özel bir yoğun bakım ünitesinde kafeste 60 dakika kurtarmak için izin ver. 3 gün boyunca deri altından buprenorfinin analjezik olarak (0.1 mg / kg), her 12 saat için enjekte edilir. Daha sonra normal bir kafese sıçan taşımak, su ve gıda ad libitum erişim sağlar.

<ol>
	<li>Puhl, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Low+viscosity+histidine-tryptophan-ketoglutarate+graft+flush+improves+subsequent+extended+cold+storage+in+University+of+Wisconsin+solution+in+an+extracorporeal+rat+liver+perfusion+and+rat+liver+transplantation+model.">Low viscosity histidine-tryptophan-ketoglutarate graft flush improves subsequent extended cold storage in University of Wisconsin solution in an extracorporeal rat liver perfusion and rat liver transplantation model.</a> Liver Transpl. 12, 1841-1849 (2006).</li><li>Yagi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+Preservation+and+Microcirculation+with+POLYSOL+After+Partial+Liver+Transplantation+in+Rats.">Improved Preservation and Microcirculation with POLYSOL After Partial Liver Transplantation in Rats.</a> J Surg Res. 167, e375-e383 (2011).</li><li>Engemann, R., Ulrichs, K., Thiede, A., Muller-Ruchholtz, W., Hamelmann, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Value+of+a+physiological+liver+transplant+model+in+rats.+Induction+of+specific+graft+tolerance+in+a+fully+allogeneic+strain+combination.">Value of a physiological liver transplant model in rats. Induction of specific graft tolerance in a fully allogeneic strain combination.</a> Transplantation. 33, 566-568 (1982).</li><li>Sumimoto, R., Shinomiya, T., Yamaguchi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+hepatic+arterial+blood+flow+in+rats+with+liver+transplants.+Examination+of+donor+liver-derived+serum+class+I+MHC+antigen+in+rats+with+liver+transplants+with+or+without+hepatic+arterial+reconstruction.">Influence of hepatic arterial blood flow in rats with liver transplants. Examination of donor liver-derived serum class I MHC antigen in rats with liver transplants with or without hepatic arterial reconstruction.</a> Transplantation. 51, 1138-1139 (1991).</li><li>Chaland, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+transplantation+with+hepatic+artery+anastomoses.+Hemodynamics+and+response+to+hemorrhage+in+conscious+rats.">Orthotopic liver transplantation with hepatic artery anastomoses. Hemodynamics and response to hemorrhage in conscious rats.</a> Transplantation. 49, 675-678 (1990).</li><li>Imamura, H., Rocheleau, B., Cote, J., Huet, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+consequence+of+rat+orthotopic+liver+transplantation+with+and+without+hepatic+arterial+reconstruction:+a+clinical,+pathological,+and+hemodynamic+study.">Long-term consequence of rat orthotopic liver transplantation with and without hepatic arterial reconstruction: a clinical, pathological, and hemodynamic study.</a> Hepatology. 26, 198-205 (1997).</li><li>Zhong, Z., Theruvath, T. P., Currin, R. T., Waldmeier, P. C., Lemasters, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=NIM811,+a+mitochondrial+permeability+transition+inhibitor,+prevents+mitochondrial+depolarization+in+small-for-size+rat+liver+grafts.">NIM811, a mitochondrial permeability transition inhibitor, prevents mitochondrial depolarization in small-for-size rat liver grafts.</a> Am. J. Transplant. 7, 1103-1111 (2007).</li><li>Spiegel, H. U., Palmes, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+techniques+of+orthotopic+rat+liver+transplantation.">Surgical techniques of orthotopic rat liver transplantation.</a> J. Invest. Surg. 11, 83-96 (1998).</li><li>Lee, S., Charters, A. C., Chandler, J. G., Orloff, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technique+for+orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.">A technique for orthotopic liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 16, 664-669 (1973).</li><li>Lee, S., Charters, A. C., Orloff, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simplified+technic+for+orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.">Simplified technic for orthotopic liver transplantation in the rat.</a> Am. J. Surg. 130, 38-40 (1975).</li><li>Kamada, N., Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.+Technique+using+cuff+for+portal+vein+anastomosis+and+biliary+drainage.">Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage.</a> Transplantation. 28, 47-50 (1979).</li><li>Howden, B., Jablonski, P., Grossman, H., Marshall, V. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+importance+of+the+hepatic+artery+in+rat+liver+transplantation.">The importance of the hepatic artery in rat liver transplantation.</a> Transplantation. 47, 428-431 (1989).</li><li>Gao, W., Lemasters, J. J., Thurman, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+a+new+method+for+hepatic+rearterialization+in+rat+orthotopic+liver+transplantation.+Reduction+of+liver+injury+and+improvement+of+surgical+outcome+by+arterialization.">Development of a new method for hepatic rearterialization in rat orthotopic liver transplantation. Reduction of liver injury and improvement of surgical outcome by arterialization.</a> Transplantation. 56, 19-24 (1993).</li><li>Zhao, D., Zimmermann, A., Wheatley, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morphometry+of+the+liver+after+liver+transplantation+in+the+rat:+significance+of+an+intact+arterial+supply.">Morphometry of the liver after liver transplantation in the rat: significance of an intact arterial supply.</a> Hepatology. 17, 310-317 (1993).</li><li>Omura, T., Ascher, N. L., Emond, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fifty-percent+partial+liver+transplantation+in+the+rat.">Fifty-percent partial liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 62, 292-293 (1996).</li><li>Lehmann, T. G., Bunzendahl, H., Langrehr, J. M., Neuhaus, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Arterial+reconstruction+in+rat+liver+transplantation--development+of+a+new+tubing+technique+of+the+common+hepatic+artery.">Arterial reconstruction in rat liver transplantation--development of a new tubing technique of the common hepatic artery.</a> Transpl. Int. 18, 56-64 (2005).</li><li>Reck, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+arterialization+on+hepatic+oxygen+supply,+tissue+energy+phosphates,+and+outcome+after+liver+transplantation+in+the+rat.">Impact of arterialization on hepatic oxygen supply, tissue energy phosphates, and outcome after liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 62, 582-587 (1996).</li><li>Hasuike, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simple+method+for+orthotopic+liver+transplantation+with+arterial+reconstruction+in+rats.">A simple method for orthotopic liver transplantation with arterial reconstruction in rats.</a> Transplantation. 45, 830-832 (1988).</li><li>Steffen, R., Ferguson, D. M., Krom, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+method+for+orthotopic+rat+liver+transplantation+with+arterial+cuff+anastomosis+to+the+recipient+common+hepatic+artery.">A new method for orthotopic rat liver transplantation with arterial cuff anastomosis to the recipient common hepatic artery.</a> Transplantation. 48, 166-168 (1989).</li><li>Knoop, M., Bachmann, S., Keck, H., Steffen, R., Neuhaus, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experience+with+cuff+rearterialization+in+600+orthotopic+liver+grafts+in+the+rat.">Experience with cuff rearterialization in 600 orthotopic liver grafts in the rat.</a> Am. J. Surg. 167, 360-363 (1994).</li><li>Hickman, R., Engelbrecht, G. H., Duminy, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technique+for+liver+transplantation+in+the+rat.">A technique for liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 48, 1080 (1989).</li><li>Liu, T., Freise, C. E., Ferrell, L., Ascher, N. L., Roberts, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+modified+vascular+"sleeve"+anastomosis+for+rearterialization+in+orthotopic+liver+transplantation+in+rats.">A modified vascular "sleeve" anastomosis for rearterialization in orthotopic liver transplantation in rats.</a> Transplantation. 54, 179-180 (1992).</li><li>Li, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modified+sleeve+anastomosis+for+reconstruction+of+the+hepatic+artery+in+rat+liver+transplantation.">Modified sleeve anastomosis for reconstruction of the hepatic artery in rat liver transplantation.</a> Microsurgery. 22, 62-68 (2002).</li><li>Martins, P. N., Theruvath, T. P., Neuhaus, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rodent+models+of+partial+hepatectomies.">Rodent models of partial hepatectomies.</a> Liver Int. 28, 3-11 (2008).</li><li>Russell, W. M. S., Burch, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Principles of Humane Experimental Technique. , (1992).</li></ol>

Biz ifşa etmek çakışan çıkarları var. Sıçanlar Laboratuar Hayvan Bilimi Dernekleri (FELASA) için Federasyonu&#39;nun kurallarına göre spesifik patojen free koşullar altında yerleştirilmiştir. Tüm deneyler hayvanların korunması ve &quot;Laboratuvar Hayvanları Bakım ve Kullanım Kılavuzu&quot; (Sağlık yayını No 86-23 National Institutes, 1985 revize) ile ilgili Alman federal yasalara uygun olarak yapılmıştır.

Sıçan OKT ilk modeli Lee ve ark tarafından rapor edilmiştir. 1973 9, hepatik arter dahil tüm gemiler bir el-dikili yöntemi ile yeniden inşa edildi ve ekstrakorporeal portosistemik şant kullanıldığı. Bu model teknik ve karmaşık gerçekleştirmek zordu. Sonraki model 1975 yılında 10 aynı yazarlar tarafından geliştirilen hepatik arteriyel rekonstrüksiyon ve ekstrakorporeal şant olmadan biriydi. Daha sonra 1979 yılında, Kamada ark. Hepatik rearterialization 11 olmadan modeli için manşet anastomoz tekniğini tanıttı. Bu değişiklikler ile, sıçanlarda OKT alıcı operasyonları kısaltılmış anhepatic zaman basitleştirilmiş ve yaygın olarak kabul edilen bir deneysel model olarak kullanılmıştır. Arterleştirilmelerine zorlu bir görevdi ama, çünkü Ancak, sıçanlarda hepatik arterleştirilmelerine OKT 8 önemi üzerinde o zamandan beri oldukça tartışmalı olmuştur diTransplantasyon sonrası sağkalım etkilemez d. Çeşitli teknikler kullanılarak yeniden karaciğer arterleştirilmelerine üzerinde çok sayıda çalışma böyle bir aort kademeli-to-aort anastomoz 3,9,17, bir manşon anastomoz teknik 18,19,20, bir teleskopik teknik 5, bir stent teknik olarak 13 8, rapor edilmiştir, 16, ve bir kol anastomoz teknik 12,21-23. Sıçan OKT için tekniği bugün hala standart değil iken, arterialized modeli giderek onun fizyolojik üstünlüğü 8,12,13,14 açısından tercih edilmiştir. Yukarıda bahsedilen yöntemler arasında gerçekleştirmek için basit ve hızlı bir stent teknik Lehmann et al tarafından rapor edilmiştir. 2005 16. Çalışma mükemmel sonuçlar gösterdi: hayır oklüzyon oranı reperfüzyon sonrası 8 saat, 24 saat ve 6 ay sonunda yeniden hepatik arterde idi. Bu nedenle hepatik arterleştirilmelerine için bu tekniği benimsemiştir. Biz perforSHVC ve IHVC yeniden inşası için ma el-dikili anastomoz. Bu yöntem tromboz 8 sıklığının azaldığı yol optimal fizyolojik durumu ile anastomoz sağlar ve iyi mikrocerrahi simülasyon ve cerrahlar için eğitimdir. Buna ek olarak, anastomoz hatta kısa damar kütükleri ile mümkün olabilir. IHVC ve anastomoz ile ilgili olarak, bu yöntem manşon anastomoz tekniği ile karşılaştırıldığında greft tarafında bir uzun IHVC gerektirmez. Bu nedenle, verici renal damar uzun greft IHVC yapmak için parçalanmıştır zaman, bu yöntem, böyle bir kısa intrahepatik ile sağ yan lobların kaudat ve oluşan bir aşı olarak% 30 bir uzun IHVC, gerektiren, küçük bir graft transplantasyonu için geçerlidir SHVC 2 olmadan vena kava. Çeşitli yöntemler bugüne kadar sıçanlarda, karaciğer rezeksiyon teknikleri İlişkin bildirilmiştir; iki büyük teknikleri klasik kitle ligature tekniktirve damar odaklı tekniği 24. Biz% 50 karaciğer rezeksiyonu 15 klasik bağ tekniği gerçekleştirmek, ancak cerrahi bir mikroskop altında prosedürü daha ince yapmak için, ve kalan lob ve yapılara zarar vermemek için. Biz modelinde alıcı fareler temsilcisi sonuçları açıklanan; sıçanlarda belirgin komplikasyon olmadan 7 günlük gözlem döneminde kurtuldu. Model, uzun süreli soğuk depolama, kalp ölümünden sonra bağış içerir uzamış sıcak iskemi, ve karaciğer yaralanma veya hastalıkların deneysel modellerden daha küçük karaciğer greft veya greft kullanımı gibi farklı ayarlar, seçerek deneylerin farklı amaçlar için modifiye edilebilir. ; Operasyon süresi, e kan kaybı miktarı: Bizim tecrübelerimize göre, transplantasyon, sıçan OKT sonuçlarının en güvenilir parametresi sonrasında sağkalım etkileyebilir prosedürler boyunca üç önemli faktör vardırözel portal ven ve IHVC zaman sıkma ve her bir geminin yeniden yeterliliği, hangi darlık, tromboz neden olabilir, veya kanama. Bu modelin bir eğitim döneminde, başarısızlık büyük olasılıkla bu faktörlere bağlı olabilir. Bu video yazıda, hepatik arteriyel rekonstrüksiyon ile kısmi OKT bizim sıçan modeli için cerrahi işlemler için adım-adım talimatlar sunuyoruz. OKT bir sıçan modeli karmaşık ve gelişmiş mikrocerrahi becerileri gerektirir iken, bu makalede, bu modelin eğitim ve öğrenme için iyi bir kılavuz olarak işlev görecek pratik bilgiler bol sağlar. Verimli bu model öğrenme, öğrenme sürenin kısaltılması uygulama için gerekli hayvan ve maliyetlerini sayısını azaltarak, daha sonra deneylerde güvenilir sonuçlar üreyen için özellikle önemlidir. Bu Russell ve Burch tarafından öne edildi hayvan deneyleri 3R&#39;si kavramı (değiştirme, azaltma, ve arıtma) ile uyumludur1959 25.

<table border="1"><tbody><tr><td> Isim </td><td> Şirket </td><td> Katalog numarası </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> Cerrahi mikroskop </td><td> Leica </td><td> M651 </td><td></td></tr><tr><td> Işık kaynağı </td><td> Schott </td><td> KL1500LCD </td><td></td></tr><tr><td> Pamuklu çubuklar </td><td> NOBA Verbandmittel </td><td> 974202 </td><td></td></tr><tr><td> Gazlı bezlerden (5x5 cm) </td><td> Fuhrmann </td><td> 10002 </td><td></td></tr><tr><td> povidon-iyot çözeltisi </td><td> Mundipharma </td><td> 6108022.00.01 </td><td></td></tr><tr><td> Yağ bazlı kil </td><td> Debika kurumlar </td><td> 090148 </td><td></td></tr><tr><td> TachoSil </td><td> Takeda Pharmaceuticals International GmbH </td><td> EU/1/04/277/001-004</td><td> Rezeke karaciğer yüzeyi Uygulanan </td></tr><tr><td> Bistüri No: 11 </td><td> PFM tıbbi </td><td> 200130011 </td><td> Manşet ve stentler hazırlanması </td></tr><tr><td> 14-gauge kateter </td><td> B. Braun </td><td> 4268210S </td><td> PV için Manşet </td></tr><tr><td> 18-gauge kateter </td><td> B. Braun </td><td> 4268130S </td><td> PV ile Perfüzyon </td></tr><tr><td> 24-gauge kateter </td><td> B. Braun </td><td> 4269071S </td><td> BD ve HA için Stent </td></tr><tr><td> 4-0 ipek sütür </td><td> Resorba </td><td> H3F </td><td> Karaciğer rezeksiyonu </td></tr><tr><td> 6-0 ipek sütür </td><td> Resorba </td><td> H1F </td><td></td></tr><tr><td> 7-0 Prolen (polipropilen) sütür </td><td> Ethicon </td><td> 8701H </td><td> SHVC ve IHVC </td></tr><tr><td> 4-0 Vicryl dikiş </td><td> Ethicon </td><td> V304H </td><td> Karın kapatılması </td></tr><tr><td> 5 ml şırınga </td><td> Terumo </td><td> SS + T05ES1 </td><td> Yastık yedekleyin </td></tr><tr><td> Isıtma pedi </td><td> Thermo </td><td> 190 x 260 mm </td><td></td></tr><tr><td> Manyetik fiksatör retraksiyon sistemi </td><td> Güzel Bilim Araçları A.Ş. </td><td> 18200-01 18200-02 18200-03 18200-12 </td><td></td></tr><tr><td> Soğuk su banyosu </td><td> Huber </td><td> 740.000X </td><td> Greft koruma </td></tr><tr><td> Bipolar Forseps </td><td> Söring </td><td> MBC-200 </td><td></td></tr><tr><td> Sivrisinek forseps </td><td> BONIMED </td><td> 451-476-03 </td><td> Kullanılan İki çift </td></tr><tr><td> Adson mikro forseps </td><td> Dimeda </td><td> 10.176.12 </td><td></td></tr><tr><td> Kavisli milcro forseps </td><td> AESCULAP </td><td> FD281R </td><td></td></tr><tr><td> Düz mikro forseps </td><td> Bonimed </td><td> 451-476-03 </td><td></td></tr><tr><td> Kavisli mikro makas </td><td> Medicon </td><td> 05.15.83 </td><td></td></tr><tr><td> Düz mikro makas </td><td> AESCULAP </td><td> FD12 </td><td> Güzel kesi </td></tr><tr><td> Makas </td><td> AESCULAP </td><td> BC211W </td><td></td></tr><tr><td> Mikro iğne tutucu </td><td> AESCULAP </td><td> FD241R </td><td> Imar </td></tr><tr><td> Belediye-Hegar İğne tutucu </td><td> Mizuho Ikakogyo </td><td> 06-798-00 </td><td> Karın kapatılması </td></tr><tr><td> DeBakey Bulldog kelepçe (düz) </td><td> ULRICH </td><td> CV3054 </td><td></td></tr><tr><td> DeBakey Bulldog kelepçe (eğri) </td><td> Codman </td> &lt;td&gt; 37-1062 </td><td></td></tr><tr><td> Satinsky kelepçe </td><td> Mizuhoika </td><td> 09-230-24 </td><td></td></tr><tr><td> Periferik vasküler klemp </td><td> Teleflex Medical </td><td> 353494 </td><td> Alıcı SHVC </td></tr><tr><td> Mikro damar kelepçe (atılabilir) </td><td> AROSurgical Instruments Corporation </td><td> TKM-1-60 g </td><td> PV, greft IHVC ve alıcı HA </td></tr><tr><td> Mikro damar kelepçe (metal) </td><td> Güzel Bilim Araçları A.Ş. </td><td> 18052-01 </td><td> Alıcı IHVC </td></tr><tr><td> Laktatlı Ringer solüsyonu </td><td> Fresenius Kabi </td><td> 6150917.00.00 </td><td></td></tr><tr><td> Normal tuz çözeltisi </td><td> DeltaSelect </td><td> 1299.99.99 </td><td></td></tr><tr><td> HTK çözümü </td><td> Dr Franz Köhler Chemie GmbH </td><td> 31268.00.00 </td><td> Koruma çözümü </td></tr><tr><td> Heparin-Natrium </td><td> Ratiopharm </td><td> 5394.02.00 </td><td> Greft perfüzyon önce 500 IU </td></tr><tr><td> % 8.4 sodyum bikarbonat </td><td> Fresenius Kabi </td><td> 4399.97.99 </td><td> Reperfüzyon sonrası 0.5 ml </td></tr><tr><td> % 5 glikoz çözeltisi </td><td> B. Braun </td><td> 6714567.06.00 </td><td> Reperfüzyondan sonra 1.0 mi </td></tr><tr><td> Cefuroxim sodyum </td><td> Fresenius Kabi </td><td> 38985.01.00 </td><td> Antibiyotik, 16 mg / kg &#39; </td></tr><tr><td> Buprenorfin </td><td> Essex Pharma </td><td> 997.00.00 </td><td> Ağrı kesici, 0.1 mg / kg &#39; </td></tr><tr><td> Yoğun Bakım Ünitesi Cage </td><td> Brinsea Ürünleri Ltd </td><td> Vetario S10 </td><td> Ameliyat sonrası bakım </td></tr></tbody></table>

surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction

Bir bütün veya kısmi greft kullanılarak sıçanlarda transplantasyon&#39;a (OKT) graft korunması ve iskemi-reperfüzyon hasarı 1,2, immünolojik yanıtları 3,4, hemodinami 5,6 üzerinde çalışmalar transplantasyon çalışmaları için vazgeçilmez bir deneysel model, ve küçük-için-boyutlu sendromu 7. Sıçan OKT deneysel cerrahide en zor hayvan modelleri arasında yer alıyor ve öğrenmek için uzun bir zaman alabilir gelişmiş mikrocerrahi becerileri gerektirir. Sonuç olarak, bu modelin kullanımı sınırlı kalmıştır. Sonuçların güvenilirlik ve tekrarlanabilirlik gibi karmaşık hayvan modellerinde kullanıldığı deneyler temel bileşenleri olduğu için, bu model için iyi standardize ve sofistike prosedürleri yetiştirilmek üzere sıçan OKT katılan cerrahlar için önemlidir. İlk model describ beri çeşitli teknikler ve sıçanlarda OKT modifikasyonları 8 bildirilmiştir ikenOnlar büyük ölçüde rekonstrüksiyon prosedürleri basitleştirilmiş çünkü Lee ve ark ed. 1973 yılında 9, hepatik arteriyel rekonstrüksiyon 10 ve Kamada ark manşet anastomoz tekniğinin tanıtılması ortadan kaldırılması. 11, bu modelin önemli bir gelişme idi . Kamada ve diğ. Modelinde, hepatik rearterialization de ortadan kaldırılmıştır. Sıçanlarda karaciğer transplantasyonu sonrasında hepatik arteryel akımı olmadan hayatta olabilir bu yana, hepatik arterleştirilmelerine değeri üzerinde önemli tartışmalara vardı. Bununla birlikte, arterialized modelinin fizyolojik üstünlük giderek özellikle safra kanalı sisteminde 8,12 ve karaciğer 8,13,14 bütünlüğünün korunması açısından kabul edilmiştir. Bu yazıda, ex vivo karaciğer rezeksiyonu sonrasında% 50 kısmi greft kullanılarak hepatik arter rekonstrüksiyonu ile OKT bir sıçan modeli için detaylı cerrahi işlemler sunuyoruztion. Ve ve hepatik arter stent tekniği; portal ven için bir manşet tekniği; supra-ve infrahepatic vena kava için 7-0 polipropilen devamlı sütür: Her damar ve safra kanalı için rekonstrüksiyon girişimleri aşağıdaki yöntemlerle yapılmaktadır safra kanalı.

Tüm alıcı ratlar (n = 20) (her zaman noktasında n = 5) portalı reperfüzyon sonrası (7 gün) 1, 3, 24, ve 168 saat kan örnekleri için planlı ötanazi kadar belirgin komplikasyon olmadan atlattı. Kan örnekleri 27-gauge iğne ile doğrudan bir şırınga ile IHVC toplanmıştır. 10 dakika boyunca 5.340 xg&#39;de santrifüj sonrasında serum örnekleri alındı ​​ve transplantasyon sonrası hepatosellüler hasarın derecesini yansıtan alanin aminotransferaz (ALT) düzeyleri için analiz. Serum ALT seviyeleri değişikliklerin zaman ders Şekil 16 &#39;de gösterilmiştir. ALT düzeyleri 24 saatte zirveye ulaştı (ortalama ± standart sapma: 212.6 ± 67.9 IU / L) ve daha sonra 168 saat (33.6 ± 6.8 IU / L) normal sınırlarda gerilemiştir. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig1.jpg" /> Şekil 1. Bir 1 portal ven (PV) için manşet4-gauge kateter ve 24 gauge kateter gelen hepatik arter (HA) ve safra kanalı (BD) için stentlerin. <img alt="Şekil 2," fo:content-width="4in" fo:src="/files/ftp_upload/4376/4376fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig2.jpg" /> Şekil 2. Donör sıçan karaciğer kaldırılması Şema BD, safra kanalı,. HA, hepatik arter; IHVC, infrahepatic vena kava, PV, portal ven; SHVC, suprahepatik vena kava. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig3.jpg" /> Şekil 3,. Donör operasyonu. a. sıçan, bir manyetik fiksatör geri çekme sistemi ile bir ısıtma pedi üzerine yerleştirilir. Karın ikili uzantıları ile bir orta hat kesi ile açılır. B. Stent yerleştirilmesi safra kanalı içine. C. Karaciğer Perfüzyon portal ven yoluyla. Kısaltmalar açıklar vardırŞekil 2 &#39;de ed. <img alt="Şekil 4," src="/files/ftp_upload/4376/4376fig4.jpg" /> Şekil 4. Portal ven bir manşet Ek. a, b. portal venöz gövde kavrar DeBakey Bulldog kelepçe metal kupanın üzerine yerleştirilir. Fincan ezilmiş buz. C ile dolu plastik bir kutu içinde monte edilir. Portal ven manşet yoluyla alınır. D. Portal ven duvarı 7 manşet dışında splenik ven güdük ile manşet üzerinde everte edilir pozisyonunda ve 12 pozisyonunda manşet bir uzantısı. e. portal ven manşet üzerinde çevresel 6-0 ipek iplik ile güvence altına alınır. Siyah oklar splenik ven güdük göstermektedir. <img alt="Şekil 5," src="/files/ftp_upload/4376/4376fig5.jpg" /> Şekil 5,. Ex vivohepatik artere stent yerleştirilmesi. Bir. Karaciğer, diyaframın her iki kenarını sıkma ile sabittir ve hepatik arter düz arter ligasyonu parçacığı tutarak çekilir. b. hepatik arter üzerindeki küçük kesi ön duvarının düz bir mikro forseps ile yapılır . c, d. stent hepatik arter içine yerleştirilmiş ve 6-0 ipek iplik ile güvence altına alınır. <img alt="Şekil 6" fo:content-width="3.5in" fo:src="/files/ftp_upload/4376/4376fig6highres.jpg" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig6.jpg" /> Şekil 6. Ex vivo% 50 karaciğer rezeksiyonu şema. Gri renkte Loblar kaldırılır. ACL, anterior kaudat lob; PCL, posterior kaudat lob; LLL, sol lateral lob; LML, medyan lobu sol kısmı, medyan lobun RML, sağ bölümü; SRL, üstün sağ lateral lob; IRL, inferior sağ lateral lob. Şekil 7. Ex vivo% 50 karaciğer rezeksiyonu. medyan lobu. c sol kısmının pedikül bir. posterior kaudat lob pedikül Ligasyonu. b. Ligasyonu.% 50 rezeksiyonu öncesi karaciğer. d.% 50 rezeksiyon sonrası karaciğer. <img alt="Şekil 8," src="/files/ftp_upload/4376/4376fig8.jpg" /> Şekil 8. Suprahepatik vena kava ex vivo plasti. Bir. Karaciğer sivrisinek forseps ile diyaframın her iki kenarını sıkma ile sabittir. b. kalın dikişler 7-0 polipropilen iki köşesinden de bağlıdırlar. <img alt="Şekil 9" fo:content-width="4in" fo:src="/files/ftp_upload/4376/4376fig9highres.jpg" src = &quot;/ files/ftp_upload/4376/4376fig9.jpg&quot; /&gt; 9 Şekil. Alıcı sıçan greft implantasyonu Şeması. Rekonstrüksiyon girişimleri 7-0 sürekli dikiş, bir manşet tekniği ile portal ven (PV), ve karaciğer yetmezliği olan supra-ve infrahepatic vena kava (SHVC ve IHVC) için yapılır stent tekniği ile arter (HA) ve safra kanalı (BD). <img alt="Şekil 10" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig10.jpg" /> 10 Şekil. Doğal karaciğer çıkarılması kadar Alıcı işlem. Bir. karın orta hat kesi ile açılır. b. sağ adrenal ven ligasyonu edilir. c. Yerel karaciğer eksize edilir. Kısaltmalar Şekil 2 &#39;de açıklanmaktadır. <img alt="Şekil 11" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig11.jpg" /> 11 Şekil. Suprahe anastomozuhepatik vena kava. a, b. suprahepatik vena kava için periferik vasküler klemp yağ bazlı kil bir yumru giderilmiştir. Her iki köşelerinde kalmak dikişler superiolaterally anastomoz genişletmek için hafif çekme ile korunur. C. Sürüyor posterior satırın Sürekli intraluminal sütür. D. Sürüyor anterior satır Kontinü sütür. <img alt="Şekil 12" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig12.jpg" /> Şekil 12. Portal ven rekonstrüksiyonu. a, b. portal ven sıkma sivrisinek forseps yağ bazlı kil giderilen ve karaciğer hilus doğru çekilir. krş. portal ven içine manşet yerleştirilmesi. <img alt="Şekil 13" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig13.jpg" /> 13 Şekil. Hepatik arter rekonstrüksiyonu. a, b. </stron<html> g proper hepatik arter (PHA) ve gastroduodenal arterden (GDA) ve bifürkasyonunda alıcının ortak hepatik arter (CHA) içine stent&gt; Ekleme. <img alt="Şekil 14" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig14.jpg" /> 14 Şekil. Infrahepatic vena kava Anastomoz. infrahepatic vena kava bir. hem köşelerde kalmak dikişler. b. posterior satır Kontinü sütür. c. anterior satır Kontinü sütür. d. Reperfüzyon. Kısaltmalar Şekil 2 &#39;de açıklanmaktadır. <img alt="Şekil 15" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig15.jpg" /> Şekil 15. Tüm rekonstrüksiyon işlemleri tamamlanmıştır. Kısaltmalar Şekil 2 &#39;de açıklanmaktadır. <img alt="&lt;/ Html">&quot;Şekil 16&quot; src = &quot;/ files/ftp_upload/4376/4376fig16.jpg&quot; /&gt; Şekil 16 serum alanin aminotransferaz (ALT) düzeylerinde değişiklikler zaman ders Postoperatif (n = 20; n her zaman noktasında = 5).. Veriler standart sapmaları belirten hata çubukları ile araç olarak ifade edilmiştir. ALT düzeyleri 24 saatte bir tepe (212.6 ± 67.9 IU / L) ulaştığı ve daha sonra 168 saat (33.6 ± 6.8 IU / L) normal sınırlarda gerilemiştir.

Watch this Scientific Journal Video about Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction at JoVE.com

Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

Sıçanlarda transplantasyon&#39;a biyomedikal araştırmalar için vazgeçilmez bir deneysel model. Burada% 50 parsiyel greft kullanılarak hepatik arter rekonstrüksiyonu ile ortotopik sıçan karaciğer nakli için cerrahi işlemler sunuyoruz.

Hepatik Arter İmar Kısmi Ortotopik Karaciğer Nakli Bir Rat Modeli Cerrahi İşlemleri

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as ...

surgical-procedures-for-rat-model-partial-orthotopic-liver

Research

JoVE Journal

Medicine

36.0K Görüntüleme.  RWTH-Aachen University. Sıçanlarda transplantasyon'a biyomedikal araştırmalar için vazgeçilmez bir deneysel model. Burada% 50 parsiyel greft kullanılarak hepatik arter rekonstrüksiyonu ile ortotopik sıçan karaciğer nakli için cerrahi işlemler sunuyoruz.

Video: Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

Orthotopic Aortic Transplantation: A Rat Model to Study the Development of Chronic Vasculopathy

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant vasculopathy (TVP).
The commonly used animal model for cardiovascular chronic rejection studies is the heterotopic heart transplant model performed in laboratory rodents. This model is used widely in experiments since Ono and Lindsey (3) published their technique. To analyze the findings in the blood vessels, the heart has to be sectioned and all vessels have to be measured.
Another method to investigate chronic rejection in cardiovascular questionings is the aortic transplant model (1, 2). In the orthotopic aortic transplant model, the aorta can easily be histologically evaluated (2). The PVG-to-ACI model is especially useful for CAV studies, since acute vascular rejection is not a major confounding factor and Cyclosporin A (CsA) treatment does not prevent the development of CAV, similar to what we find in the clinical setting (4). A7-day period of CsA is required in this model to prevent acute rejection and to achieve long-term survival with the development of TVP.
This model can also be used to investigate acute cellular rejection and media necrosis in xenogeneic models (5).

This video demonstrates the orthotopic aortic transplant model as a simple model to study the development of transplant vasculopathy (TVP) in rats.

Ortotopik Aort Nakli: Rat Modeli Kronik Vaskülopati Geliştirme Çalışması

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant ...

Tıp

Orthotopic Liver Transplantation in Rats

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat liver transplantation in 1979 by Kamada et al.3, this model has remained the gold standard despite various proposed alternative techniques4. Nevertheless, its broader use is limited by its steep learning curve5.
In this video paper, we show a simple and easy-to-establish revision of Kamada's two-cuff technique. The suprahepatic vena cava anastomosis is performed manually with a running suture, and the vena porta and infrahepatic vena cava anastomoses are performed utilizing a quick-linker cuff system6. Manufacturing the quick-linker kit is shown in a separate video paper.

We present an easy-to-establish revision of the classical two-cuff technique for orthotopic liver transplantation in rat.

Sıçanlarda Ortotopik Karaciğer Nakli

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat ...

Heterotopic Auxiliary Rat Liver Transplantation With Flow-regulated Portal Vein Arterialization in Acute Hepatic Failure

In acute hepatic failure auxiliary liver transplantation is an interesting alternative approach. The aim is to provide a temporary support until the failing native liver has regenerated.1-3 The APOLT-method, the orthotopic implantation of auxiliary segments- averts most of the technical problems. However this method necessitates extensive resections of both the native liver and the graft.4 In 1998, Erhard developed the heterotopic auxiliary liver transplantation (HALT) utilizing portal vein arterialization (PVA) (Figure 1). This technique showed promising initial clinical results.5-6 We developed a HALT-technique with flow-regulated PVA in the rat to examine the influence of flow-regulated PVA on graft morphology and function (Figure 2).
A liver graft reduced to 30 % of its original size, was heterotopically implanted in the right renal region of the recipient after explantation of the right kidney.&#160; The infra-hepatic caval vein of the graft was anastomosed with the infrahepatic caval vein of the recipient. The arterialization of the donor&#8217;s portal vein was carried out via the recipient&#8217;s right renal artery with the stent technique. The blood-flow regulation of the arterialized portal vein was achieved with the use of a stent with an internal diameter of 0.3 mm. The celiac trunk of the graft was end-to-side anastomosed with the recipient&#8217;s aorta and the bile duct was implanted into the duodenum. A subtotal resection of the native liver was performed to induce acute hepatic failure. 7
In this manner 112 transplantations were performed. The perioperative survival rate was 90% and the 6-week survival rate was 80%. Six weeks after operation, the native liver regenerated, showing an increase in weight from 2.3&#177;0.8 g to 9.8&#177;1 g. At this time, the graft&#8217;s weight decreased from 3.3&#177;0.8 g to 2.3&#177;0.8 g.
We were able to obtain promising long-term results in terms of graft morphology and function. HALT with flow-regulated PVA reliably bridges acute hepatic failure until the native liver regenerates.

Auxiliary liver transplantation provides a temporary support in acute hepatic failure, until regeneration of the failing liver. The heterotopic auxiliary liver transplantation (HALT) with portal vein arterialization (PVA) renders sufficient liver function. We developed an analogous technique in the rat, to examine the influence of the portal vein arterialization on the morphology and function of the graft.

Heterotopik Yardımcı Sıçan Karaciğer Nakli ile Akut Karaciğer Yetmezliği Portal Ven arteriali Akış ayarlı

In acute hepatic failure auxiliary liver transplantation is an interesting alternative approach. The aim is to provide a temporary support until the ...

Method of Direct Segmental Intra-hepatic Delivery Using a Rat Liver Hilar Clamp Model

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ischemia/reperfusion (I/R) injury with myriad negative consequences. Potential I/R injury in marginal organs destined for liver transplantation contributes to the current donor shortage secondary to a decreased organ utilization rate. A significant need exists to explore hepatic I/R injury in order to mediate its impact on graft function in transplantation. Rat liver hilar clamp models are used to investigate the impact of different molecules on hepatic I/R injury. Depending on the model, these molecules have been delivered using inhalation, epidural infusion, intraperitoneal injection, intravenous administration or injection into the peripheral superior mesenteric vein. A rat liver hilar clamp model has been developed for use in studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating I/R injury. The described model for rat liver hilar clamp includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic hepatic segment via a side branch of the portal vein, allowing for direct segmental hepatic delivery. Our approach is to induce ischemia in the left lateral and median lobes for 60 min, during which time the substance under study is infused. In this case, pegylated-superoxide dismutase (PEG-SOD), a free radical scavenger, is infused directly into the ischemic segment. This series of experiments demonstrates that infusion of PEG-SOD is protective against hepatic I/R injury. Advantages of this approach include direct injection of the molecule into the ischemic segment with consequent decrease in volume of distribution and reduction in systemic side effects.

A unique rat liver hilar clamp model was developed for studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating ischemia-reperfusion injury. This model includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic liver segment via a branch of the portal vein, allowing for direct hepatic delivery.

Bir Sıçan Karaciğer Hilar Kelepçe Modeli Kullanılarak Doğrudan Segmental İçi hepatik Dağıtım Yöntemi

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ...

Re-Arterialized Rat Partial Liver Transplantation with an in vivo Vessel-Oriented 70% Hepatectomy

Split liver transplantation and living liver donor liver transplantation were developed in the clinic to utilize liver organs in a more efficient manner. To better understand the mechanism behind these surgical procedures, a rat partial liver transplantation (PLTx) model was established for relevant surgical studies. Because of the complexity of the rat PLTx model, a protocol with detailed descriptions is required. An article published previously reported a protocol in which ex vivo hepatectomy was used to achieve 50% rat PLTx. In contrast to this protocol, we introduced a re-arterialized PLTx with an in vivo 70% hepatectomy. An updated vessel-oriented hepatectomy was incorporated into the rat PLTx to refine the microsurgical procedure. The portal veins and hepatic arteries of the left lateral lobe and the median lobe were individually dissected and ligated before removal of the liver parenchyma, thereby decreasing the probability of bleeding in the remnant liver stump. Furthermore, an end-to-side vessel anastomosis between the common hepatic artery and the enlarged proper hepatic artery was introduced to re-arterialize the hepatic artery. By using this end-to-side vessel anastomosis technique, the diameter of the anastomosis was enlarged, thereby decreasing the difficulty of hand suture and maintaining a high rate of anastomotic patency. Moreover, the cuff anastomosis of the infrahepatic vena cava was slightly modified. A section of circumferential liver parenchyma around the vena cava of a recipient was preserved during cuff anastomosis to maintain the three-dimensional shape of the vascular lumen. This section of liver parenchyma was removed after completing the anastomosis. With this modification, the step involving placement of stay sutures was omitted, thereby further shortening the cuff anastomosis time. By using this protocol of rat PLTx, a low liver enzyme level, an intact liver lobular architecture and a high survival rate were achieved after microsurgery.

Re-Arterialized Rat Partial Liver Transplantation with an in vivo Vessel-Oriented 70% Hepatectomy

Here, a protocol involving re-arterialized rat partial liver transplantation is presented. Specifically, 70% liver was resected in vivo by using an updated technique of vessel-oriented hepatectomy. The hepatic artery was reconstructed in an end-to-side manner. The cuff technique was modified to shorten the anastomosis time of the infrahepatic vena cava.

Yeniden Arterialized sıçan kısmi karaciğer nakli bir vivo içinde gemi odaklı % 70 ile Hepatectomy

Split liver transplantation and living liver donor liver transplantation were developed in the clinic to utilize liver organs in a more efficient manner. ...

A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep learning curve. The introduction of the cuff technique for anastomosis of the portal vein (PV) and infrahepatic vena cava (IHVC) has significantly simplified the transplant procedure in rats. However, due to the short anterior wall of the recipients' suprahepatic vena cava (SHVC), the cuff technique is very difficult to use for the reconstruction of the SHVC. Most researchers in this field still use the hand-suture technique for SHVC reconstruction, which makes it the bottleneck step in rat orthotopic liver transplantation. The magnetic anastomosis technique (i.e., magnamosis) is a method of connecting two vessels using the attractive force between two magnets. Our recent study has shown that the magnetic anastomosis technique is superior to the hand-suture technique for SHVC reconstruction in rats. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using the novel magnetic anastomosis technique. In this model, the reconstruction of the PV and IHVC was performed by the standard cuff technique, while the reconstruction of the bile duct (BD) was performed by a stent technique. The hepatic re-arterialization was not performed. The magnetic anastomosis technique made SHVC reconstruction much easier and significantly shortened the anphepatic phase. After a reasonable learning curve, even researchers without advanced microsurgical skills can produce reliable and reproducible results using this rat model of OLT.

The reconstruction of the suprahepatic vena cava (SHVC) remains a difficult step in rat orthotopic liver transplantation. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using a novel magnetic anastomosis technique.

Orthotopic fare modeli bir roman manyetik anastomoz teknik Suprahepatic Vena kava imar için kullanılarak karaciğer nakli

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep ...

Orthotopic Rat Kidney Transplantation: A Novel and Simplified Surgical Approach

Kidney transplantation offers increased survival rates and improved quality of life for patients with end-stage renal disease, as compared to any type of renal replacement therapy. Over the past few decades, the rat kidney transplantation model has been used to study the immunological phenomena of rejection and tolerance. This model has become an indispensable tool to test new immunomodulatory pharmaceuticals and regimens prior to proceeding with expensive preclinical large animal studies.
This protocol provides a detailed overview of how to reliably perform orthotopic kidney transplantation in rats. This protocol includes three distinctive steps that increase the probability of success: perfusion of the donor kidney by flushing through the portal vein and the use of a cuff system to anastomose the renal veins and ureters, thereby decreasing cold and warm ischemia times. Using this technique, we have achieved survival rates beyond 6 months with normal serum creatinine in animals with syngeneic or tolerant kidney transplants. Depending on the aim of the study, this model can be modified by pre- or posttransplant treatments to study the acute, chronic, cellular, or antibody-mediated rejection. It is a reproducible, reliable, and cost-effective animal model to study different aspects of kidney transplantation.

The purpose of this manuscript and protocol is to explain and demonstrate in detail the surgical procedure of orthotopic kidney transplantation in rats. This method is simplified to achieve the correct perfusion of the donor kidney and shorten the reperfusion time by using the venous and ureteral cuff anastomosis technique.

Ortootopik Rat böbrek nakli: bir roman ve Basitleştirilmiş cerrahi yaklaşım

Kidney transplantation offers increased survival rates and improved quality of life for patients with end-stage renal disease, as compared to any type of ...

Generation of a Rat Model of Acute Liver Failure by Combining 70% Partial Hepatectomy and Acetaminophen

Acute liver failure (ALF) is a clinical condition caused by various etiologies resulting in the loss of metabolic, biochemical, synthesizing, and detoxifying functions of the liver. In most irreversible liver damage cases, orthotropic liver transplant (OLT) remains the only available treatment. To study the therapeutic potential of a treatment for ALF, its prior testing in an animal model of ALF is essential. In the current study, an ALF model in rats was developed by combining 70% partial hepatectomy (PHx) and injections of acetaminophen (APAP) that provides a therapeutic window of 48 h. The median and left lateral lobes of the liver were removed to excise 70% of the liver mass and APAP was given 24 h postsurgically for 2 days. Survival in ALF-induced animals was found to be severely decreased. The development of ALF was confirmed by altered serum levels of the enzymes alanine amino transferase (ALT), aspartate amino transferase (AST), alkaline phosphatase (ALP); changes in prothrombin time (PT); and assessment of the international normalized ratio (INR). Study of the gene expression profile by qPCR revealed an increase in expression levels of genes involved in apoptosis, inflammation, and in the progression of liver injury. Diffused degeneration of hepatocytes and infiltration of immune cells was observed by histological evaluation. The reversibility of ALF was confirmed by the restoration of survival and serum levels of ALT, AST, and ALP after intrasplenic transplantation of syngeneic healthy rat hepatocytes. This model presents a reliable alternative to the available ALF animal models to study the pathophysiology of ALF as well as to evaluate the potential of a novel therapy for ALF. The use of two different approaches also makes it possible to study the combined effect of physical and drug-induced liver injury. The reproducibility and feasibility of current procedure is an added benefit of the model.

The acute liver failure animal model developed in the current study presents a feasible alternative for the study of potential therapies. The current model employs the combined effect of physical and drug-induced hepatic injury and provides a suitable time window to study the potential of novel therapies.

%70 Parsiyel Hepatektomi ve Asetaminofen birleştirerek Akut Karaciğer Yetmezliği Bir Sıçan Modeli Nin Üretimi

Acute liver failure (ALF) is a clinical condition caused by various etiologies resulting in the loss of metabolic, biochemical, synthesizing, and ...

Reduced Complications after Arterial Reconnection in a Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation

The rat orthotopic liver transplantation (OLT) model is a powerful tool to study acute and chronic rejection. However, it is not a complete representation of human liver transplantation due to the absence of arterial reconnection. Described here is a modified transplantation procedure that includes the incorporation of hepatic artery (HA) reconnection, leading to a marked improvement in transplant outcomes. With a mean anhepatic time of 12 min and 14 s, HA reconnection results in improved perfusion of the transplanted liver and an increase in long-term recipient survival from 37.5% to 88.2%. This protocol includes the use of 3D-printed cuffs and holders to connect the portal vein and infrahepatic inferior vena cava. It can be implemented for studying multiple aspects of liver transplantation, from immune response and infection to technical aspects of the procedure. By incorporating a simple and practical method for arterial reconnection using a microvascular technique, this modified rat OLT protocol closely mimics aspects of human liver transplantation and will serve as a valuable and clinically relevant research model.

The goal of this study is to modify the rat orthotopic liver transplant model to better represent human liver transplantation and improve recipient survival. The presented method reestablishes hepatic arterial inflow by connecting the donor liver&#39;s common hepatic artery to the recipient liver&#39;s proper hepatic artery.

Ortotopik Karaciğer Transplantasyonunun Sıçan Modelinde Arteriyel Reconnection Sonrası Azaltılmış Komplikasyonlar

The rat orthotopic liver transplantation (OLT) model is a powerful tool to study acute and chronic rejection. However, it is not a complete representation ...

Left Lung Orthotopic Transplantation in a Juvenile Porcine Model for ESLP

Lung transplantation is the gold-standard treatment for end-stage lung disease, with over 4,600 lung transplantations performed worldwide annually. However, lung transplantation is limited by a shortage of available donor organs. As such, there is high waitlist mortality. Ex situ lung perfusion (ESLP) has increased donor lung utilization rates in some centers by 15%-20%. ESLP has been applied as a method to assess and recondition marginal donor lungs and has demonstrated acceptable short- and long-term outcomes following transplantation of extended criteria donor (ECD) lungs. Large animal (in vivo) transplantation models are required to validate ongoing in vitro research findings. Anatomic and physiologic differences between humans and pigs pose significant technical and anesthetic challenges. An easily reproducible transplant model would permit the&#160;in vivo&#160;validation of current ESLP strategies and the preclinical evaluation of various interventions designed to improve donor lung function. This protocol describes a porcine model of orthotopic left lung allotransplantation. This includes anesthetic and surgical techniques, a customized surgical checklist, troubleshooting, modifications, and the benefits and limitations of the approach.

This protocol describes a juvenile porcine model of orthotopic left lung allotransplantation designed for use with ESLP research. Focus is made on anesthetic and surgical techniques, as well as critical steps and troubleshooting.

ESLP için Juvenil Domuz Modelinde Sol Akciğer Ortotopik Transplantasyonu

Lung transplantation is the gold-standard treatment for end-stage lung disease, with over 4,600 lung transplantations performed worldwide annually. ...