Name: rna pull-down procedure to identify rna targets of a long non-coding rna
Uploaded: 2018-04-10T14:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 36 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about RNA Pull-down Procedure to Identify RNA Targets of a Long Non-coding RNA at JoVE.com

Bu eser Aix-Marseille Üniversitesi ve CNRS tarafından desteklenen ve Pfizer laboratuvarlar bir hibe tarafından finanse.

Tüm yordamları Avrupa Ekonomik Topluluğu ile sıkı uygun bakım ve laboratuvar hayvanlarının (86/609/EEC ve 2010/63/UE) ve bir lisans altında kullanımı için verilen ö. Becquet (Préfecture des Bouches-du-Rhône, yetkilendirme No 13-002) yapıldı.
1. sonda tasarım
<ol><li>
Faiz lncRNA birincil dizisini kullanarak, "RNAstructure Web sunucusu"5ikincil yapısı oluşturmak. Not: Bu sitede farklı algoritmaları kullanılabilir. Sonda tasarımlar için en iyi sonuçları vermek üç tahmin araçları: "Kat" (en düşük fiyat serbest enerji yapısı), "MaxExpect" (son derece olası baz çifti) ve "Probnot" (muhtemel baz çifti pseudoknots de dahil olmak üzere). Bu üç analizleri gerçekleştirilen ve karşılaştırıldığında. Viyana RNA websuite7gibi diğer web sunucuları da kullanılabilir.<ol>
<li>İç baz eşleşmesi düşük bir olasılık görüntüleyen ve anti-anlamda Oligonükleotid probları bu bölgeler için güçlü bir ilgi ile 25 üslerinin tasarım bölgeleri seçin. Not: Bu sondalar GC içeriğini 40 ile % 60 arasında oluşan. Bir hizalama arama aracı (patlama) kullanarak, seçili Anti-anlamda Oligonükleotid probları seçilen hücre sisteminde ifade diğer RNA nükleotit dizilerinde tanıyor musunuz emin olun.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Ayrıca ben de benzeşme faiz lncRNA için ne de diğer RNA serileri için faiz genom görüntüleyen bir non-spesifik DNA Oligonükleotid sonda 25 üslerinin tasarımı.</li>
	<li>Probları biotin ile 3'-sonunda sipariş. Not: steric engel azaltmak için Oligonükleotid ve Biotin arasındaki mesafe triethyleneglycerol rondela ile arttırılması gerekir. Bir en iyi sonuç için ve açılan sonuçlarını özgüllük değerlendirmek için bu tasarım için 3 farklı Anti-anlamda Oligonükleotid probları tavsiye edilir ve daha sonra onların verimliliği deneysel olarak karşılaştırmak için.</li>
</ol>2. cross-linking
<ol><li>
Kültürlü hücre cross-linking
	<ol>
<li>Kültür GH4C1 sommatolactotroph hipofiz hücreleri Ham'ın F10 orta % 15 at serum ve % 2 fetal buzağı serum ile desteklenmiştir. İzdiham 78.5 cm2 kültür tabak içinde kadar hücreleri büyümek. Bu yaklaşık 1 x 107 hücrelere karşılık gelir.</li>
		<li>Hücre kültür orta Konfluent GH4C1 78.5 cm2 kültür tabağı kaldırmak, durulama 1 fosfat orta hacmi x ile serum fizyolojik (PBS) arabelleğe alınmış</li>
		<li>PBS (10 mL) 78.5 cm2 yemekler için; %1 paraformaldehyde çözeltilerine ile hücreleri tamir Bu çözüm %4 paraformaldehyde hisse senedi eriyik--dan taze hazırlanmalıdır. Ajitasyon (RT) oda sıcaklığında 10 dakika altında çapraz. Dikkat: Paraformaldehyde (PFA) toksik ve dikkatli bir şekilde ele alınması gerekir.</li>
		<li>Glisin 1.25 M (10 mL paraformaldehyde çözeltisi başına 1 mL); 1/10 hacmi ekleyerek paraformaldehyde eylem gidermek 5 dk RT. az tahrik</li>
		<li>Medya tarafından aspirasyon ve durulama iki (5 dk) 1 X PBS orta hacmi ile atmak.</li>
		<li>PBS 1'e karşılık gelen bir birim eklemek/medya, toplamak hücreleri hücre kazıyıcı ve sonra aktarmak için bir santrifüj tüpü hacmi 10.</li>
		<li>5 min için 4 ° C'de 510 g de spin.</li>
		<li>Mümkün olduğu kadar süpernatant kaldırın.</li>
		<li>Süresiz olarak-80 ° C'de gerektiği gibi granül depolamak</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Doku Cross-linking
	<ol>
<li>5 mg taze elde edilen fare hipofiz dokusunun PBS (yaklaşık 10 x cilt dokusunun) içinde seyreltilmiş %1 paraformaldehyde bir çözüm koymak, RT, 10 min için kışkırtmak</li>
		<li>Paraformaldehyde eylemi bir 1,25 M glisin çözüm (10 mL paraformaldehyde çözeltisi başına 1 mL) ekleyerek gidermek ve 5 dk RT. az tahrik</li>
		<li>Medya tarafından aspirasyon atın ve PBS (yaklaşık 10 doku hacmi x) ile iki kez durulayın. Mümkün olduğu kadar süpernatant kaldırın.</li>
		<li>Çapraz bağlı doku-80 ° C'de süresiz olarak depolamak</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. hücre veya doku lizis
<ol><li>Lizis arabellek (50 mM Tris-HCl pH 7,0, 10 mM EDTA, 200 U/mL RNAse inhibitörü çözeltisi ve proteaz inhibitörü 5 µL/mL bir kokteyl ile tamamlanan % 1 SDS) hazırlayın.</li>
	<li>Önceki çözdürme olmadan lysed örneklerini almak için hücre topakları veya bu arabelleği (yaklaşık 1 mL başına hücre Pelet veya doku 100 mg) ile çapraz bağlı doku yeniden askıya. 1 x 107 hücrelerinden elde edilen bir hücre Pelet artış yaklaşık 20 mg protein içeren bir lysed örnek ver. Not: kullanılan doku bağlı olarak, bir adım mekanik bozulma eklenmesi gerekir. Bu durumda, bu ek adımı sırasında örneklerin Isıtma önlemek önemlidir.</li>
</ol>4. sonication
<ol><li>
Sonication koşullardan en iyi duruma getirme
	<ol>
<li>Program 30 s ON 2-5 serisi ile sonicator ve 30 s OFF.</li>
		<li>Seyreltilmiş lysed örnekleri (seyreltme faktörü ½ veya protein yaklaşık 10 veya 5 mg için karşılık gelen ¼) sonication koşullara en iyi duruma getirmek için sınamaları gerçekleştirin. Yer lysed 4 ° C su banyosu örneklerinde seyreltilmiş ve sonication seri başlatmak.</li>
		<li>RNA'ların bir RNA arıtma kiti ile veya bir RNA izolasyon reaktif (örneğin, Trizol) ile arındırmak.</li>
		<li>% 1'özel Jel Elektroforez TBE tampon üzerinde saf RNA bütünlük yük, RNA parçaları uzunluğunu denetleyin. Bu uzunluk 200 ve 800 bp mesafe. Not: Anti-anlamda Oligonükleotid probları verimliliği RNA parça boyutuna bağlı olarak değişebilir. O zaman sonication farklı koşullar altında probları verimliliğini kontrol etmek için tavsiye edilir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Lysed örnekleri sonication
	<ol>
<li>4 ° c (-den sonra adım 3.2 elde edilen) proteinlerin 20 mg karşılık gelen yer lysed örnekleri banyo su ve 4.1 adımda en iyi duruma getirilmiş gibi sonication seri başlatmak.</li>
		<li>Hemen sonication, santrifüj, 12.000 g 4 ° C'de 5 dakika sonra Supernatants yeni santrifüj tüpler aktarın. Not: homojenliği emin olmak için çoğaltma supernatants getirilebilir havuza alınmış ve bu adımda yeniden dağıtılabilir.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. RNA aşağı açılır
<ol><li>
Gün 1 – hibridizasyon adım
	<ol>
<li>Hibridizasyon arabelleği (50 mM Tris-HCl pH 7,0, 750 mM NaCl, 1 mM EDTA, % 1 SDS, Formamide eklendi altercations % 15) 2 cilt eklemek sonication adımdan sonra toplanan supernatants için. Girdap.</li>
		<li>Bir santrifüj tüpü (giriş örnekleri) her örneğinin 20 µL aktarın ve -20 ° C'de depolayın</li>
		<li>100 pmol biotinylated Oligonükleotid problar (özel ya da non-spesifik; bkz. Tablo 1), her örnek için ekleyin. 4-6 h altında orta ajitasyon RT. tüp rotator üzerinde kuluçkaya</li>
		<li>Manyetik streptavidin boncuk 50 µL 200 U/mL RNAse inhibitörü çözeltisi ve proteaz inhibitörü 5 µL/mL bir kokteyl ile desteklenmiş ekleyin.</li>
		<li>Gecede altında orta ajitasyon RT. tüp rotator üzerinde kuluçkaya</li>
	</ol>
</li>
	<li>
2. gün-RNA izolasyon adım
	<ol>
<li>Hücre lysate boncuk ayrı süpernatant atmak ve boncuk 900 µL yıkama arabelleği ile yıkamak için manyetik desteğini kullanın (SDS % 0.5, SSC 2 x). Tekrar 5 kere 5 dk ajitasyon RT. rotator üzerinde serpiştirilmiş</li>
		<li>Son yıkama sonra son bir kez dikkatle boşaltmak ve Proteinease K arabelleği (10 mM Tris-HCl pH 7,0, 100 mM NaCl, 1 mM EDTA, % 0.5 SDS) 95 µL ekleyin ve 5 µL İndinavir-k (20 mg/mL) örnekleri.</li>
		<li>Buz üzerinde giriş örnekleri (20 μL) çözülme ve Proteinease K arabelleği 75 µL ve 5 µL İndinavir-k (20 mg/mL) ekleyin.</li>
		<li>Tüm örnekleri ile İndinavir K 50 ° c sonra 10 min 95 ° C'de 45 dk için kuluçkaya</li>
		<li>Örnek 3 dakika buzda boncuk RNA'ların manyetik desteğiyle ayıran önce sakin ol. Süpernatant tutmak ve boncuk atın.</li>
		<li>RNA'ların DNA sindirim adımı içermelidir bir RNA arıtma kiti ile arındırmak. RNA'ların-80 ° C'de depolayın</li>
		<li>Ters transkripsiyon qPCR (RT-qPCR) belirli primerler (Tablo 1) kullanılarak qPCR tarafından izlenen bir RT kit kullanarak gerçekleştirin.</li>
		<li>Her belirli Neat1 sondalar (Tablo 1) ile elde edilen iki RNA havuzlarına karşılık gelen iki DNA kitaplığı oluşturun. Sıralama yeni nesil sıralama sistem üzerinde gerçekleştir.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>Chu, C., Qu, K., Zhong, F. L., Artandi, S. E., Chang, H. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genomic+maps+of+long+noncoding+RNA+occupancy+reveal+principles+of+RNA-chromatin+interactions.">Genomic maps of long noncoding RNA occupancy reveal principles of RNA-chromatin interactions.</a> Mol Cell. , 667-678 (2011).</li><li>Chu, C., Quinn, J., Chang, H. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chromatin+isolation+by+RNA+purification+(ChIRP).">Chromatin isolation by RNA purification (ChIRP).</a> J Vis Exp. , e3912 (2012).</li><li>Simon, M. D., Wang, C. I., Kharchenko, P. V., West, J. A., Chapman, B. A., Alekseyenko, A. A., Borowsky, M. L., Kuroda, M. I., Kingston, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+genomic+binding+sites+of+a+noncoding+RNA.">The genomic binding sites of a noncoding RNA.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. , 20497-20502 (2011).</li><li>Simon, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Capture+hybridization+analysis+of+RNA+targets+(CHART).">Capture hybridization analysis of RNA targets (CHART).</a> Curr Protoc Mol Biol. , (2013).</li><li>Reuter, J. S., Mathews, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RNAstructure:+software+for+RNA+secondary+structure+prediction+and+analysis.">RNAstructure: software for RNA secondary structure prediction and analysis.</a> BMC Bioinformatics. 11, 129 (2010).</li><li>Sun, X., Haider Ali, M. S. S., Moran, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+interactions+of+long+non-coding+RNAs+and+heterogeneous+nuclear+ribonucleoproteins+in+regulating+cellular+functions.">The role of interactions of long non-coding RNAs and heterogeneous nuclear ribonucleoproteins in regulating cellular functions.</a> Biochem J. , 2925-2935 (2017).</li><li>Gruber, A. R., Lorenz, R., Bernhart, S. H., Neub&#246;ck, R., Hofacker, I. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Vienna+RNA+websuite.">The Vienna RNA websuite.</a> Nucleic Acids Res. , W70-W74 (2008).</li><li>Tollervey, J. R., Curk, T., Rogelj, B., Briese, M., Cereda, M., Kayikci, M., K&#246;nig, J., Hortob&#225;gyi, T., Nishimura, A. L., Zupunski, V., Patani, R., Chandran, S., Rot, G., Zupan, B., Shaw, C. E., Ule, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterizing+the+RNA+targets+and+position-dependent+splicing+regulation+by+TDP-43.">Characterizing the RNA targets and position-dependent splicing regulation by TDP-43.</a> Nat Neurosci. , 452-458 (2011).</li><li>Riva, P., Ratti, A., Venturin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+long+non-coding+RNAs+in+neurodegenerative+diseases:+novel+mechanisms+of+pathogenesis.">The long non-coding RNAs in neurodegenerative diseases: novel mechanisms of pathogenesis.</a> Curr Alzheimer Res. (27338628), (2016).</li><li>Barry, G., Briggs, J. A., Hwang, D. W., Nayler, S. P., Fortuna, P. R., Jonkhout, N., Dachet, F., Maag, J. L., Mestdagh, P., Singh, E. M., Avesson, L., Kaczorowski, D. C., Ozturk, E., Jones, N. C., Vetter, I., Arriola-Martinez, L., Hu, J., Franco, G. R., Warn, V. M., Gong, A., Dinger, M. E., Rigo, F., Lipovich, L., Morris, M. J., O'Brien, T. J., Lee, D. S., Loeb, J. A., Blackshaw, S., Mattick, J. S., Wolvetang, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+long+non-coding+RNA+NEAT1+is+responsive+to+neuronal+activity+and+is+associated+with+hyperexcitability+states.">The long non-coding RNA NEAT1 is responsive to neuronal activity and is associated with hyperexcitability states.</a> Sci Rep. , 40127 (2017).</li><li>Adriaens, C., Standaert, L., Barra, J., Latil, M., Verfaillie, A., Kalev, P., Boeckx, B., Wijnhoven, P. W., Radaelli, E., Vermi, W., Leucci, E., Lapouge, G., Beck, B., van den Oord, J., Nakagawa, S., Hirose, T., Sablina, A. A., Lambrechts, D., Aerts, S., Blanpain, C., Marine, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=p53+induces+formation+of+NEAT1+lncRNA-containing+paraspeckles+that+modulate+replication+stress+response+and+chemosensitivity.">p53 induces formation of NEAT1 lncRNA-containing paraspeckles that modulate replication stress response and chemosensitivity.</a> Nat Med. , (2016).</li><li>Fang, J., Qiao, F., Tu, J., Xu, J., Ding, F., Liu, Y., Akuo, B. A., Hu, J., Shao, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High+expression+of+long+non-coding+RNA+NEAT1+indicates+poor+prognosis+of+human+cancer.">High expression of long non-coding RNA NEAT1 indicates poor prognosis of human cancer.</a> Oncotarget. , (2017).</li><li>Torres, M., Becquet, D., Blanchard, M. P., Guillen, S., Boyer, B., Moreno, M., Franc, J. L., Fran&#231;ois-Bellan, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Circadian+RNA+expression+elicited+by+3'-UTR+IRAlu-paraspeckle+associated+elements.">Circadian RNA expression elicited by 3'-UTR IRAlu-paraspeckle associated elements.</a> Elife. , (2016).</li><li>Chen, L. L., DeCerbo, J. N., Carmichael, G. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alu+element-mediated+gene+silencing.">Alu element-mediated gene silencing.</a> EMBO J. , 1694-1705 (2008).</li><li>Tripathi, V., Ellis, J. D., Shen, Z., Song, D. Y., Pan, Q., Watt, A. T., Freier, S. M., Bennett, C. F., Sharma, A., Bubulya, P. A., Blencowe, B. J., Prasanth, S. G., Prasanth, K. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+nuclear-retained+noncoding+RNA+MALAT1+regulates+alternative+splicing+by+modulating+SR+splicing+factor+phosphorylation.">The nuclear-retained noncoding RNA MALAT1 regulates alternative splicing by modulating SR splicing factor phosphorylation.</a> Mol Cell. , 925-938 (2010).</li><li>Engreitz, J. M., Sirokman, K., McDonel, P., Shishkin, A. A., Surka, C., Russell, P., Grossman, S. R., Chow, A. Y., Guttman, M., Lander, E. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RNA-RNA+Interactions+Enable+Specific+Targeting+of+Noncoding+RNAs+to+Nascent+Pre-mRNAs+and+Chromatin+Sites.">RNA-RNA Interactions Enable Specific Targeting of Noncoding RNAs to Nascent Pre-mRNAs and Chromatin Sites.</a> Cell. , 188-199 (2014).</li><li>Nakagawa, S., Ip, J. Y., Shioi, G., Tripathi, V., Zong, X., Hirose, T., Prasanth, K. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Malat1+is+not+an+essential+component+of+nuclear+speckles+in+mice.">Malat1 is not an essential component of nuclear speckles in mice.</a> RNA. , (2012).</li><li>Zhang, B., Arun, G., Mao, Y. S., Lazar, Z., Hung, G., Bhattacharjee, G., Xiao, X., Booth, C. J., Wu, J., Zhang, C., Spector, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+lncRNA+Malat1+is+dispensable+for+mouse+development+but+its+transcription+plays+a+cis-regulatory+role+in+the+adult.">The lncRNA Malat1 is dispensable for mouse development but its transcription plays a cis-regulatory role in the adult.</a> Cell Rep. , 111-123 (2012).</li><li>Trapnell, C., Roberts, A., Goff, L., Pertea, G., Kim, D., Kelley, D. R., Pimentel, H., Salzberg, S. L., Rinn, J. L., Pachter, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+gene+and+transcript+expression+analysis+of+RNA-seq+experiments+with+TopHat+and+Cufflinks.">Differential gene and transcript expression analysis of RNA-seq experiments with TopHat and Cufflinks.</a> Nat Protoc. , 562-578 (2012).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Büyük bir alan araştırma uzun kodlamayan RNA'ların (lncRNAs) sayısı ve çeşitliliği temsil ve rolleri hala keşfedilmeyi çoğu. Çoğu bu lncRNAs nükleer bir Yerelleştirme ve bunlar arasında bazı transkripsiyon veya posttranscriptional mekanizmalar yoluyla gen ifadesinin yasal yollar karıştığı. Bu alanda geçerli sorunlardan biri bu lncRNAs RNA'ların çoğu işlemedeki alaka anlamaktır. Bu amaçla, lncRNAs tarafından hedef RNA'ların tespit edilmesi gerekiyor. Önceki çalışmalarda lncRNAs Derneği Kromatin ile üzerinde duruldu esinlenerek, RNA'ların bir lncRNA ile ilişkili kimliği sağlar bir yordam geliştirdik. Esas olarak iki önemli adım üzerinde bağımlı RNA aşağı açılır adlı bu protokol başarıdır, yani Anti-anlamda DNA Oligonükleotid probları tasarımını var özellikle ve sadece ilgi lncRNA ve doku koşullarına melezlemek veya Tüm moleküler ortakları arasında ağ bütünlüğünü korumak zorunda hücre fiksasyon.
Daha önce bir lncRNA ile birlikte, ilişkili Kromatin dizileri (cıvıltı1,2, grafik3,4) yalıtmak için yordamları sağlanan protokoller yayınlandı. Bu protokoller farklı stratejiler Anti-anlamda DNA biotinylated Oligonükleotid probları tasarım istihdam edildi. Cıvıltı yordamda yazarlar DNA biotinylated Oligonükleotid probları lncRNA ilgi tüm uzunluğu tüm gereksiz ve non-spesifik problar1,2dışlanması sonra kapsayan bir havuz kullanılır. GRAFİK protokolündeki yazarlar hibridizasyon için daha erişilebilir lncRNA bölgelerinde tespit ve bu bölgelerde hedef yakalama oligonucleotides tasarlanmış. Bu bölgeler temelinde kendi RNase H duyarlılık seçildi. Gerçekten de, RNA'ların RNA-DNA bağlama sitelerdeki hidrolize için RNAse H özelliğini kullanarak, lncRNA erişilebilir sitelere melezlemek oligonucleotides RNA-DNA melez üretmek ve lncRNA enzimatik bölünme için yol. Yazarlar bu aday yakalama oligonucleotides üçü seçili ve onları bir kokteyl3,4' te kullanılan.
Yordamı grafik protokolünde kullanılan anti-anlamda DNA biotinylated Oligonükleotid probları yapıldı yakın tasarım yapardık ama istenen lncRNA hibridizasyon kullanılabilir bölgelerinde onların RNAse H duyarlılık temelinde, seçili değil ama Biyoinformatik modelleme lncRNA ikincil yapılara sahip tarafından belirlenen iç baz eşleşmesi onların düşük olasılık göre. Farklı ikincil yapılar farklı algoritmaları kullanarak tahmin ve seçilecek sondalar o lncRNA en büyük sayısı tahmin ikincil yapılar olarak kullanılabilir sıralarını melezlemek olmalıdır fark gerekir. Aynı sonuçları üç tasarlanmış bir kokteyl, belirli probları veya tek bir sonda kullanarak tek tek elde edilmiştir. Bu iki ayrı, belirli problar kullanımı ve bu iki problar için ortak olan bu olumlu sonuçlar dikkate istenir. Son olarak, bu nedenle bir en iyi sonuç için yöntem geliştirilmesi başında önerilir ve 3 farklı Anti-anlamda Oligonükleotid tasarlamak için aşağı açılır, sonuçlarını özgüllük değerlendirmek muktedir probları ve sonra karşılaştırmak için özellikle sonda verimliliği hücre lysate hazırlık tarafından değişmiş olabilir beri deneysel olarak onların verimliliği. Yine de, lncRNA biz kullanılan yapısı daha ucuz fayans Oligonükleotid probları2takımlık üzerinde temel kaldı ve bu yöntemi göre daha az zaman alıcı ikincil modellenmesi Biyoinformatik dayalı soruşturma tasarım prosedürü RNAse H duyarlılık4üzerinde.
Bir negatif kontrol negatif yakalama Oligonükleotid anlamda DNA biotinylated Oligonükleotid probları gibi kullanarak aynı zamanda gerçekleştirilmesi gereken veya Oligonükleotid probları veya karşı ilgisiz bir RNA yönetmen oligonucleotides karıştırılmış. Doğal antianlamlı transkript lncRNAs varlığı nedeniyle anlamda Oligonükleotid sonda kullanımı bazen yetersiz olabilir. Negatif denetim için seçilmiş Oligonükleotid sonda ne olursa olsun, bilinen bir RNA ile melez değil patlamanın kontrol etmek ve bu Oligonükleotid hala un ek açıklama eklenen bir lncRNA melezlemek akılda tutmak için gereklidir.
Bu RNA açılan deneylerde kullanılan hücre lysates 10 elde edilmiştir6 -107 hücreler kültürlü hücrelerle ve 1-10 mg doku ile çalışırken çalışırken. Hücre lysates hazırlanması optimize edilmiş olması gereken iki ana adımları ile kullanılan doku veya hücre tipine göre adapte gerekiyor: Yani, cross-linking adım lncRNA ve moleküler ortakları arasında Kovalent bağlar oluşumunu sağlayan ve viskozite Kromatin parçalama tarafından azaltır sonication adım.
Cross-linking adım tüm moleküler ortakları arasında bir ağ oluşumu inducing tarafından tüm RNA hedefler için lncRNA kapalı kalmasını sağlamak için amaçtır. Yararlanılabilmesi için retiküle. lncRNA ve ortakları arasında Kovalent bağlar oluşturacak bir paraformaldehyde tedavi adım sağlar GRAFİK iletişim kuralında nükleer lncRNA ile paraformaldehyde ile ilk tedavi gerçekleştirmek için çalışan bütün lysate hücre ve bir saniye önerildi tedavi izole nükleik kesir3,4. Hücrelerdeki lncRNA erişilebilirlik azaltarak, bu ek adım sondalar, verimliliğini muhtemelen azalma gözlendi. Bu nedenle, hücre dikkate alarak adapte olmak paraformaldehyde tarafından Şebekeleşme derecesine sahiptir veya doku türü kullanıldığında, yerelleştirme tasarlanmış probları etkinlik ve faiz lncRNA.
Hücreleri lysing, süre Kromatin lysate içinde yayınlanır ve viskozite artırır; Kromatin örnekleri akışkanlık ve dolayısıyla Oligonükleotid erişilebilirliğini kolaylaştırmak için sonication tarafından parçalamak için gerekli faiz lncRNA için probları, sonra nedir. Ancak, sonication da faiz lncRNA ile çıkarılan RNA'ları parçalayıp. Böyle bir şekilde verimli bir şekilde lysate viskozite azaltır iken, bu da bir uzunluğu ile elde RNA'ın parçaları sağlayan sonication süresini en aza indirmek önemli 200-800 bp. sonication zaman-ecek var olmak yüksek not arasında oluşan, sonra nedir hem miktar hem de doku veya kullanılan kültürlü hücre türüne bağlıdır.
Sonuç olarak, burada açıklanan yordam 2-3 gün içinde istenen lncRNA RNA hedeflerini yakalama sağlar. RT-qPCR ile birleştiğinde, bu yöntemler tarafından istenen lncRNA bir aday yaklaşım olarak bir ilişki ve düzenleme, bir mRNA arıyor izin verir. Genom geniş yaklaşım için RNA açılan deneyler yüksek üretilen iş RNA-sıralama istenen lncRNA ile ilişkili tüm RNA'ların alınmasını sağlayan tarafından analiz edilebilir. Seçilen her türlü analitik strateji, RNA açılan yordam tarafından lncRNAs RNA regülasyonu yeni önemli bilgi sağlamalıdır.

Burada açıklanan yöntemi genel amacı uzun kodlamayan RNA (lncRNA) RNA moleküler ortakları belirlemektir. LncRNA tanımlanmış okuma çerçeve olmadan 200'den fazla nükleotit dizilerinin karşılık gelir. Bazıları gen ifade düzenlemesi, transkripsiyon düzeyinde, hem de RNA co - ve çoğu olgunlaşma farklı adımlar dahil olmak için göstermiştir. İkinci durumda, moleküler lncRNA, belirlenecek olan RNA'ların ortağız. RNA'ların doğrudan ilişkili olan ya da dolaylı olarak bir lncRNA ilgi ile kimlik etkinleştirme yöntemi daha sonra geliştirmek için gerekli olacaktır.
Kromatin yalıtım RNA arıtma (cıvıltı)1,2 ve yakalama hibridizasyon analizi, RNA hedefler (grafik)3,4, tarafından izin yüksek üretilen iş keşfi olarak daha önce yayınlanan yöntemleri, RNA bağlı proteinler ve genomik bağlama sitelerin belirli bir lncRNA. Bu iki yöntem, faiz lncRNA ilk biotinylated tamamlayıcı oligonucleotides melezleşmiştir ve karmaşık sonra streptavidin boncuklar kullanılarak izole. Bu iki teknik arasındaki temel fark lncRNAs hedef probları için tasarım ilgilidir. Cıvıltı, strateji RNA balık tarafından lncRNA tüm uzunluğu döşemek için kısa Tamamlayıcı DNA Oligonükleotid probları bir havuz tasarımı oluşuyordu, ilham. Buna karşılık, GRAFİKTE, site hibridizasyon için mevcut soruşturma için lncRNAs bir RNase H eşleme tahlil yazarlar uyarlanmış.
Burada önerilen tasarım Anti-anlamda DNA biotinylated Oligonükleotid iç düşük bir olasılık görüntülemek bölgeler için güçlü bir yakınlık ile seçmek için lncRNA ikincil yapı5 / Biyoinformatik modelleme probları probları kullanır yordamı baz çifti. Bu yordam döşeme Oligonükleotid probları2 takımlık üzerinde dayalı olanlar daha ucuz ve daha az zaman alıcı RNAse H duyarlılık4üzerinde dayalı olanlar daha olmanın avantajı vardır.
Kanıt lncRNAs6tarafından çoğu gen düzenlemesi için büyüyen bir vücut gibi bir lncRNA hedefler RNA'ların yakalama etkinleştirme bir yaklaşım geliştirmek çok yararlıdır. Ayrıca, çoğu uygulama için kullanılabilir olması için yaklaşım hem kültürlü hücre ve doku özleri optimize edildi.

<table><tbody><tr><td>Bioruptor Plus</td><td>Diagenode</td><td>B01020001</td><td>Sonicator</td></tr><tr><td>Dynabeads My One</td><td>Thermo-Fisher</td><td>65001</td><td>Magnetic streptavidin beads</td></tr><tr><td>Formamide</td><td>Thermo-Fisher</td><td>15515-026</td><td></td></tr><tr><td>Gel electrophoresis apparatus</td><td>Advance</td><td>Mupid-One</td><td>Gel electrophoresis apparatus</td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>Sigma</td><td>P2308</td><td></td></tr><tr><td>RNA XS purification kit</td><td>Macherey-Nagel</td><td>740902</td><td>RNA purificationkit</td></tr><tr><td>RNAseOUT</td><td>Thermo-Fisher</td><td>10777-019</td><td>RNAse inhibitor</td></tr><tr><td>Trizol</td><td>Thermo-Fisher</td><td>15596018</td><td>RNA purification</td></tr><tr><td>Tube Rotator</td><td>Stuart</td><td>SB2</td><td>Eppendorf tube rotator</td></tr><tr><td>RNA to DNA</td><td>Thermo-Fisher</td><td>4387405</td><td>Reverse transcription kit</td></tr><tr><td>iTaq Universal SYBR Green Supermix</td><td>BioRad</td><td>1725124</td><td>qPCR reagent</td></tr><tr><td>Applied 7500 Fast</td><td>Thermo-Fisher</td><td>4351107</td><td>qPCR apparatus</td></tr><tr><td>Illumina TruSeq Stranded mRNA Sample Preparation kit</td><td>Illumina</td><td>20020594</td><td>DNA library construction kit</td></tr><tr><td>Illumina NextSeq 500</td><td>Illumina</td><td>SY-415-1002</td><td>NGS system</td></tr></tbody></table>

rna pull-down procedure to identify rna targets of a long non-coding rna

Uzun bir tanımlanmış okuma çerçeve olmadan 200'den fazla nükleotit dizilerinin olan RNA (lncRNA), kodlamayan düzenleyici kodlamayan RNA'ın ailesine ait. Her ne kadar biyolojik işlevleri büyük ölçüde bilinmeyen kalır, bu lncRNAs sayısı giderek artmıştır ve bu şimdi insanlar 10.000'den fazla tür transkript olabilir tahmin edilmektedir. Bunlardan bazıları transkripsiyon düzeyi, fakat aynı zamanda RNA co - ve çoğu olgunlaşma farklı adımları gerçekleşecek önemli yasal yollar gen ifadesinin yer olduğu bilinmektedir. İkinci durumda, tespit edilmesi lncRNA tarafından hedef RNA'ların var. Bu neden kimlik RNA'ların doğrudan ilişkili olan ya da dolaylı olarak bir lncRNA ilgi ile sağlayan bir yöntem geliştirmek yararlıdır nedenidir.
Bir lncRNA ile birlikte, ilişkili Kromatin dizileri izolasyon sağlar daha önce yayımlanmış iletişim kuralları tarafından ilham kaynağı oldu, bu iletişim kuralını ilişkili RNA'ların yalıtım izin vermek için uyarlanmıştır. Biz iki adım bu protokolünün etkinliği için kritik belirlenir. İlk belirli DNA Anti-anlamda Oligonükleotid probları faiz lncRNA için melezlemek mümkün tasarımıdır. Bu amaçla, lncRNA ikincil yapı Biyoinformatik tarafından tahmin edilmiştir ve anti-anlamda Oligonükleotid probları iç baz eşleşmesi düşük bir olasılık görüntülemek bölgeler için güçlü bir yakınlık ile tasarlanmıştır. İkinci önemli adım yordam doku veya tüm moleküler ortakları arasında ağ korumak için olan kültürlü hücreleri sabitleştirici koşulları kullanır. Yüksek işlem hacmi RNA sıralama ile birleştiğinde, bu RNA açılan iletişim kuralı bir lncRNA ilgi tüm RNA interactome sağlayabilir.

Birkaç son çalışmalar göstermiştir lncRNAs hemen hemen her önemli biyolojik süreç içinde önemli bir rol oynamak ve bu rolün hem transkripsiyon ve çoğu düzeylerinde meydana gelen gen ifadesinin denetimi yoluyla elde edilir Bu ikinci durumda RNA'ların lncRNAs6hedefi olabilir gösterilen.
LncRNA nükleer zenginleştirilmiş bol transkript 1 (Neat1) içinde farklı neuropathologies da demans, amyotrofik lateral skleroz veya epilepsi8,9,10karıştığı ve aynı zamanda misregulated farklı kanser11,12'.
Bu lncRNA da bilinir yapısal bileşeni belirli nükleer organları, paraspeckles olarak ve çoğu sirkadiyen gen ifade13yönetmelikte dahil olmak. Her hücre çekirdeğinde bulunan ve sadece birkaç RNA bağlayıcı protein (RBP)14, ama aynı zamanda etrafında onların oluşumu için gerekli olan Neat1, etrafında oluşan Paraspeckles gerçekten de15 çekirdeği içinde RNA hedefler korumak mümkün olduğu bilinmektedir . Paraspeckles oluşumu farklı bileşenleri Derneği elde edilir. Bu oluşumun sirkadiyen bir ritmik desen RNA hedef13ritmik bir nükleer tutma sürüş görüntülemek için gösterildi. RNA hedeflerini paraspeckles göre nükleer tutma RBP için bağlama aracılığıyla veya doğrudan RNA/RNA Derneği aracılığıyla ortaya çıkabilir, ama belirlenecek RNA'ların paraspeckles tarafından hedeflenen ölçüde vardı. Hedef RNA tanımlamak için doğrudan veya dolaylı olarak Neat1 tarafından yalıtım ve kültürlü hücreler de ( şekil 1 bir grafik için bkz: doku örnekleri olduğu gibi bütün Neat1 RNA hedefleri tanımlaması sağlayan bir RNA açılan protokol tasarlanmıştır sunum tekniği).
Protokol bir başka bir lncRNA metastaz ilişkili akciğer adenokarsinom transkript 1 (Malat1) RNA hedefleri tanımlaması da başarıyla uygulandı. Malat1 ile birlikte birkaç RNA faktörler Uçbirleştirme nükleer speckles bulunan son derece korunmuş ve ifade lncRNA var. Malat1 birkaç yeni doğmakta olan pre-mRNA16,17ve yapıştırma yönetmelikte yer olduğu bilinmektedir.
Özel (SO) ve non-spesifik Oligonükleotid (NSO) sondalar burada açıklanan soruşturma tasarım stratejisini kullanarak oluşturulan. Bu strateji iç Bankası eşleştirme düşük bir olasılık olarak tahmin lncRNA ikincil yapı tarafından görüntülemek bölgeleri seçimi ve bu bölgeler için güçlü bir ilgi ile belirli probları tasarım dayanmaktadır. Bu Biyoinformatik tahminler, tahmin edilen ikincil yapı, Neat1 bir dizi resmi temsilcisi bir sonucu olarak (nukleotid 1.480-2000) ile birlikte iki probları Şekil 2' de verilen bu yüzden tasarlanmış konumunu.
Tasarlanmış probları kültürlü GH4C1 hücreleri ve hipofiz doku özleri (Tablo 1) için fare Neat1 için Neat1 veya Malat1 sıçan için yönetildi. Neat1 veya Malat1 göreli zenginleştirme için belirsiz ve belirli probları giriş örnekleri göre hesaplanır. Şekil 3 için açılan Neat1 sıçan GH4C1 hipofiz hücre kültürünü (şekil 3A) içinde belirli probları verimliliğini gösterir ve fare hipofiz doku (şekil 3B) ayıklar. Sonda tasarım Protokolü (böylece Malat1 için probları yönetmen) belirli Oligonükleotid oluşturmak için kullanırken, bir süre başka yeterince verimli değildi ve verimli sonda elde edildi (şekil 4A) atılır.
Sonra bir RNA RT-qPCR deneyleri, bazı RNA'ların belirli astar (Tablo 1) ile değerlendirildi ve ardından açılan yordamı GH4C1 özler Neat1 veya Malat1 ile ilişkili olduğu gösterildi. GH4C1 hücre özler Neat1 ile ilişkili RNA'ların da hipofiz doku özler Neat1 ile ilişkilendirilmesi gösterilmiştir. Gerçekten de, Neat1 RNA aşağı açılır sonra Malat1 Neat1 tarafından GH4C1 hücre kültürünü ve hipofiz fare doku özleri (şekil 5A) hedef tespit edildi. Malat1 RNA aşağı açılır (şekil 4B) GH4C1 hücrelerdeki belirli bir sonda ile yapılır sonra karşılıklı, Neat1 önemli ölçüde zenginleştirilmiş. İki lncRNAs arasında yakın bir ilişki vurgulayarak, bu sonuçlar Neat1 ve varyasyonları Neat1 RNA ifade18', görüntülemek Malat1 nakavt fareler tarafından önerilen Malat1 potansiyel co-regulatory rolü ile tutarlı 19. iki ana hipofiz hormonları, büyüme hormonu (Gh) (şekil 5B) ve prolaktin (Prl) (şekil 5C) Tutanaklar önemli ölçüde Neat1 RNA aşağı açılır GH4C1 hücreleri ve hipofiz belirli probları ile zenginleştirilmiş özler, olası bir düzenleme Neat1 tarafından iki hormon, düşündüren. Kullanılan iki belirli problar karşılaştırırken, onların verimliliği kabul RNA hedef bağlı olarak (ve şekil 5C5B anlamaya) değişebilir ortaya çıktı. Bu sonuçlar bu sadece açılan lncRNA zenginlik içinde en iyi verimlilik, aynı zamanda en iyi verimlilik RNA hedeflerini zenginleştirme görüntüleme seçmek için birkaç belirli probları tasarlama gerekliliği vurgulayın.
RNA açılan yöntemi Ayrıca faiz13lncRNA RNA hedefleri kapsamlı listesini elde etmek için RNA yüksek üretilen iş sıralama tarafından izlenebilir. RNA-seq analizi yukarıda açıklanan iki belirli problar kullanarak Neat1 RNA açılan gerçekleştirmesinden sonra GH4C1 hipofiz hücreleri üzerinde. RNA açılan NSO ile inşaat kütüphanelerin izin için yeterli olduğu sonra RNA düzeyini yeniden elde etmek, bir negatif kontrol bir NSO kullanarak da RNA-seq analize tabi unutulmamalıdır. Bu durum önceki deneyim13' te böyle değildi. Belirli sonda kullanımı analiz sonra zanaat/kol düğmeleri kullanarak oluşturulan kitaplıkları boru hattı20 ve yalnızca transkript kilobaz başına parçasının değerlerle milyon eşlenen okur (FPKM) 1 dikkate alınmıştır daha yüksek. Listeleri elde Neat1 için yönettiği iki belirli problar ile (Tablo 1) sonuçları özgüllük değerlendirmek için çaprazdı. 4,268 gen GH4C1 hücreleri13' te ifade tutanakları % 28 temsil paraspeckles ile ilişkili bulunmuştur. QPCR analizi (Şekil 5A-C) kullanılarak elde edilen sonuçlar ile tutarlı, Gh, Prl ve Malat1 transkript Neat1 ile ilişkili bulunmuştur. RNA açılan yöntemi bu nedenle lncRNAs ve RNA hedeflerine arasındaki etkileşimi keşfetmek için verimli bir araç olarak kanıtlanmıştır.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57379/57379fig1v2.jpg"> Şekil 1: RNA grafik gösterimini çekin prosedürü. İlk gününde, hücreleri veya doku paraformaldehyde ile çapraz bağlı, lysed ve biotinylated belirli probları ekleyerek gerçekleştirilen hibridizasyon adım önce sonicated. Manyetik streptavidin boncuk sonra belirli malzeme hücre lysate geri kalanından ayırmak için eklenmiştir. İkinci gün, boncuk bir mıknatıs tarafından izole ve birkaç kez yıkanmış. Bir de-çapraz adım saflaştırılmış ve RT-qPCR veya RNA-seq analiz için kullanılan RNA'lar kurtarılması izin. <a href="/files/ftp_upload/57379/57379fig1v2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57379/57379fig2.jpg"> Şekil 2: ikincil yapı olarak tahmin Biyoinformatik kaynak (RNAstructure webserver; en düşük serbest enerji yapısı) tarafından Neat1 dizisinin (nükleotit 1.480-2000). Yapısı baz eşleşmesi olasılık derecesine göre renklidir. İki oligonucleotides problar (SO1 ve SO2) kırmızı Neat1 RNA yapısı konumlandırılır. <a href="/files/ftp_upload/57379/57379fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57379/57379fig3.jpg"> Şekil 3: Neat1 zenginleştirme giriş karşı doğrulanmasını qPCR. Neat1 RNA sonra giriş karşı Neat1 zenginleştirme qPCR doğrulama iki farklı belirli problar (SO1-rn ve SO2-rn GH4C1 hücreleri ve SO1-mm ve SO2-mm hipofiz doku için) bir belirsiz karşılaştırıldığında tarafından aşağı çekin bir (GH4C1 hücreler için NSO-rn ve NSO-mm için Hipofiz bez) GH4C1 fare hücreleri(a)ve fare hipofiz doku (B) ayıklar. 3-10 deneylerde elde edilen ortalama ± SEM sonuçlarıdır. <a href="/files/ftp_upload/57379/57379fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57379/57379fig5.jpg">
Şekil 4: aşağı çekin Malat1 RNA sonra giriş karşı Malat1 ve Neat1 zenginleştirme doğrulanmasını qPCR. Malat1 qPCR doğrulama(a)ve Neat1 (B) zenginleştirme giriş karşı Malat1 RNA sonra iki farklı belirli problar (SO3-rn ve SO4-rn) spesifik olmayan karşılaştırıldığında tarafından aşağı çekin bir (NSO-rn) GH4C1 fare hücrelerinde. 3 deneylerde elde edilen ortalama ± SEM sonuçlarıdır. <a href="/files/ftp_upload/57379/57379fig5large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57379/57379fig4.jpg"> Şekil 5: Malat1, Gh, Prl zenginleştirme Neat1 RNA aşağı çekin sonra giriş karşı doğrulanmasını qPCR. Malat1 qPCR doğrulama(a)aşağı çekin non-spesifik bir GH4C1 fare hücrelerinde karşılaştırıldığında farklı belirli probları kullanarak Gh (B), Neat1 RNA sonra giriş karşı Prl (C) zenginleştirme ve fare hipofiz doku ayıklar. 3-8 deneylerde elde edilen ortalama ± SEM sonuçlarıdır. <a href="/files/ftp_upload/57379/57379fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>SONDA ADLARI</td>
			<td colspan="2">Dizileri</td>
		</tr>
<tr>
<td>NSO-Rn</td>
			<td colspan="2">TAAAATACCATTTGATGTTTGAAATTAT</td>
		</tr>
<tr>
<td>SO1-Rn</td>
			<td colspan="2">CTCCACCATCATCAATCCTCTGGAC</td>
		</tr>
<tr>
<td>SO2-Rn</td>
			<td colspan="2">GCCTTCCCACATTTAAAAACACAAC</td>
		</tr>
<tr>
<td>SO3-Rn</td>
			<td colspan="2">AACTCGTGGCTCAAGTGAGGTGACA</td>
		</tr>
<tr>
<td>SO4-Rn</td>
			<td colspan="2">AAGACTCTCAGGCTCCTGCTCATTC</td>
		</tr>
<tr>
<td>NSO-mm</td>
			<td colspan="2">GTTTGTGGTTTAACAGTGGGAAGGC</td>
		</tr>
<tr>
<td>SO1-mm</td>
			<td colspan="2">GCCTTCCCACTGTTAAACCACAAAC</td>
		</tr>
<tr>
<td>SO2-mm</td>
			<td colspan="2">CTCACCCGCACCCCGACTCCTTCAA</td>
		</tr>
<tr>
<td>qPCR ASTAR:</td>
			<td colspan="2"></td>
		</tr>
<tr>
<td>Rattus norvegicus</td>
			<td colspan="2"></td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Neat1</td>
			<td colspan="2">AAGGCACGAGTTAGCCGCAAAT</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">TGTGCACAGTCAGACCTGTCATTC</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Malat1</td>
			<td colspan="2">GAAGGCGTGTACTGCTATGCTGTT</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">TCTCCTGAGGTGACTGTGAACCAA</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">GH1</td>
			<td colspan="2">CCGCGTCTATGAGAAACTGAAGGA</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">GGTTTGCTTGAGGATCTGCCCAAT</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">PRL</td>
			<td colspan="2">TGAACCTGATCCTCAGTTTGGT</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">AGCTGCTTGTTTTGTTCCTCAA</td>
		</tr>
<tr>
<td>Mus musculus</td>
			<td colspan="2"></td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Neat1</td>
			<td colspan="2">TGGGCCCTGGGTCATCTTACTAGATA</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">CACAGCTGTTCCAATGAGCGATCT</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">GH1</td>
			<td colspan="2">CTCGGACCGTGTCTATGAGAAACTGA</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">TTTGCTTGAGGATCTGCCCAACAC</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">PRL</td>
			<td colspan="2">TGAACCTGATCCTCAGTTTGGT</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="2">AGCTGCTTGTTTTGTTCCTCAA</td>
		</tr>
</tbody></table>Tablo 1: DNA Oligonükleotid probları ve qPCR astar dizileri

Watch this Scientific Journal Video about RNA Pull-down Procedure to Identify RNA Targets of a Long Non-coding RNA at JoVE.com

RNA Pull-down Procedure to Identify RNA Targets of a Long Non-coding RNA

Bu RNA açılan yöntem uzun kodlamayan RNA (lncRNA) RNA hedeflerini belirleme sağlar. Ev yapımı, tasarlanmış Anti-anlamda DNA Oligonükleotid probları bu lncRNA uygun bir şekilde sabit doku veya hücre için belirli hibridizasyon dayanarak, verimli bir şekilde lncRNA ait tüm RNA hedefleri yakalama sağlar.

Uzun kodlamayan RNA, RNA hedefleri tanımlamak için RNA Pull-down yordamı

Long non-coding RNA (lncRNA), which are sequences of more than 200 nucleotides without a defined reading frame, belong to the regulatory non-coding ...

rna-pull-down-procedure-to-identify-rna-targets-long-non-coding

Research

JoVE Journal

Genetics

25.2K Görüntüleme.  Aix-Marseille Université. Bu RNA açılan yöntem uzun kodlamayan RNA (lncRNA) RNA hedeflerini belirleme sağlar. Ev yapımı, tasarlanmış Anti-anlamda DNA Oligonükleotid probları bu lncRNA uygun bir şekilde sabit doku veya hücre için belirli hibridizasyon dayanarak, verimli bir şekilde lncRNA ait tüm RNA hedefleri yakalama sağlar.

Video: RNA Pull-down Procedure to Identify RNA Targets of a Long Non-coding RNA

Isolation of Cognate RNA-protein Complexes from Cells Using Oligonucleotide-directed Elution

Ribonucleoprotein particles direct the biogenesis and post-transcriptional regulation of all mRNAs through distinct combinations of RNA binding proteins. They are composed of position-dependent, cis-acting RNA elements and unique combinations of RNA binding proteins. Defining the composition of a specific RNP is essential to achieving a fundamental understanding of gene regulation. The isolation of a select RNP is akin to finding a needle in a haystack. Here, we demonstrate an approach to isolate RNPs associated at the 5' untranslated region of a select mRNA in asynchronous, transfected cells. This cognate RNP has been demonstrated to be necessary for the translation of select viruses and cellular stress-response genes.
The demonstrated RNA-protein co-precipitation protocol is suitable for the downstream analysis of protein components through proteomic analyses, immunoblots, or suitable biochemical identification assays. This experimental protocol demonstrates that DHX9/RNA helicase A is enriched at the 5' terminus of cognate retroviral RNA and provides preliminary information for the identification of its association with cell stress-associated huR and junD cognate mRNAs.

This manuscript describes an approach to isolate select cognate RNPs formed in eukaryotic cells via a specific oligonucleotide-directed enrichment. We demonstrate the applicability of this approach by isolating a cognate RNP bound to the retroviral 5' untranslated region that is composed of DHX9/RNA helicase A.

Oligonükleotid yönelik elüsyon kullanılarak Hücreler Aynı Kökenli RNA-protein kompleksleri izolasyonu

Ribonucleoprotein particles direct the biogenesis and post-transcriptional regulation of all mRNAs through distinct combinations of RNA binding proteins. ...

Biyokimya

Novel RNA-Binding Proteins Isolation by the RaPID Methodology

RNA-binding proteins (RBPs) play important roles in every aspect of RNA metabolism and regulation. Their identification is a major challenge in modern biology. Only a few in vitro and in vivo methods enable the identification of RBPs associated with a particular target mRNA. However, their main limitations are the identification of RBPs in a non-cellular environment (in vitro) or the low efficiency isolation of RNA of interest (in vivo). An RNA-binding protein purification and identification (RaPID) methodology was designed to overcome these limitations in yeast and enable efficient isolation of proteins that are associated in vivo. To achieve this, the RNA of interest is tagged with MS2 loops, and co-expressed with a fusion protein of an MS2-binding protein and a streptavidin-binding protein (SBP). Cells are then subjected to crosslinking and lysed, and complexes are isolated through streptavidin beads. The proteins that co-purify with the tagged RNA can then be determined by mass spectrometry. We recently used this protocol to identify novel proteins associated with the ER-associated PMP1 mRNA. Here, we provide a detailed protocol of RaPID, and discuss some of its limitations and advantages.

RNA-protein interactions lie at the heart of many cellular processes. Here, we describe an in vivo method to isolate specific RNA and identify novel proteins that are associated with it. This could shed new light on how RNAs are regulated in the cell.

Rapid Metodoloji tarafından Roman RNA Bağlayıcı Proteinler İzolasyon

RNA-binding proteins (RBPs) play important roles in every aspect of RNA metabolism and regulation. Their identification is a major challenge in modern ...

Genetik

Sample Preparation for Mass Spectrometry-based Identification of RNA-binding Regions

Noncoding RNAs play important roles in several nuclear processes, including regulating gene expression, chromatin structure, and DNA repair. In most cases, the action of noncoding RNAs is mediated by proteins whose functions are in turn regulated by these interactions with noncoding RNAs. Consistent with this, a growing number of proteins involved in nuclear functions have been reported to bind RNA and in a few cases the RNA-binding regions of these proteins have been mapped, often through laborious, candidate-based methods.
Here, we report a detailed protocol to perform a high-throughput, proteome-wide unbiased identification of RNA-binding proteins and their RNA-binding regions. The methodology relies on the incorporation of a photoreactive uridine analog in the cellular RNA, followed by UV-mediated protein-RNA crosslinking, and mass spectrometry analyses to reveal RNA-crosslinked peptides within the proteome. Although we describe the procedure for mouse embryonic stem cells, the protocol should be easily adapted to a variety of cultured cells.

We describe a protocol to identify RNA-binding proteins and map their RNA-binding regions in live cells using UV-mediated photocrosslinking and mass spectrometry.

Kütle spektrometresi tabanlı kimlik RNA-bağlama bölgelerinin için numune hazırlama

Noncoding RNAs play important roles in several nuclear processes, including regulating gene expression, chromatin structure, and DNA repair. In most ...

Biotin-based Pulldown Assay to Validate mRNA Targets of Cellular miRNAs

MicroRNAs (miRNAs) are a class of small noncoding RNAs that post-transcriptionally regulate cellular gene expression. MiRNAs bind to the 3&#39; untranslated region (UTR) of target mRNA to inhibit protein translation or in some instances cause mRNA degradation. The binding of the miRNA to the 3&#39; UTR of the target mRNA is mediated by a 2&#8211;8 nucleotide seed sequence at the 5&#39; end of miRNA. While the role of miRNAs as cellular regulatory molecules is well established, identification of the target mRNAs with functional relevance remains a challenge. Bioinformatic tools have been employed to predict sequences within the 3&#39; UTR of mRNAs as potential targets for miRNA binding. These tools have also been utilized to determine the evolutionary conservation of such sequences among related species in an attempt to predict functional role. However, these computational methods often generate false positive results and are limited to predicting canonical interaction between miRNA and mRNA. Therefore, experimental procedures that measure direct binding of miRNA to its mRNA target are necessary to establish functional interaction. In this report, we describe a sensitive method for validating direct interaction between the cellular miRNA miR-125b and the 3&#39; UTR of PARP-1 mRNA. We elaborate a protocol in which synthetic biotinylated-miRNA mimics were transfected into mammalian cells and the miRNA-mRNA complex in the cellular lysate was pulled down with streptavidin-coated magnetic beads. Finally, the target mRNA in the pulled-down nucleic acid complex was quantified using a qPCR-based strategy.

This report describes a fast and reliable method for validating mRNA targets of cellular miRNAs. The method uses synthetic biotinylated Locked Nucleic Acid (LNA)-based miRNA mimics to capture target mRNA. Subsequently, streptavidin-coated magnetic beads are employed to pulldown the target mRNA for quantification by qPCR polymerase chain reaction.

Biotin tabanlı açılan tahlil için Doğrula mRNA hedefleri hücresel miRNAs

MicroRNAs (miRNAs) are a class of small noncoding RNAs that post-transcriptionally regulate cellular gene expression. MiRNAs bind to the 3&#39; ...

An Oligonucleotide-based Tandem RNA Isolation Procedure to Recover Eukaryotic mRNA-Protein Complexes

RNA-binding proteins (RBPs) play key roles in the post-transcriptional control of gene expression. Therefore, biochemical characterization of mRNA-protein complexes is essential to understanding mRNA regulation inferred by interacting proteins or non-coding RNAs. Herein, we describe a tandem RNA isolation procedure (TRIP) that enables the purification of endogenously formed mRNA-protein complexes from cellular extracts. The two-step protocol involves the isolation of polyadenylated mRNAs with antisense oligo(dT) beads and subsequent capture of an mRNA of interest with 3&#39;-biotinylated 2&#39;-O-methylated antisense RNA oligonucleotides, which can then be isolated with streptavidin beads. TRIP was used to recover in vivo crosslinked mRNA-ribonucleoprotein (mRNP) complexes from yeast, nematodes and human cells for further RNA and protein analysis. Thus, TRIP is a versatile approach that can be adapted to all types of polyadenylated RNAs across organisms to study the dynamic re-arrangement of mRNPs imposed by intracellular or environmental cues.

A tandem RNA isolation procedure (TRIP) for recovery of endogenously formed mRNA-protein complexes is described. Specifically, RNA-protein complexes are crosslinked in vivo, polyadenylated RNAs are isolated from extracts with oligo(dT) beads, and particular mRNAs are captured with modified RNA antisense oligonucleotides. Proteins bound to mRNAs are detected by immunoblot analysis.

Ökaryotik mRNA-Protein kompleksleri kurtarmak için bir Tandem oligonükleotid tabanlı RNA izolasyon yordamı

RNA-binding proteins (RBPs) play key roles in the post-transcriptional control of gene expression. Therefore, biochemical characterization of mRNA-protein ...

Identification of RNAs Engaged in Direct RNA-RNA Interaction with a Long Non-Coding RNA

The growing role attributed nowadays to long non-coding RNAs (lncRNA) in physiology and pathophysiology makes it crucial to characterize their interactome by identifying their molecular partners, DNA, proteins and/or RNAs. The latter can interact with lncRNA through networks involving proteins, but they can also be engaged in direct RNA/RNA interactions. We, therefore, developed an easy-to-use RNA pull-down procedure that allowed identification of RNAs engaged in direct RNA/RNA interaction with a lncRNA using psoralen, a molecule that cross-links only RNA/RNA interactions. Bioinformatics modeling of the lncRNA secondary structure allowed the selection of several specific antisense DNA oligonucleotide probes with a strong affinity for regions displaying a low probability of internal base pairing. Since the specific probes that were designed targeted accessible regions throughout the length of the lncRNA, the RNA-interaction zones could be delineated in the sequence of the lncRNA. When coupled with a high throughput RNA sequencing, this protocol can be used for the whole direct RNA interactome studies of a lncRNA of interest.

<meta charset="utf8"></head><body>Kodlamayan Uzun RNA ile Doğrudan RNA-RNA Etkileşiminde Bulunan RNA'ların Tanımlanması

An easy-to-use RNA pull-down protocol is designed for the identification of RNAs engaged in direct RNA/RNA interaction with a long non-coding RNA. The protocol uses psoralen as a fixative to cross-link only RNA/RNA interactions and provides the whole direct RNA interactome of a long non-coding RNA when coupled with RNA sequencing.

Kodlamayan Uzun RNA ile Doğrudan RNA-RNA Etkileşiminde Bulunan RNA'ların Tanımlanması

The growing role attributed nowadays to long non-coding RNAs (lncRNA) in physiology and pathophysiology makes it crucial to characterize their interactome ...

A Rapid High-throughput Method for Mapping Ribonucleoproteins (RNPs) on Human pre-mRNA

Sequencing RNAs that co-immunoprecipitate (co-IP) with RNA binding proteins has increased our understanding of splicing by demonstrating that binding location often influences function of a splicing factor.  However, as with any sampling strategy the chance of identifying an RNA bound to a splicing factor is proportional to its cellular abundance.  We have developed a novel in vitro approach for surveying binding specificity on otherwise transient pre-mRNA. This approach utilizes a specifically designed oligonucleotide pool that tiles across introns, exons, splice junctions, or other pre-mRNA.  The pool is subjected to some kind of molecular selection. Here, we demonstrate the method by separating the oligonucleotide into a bound and unbound fraction and utilize a two color array strategy to record the enrichment of each oligonucleotide in the bound fraction. The array data generates high-resolution maps with the ability to identify sequence-specific and structural determinates of ribonucleoprotein (RNP) binding on pre-mRNA.  A unique advantage to this method is its ability to avoid the sampling bias towards mRNA associated with current IP and SELEX techniques, as the pool is specifically designed and synthesized from pre-mRNA sequence. The flexibility of the oligonucleotide pool is another advantage since the experimenter chooses which regions to study and tile across, tailoring the pool to their individual needs.  Using this technique, one can assay the effects of polymorphisms or mutations on binding on a large scale or clone the library into a functional splicing reporter and identify oligonucleotides that are enriched in the included fraction.  This novel in vitro high-resolution mapping scheme provides a unique way to study RNP interactions with transient pre-mRNA species, whose low abundance makes them difficult to study with current in vivo techniques.  



A Rapid High-throughput Method for Mapping Ribonucleoproteins RNPs on Human pre-mRNA

Due to the transient nature of pre-mRNA, it can be difficult to isolate and study in vivo. Here, we present a novel in vitro approach to investigate RNA-protein interactions using a synthetic oligo pool that tiles across selected regions of pre-mRNA.

İnsan pre-mRNA üzerinde Haritalama Ribonucleoproteins Hızlı Yüksek verim için Yöntemi (RNPs)

Sequencing RNAs that co-immunoprecipitate (co-IP) with RNA binding proteins has increased our understanding of splicing by demonstrating that binding ...

Biyoloji

An Optimized Quantitative Pull-Down Analysis of RNA-Binding Proteins Using Short Biotinylated RNA

Protein-RNA interactions regulate gene expression and cellular functions at transcriptional and post-transcriptional levels. For this reason, identifying the binding partners of an RNA of interest remains of high importance to unveil the mechanisms behind many cellular processes. However, RNA molecules might interact transiently and dynamically with some RNA-binding proteins (RBPs), especially with non-canonical ones. Hence, improved methods to isolate and identify such RBPs are greatly needed.
To identify the protein partners of a known RNA sequence efficiently and quantitatively, we developed a method based on the pull-down and characterization of all interacting proteins, starting from cellular total protein extract. We optimized the protein pull-down using biotinylated RNA pre-loaded on streptavidin-coated beads. As a proof of concept, we employed a short RNA sequence known to bind the neurodegeneration-associated protein TDP-43 and a negative control of a different nucleotide composition but the same length. After blocking the beads with yeast tRNA, we loaded the biotinylated RNA sequences on the streptavidin beads and incubated them with the total protein extract from HEK 293T cells. After incubation and several washing steps to remove nonspecific binders, we eluted the interacting proteins with a high-salt solution, compatible with the most commonly used protein quantification reagents and with sample preparation for mass spectrometry. We quantified the enrichment of TDP-43 in the pull-down performed with the known RNA binder compared to the negative control by mass spectrometry. We used the same technique to verify the selective interactions of other proteins computationally predicted to be unique binders of our RNA of interest or of the control. Finally, we validated the protocol by western blot via the detection of TDP-43 with an appropriate antibody. 
This protocol will allow the study of the protein partners of an RNA of interest in near-to-physiological conditions, helping uncover unique and unpredicted protein-RNA interactions.

Here, we present an optimized in vitro method to uncover, quantify, and validate protein interactors of specific RNA sequences, using total protein extract from human cells, streptavidin beads coated with biotinylated RNA, and mass spectrometry analysis.

Kısa Biyotinile RNA Kullanan RNA Bağlayıcı Proteinlerin Optimize Edilmiş Kantitatif Aşağı Çekme Analizi

Protein-RNA interactions regulate gene expression and cellular functions at transcriptional and post-transcriptional levels. For this reason, identifying ...

Method for the Isolation and Identification of mRNAs, microRNAs and Protein Components of Ribonucleoprotein Complexes from Cell Extracts using RIP-Chip

As a result of the development of high-throughput sequencing and efficient microarray analysis, global gene expression analysis has become an easy and readily available form of data collection. In many research and disease models however, steady state levels of target gene mRNA does not always directly correlate with steady state protein levels. Post-transcriptional gene regulation is a likely explanation of the divergence between the two. Driven by the binding of RNA Binding Proteins (RBP), post-transcriptional regulation affects mRNA localization, stability and translation by forming a Ribonucleoprotein (RNP) complex with target mRNAs. Identifying these unknown de novo mRNA targets from cellular extracts in the RNP complex is pivotal to understanding mechanisms and functions of the RBP and their resulting effect on protein output. This protocol outlines a method termed RNP immunoprecipitation-microarray (RIP-Chip), which allows for the identification of specific mRNAs associated in the ribonucleoprotein complex, under changing experimental conditions, along with options to further optimize an experiment for the individual researcher. With this important experimental tool, researchers can explore the intricate mechanisms associated with post-transcriptional gene regulation as well as other ribonucleoprotein interactions.

A step by step protocol to isolating and identifying RNA associated complexes through RIP-Chip.

RIP-Chip kullanarak Hücre Ekstraktlarının gelen mRNA mikroRNA&#39;lar ve ribonükleoprotein Kompleksi Protein Bileşenlerinin İzolasyonu ve Tanımlama için Yöntemi

As a result of the development of high-throughput sequencing and efficient microarray analysis, global gene expression analysis has become an easy and ...

Uzun kodlamayan RNA, RNA hedefleri tanımlamak için RNA Pull-down yordamı

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Oligonükleotid yönelik elüsyon kullanılarak Hücreler Aynı Kökenli RNA-protein kompleksleri izolasyonu

Rapid Metodoloji tarafından Roman RNA Bağlayıcı Proteinler İzolasyon

Kütle spektrometresi tabanlı kimlik RNA-bağlama bölgelerinin için numune hazırlama

Biotin tabanlı açılan tahlil için Doğrula mRNA hedefleri hücresel miRNAs

Ökaryotik mRNA-Protein kompleksleri kurtarmak için bir Tandem oligonükleotid tabanlı RNA izolasyon yordamı

Kodlamayan Uzun RNA ile Doğrudan RNA-RNA Etkileşiminde Bulunan RNA'ların Tanımlanması

Kodlamayan Uzun RNA ile Doğrudan RNA-RNA Etkileşiminde Bulunan RNA'ların Tanımlanması

İnsan pre-mRNA üzerinde Haritalama Ribonucleoproteins Hızlı Yüksek verim için Yöntemi (RNPs)

Kısa Biyotinile RNA Kullanan RNA Bağlayıcı Proteinlerin Optimize Edilmiş Kantitatif Aşağı Çekme Analizi

RIP-Chip kullanarak Hücre Ekstraktlarının gelen mRNA mikroRNA'lar ve ribonükleoprotein Kompleksi Protein Bileşenlerinin İzolasyonu ve Tanımlama için Yöntemi