Bu çalışma, NIH'nin NIDDK tarafından R01DK116899 Numaralı Ödül altında, USDA/ARS Ödül Numarası 3092-51000-064-000D altında ve Baylor Tıp Fakültesi Kardiyovasküler Araştırma Enstitüsü'nden bir pilot ödül tarafından desteklenmektedir. Akış şemaları BioRender kullanılarak üretildi.

Hayvan prosedürleri, Baylor Tıp Fakültesi'ndeki Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylandı. Tüm prosedürler 3 haftalık ve 3 aylık C57BL / 6J erkek fareler üzerinde gerçekleştirildi. Diseksiyondan önce, tüm farelere onaylanmış kemirgen karbondioksit ötenazi prosedürü kullanılarak ötenazi yapıldı. Bu protokolde kullanılan tüm malzemeler, reaktifler ve aletlerle ilgili ayrıntılar için Malzeme Tablosuna bakın.
1. scBAT diseksiyonu
<ol><li>Fare karkasını tezgahın üzerine yerleştirin ve cerrahi makası ve ince uçlu forsepsleri %70 etanol ile temizleyin.</li>
	<li>Kürkü ıslatmak ve kürk kontaminasyonunu en aza indirmek için farenin karın boynuna %70 etanol püskürtün.</li>
	<li>Köprücük kemiği boyunca yaklaşık 1,5 cm'lik iki taraflı bir kesi yapın.</li>
	<li>Önceki insizyonun uçlarından, yaklaşık 1 cm uzunluğunda, kulaklara doğru uzunlamasına kesin. Bu, boyun çevresinde kare şeklinde U şeklinde bir kesi oluşturacaktır (Şekil 1A,B). NOT: scBAT boynun orta tabakasında yer alır. Bu aşamada deri, deri altı yağ dokusu ve tükürük bezlerinden oluşan yüzeysel tabaka açığa çıkar. Ara tabaka, scBAT ile birlikte juguler venleri ve boyun kaslarını içerir. Derin boyun BAT ile atardamar ve şah damarlarını içeren boynun derin tabakası, iskelet kası çıkarılarak açığa çıkarılır.</li>
	<li>Fareyi diseksiyon mikroskobu altına yerleştirin ve açıkta kalan boynu odağa getirin (Şekil 1C). NOT: Bu eklenen adım, scBAT'ın küçük boyutu göz önüne alındığında gerekli olan doku toplama hassasiyetini büyük ölçüde artırır.</li>
	<li>Kesilen cilt bölümlerini forseps ile kaldırarak tükürük bezlerini tamamen ortaya çıkarın.</li>
	<li>Cerrahi makas ve forseps kullanarak tükürük bezlerini köprücük kemiği çevresindeki dokuya ve birbirine bağlayan dokuyu ayırın.</li>
	<li>Tükürük bezlerini kaldırarak scBAT depolarını açığa çıkarın. Dış juguler ven boyunca ve muhtemelen tükürük bezlerinin alt tarafına bağlı olan BAT'ı arayın. Çevreleyen dokuya karşı öne çıkan turuncumsu rengiyle tanımlayın.</li>
	<li>Hedef yağ dokusunu forseps ile tutun ve tükürük bezlerinden nazikçe soyun.</li>
	<li>Tükürük bezlerinden ayrıldıktan sonra, boynun her iki tarafındaki depolar tamamen çıkarılana kadar scBAT'ı dış juguler venden ve boynun kas sisteminden ayırmaya devam edin.</li>
	<li>Kalan bağ dokusunu çıkarmak için forseps kullanarak diseke edilen her scBAT örneğini diseksiyon mikroskobu altında (Şekil 1D,E) inceleyin.</li>
	<li>Her numuneyi 10 mL fosfat tamponlu salin solüsyonu (PBS) içeren bir cam sintilasyon şişesine yerleştirin ve fareyi mikroskop altından çıkarın.</li>
</ol>2. scBAT'ın işlenmesi ve hematoksilen ve eozin (H&E) boyaması ( Şekil 2A'da gösterilmiştir)
<ol><li>PBS'yi (adım 1.12) 10 mL soğuk %4 paraformaldehit (PFA) ile değiştirin ve şişeyi scBAT'ı sabitlemek için gece boyunca 4 °C'de sallanan bir nutatör üzerine yerleştirin. NOT: Perfüzyon fiksasyonu, immünohistokimya analizi için daha fazla işleme ihtiyaç duyulduğunda doğum sonrası, özellikle yetişkin farelerde uygulanabilir.</li>
	<li>Ertesi gün, PFA çözeltisini steril bir transfer pipeti ile flakondan çıkarın ve 10-15 mL PBS ile değiştirin. Şişeyi bir nutator üzerine yerleştirin ve oda sıcaklığında 30 dakika boyunca sallayın. PBS'yi %0.85 salin solüsyonu ile değiştirin ve oda sıcaklığında 30 dakika daha sallamaya devam edin. NOT: Tuzlu su çözeltisi, DEPC ile arıtılmış suda (RNaz içermeyen) %0.85 salindir (NaCl) w/v'dir. PBS, bu ve sonraki adımda salin çözeltisi ile ikame edilebilir.</li>
	<li>%0.85 salini bir transfer pipeti ile çıkarın ve şişeye 10 mL %70 Etanol/%0.85 salin solüsyonu ekleyin. Şişeyi gece boyunca veya parafin yerleştirmeye hazır olana kadar 4 ° C'lik bir buzdolabında saklayın. NOT:% 0.85 salin mevcut değilse PBS kullanılabilir. scBAT, daha kolay kesitleme ve daha iyi korunmuş doku morfolojisi için mümkün olan en kısa sürede işlenmelidir.</li>
	<li>Parafin yerleştirmeden önce, dokudan suyu çıkarmak için bir dizi etanol değişimi yoluyla scBAT'ı kurutun.<ol><li>Başlamak için, bir transfer pipeti ile flakondan% 70 etanol /% 0.85 salin çıkarın ve şişeyi oda sıcaklığında 1 saat boyunca bir nutatör üzerinde sallayarak 10-15 mL% 95 Dehidrant Alkol ekleyin. Bu adımı bir kez tekrarlayın. NOT: Etanol, kurutucu alkol çözeltileri yerine kullanılabilir.</li>
		<li>Ardından, %95 Dehidrant Alkolü 10-15 mL %100 Dehidrant Alkol ile değiştirin ve 1 saat boyunca bir nutatör üzerinde sallamaya devam edin. Yeni %100 Kurutucu Alkol ile yeniden doldurun ve şişedeki scBAT miktarına bağlı olarak birkaç saat veya gece boyunca sallanmaya devam edin.</li>
	</ol></li>
	<li>Gömme için scBAT'ı temizlemek için, şişeye 10 mL toluen ekleyin ve scBAT şeffaf olana kadar yaklaşık 6-8 saat bir nutatör üzerinde sallamaya devam edin. NOT: Tatmin edici bir takas elde etmek için gereken süre, scBAT'ın boyutuna bağlıdır. Öğleden sonra sızma ve gömmenin gerçekleşebilmesi için sabahları hemen temizlemeye başlanması önerilir.</li>
	<li>scBAT'ı parafin mumuna gömmek için tolueni çıkarın ve şişeye 10 mL erimiş infiltrasyon parafin mumu ekleyin. Şişeyi 65 °C'de 1 saat fırına koyun. Bu adımı yeni balmumu ile tekrarlayın. NOT: Balmumunun tamamen sıvı olduğundan emin olmak için gömme başlamadan önce balmumu peletlerini bir gece fırında eritmeye başlayın.</li>
	<li>İnfiltrasyon parafin mumunu gömülü parafin mumu ile değiştirin ve şişeyi 1 saat boyunca aynı sıcaklığa yerleştirin. Bu adımı bir kez tekrarlayın. NOT: Sızma aşaması kesintiye uğrayabilir ve daha sonra devam edebilir. Şişeyi fırından çıkarın ve devam etmeye hazır olana kadar oda sıcaklığında saklayın.</li>
	<li>Dokuyu önce bir doku gömme kalıbına yerleştirerek gömün, kalıba erimiş gömme mumu ekleyin ve dokuyu bir stereomikroskop altında yeniden yönlendirin. Ardından, balmumunun üzerine bir gömme kaseti yerleştirin ve dolana ve gömme kapağı balmumu bloğuna sabitlenene kadar üstüne gömme balmumu dökmeye devam edin. Metal kalıbı çıkarmadan önce balmumunun sertleşmesini ve büzülmesini sağlamak için bloğu gece boyunca 4 °C'lik bir buzdolabına aktarın.</li>
	<li>scBAT'ı 5-6 μm18 kalınlığa kadar bir mikrotomla, mikroskop lamı başına üç ila dört bölüm olacak şekilde bölümlere ayırın ve doku kesitlerinin düzleşmesine izin vermek için ~42 °C'de ılık bir parafin bölümü yüzdürme banyosuna yerleştirin.</li>
	<li>Bölümleri slaytlara aktarın ve suyun slaytlardan damlamasını sağlamak için slaytları yüzdürme banyosuna dik olarak yerleştirin.</li>
	<li>Slaytları paslanmaz bir boyama rafına aktarın ve rafı gece boyunca kuruması için bir slayt kurutma tezgahına yerleştirin. NOT: Parafin slaytları, daha fazla işlem yapılmadan önce oda sıcaklığında uzun süre saklanabilir.</li>
	<li>H&E boyamayı gerçekleştirin19. Başlamak için, slaytları bir boyama rafına yerleştirin, ardından rafı 40 saniye boyunca ksilen içeren bir boyama kavanozuna yerleştirin. Bu adımı bir kez tekrarlayın. NOT: Parafin iki aşamadan sonra hala görünüyorsa, devam etmeden önce tamamen çözünmesini bekleyin.</li>
	<li>Dokuyu yeniden sulandırmak için, sürgülü rafı iki 20 s aşaması için %100 Dehidrant Alkol ile doldurulmuş bir boyama kavanozuna yerleştirin, ardından %95 Dehidrant Alkolde 15 s'lik bir aşama ve ddH2O'dason 15 s'lik bir durulama.</li>
	<li>Nükleer boyama elde etmek için slaytları 75 saniye boyunca hematoksilen çözeltisi ile dolu bir boyama kabına yerleştirin, ardından slaytları bir boyama kabında ddH2O ile 45 saniye durulayın. NOT: İstenilen leke rengine bağlı olarak süre ayarlanabilir.</li>
	<li>Slaytları 15 saniye boyunca HCl-etanol çözeltisi ile doldurulmuş bir boyama kabına daldırarak boyamayı ayırt edin, ardından slaytları 15 saniye boyunca başka bir ddH2O durulamaya aktarın. NOT: HCl-etanol çözeltisi, yayınlanmış bir yönteme19 göre hazırlanır.</li>
	<li>Sitoplazmik boyama için, slaytı 15 saniye boyunca bir Eosin Y karşı boyama çözeltisine yerleştirin.</li>
	<li>Dehidrasyonu bitirmek için slaytları her biri 15 saniye boyunca üç ardışık %95 Dehidrant Alkol çözeltisi aşamasına daldırarak dokuyu kurutun, ardından iki ardışık %100 Dehidrant Alkol banyosu - ilki 15 s ve ikincisi 45 s için.</li>
	<li>Son olarak, dokuyu organik çözücülere yeniden alıştırmak için slaytları 45 saniye boyunca bir ksilen banyosuna aktarın. Bu adımdan sonra boyama tamamlanır; Dokuyu çözeltiden çıkarın.</li>
	<li>Her kızağa montaj ortamı uygulayın ve kimyasal bir davlumbazın içine lamel uygulayın. Görüntülemeden önce gece boyunca kurutun. Görüntüleme sonuçları Şekil 2B'de gösterilmiştir.</li>
</ol>3. scBAT'ın gen ekspresyon analizi
<ol><li>Doku Toplama (öğütme)<ol><li>ScBAT'ı diseksiyon ettikten sonra, dokuyu hemen bir mikrosantrifüj tüpüne koyun, tüpün üstüne steril bir iğne ile bir delik açın ve sıvı nitrojen içinde dondurun. NOT: Burada özetlenen protokolün ana adımları Şekil 3A'da gösterilmektedir. Sıvı nitrojene düşürmeden önce tüpün üst kısmına bir delik açmak, ani basınç değişimi nedeniyle tüpün patlamasını önler.</li>
		<li>Plastik bir kabı sıvı nitrojenle doldurun ve ıslanması için bir havaneli ve ince bir spatula bırakın. NOT: Dokunun çözülmesini önlemek için tüm prosedür boyunca tüm aletlerin ve doku örneklerinin sıcaklığını mümkün olduğunca soğuk, sıvı nitrojen sıcaklığına yakın tutmak önemlidir. Çözülmüş yağ dokusu çok yapışkandır ve pudralamayı daha zor hale getirir. Aletleri ve s'yi yalnızca kullanımdan hemen önce sıvı nitrojen banyolarından çıkarın.</li>
		<li>Her seferinde bir çırpıda donmuş doku örneği alın ve mikrosantrifüj tüpünden harca dökün.</li>
		<li>Harca az miktarda sıvı nitrojen ekleyin, ardından donmuş dokuyu tamamen toz haline gelene kadar öğütmek için havaneli kullanın. NOT: Doku herhangi bir noktada yumuşamaya veya yapışkan hale gelmeye başlarsa, çözülüyor demektir; Harcın içine daha fazla sıvı nitrojen dökün.</li>
		<li>Toz haline getirilmiş dokuyu dikkatlice kazımak ve mikrosantrifüj tüpüne geri aktarmak için ince spatulayı kullanın. Bir spatula ile aktarmadan önce kalan doku parçalarını toplamak için kazıma sırasında harca sıvı nitrojen dökün. Harçtan tüm doku çıkarılana kadar transfer adımlarını tekrarlayın.</li>
		<li>Bir sonraki numuneyi öğütmek üzere boşaltmadan önce harcı hafif hizmet tipi bir doku sileceği ve %70 etanol ile temizleyin. Toz halindeki dokuyu -80 °C'lik bir dondurucuda uzun süre saklayın.</li>
	</ol></li>
	<li>Toplam RNA izolasyonu<ol><li>Hazırlık<ol><li>RNase'i çıkarmak için çalışma tezgahını, pipetleri, uç tutucuları ve tüp raflarını hem %70 etanol hem de yüzey dekontaminantı ile temizleyin.</li>
			<li>Santrifüj makinesini 4 °C'ye ulaşacak şekilde çalıştırın.</li>
			<li>Elüsyon çözeltisini 70 °C'ye ısıtın.</li>
			<li>DNaz I'i, numune başına 5 μL sulandırılmış DNaz I'i 75 μL DNaz seyreltme çözeltisi ile karıştırarak seyreltin. DNase I çözeltisini kullanana kadar buzun üzerine yerleştirin.</li>
		</ol></li>
		<li>Prosedür<ol><li>Her numune için iki mikrosantrifüj tüpünü, iki kolon tutma tüpünü (iki kapaksız dereceli mikrosantrifüj tüpü) ve bir bağlayıcı mini kolonu etiketleyin.</li>
			<li>Her numuneye 500 μL RNA izolasyon çözeltisi ekleyin ve 30 saniye boyunca bir pelet havaneli motoru kullanarak sonikat yapın.</li>
			<li>Her numune için bir şırınga alın ve dokuyu daha da parçalamak için 10 kat yukarı ve aşağı pipetleyin. Şırıngadan sonra katı madde görünmediğinden emin olun.</li>
			<li>250 μL kloroform ekleyin ve numunelerin oda sıcaklığında inkübe etmesi için 5 dakika beklerken ara sıra vorteks yapın.</li>
			<li>21.000 × g'da 4 °C'de 20 dakika santrifüjleyin.</li>
			<li>Üst sulu kısmı yeni bir mikrosantrifüj tüpüne aktarın ve eşdeğer miktarda %70 etanol (~500 μL) ekleyin. NOT: Üst sulu kısım berrak olmalı, alt kısım kırmızı RNA izolasyon solüsyonu olmalı ve iki tabaka arasında bazı istenmeyen katılar bulunmalıdır.</li>
			<li>500 μL yeni lizatı bağlama kolonuna aktarın. 60 saniye boyunca 18.000 × g'da santrifüjleyin ve ardından süzüntüyü atın.</li>
			<li>Tüm RNA'yı bağlanma kolonuna almak için kalan lizat ile önceki adımı tekrarlayın.</li>
			<li>Bağlama kolonuna 700 μL düşük sertlikte yıkama ekleyin, 30 saniye santrifüjleyin ve süzüntüyü atın.</li>
			<li>Her bağlama kolonuna 80 μL seyreltilmiş DNaz I ekleyin. Oda sıcaklığında 15 dakika inkübe edin.</li>
			<li>700 μL yüksek sıkılıkta yıkama ekleyin, 30 saniye santrifüjleyin ve süzüntüyü atın.</li>
			<li>700 μL düşük sıkılıkta yıkama ekleyin, 60 saniye santrifüjleyin ve süzüntüyü atın.</li>
			<li>Bağlama kolonlarını 2. yeni kapaksız kolon tutma tüpüne taşıyın ve tüm sıvıların ciltleme kolonundan çıkarıldığından emin olmak için 2 dakika santrifüjleyin.</li>
			<li>Bağlayıcı kolonları yeni bir mikrosantrifüj tüpüne taşıyın ve 30 μL ısıtılmış elüsyon çözeltisi ekleyin. Oda sıcaklığında 1 dakika inkübe edin.</li>
			<li>Mikrosantrifüj tüpünün dibinde ayrıştırılmış RNA'yı toplamak için 2 dakika santrifüjleyin.</li>
			<li>Bir spektrofotometre kullanarak toplam RNA konsantrasyonunu ölçün. NOT: 2.0'ın altında 260/280 değeri veya 1.8'in altında 260/230 değeri ile gösterilen toplam RNA saflığı düşükse, 3.2.2.12. adımından sonra numuneler bir kez daha düşük sıkılıkta yıkama ile yıkanabilir ve ardından 3.2.2.13 adımına geçmeden önce %80 etanol ile yıkanabilir.</li>
			<li>RNA'yı -80 °C'lik bir dondurucuda saklayın.</li>
		</ol></li>
		<li>Ters transkripsiyon (RT)<ol><li>Bir PCR tüp şeridinde, DEPC ile muamele edilmiş suda seyreltilmiş 0.5-1 μg toplam RNA'yı, her RNA örneği için farklı bir kuyucuğa toplam 8 μL'ye ekleyin. NOT: Ters transkripsiyon için kullanılan RNA miktarı, üreticinin talimatlarına göre büyütülebilir veya küçültülebilir.</li>
			<li>PCR tüpündeki her numuneye 1 μL Oligo dT ve 1 μL dNTP ekleyin. Toplam hacmin numune başına 10 μL olduğundan emin olun.</li>
			<li>PCR tüp şeridini bir termocycler'a yerleştirin ve 65 dakika boyunca 5 °C'ye, ardından süresiz olarak 4 °C'ye ayarlayın.</li>
			<li>65 °C'de 5 dakika sonra PCR tüp şeridini çıkarın ve tüpü en az 2 dakika buz üzerine yerleştirin. Buz üzerinde inkübasyondan sonra beş reaktif ekleyin: 4 μL 5x First-Strand tamponu, 2 μL 25 mM MgCl2, 2 μL 0.1 M DTT, 1 μL RNaz inhibitörü ve 1 μL ters transkriptaz her numuneye. Toplam hacmin şimdi numune başına 20 μL olduğundan emin olun.</li>
			<li>PCR tüp şeridini tekrar termocycler'a yerleştirin ve programı 50 dakika boyunca 50 °C'ye, ardından 85 dakika boyunca 5 °C'ye, ardından süresiz olarak 4 °C'ye ayarlayın.</li>
			<li>Program 4 °C'ye ulaştığında, şeridi çıkarın ve 1 μL Ribonükleaz H (RNase H) ekleyin. NOT: RNase H, RT reaksiyonunda kalan herhangi bir RNA şablonunu çıkarmak için kullanılır; bu adımda, istenen RNA zaten cDNA'ya dönüştürülmelidir.</li>
			<li>Şeridi tekrar termodöngüleyiciye yerleştirin ve 37 °C'de 20 dakika ve ardından süresiz olarak 4 °C çalıştırın.</li>
			<li>Ters transkripsiyon tamamlandı; bir spektrofotometre kullanarak cDNA konsantrasyonunu ölçün.</li>
			<li>cDNA'yı 250 ng / μL'ye seyreltin; cDNA'yı -80 °C veya -20 °C dondurucuda saklayın.</li>
		</ol></li>
		<li>Kantitatif PCR (qPCR)<ol><li>96 oyuklu qPCR plakasındaki her primer ve numunenin konumunu düzenlemek için bir elektronik tablo yapın. NOT: Primerlerden birinin, 36B4 gibi diğer tüm ilgili genlerin ekspresyonunu normalleştirmek için bir referans gen olması gerekir.</li>
			<li>Her "astar + numune" kombinasyonu için bir astar ana karışımı yapın. Her bir qPCR reaksiyon kuyusuna 3 μL Moleküler Biyoloji Sınıfı Su, 5 μL qPCR enzim ana karışımı, 0.5 μL ileri primer ve 0.5 μL ters primer ekleyin, bu da reaksiyon başına 9 μL'ye kadar ekler. Reaksiyon kuyusu başına toplam 10 μL yapmak için reaksiyon başına 1 μL cDNA ekleyin. NOT: Standart, her bir "primer + numune" kombinasyonu için üç teknik kopyaya sahip olmaktır, bu nedenle her bir ana karışım yukarıdaki miktarların 4 katı olmalıdır.</li>
			<li>Her primer ana karışımına her replikat için 1 μL cDNA ekleyin. Her bir ana karışım 4x ise, her bir numune cDNA'sının 4 μL'sini kendi etiketli tüplerine pipetleyin.</li>
			<li>Son olarak, her reaksiyonun 10 μL'sini pipetleyin, elektronik tablo tarafından belirlenen konumlarda 96 oyuklu qPCR plakasına karıştırın.</li>
			<li>Plakayı kalın bir yapışkan conta ile kapatın ve ardından 96 oyuklu plakayı 450 × g'da 20 °C'de 2 dakika santrifüjleyin. NOT: Numunelerin termodöngü sırasında buharlaşmasını önlemek için plakanın tamamen sızdırmaz olması çok önemlidir. Contayı plakaya, özellikle kenarlara bastırmak için hafif hizmet tipi kağıt mendil silecekleri kullanın.</li>
			<li>Plakayı gerçek zamanlı bir PCR cihazında çalıştırın. PCR reaksiyonunu üreticinin talimatlarına göre programlayın: 50 °C'de 2 dakika, ardından 95 °C'de 2 dakika daha ve son olarak 95 °C'de 15 sn ve 60 °C'de 30 s'lik 40 döngü. qPCR gen ekspresyon analizinin sonuçları Şekil 3B'de gösterilmektedir.</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
</ol>

Farelerde scBAT'ın Morfolojik ve Moleküler Karakterizasyonu

<ol>
	<li>Boutari, C., Mantzoros, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+2022+update+on+the+epidemiology+of+obesity+and+a+call+to+action:+as+its+twin+COVID-19+pandemic+appears+to+be+receding,+the+obesity+and+dysmetabolism+pandemic+continues+to+rage+on.">A 2022 update on the epidemiology of obesity and a call to action: as its twin COVID-19 pandemic appears to be receding, the obesity and dysmetabolism pandemic continues to rage on.</a> Metabolism. 133, 155217 (2022).</li><li>Hales, C. M., Carroll, M. D., Fryar, C. D., Ogden, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevalence+of+obesity+and+severe+obesity+among+adults:+United+States,+2017-2018.">Prevalence of obesity and severe obesity among adults: United States, 2017-2018.</a> NCHS Data Brief. (360), 1-8 (2020).</li><li>Berry, D. C., Stenesen, D., Zeve, D., Graff, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+developmental+origins+of+adipose+tissue.">The developmental origins of adipose tissue.</a> Development. 140 (19), 3939-3949 (2013).</li><li>Wang, W., Seale, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Control+of+brown+and+beige+fat+development.">Control of brown and beige fat development.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 17 (11), 691-702 (2016).</li><li>Maliszewska, K., Kretowski, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brown+adipose+tissue+and+its+role+in+insulin+and+glucose+homeostasis.">Brown adipose tissue and its role in insulin and glucose homeostasis.</a> Int J Mol Sci. 22 (4), 1530 (2021).</li><li>Cannon, B., Nedergaard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brown+adipose+tissue:+function+and+physiological+significance.">Brown adipose tissue: function and physiological significance.</a> Physiol Rev. 84 (1), 277-359 (2004).</li><li>Cypess, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+and+importance+of+brown+adipose+tissue+in+adult+humans.">Identification and importance of brown adipose tissue in adult humans.</a> N Engl J Med. 360 (15), 1509-1517 (2009).</li><li>van Marken Lichtenbelt, W. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cold-activated+brown+adipose+tissue+in+healthy+men.">Cold-activated brown adipose tissue in healthy men.</a> N Engl J Med. 360 (15), 1500-1508 (2009).</li><li>Virtanen, K. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+brown+adipose+tissue+in+healthy+adults.">Functional brown adipose tissue in healthy adults.</a> N Engl J Med. 360 (15), 1518-1525 (2009).</li><li>Cypess, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomical+localization,+gene+expression+profiling+and+functional+characterization+of+adult+human+neck+brown+fat.">Anatomical localization, gene expression profiling and functional characterization of adult human neck brown fat.</a> Nat Med. 19 (5), 635-639 (2013).</li><li>Leitner, B. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mapping+of+human+brown+adipose+tissue+in+lean+and+obese+young+men.">Mapping of human brown adipose tissue in lean and obese young men.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 114 (32), 8649-8654 (2017).</li><li>Mo, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+and+characterization+of+a+supraclavicular+brown+adipose+tissue+in+mice.">Identification and characterization of a supraclavicular brown adipose tissue in mice.</a> JCI Insight. 2 (11), e93166 (2017).</li><li>Shi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gene+Expression+Analysis+of+Environmental+Temperature+and+High-Fat+Diet-Induced+Changes+in+Mouse+Supraclavicular+Brown+Adipose+Tissue.">Gene Expression Analysis of Environmental Temperature and High-Fat Diet-Induced Changes in Mouse Supraclavicular Brown Adipose Tissue.</a> Cells. 10 (6), 1370 (2021).</li><li>Chang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Loss+of+perivascular+adipose+tissue+on+peroxisome+proliferator-activated+receptor-gamma+deletion+in+smooth+muscle+cells+impairs+intravascular+thermoregulation+and+enhances+atherosclerosis.">Loss of perivascular adipose tissue on peroxisome proliferator-activated receptor-gamma deletion in smooth muscle cells impairs intravascular thermoregulation and enhances atherosclerosis.</a> Circulation. 126 (9), 1067-1078 (2012).</li><li>Ye, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Developmental+and+functional+characteristics+of+the+thoracic+aorta+perivascular+adipocyte.">Developmental and functional characteristics of the thoracic aorta perivascular adipocyte.</a> Cell Mol Life Sci. 76 (4), 777-789 (2019).</li><li>de Jong, J. M., Larsson, O., Cannon, B., Nedergaard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+stringent+validation+of+mouse+adipose+tissue+identity+markers.">A stringent validation of mouse adipose tissue identity markers.</a> Am J Physiol Endocrinol Metab. 308 (12), E1085-E1105 (2015).</li><li>Fu, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+crest+cells+differentiate+into+brown+adipocytes+and+contribute+to+periaortic+arch+adipose+tissue+formation.">Neural crest cells differentiate into brown adipocytes and contribute to periaortic arch adipose tissue formation.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 39 (8), 1629-1644 (2019).</li><li>Tucker, D. K., Foley, J. F., Bouknight, S. A., Fenton, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sectioning+mammary+gland+whole+mounts+for+lesion+identification.">Sectioning mammary gland whole mounts for lesion identification.</a> J Vis Exp. (125), e55796 (2017).</li><li>Berry, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Imaging+of+adipose+tissue.">Imaging of adipose tissue.</a> Methods Enzymol. 537, 47-73 (2014).</li></ol>

Yazarların ifşa edecek herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Bu protokolde, H&E ve gen ekspresyon analizleri için scBAT'ın diseksiyonu ve işlenmesi prosedürlerini ayrıntılı olarak sunuyoruz. scBAT boynun orta tabakasında bulunduğundan ve büyük damarlar boyunca uzandığından, bu deponun izolasyonu hassas bir teknik gerektirir. Özellikle, depoyu net bir şekilde görebilmek için, fareyi boyun açıldıktan sonra diseksiyon mikroskobu altına yerleştirmenizi öneririz. Tükürük bezinden ve çevresindeki damarlardan scBAT'ı soymak için bir çift süper ince nokta f...

ABD'de ve dünya çapında artan obezite prevalansı, etiyolojisini anlama ve potansiyel tedavileri belirleme konusunda büyük ilgi uyandırmıştır 1,2. Yağ dokusu metabolizmada hayati bir rol oynar ve yağ dokusunun düzensizliği obezite gelişimine yol açabilir. Genel olarak beyaz ve kahverengi yağ dokusu olmak üzere iki tip yağ dokusu vardır. Beyaz yağ dokusu (WAT) kimyasal enerjiyi depolayabilir ve endokrin faktörleri salgılayabilirken, kahverengi yağ dokusu (BAT) soğukta ısı üretmek ve vücut ısısını korumak için kimyasal enerji kullanabilir 3,4. Bu eşsiz yetenek nedeniyle, BAT'ın aktivasyonu ayrıca enerji harcamasını artırabilir ve insülin duyarlılığını artırabilir5.
BAT, işlevini, ayrılma proteini 1'in (UCP1)6 aracılık ettiği bir süreç olan titremeyen termojenez yoluyla gerçekleştirir. Fareler ve insanlar da dahil olmak üzere memeliler, değişen miktarlarda BAT'ye sahiptir. BAT'ın klasik görüşü, bu yağ dokularının farelerde ve bebeklerde yetişkin insanlara göre daha bol olduğudur. Kürek kemiği arasındaki üst dorsal kanatta bulunan iBAT, farelerde en çok çalışılan BAT deposudur. Radyoizotop görüntüleme ve biyopsi testleri uygulayarak, son çalışmalar yetişkin insanlarda birkaç BAT deposu tanımladı. Derin boyun ve supraklaviküler bölgede bulunan depolar da dahil olmak üzere bazıları daha önce farelerde veya diğer model hayvanlardatanımlanmamıştı 7,8,9,10,11. Bu BAT depoları arasında yetişkin insanlarda en sık görülen depo scBAT deposudur. İnsanlarda yeni bulunan bu BAT depolarının kökenini ve moleküler katkısını daha iyi anlamak için, farelerde genetik ve moleküler manipülasyonların bu depoların işlevsel rolünü izlemesine ve test etmesine izin veren eşdeğer depoları tanımlamak önemlidir. Bu nedenle, biz ve diğerleri, scBAT 12,13, torasik perivasküler BAT 14,15, perirenal BAT16 ve periaortik BAT17 dahil olmak üzere farelerde farklı anatomik konumlarda daha önce bilinmeyen birkaç BAT deposu belirledik. Fare scBAT anatomik olarak insan scBAT'a benzer ve morfolojik olarak klasik iBAT'a benzer ve yüksek UCP112 seviyelerini ifade eder.
Kolayca diseke edilebilen fare iBAT'ın aksine, scBAT fare boynunun ara katmanında, tükürük bezlerinin altında ve dış şah damarı boyunca bulunur. Bu deponun histolojik ve moleküler analizler için izolasyonu zor olabilir. Burada, doğum sonrası ve yetişkin farelerden scBAT'ın diseke edilmesi ve bu deponun histoloji ve gen ekspresyon analizi için işlenmesi prosedürünü ayrıntılı olarak açıklıyoruz.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>95% Dehydrant Alcohol (Flex 95)</td>
			<td>Epredia</td>
			<td>8201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100% Dehydrant Alcohol (Flex 100)</td>
			<td>Epredia</td>
			<td>8101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>96-well PCR plate</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>MLL9601</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aurum Binding Mini Column</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>7326826</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aurum High Stringency Wash</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>7326803</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aurum Low Stringency Wash</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>7326804</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Base Molds (for embedding)</td>
			<td>Tissue-Tek</td>
			<td>4122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD PrecisionGlide Needle 21g x 1 1/2&#34;</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>305167</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C1000 Touch Thermal Cycler</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>1840148</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Capless Microcentrifuge Tubes 2 mL</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>02-681-453</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge&#160;</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5430R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CFX Opus 96 Real-Time PCR Instrument</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>12011319</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chloroform</td>
			<td>Thermo Scientific Chemicals</td>
			<td>383760010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cytoseal 60 Low-viscosity mounting medium</td>
			<td>Epredia</td>
			<td>83104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DEPC-Treated Water</td>
			<td>Ambion</td>
			<td>AM 9906</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting Microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>SMZ1500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNase Dilution Solution</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>7326805</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNase I</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>7326828</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>dNTPs</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>18427013</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Elution solution</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>7326801</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EM 400 embedding medium paraffin</td>
			<td>Leica Biosystems</td>
			<td>3801320</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eosin Y (0.5% w/v)</td>
			<td>RICCA</td>
			<td>2858-16</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Formula R Infiltration medium paraffin</td>
			<td>Leica Biosystems</td>
			<td>3801470</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Genemark Nutator Gyromixer 349</td>
			<td>Bio Express</td>
			<td>S-3200-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gill #3 Hematoxylin</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>GHS332-1L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HCl (for HCL-Ethanol)</td>
			<td>Fisher Chemical</td>
			<td>A142212</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IP VI Embedding Cassettes</td>
			<td>Leica Biosystems</td>
			<td>39LC-550-5-L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Koptec&#39;s Pure Ethanol - 200 Proof (for 70% Ethanol)</td>
			<td>Decon Labs</td>
			<td>V1001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MgCl2 (25 mM)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>R0971</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microcentrifuge Tubes 1.7 mL</td>
			<td>Avantor</td>
			<td>87003-294</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microseal &#39;B&#39; Seals (adhseive seals)</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>MSB1001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microtome</td>
			<td>Leica Biosystems</td>
			<td>RM2245</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Molecular Biology Grade Water</td>
			<td>Corning</td>
			<td>46-000-CM</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mortar Coors Tek</td>
			<td>Thomas Scientific</td>
			<td>60310</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl (for 0.85% saline)</td>
			<td>Fisher Bioreagents</td>
			<td>BP358-212</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NanoDrop Spectrophotometer</td>
			<td>NanoDrop Technologies</td>
			<td>ND-1000 UV/Vis</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oligo dT</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>18418020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraffin Section Flotation Bath</td>
			<td>Boekel Scientific</td>
			<td>14792V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraformaldehyde (PFA)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P6148-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PCR Tube Strip</td>
			<td>Avantor</td>
			<td>76318-802</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pestle by Coors Tek</td>
			<td>Thomas Scientific</td>
			<td>60311</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pestle Pellet Motor</td>
			<td>Kimble</td>
			<td>749540-0000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffer Saline (PBS)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>D8537-500ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Precision Model 19 Vacuum Oven&#160;</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>CAT# 51221162</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primer: 36B4&#160; (forward) 10 &#956;M 
			5&#39; TGA AGT GCT CGA CAT CAC AGA GCA 3&#8217;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Chen lab Oligo database</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primer: 36B4 (reverse) 10 &#956;M 
			5&#39; GCT TGT ACC CAT TGA TGA TGG AGT GT 3&#8217;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Chen lab Oligo database</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primer: Fabp4 (forward) 10 &#956;M 
			5&#8217; ACA CCG AGA TTT CCT TCA AAC TG 3&#8217;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Chen lab Oligo database</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primer: Fabp4 (reverse) 10 &#956;M 
			5&#8217; CCA TCT AGG GTT ATG ATG CTC TTC A 3&#8217;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Chen lab Oligo database</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primer: Glut 4 (forward primer) 10 &#956;M 
			5&#8217; CTG ATT CTG CTG CCC TTC TGT CCT 3&#8217;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Chen lab Oligo database</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primer: Glut 4 (reverse) 10 &#956;M 
			5&#8217; GAC ATT GGA CGC TCT CTC TCC AAC TT 3&#8217;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Chen lab Oligo database</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primer: PPARg (forward) 10 &#956;M 
			5&#8217; AGG GCG ATC TTG ACA GGA AAG ACA 3&#8217;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Chen lab Oligo database</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primer: PPARg (reserve) 10 &#956;M 
			5&#8217; AAA TTC GGA TGG CCA CCT CTT TGC 3&#8217;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Chen lab Oligo database</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primer: Ppargc1a (reverse) 10 &#956;M 
			5&#39; ATG TTG CGA CTG CGG TTG TGT ATG 3&#8217;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Chen lab Oligo database</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primer: Ppargc1a(forward) 10 &#956;M 
			5&#39; ACG TCC CTG CTC AGA GCT TCT CA 3&#8217;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Chen lab Oligo database</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primer: Ucp1 (forward) 10 &#956;M 
			5&#8217; AGC CAC CAC AGA AAG CTT GTC AAC 3&#8217;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Chen lab Oligo database</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primer: Ucp1 (reverse) 10 &#956;M 
			5&#8217; ACA GCT TGG TAC GCT TGG GTA CTG 3&#8217;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Chen lab Oligo database</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RNA isolation solution (PureZol)</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>7326880</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RNase Away (surface decontaminant)</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>1437535</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RNase H</td>
			<td>NEB</td>
			<td>M0297S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rnase inhibitor (RNase Out)</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>10777019</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scintillation Vial (glass)</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>72632</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Slide drying bench&#160;</td>
			<td>Electrothermal (Cole-Parmer)</td>
			<td>MH6616</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stainless staining rack</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>70312-54</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereo microscope (for embedding)</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>SZ51</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sugical scissors</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>43-1-104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Superfine point Straight Dissecting Forceps</td>
			<td>Avantor</td>
			<td>82027-402</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Superfrost Plus Microscope Slides</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>12-550-15</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Superscript III Reverse Transcriptase (Includes 5x First-Strand Buffer and 0.1M DTT)&#160;</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>18080044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SUR-VET syringe with needle 25 G x 5/8&#34;, 1 mL</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>100281</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SYBR Green (qPCR enzyme master mixture)</td>
			<td>Applied Biosystems</td>
			<td>A25778</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue-Tek Manual Slide Staining Set (jars)</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>SKU: 62540-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Toluene</td>
			<td>Fisher Chemical</td>
			<td>T324-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transfer pipette</td>
			<td>Avantor</td>
			<td>414004-005</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylene</td>
			<td>Fisher Chemical</td>
			<td>X3P-1GAL</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

dissection, histological processing, and gene expression analysis of murine supraclavicular brown adipose tissue

Kahverengi yağ dokusu (BAT) aracılı termojenez, metabolizmanın düzenlenmesinde önemli bir rol oynar ve morfolojisi ve işlevi, farelerde ve insanlarda çevresel uyaranlardan büyük ölçüde etkilenebilir. Şu anda, farelerin üst dorsal kanadındaki iki kürek kemiği arasında bulunan murin interskapular BAT (iBAT), araştırma laboratuvarları tarafından BAT fonksiyonunu incelemek için kullanılan ana BAT deposudur. Son zamanlarda, farelerde, insan supraklaviküler kahverengi yağ dokusuna benzer bir tane de dahil olmak üzere, daha önce bilinmeyen birkaç BAT deposu tanımlandı. iBAT'tan farklı olarak, murin supraklaviküler kahverengi yağ dokusu (scBAT) boynun orta tabakasında bulunur ve bu nedenle kolayca erişilemez.
Yeni tanımlanan fare scBAT'ın çalışmasını kolaylaştırmak için, burada sunulan, bozulmamış scBAT'ı doğum sonrası ve yetişkin farelerden ayırma adımlarını detaylandıran bir protokoldür. scBAT'ın diğer yağ depolarına göre küçük boyutu nedeniyle, prosedürler özellikle scBAT'ı işlemek için değiştirilmiş ve optimize edilmiştir. Bu modifikasyonlar arasında, sonraki qPCR analizinin verimliliğini artırmak için donmuş scBAT örneklerinin hassasiyetini ve homojenizasyonunu artırmak için doku toplama sırasında bir diseksiyon mikroskobunun kullanılması yer almaktadır. Bu optimizasyonlar ile farelerde scBAT'ın tanımlanması, morfolojik görünümü ve moleküler karakterizasyonu belirlenebilir.

The increasing prevalence of obesity in the U.S. and worldwide has ignited great interest in understanding its etiology and identifying potential treatments1,2. Adipose tissue plays a vital role in metabolism, and dysregulation of the adipose tissue can lead to the development of obesity. Generally, there are two types of adipose tissues, white and brown adipose tissue. While white adipose tissue (WAT) can store chemical energy and secrete endocrine factors, brown adipose tissue (BAT) can use chemical energy to generate heat and maintain body temperature in the cold3,4. Because of this unique ability, activation of BAT can also increase energy expenditure and improve insulin sensitivity5.
BAT exerts its function through non-shivering thermogenesis, a process mediated by uncoupling protein 1 (UCP1)6. Mammals, including mice and humans, possess varying amounts of BAT. The classical view of BAT is that these adipose tissues are more abundant in mice and infants than in adult humans. iBAT, located in the upper dorsal flank between the scapulae, is the most studied BAT depot in mice. By applying radioisotope imaging and biopsy tests, recent studies identified several BAT depots in adult humans. Some of them, including the depots found in the deep neck and supraclavicular region, had not previously been identified in mice or other model animals7,8,9,10,11. Among these BAT depots, the scBAT is the most frequently seen depot in adult humans. To better understand the origin and molecular contribution of these newly found BAT depots in humans, it is essential to identify equivalent depots in mice that allow genetic and molecular manipulations to trace and test the functional role of these depots. Thus, we and others identified a few previously unknown BAT depots in different anatomical locations in mice, including scBAT12,13, thoracic perivascular BAT14,15, perirenal BAT16, and periaortic BAT17. Mouse scBAT anatomically resembles human scBAT and morphologically resembles classical iBAT, expressing high levels of UCP112.
Unlike mouse iBAT, which can be readily dissected, scBAT is situated in the intermediate layer of the mouse neck, beneath the salivary glands and along the external jugular vein. Isolation of this depot for histological and molecular analyses can be challenging. Here, we describe in detail the procedure for dissecting scBAT from postnatal and adult mice and processing this depot for histology and gene expression analysis.

Yazar Gündemi: Genetik Analiz için Supraklaviküler Kahverengi Yağ Dokusu Ekstraksiyonunun Optimize Edilmesi

Murin Supraklaviküler Kahverengi Yağ Dokusunun Diseksiyonu, Histolojik İşlemi ve Gen Ekspresyon Analizi

Sırtın deri altı tabakasında iki kürek kemiği arasında yer alan iBAT'tan farklı olarak, scBAT boynun orta tabakasında yer alır ve dış juguler ven boyunca büyüdükçe iskelet kası katmanları ile tükürük bezi arasında derinlere uzanır (Şekil 1A). scBAT'ı diseksiyon yapmak iBAT kadar kolay değildir. Burada, postnatal ve yetişkin farelerden sağlam scBAT'ın diseksiyonu için önemli adımları içeren ayrıntılı bir prosedür sunuyoruz...

Watch this Scientific Journal Video about Author Spotlight: Optimizing Supraclavicular Brown Adipose Tissue Extraction for Genetic Analysis at JoVE.com

Burada, murin supraklaviküler kahverengi yağ dokusunun diseksiyonu ve histolojik ve gen ekspresyon analizlerinin yapılması için pratik bir prosedür sunuyoruz.

Brown adipose tissue (BAT)-mediated thermogenesis plays an important role in the regulation of metabolism, and its morphology and function can be greatly ...

dissection-histological-processing-gene-expression-analysis-murine

Research

JoVE Journal

Biology

Dissection, Histological Processing, and Gene Expression Analysis of Murine Supraclavicular Brown Adipose Tissue

1.1K Görüntüleme.  Baylor College of Medicine. 1 Laboratuvarımız,insan kahverengi yağ dokusuna 5 anatomik benzerlikleri nedeniyle kahverengi yağ analizi için değerli bir depo 4 olarak 2 supraklaviküler kahverengi yağ dokusu 3 veya SCBAT oluşturmaya odaklanmıştır. 6 Bu protokol,SCBAT araştırmalarının erişilebilirliğini 7 artırmayı amaçlamaktadır. 8 Bu depo, küçük boyutu 9 ve boyundaki büyük damarlara yakınlığı nedeniyle korkutucu olabilir, 10 bu nedenle, 11 SCBAT'ı ç...

Video: Yazar Gündemi: Genetik Analiz için Supraklaviküler Kahverengi Yağ Dokusu Ekstraksiyonunun Optimize Edilmesi

Brown adipose tissue (BAT)-mediated thermogenesis plays an important role in the regulation of metabolism, and its morphology and function can be greatly impacted by environmental stimuli in mice and humans. Currently, murine interscapular BAT (iBAT), which is located between two scapulae in the upper dorsal flank of mice, is the main BAT depot used by research laboratories to study BAT function. Recently, a few previously unknown BAT depots were identified in mice, including one analogous to human supraclavicular brown adipose tissue. Unlike iBAT, murine supraclavicular brown adipose tissue (scBAT) is situated in the intermediate layer of the neck and thus cannot be accessed as readily.
To facilitate the study of newly identified mouse scBAT, presented herein is a protocol detailing the steps to dissect intact scBAT from postnatal and adult mice. Due to scBAT&#39;s small size relative to other adipose depots, procedures have been modified and optimized specifically for processing scBAT. Among these modifications is the use of a dissecting microscope during tissue collection to increase the precision and homogenization of frozen scBAT samples to raise the efficiency of subsequent qPCR analysis. With these optimizations, the identification of, morphological appearance of, and molecular characterization of the scBAT can be determined in mice.

Here, we provide a practical procedure for dissecting and performing histological and gene expression analyses of murine supraclavicular brown adipose tissue.