Name: pan-lyssavirus real time rt-pcr for rabies diagnosis
Uploaded: 2019-07-10T14:00:00
Duration: 6 min 25 s
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著者たちは、実験を完了する際の支援のためにエマ・ワイズさんとミス・ミーガン・ゴールディングさんに感謝したいと思っています。このプロトコルの開発は、英国環境・食糧・農村省(Defra)、スコットランド政府、ウェールズ政府の助成金[SV3500、およびSE0431]および欧州ウイルスアーカイブ・グローバル(EVAg)プロジェクトによって財政的に支援されました。欧州連合のHorizon 2020研究・イノベーション・プログラムから助成金を受け取ったNo 653316。

自然感染後にAPHAで受け取った診断材料からのサンプル、またはライセンス70/7394の下で英国内務省の規則の下でAPHA倫理および統計委員会によって評価されたプロトコルを使用してマウスを接種することによって得られる。
マイクロ容積分光光度計を用いたRNAの定量
<ol><li>分光光度計の設定がRNAに設定されていることを確認します。</li>
	<li>1-2 μLの分子グレードの水を使用して機械を初期化し、ベースラインを設定します。</li>
	<li>各試験RNAサンプルの1-2 μLを使用して、RNA量を評価します。</li>
	<li>読み取りとドキュメントを保存します。</li>
	<li>必要に応じて、RNA を 1 μg/μL に調整します。 注:RNAは常に氷の上(または涼しいブロック)に保管する必要があります。RNAがカラムを使用して得られる場合、またはビーズベースの方法では、RNAは通常1 μg/μL未満である。この状況では、RNA をきちんと使用します。</li>
</ol>2. エンドポイント感度を決定するRNA希釈シリーズの調製
<ol><li>
RNAの10倍のシリアル希釈を行います。
	<ol>
<li>希釈系列(例えば、10-1、10-2など)およびRNAの詳細を含むチューブを標識する。</li>
		<li>各チューブに45μLの分子グレードの水を加えます。</li>
		<li>RNAの5 μL(以前は1μg/μLに希釈)を加え、よく混ぜます。</li>
		<li>適切な消毒剤でピペットチップを処分し、新鮮な先端に交換してください。</li>
		<li>10-1から5μLを取り、10-2チューブに追加し、よく混ぜます。 </li>
		<li>残りの希釈で 2.1.3-2.1.5 を繰り返します。 注:RNAは常に氷の上(または涼しいブロック)に保管する必要があります。</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. リアルタイムRT-PCR反応の調製
<ol><li>スプレッドシートを使用して、リサウイルスとβ-アクチンアッセイの両方について、試験サンプルと制御サンプルの数に応じてプレートレイアウトを計画します。 注:4つのサンプルが正と負の対照で複製して試験される場合、これは両方のアッセイに対する10の反応に相当します。</li>
	<li>RNAテンプレートとは別の「クリーンルーム」またはエリアで、PCRワークステーションを使用する前に適切な消毒剤で表面を拭き取るか、PCRワークステーションを準備します(使用する場合)。ワークステーションを準備するには、適切な消毒でキャビネット表面を拭き取り、必要なアイテムをワークステーションに置き、ドアを閉めます。紫外線を10分間オンにする</li>
	<li>冷凍庫からリージェントとプライマーを取り出し、解凍します(表1に記載されている試薬および表2のプライマー)。 注:酵素ミックスはグリセロールに保存されているので、解凍を必要とせず、常に氷(または冷たいブロック)に保管する必要があります。他のすべての試薬は室温で解凍することができる。</li>
	<li>解凍したら、試薬と遠心分離機を短時間混ぜて液体を回収します。 注:酵素ミックスを渦に入れないでください, ちょうど簡単に遠心分離.</li>
	<li>リッサウイルスとβ-アクチンのための別々のマスターミックスを準備します。各反応について、分子グレード水の7.55μL、2xユニバーサルSYBRグリーン反応ミックスの10μL、フォワードプライマーの0.6μL、リバースプライマーの0.6μL、iTaq RT酵素ミックスの0.25 μLを追加します。
	<ol>
<li>手動計算のエラーを回避するために、スプレッドシートを使用して正しいボリュームを計算します。ピペッティング エラーを補正するのに十分なマスター ミックスが用意されていることを確認します。したがって、10の反応が必要な場合(3.1の注を参照)、12の反応を調作成します。</li>
		<li>氷(またはクールブロック)にマスターミックスを準備し、リアルタイムマシンに置かれるまで氷の上に残ります。</li>
	</ol></li>
	<li>準備されたマスターミックス、遠心分離機を短時間混合し、ストリップチューブの関連ウェルまたは使用中のリアルタイムマシンと互換性のある96ウェルプレートに19 μLを分配します。 注:ピペッティングしながら、井戸の気泡の生産を最小限に抑えます。</li>
	<li>別の部屋で、または3.2で説明するように調製されたUVキャビネットで、以前に調整されたRNAの1 μLを慎重に1 μg/μL(ステップ1.5参照)に加え、適切なマスターミックスの表面の下によく混ぜて穏やかに混ぜます。ピペットチップは、使用後(表面の下)に直接消毒剤に捨てます。
	<ol>
<li>テストサンプルの後にコントロールを追加し、次にポジティブコントロールを追加し、テンプレートコントロールなし(NTC – 分子グレードの水)を最後に追加しました。使用するRNAの量は、サンプルの種類、および使用されるRNA抽出に応じて変更することができる。反応が最適化されていることを確認するには、使用される量を検証する必要があります。</li>
	</ol></li>
	<li>すべての蓋がしっかりと閉じられ、サンプルを向くために十分にラベル付けされていることを確認するために注意してストリップ蓋またはシーラーを使用してシールプレート。プレート/ストリップチューブのエッジにラベルを付けます。</li>
	<li>遠心分離機を使用してサンプルをスピンダウンし、井戸の底にあるすべての液体を収集します。</li>
	<li>リアルタイムPCRマシンにプレートを転送し、ドアを開け、ホルダー内に配置し、プレートレイアウトに従ってサンプルの正しい位置/方向を確保します。 注:チューブストリップを使用する場合は、ホルダーが所定の位置にあることを確認します。</li>
	<li>リアルタイムPCRマシンプログラムを開き、解離曲線を使用したSYBRリアルタイム実験のオプションを選択します。データ収集ポイントを含む、表3で指定した熱循環条件を使用してリアルタイムPCRマシンをプログラムします。</li>
	<li>蛍光色素としてSYBRを選択し、サンプルタイプとして不明を選択し、正しいサンプル名ボックスに名前を挿入します。 注:複製物とリサウイルスとβ-アクチンウェルを区別する。</li>
	<li>実験データを保存するファイルの場所を選択し、実行の最後にランプがオフになっていることを確認してから、実行を開始します。 注:最初のステップは RT ステージであるため、この間はデータが収集されないため、ランプがウォームアップ期間を必要とする場合、RT ステージ中に発生する可能性があります。リアルタイムマシンとソフトウェアは、増幅曲線をリアルタイムで表示し、融解曲線はサイクルの終了時に生成されます。</li>
</ol>4. データ分析
<ol><li>
実行が完了すると、次のようにデータ分析を実行します。
	<ol>
<li>まず、試験サンプルの増幅プロット結果をコントロールサンプルと一緒に分析します。正のサンプルは指数ランプを表示し、通常は高原と Ct値が続きます。負のサンプルは、Ct値のないフラット増幅プロットを表示します (図 1A)。Ct値はソフトウェアによって自動的に計算されますが、必要に応じてチェックして手動で変更する必要があります。</li>
		<li>次に、検定サンプルの解離曲線結果をコントロールサンプルと共に分析します。陽性サンプルは溶融温度(T m)77~80°Cを持ち、正の対照図1Bと重なる。</li>
		<li>コントロールが有効であることを確認して、全体的な診断結果を取得します。表 4を使用して、内部 θ-アクチンコントロールに関連する結果を解釈します。正のコントロール サンプルが負の場合、または負のサンプルが正の場合は、実行を無視する必要があります。</li>
		<li>コントロールRNAで得られたCtおよびTm値を「コントロールカード」に記録し、トレンド分析を可能にし、アッセイ感度のドリフトを特定します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=OIE.">OIE.</a> OIE Terrestrial Manual 2018. , 8-14 (2018).</li><li>Panning, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+analysis+of+rabies+virus+reverse+transcription-PCR+and+virus+isolation+using+samples+from+a+patient+infected+with+rabies+virus.">Comparative analysis of rabies virus reverse transcription-PCR and virus isolation using samples from a patient infected with rabies virus.</a> Journal of Clinical Microbiology. 48 (8), 2960-2962 (2010).</li><li>Wakeley, P. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+a+real-time,+TaqMan+reverse+transcription-PCR+assay+for+detection+and+differentiation+of+lyssavirus+genotypes+1,+5,+and+6.">Development of a real-time, TaqMan reverse transcription-PCR assay for detection and differentiation of lyssavirus genotypes 1, 5, and 6.</a> Journal of Clinical Microbiology. 43 (6), 2786-2792 (2005).</li><li>Wang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+SYBR-green+I+quantitative+real-time+reverse+transcription-PCR+assay+for+rabies+viruses+with+different+virulence.">A SYBR-green I quantitative real-time reverse transcription-PCR assay for rabies viruses with different virulence.</a> Virologica Sinica. 29 (2), 131-132 (2014).</li><li>Wadhwa, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Pan-Lyssavirus+Taqman+Real-Time+RT-PCR+Assay+for+the+Detection+of+Highly+Variable+Rabies+virus+and+Other+Lyssaviruses.">A Pan-Lyssavirus Taqman Real-Time RT-PCR Assay for the Detection of Highly Variable Rabies virus and Other Lyssaviruses.</a> PLOS Neglected Tropical Diseases. 11 (1), e0005258 (2017).</li><li>Nadin-Davis, S. A., Sheen, M., Wandeler, A. 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C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lyssavirus+in+Japanese+Pipistrelle,+Taiwan.">Lyssavirus in Japanese Pipistrelle, Taiwan.</a> Emerging Infectious Disease. 24 (4), 782-785 (2018).</li><li>Nokireki, T., Tammiranta, N., Kokkonen, U. M., Kantala, T., Gadd, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tentative+novel+lyssavirus+in+a+bat+in+Finland.">Tentative novel lyssavirus in a bat in Finland.</a> Transboundary and Emerging Diseases. 65 (3), 593-596 (2018).</li><li>Hayman, D. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+universal+real-time+assay+for+the+detection+of+Lyssaviruses.">A universal real-time assay for the detection of Lyssaviruses.</a> Journal of Virological Methods. 177 (1), 87-93 (2011).</li><li>Calisher, C. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Antigenic+relationships+among+rhabdoviruses+from+vertebrates+and+hematophagous+arthropods.">Antigenic relationships among rhabdoviruses from vertebrates and hematophagous arthropods.</a> Intervirology. 30 (5), 241-257 (1989).</li><li>Aznar-Lopez, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Detection+of+rhabdovirus+viral+RNA+in+oropharyngeal+swabs+and+ectoparasites+of+Spanish+bats.">Detection of rhabdovirus viral RNA in oropharyngeal swabs and ectoparasites of Spanish bats.</a> Journal of General Virology. 94 (1), 69-75 (2013).</li></ol>

著者は何も開示していない。

記載されているパンリサウイルスリアルタイムRT-PCRアッセイは、3つのフィログループ全体でリッサウイルスを検出する閉じたチューブ、ワンステップアッセイである。このアッセイは、死後の脳組織(最適な脳幹)、皮膚生検、連続採取唾液、または脳脊髄液(CSF)などのアンテモーテ・サンプルを含む、動物とヒト狂犬病の診断の両方で検証されています。このアッセイで利用されるプライマーは、最初に多くのOIE狂犬病研究所で使用され、EURLの熟練スキームで一貫して実行されているRABV、EBLV-1およびEBLV-23を区別するためにプローブベースのアッセイのために設計され、利用されました。続いて、これらのプライマーの「パンリサウイルス」の性質は、2段階のリアルタイムアッセイ15を用いて確認された。ここで説明するアッセイは、プライマーを利用して、閉管、高速システムを可能にするワンステップSYBRアッセイでRT-PCRをさらに最適化した。さらに、このアッセイを用いた狂犬病流行国での訓練は、クロスコンタミネーションと微量サンプル、試薬を貯蔵する施設、リアルタイムの施設を削減するための基本的なPPEおよび品質システムを備えたあらゆる実験室で実施する適合性を確認した。SYBR検出を備えたマシン。アッセイは非常に強く、分解されたサンプル3に対する感度が向上し、FATと100%の相関関係があります。プローブベースのアッセイと比較して、DNAインターカリング色素ベースのアッセイの主な利点の1つは、相対コストです。もう一つの利点は、アッセイが2つのプライマーのみを使用するため、以前に公開されたプローブベースのアッセイの弱点であったシーケンス発散による検出に失敗するリスクが少ないです。実際、すべてのリッサウイルス種(TWBLVおよびKBLVを除く)の代表者は、このアッセイを使用して検出され、プライマー部位全体でのTWBLVおよびKBLVの配列分析は、それらも使用して検出されることを強く示唆する有意な発散を明らかにしないこのメソッド。分析されたウイルス全体で観察される検出の範囲は、2つの主な要因によるものと考えることができる。第1は、RNAが臨床脳材料から単離されたため、希釈されていない各サンプル中のゲノムコピーの量は直接比較できないということです。RNAは、総RNAを1 μg/μLに調整することによって「正規化」された。しかし、そのサンプル内のウイルスゲノムRNAの割合は異なります。第2は、リッサウイルス配列の多様性であり、プライマー部位が保存領域に位置しているにもかかわらず、変動の位置が残っている。したがって、アッセイに対する感受性が低いリッサウイルスの大部分がフィログループIIおよびIIIウイルスであることは驚くべきことではない。解離曲線解析は必須パラメータを表し、プライマーダイマーの形成、または宿主ゲノム内の非特異的領域の増幅によって起こり得る偽陽性の結果を最小限に抑えます。実際には、これはまれな発生であり、解離曲線解析は、正しいサイズの従来のRT-PCRアンプリコンを視覚化するためにアガロースゲルを実行することに相当します。当研究室で収集したデータに基づき、許容されるTm値の範囲(77~80°C)が提供されています。個々のラボが社内データを照合し、範囲が転送可能であることを確認し、それに応じて修正することを強くお勧めします。増幅および解離プロットの両方からの結果の解釈は、正と負のコントロールおよびθ-actinの結果と共に、堅牢で再現可能な診断結果を可能にする。
このプロトコルの範囲外には、高品質のRNAを得るために使用されるRNA抽出方法があります。このプロトコルで分析されたすべてのRNAは、TRIゾルを用いて調製した。しかし、カラムおよびビーズベースの抽出キットを含む、多くの適切なグアニジウムベースの抽出RNA抽出プロトコルが利用可能です。リッサウイルス陽性(または陽性の疑いのある)サンプルの取り扱いは、国内で承認された認可されたバイオコンテインメント施設内でなければなりません。しかし、抽出された全RNAは非感染性であるため、低封じ込め実験室内で処理されます。使用される抽出方法に応じて、RNAを定量化および希釈する要件を評価する必要があります。TRIzolを含むフェノールベースの抽出のために、このステップが必要であり、gDNAを汚染するアッセイの阻害を防ぎます。しかし、カラムおよびビーズベースの抽出(特にDNA枯渇段階を有するもの)は、試験前に希釈を必要としない。
プロトコル全体を通じて、適切な井戸へのクロスコンタミネーションとサンプルの正確な添加を防ぐために、ケアと勤勉が使用される必要があります。試薬の計算とプレートレイアウトを含むスプレッドシートは、補足ファイルとしてダウンロードできます。きれいな仕事の表面、手袋の定期的な変更、各段階を分離するために障壁の先端および異なった部屋/UVキャビネットの使用を含むよい実験室の練習は汚染のチャンスを最小にする。テストが期待されるパラメータで実行されていることを確認するには、正と負のコントロールを含め、すべてのテスト サンプルを重複 (または三文) で実行する必要があります。
コントロールを含めることは、特に診断のために、任意のPCRの不可欠な機能です。陽性対照RNAは、CVS(チャレンジウイルス標準)感染マウス脳からバッチで調製し、バッチ間の一貫性を確保するために検証および校正した。対照RNAを定量し、1μg/μL.RNAに希釈し、シリアル希釈で少なくとも10-4(100pg/μLに相当)まで陽性の結果が得られたので、目的に適していると考えられた。陽性対照RNAを10-1アリコートで-80°Cで保存した。必要に応じて、アリコートを1:100に希釈し、1ng/μLで作動ストックを提供し、5μL単一使用アリコートで-80°Cで保存した。希釈された陽性対照RNAは、低レベル陽性サンプルを表し、アッセイの感度の低下が検出されたことを確実にするために使用された。Ct値を監視し、傾向を識別するために、各コントロールに対して「コントロール カード」が保持されました (表5)。表 5は、CVS 陽性コントロール サンプルC tおよび Tm値が複数の日および演算子に対して良好な実行間比較性を示し、アッセイが堅牢で再現性があることを保証しました。これらの測定値から逸脱した結果を調査し、必要に応じてサンプルを繰り返す必要があります。分子グレードの水は、試薬がリサウイルスRNAによる汚染から自由であることを確認し、陰性サンプルを確認するために、NTCとしてすべての実行に含まれていました。さらに、RNA抽出の有効性を確保するために、β-アクチンを別のチューブ内の試験試料と共に試験した。ライサウイルス陽性対照RNAは、β-アクチン陽性対照にも用いられた。他の内因性遺伝子または異種内部制御システムが利用されうる。これらのコントロールを使用すると、すべてのステップがテスト サンプルと同じ条件で分析されました。時折、サンプルが高度に分解された場合、または十分な宿主RNA(唾液またはCSFなど)が含まれなかった場合、内因性遺伝子PCRが失敗する可能性があります。この場合、ライサウイルスリアルタイムRT-PCR結果が陽性であった場合、独立したRNA抽出に関する確認- 元の試験または二次試験(従来のRT-PCRなどの分子のいずれか)によるRNA抽出中の汚染を除外する。、または FAT を使用します。診断サンプルの分析中に表4を使用すると、正しい解釈が保証されました。
狂犬病感染を確認するために使用される分子アッセイにかかわらず、サンガーシーケンシングを使用してリッサウイルス種を決定し、FATやウイルスの単離などのウイルス学における古典的な技術を決定するために調査をフォローアップし、可能にする必要があります。さらなるウイルスの特徴付けとOIEとWHOへの陽性症例の通知をサポートします。

2018年1月に分子方法論を用いて狂犬病の診断がOIEに受け入れられ、特にサンプルが最適でない場合や、アンテモーテ診断の場合に、狂犬病症例の確認におけるこれらの技術の利点を認識し、ライブウイルスや新鮮なサンプルのための要件がないため。リッサウイルスのPCRアッセイは、ゲノムがRNAであるにつれてPCRが開始される前に、逆転転写(RT)を必要とする。ゲノムの3'近位領域を検出するRT-PCRアッセイは、リサウイルス複製中に転写勾配が生じるため、最も敏感であると考えられている。一般的に使用されるRT-PCRアッセイは、エンドポイント(またはゲルベース)とリアルタイムの2つのカテゴリに大きく分けることができます。どちらの方法も機密性が高く、具体的です。しかし、リアルタイムアッセイには「リアルタイム」で結果を得ることや、完全に閉じたチューブシステムで実行されるなど、いくつかの付加的な利点があり、オペレータの汚染の可能性を低減します。リアルタイムアッセイを用いて得られたリッサウイルス特異的アンプリコンを検出するには、主に2つのアプローチがあります。1つ目は、蛍塩素とクエンチャーを含む加水分解プローブ(TaqManプローブなど)を利用します。プローブが増幅中に標的領域に結合すると、ポリメラーゼのエキソヌクレアーゼ活性が蛍光素とクエンチャーの解離をもたらし、得られた蛍光を測定することができる。2つ目は、増幅時に二重鎖DNAに結合するDNAインターカレーション色素(SYBRグリーンなどのフルオロクロム)を利用しています。結合したフルオロクロムは、各サイクルで検出される蛍光を放出し、製品のリアルタイム検出と定量を可能にします。任意のdsDNAへの結合の非特異的性質のために、解離曲線分析が行われ、反応の特異性を確認する。リアルタイムRT-PcRは、通常、長さが200 bp未満の小さなアンプリコンサイズのために迅速です。しかし、保存された領域でプライマーとプローブを設計するのに適した領域を特定することは困難であることが証明されるため、プローブの要件を取り除くことは明らかな利点です。
多くのリアルタイムRT-PcRは、RABV2の個々の株または系統を特異的に検出し、また属3、4、5、6の間でリッサウイルスを検出するように設計されています。 7,8,9.すべてのアッセイは、プライマー(および必要に応じてプローブ)配列が属を横切って保存される方法に依存する検出の限界を持ちます。実際、新しいウイルス株や新しいウイルス株は、非常に特異的なプローブベースのアッセイを無効にする可能性があります。リアルタイム検出(色素対プローブ)の選択は、意図したアプリケーションによって異なります。局所的に供給された脳材料に対してサーベイランスを行い、多数の陰性サンプルを期待する実験室では、安価なインターカリング色素の使用は賢明な選択です。SYBR Greenアプローチは、新規または発散性リサウイルスの存在がより制限されたプローブベースのアッセイによって検出されないスキャン監視を行う場合にも最適です。
リサウイルス属のすべてのメンバーは、症状が現れると致命的である狂犬病を引き起こす。ヒトおよび動物狂犬病の症例の大半は狂犬病ウイルス(RABV)によるもので、国内犬10である支配的な貯水池である。コウモリはリッサウイルスにとって重要な宿主貯水池であり、特徴付けされた2種のリッサウイルス種を除く全てがコウモリで直接同定されている- 生駒リッサウイルス(IKOV)とモコラウイルス(MOKV)-そして、これら2つのうち、IKOVはコウモリ宿主貯水池を持っていると推測されている。11.16の認識されたリッサウイルス種12に加えて、最近記載されている2つのリッサウイルスがあります:台湾コウモリリサウイルス(TWBLV)13とコタラチコウモリリサウイルス(KBLV)14。リッサウイルスは遺伝的に3つのフィログループに分けられ、RABVを含むリッサウイルスの大部分は、フィログループIに属する。しかし、最も発散性のリサウイルスはフィログループIIIに属し、RABVまたはフィログループIウイルス配列を標的とするように設計されたRT-PcRによって検出される可能性は低い。
ここで説明するアッセイは、2005年3月に最初に説明したリアルタイムプライマーペアJW12-N165を利用しています。プライマーは、元のアプリケーションがリサウイルス種を区別するためのプローブを用いたTaqManアッセイであったが、パンリサウイルスであるように設計された。その後、プライマー対が特異性におけるパン・リサウイルスであったことが確認され、WCBV15を含む利用可能な全てのライサウイルス種に対する2段階のSYBRリアルタイムアッセイを利用して達成された。プライマーペアは、インターカリングフルオロクロムを利用した1ステップRT-PCRリアルタイムアッセイで、認識された全16種のリサウイルス種の代表者を用いて検証した。この1ステップのリアルタイムアッセイは、迅速で敏感な、リッサウイルス特異的アッセイであり、プライマーの堅牢性が非常に発散性の高いリサウイルス種を同定するために設定されたことを示しています。

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Art Barrier pipette tips (various sizes)</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>various</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge</td>
			<td>Beckman</td>
			<td>Allegra 21R</td>
			<td>Rotor capable of holding 96 well plates required. Step 3.8.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge (mico)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Finnpipettes (to dispense 0.5-1000 &#181;L)</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>various</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>iTaq Universal SYBR Green One-Step RT-PCR kit</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>172-5150</td>
			<td>Equivalent kits can be used if validated</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MX3000P or MX3005P real-tme PCR system</td>
			<td>Stratagene</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Eqivalent machines can be used if validated</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MicroAmp reaction plate base</td>
			<td>Any suitable</td>
			<td></td>
			<td>Used to hold tube strip and plates securely.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Optically clear flat clear strips (8)</td>
			<td>ABgene</td>
			<td>AB-0866</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Perfect fit frame (if using tube strips)</td>
			<td>Stratagene</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Specific to machine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primers: for primer details see Table 2.</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Ordered at 0.05 &#181;mole scale HPLC purified.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo-Fast 96 well plares, non skirted</td>
			<td>ABgene</td>
			<td>AB-600</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo-Fast strips (8) Thermo-tubes</td>
			<td>ABgene</td>
			<td>AB-0452</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vortex machine / Whirlimixer</td>
			<td>Fisons Scientific equipment</td>
			<td>SGP-202-010J</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Unless stated, alternative equipment can be used</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

pan-lyssavirus real time rt-pcr for rabies diagnosis

分子アッセイは、迅速で感受性が高く、特異的であり、狂犬病の診断の中心となっています。PCRベースのアッセイは、狂犬病の診断を確認するために何十年も利用されてきましたが、狂犬病感染を検出する主要な方法としてOIE(世界動物衛生機構)によって受け入れられました。リアルタイムRT-PCRアッセイは、リアルタイムデータを提供し、クローズドチューブシステムであり、セットアップ中の汚染のリスクを最小限に抑えます。DNAインターカレーションフルオロクロムリアルタイムRT-PCRアッセイは、高価なプローブを必要とせず、サンプルあたりのコストを最小限に抑え、プライマーが保存領域で設計されている場合、1つのウイルスに特異的ではなく、ウイルスの系統全体に特異的なアッセイ種が可能です。ここでは、最も発散性ウイルスIKOV、WCBVおよびLLEBVを含むリッサウイルス属全体のリッサウイルスを検出するパンリッサウイルスSYBRリアルタイムRT-PCRアッセイについて説明する。解離曲線解析と組み合わせて、このアッセイは、すべてのリサウイルス種を検出する利点を持つ、敏感で特異的です。このアッセイは、品質保証された環境を備えた多くの診断ラボで採用されており、動物およびヒト狂犬病の症例の堅牢で迅速かつ敏感な診断を可能にします。

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Pan-lyssavirus Real Time RT-PCR for Rabies Diagnosis

狂犬病診断のためのパンリサウイルスリアルタイムRT-PCR

dsDNAインターカリング色素を用いてこのリアルタイムRT-PCRは、リサウイルス感染の診断に適しています。この方法は、狂犬病から抽出されたRNAから始まり、マンテモーテムまたは死後サンプル、マスターミックス調製、RNA添加、リアルタイムマシンのセットアップ、結果の正しい解釈を詳細に説明します。

Molecular assays are rapid, sensitive and specific, and have become central to diagnosing rabies. PCR based assays have been utilized for decades to ...

このリアルタイムRT-PCRは、アンティモートおよび事後分析サンプルの狂犬病を迅速に診断するのに適しています。パンリサウイルスプライマーは、リサウイルス属のすべてのメンバーを識別するために最適化されています。これは、臨床検体から高度に発散した種を含むリッサウイルス属全体からのウイルスを検出する、迅速で敏感で閉管アッセイです。OIEは最近、狂犬病感染を報告する分子アッセイを受け入れた。これは、ウイルス培養や抗原検出方法で必ずしも診断できない分解標本にとって特に重要です。このアッセイの感度により、異なる段階の分離を含む良好な実験室の練習は、汚染のリスクを最小限に抑えるために不可欠である。手順を実証することは、私の研究室の診断士デイジー・ジェニングスです。まず、マイクロボリューム分光光度計でRNAを定量化します。機械がRNAに設定されていることを確認し、分子グレードの水の1〜2マイクロリットルを使用して機械を正規化し、ベースラインを確立します。RNA濃度を測定し、マイクロリットル当たり1マイクログラムに調整します。テストサンプルと制御サンプルの両方を考慮して、スプレッドシートでPCRプレートのレイアウトを計画します。表面を消毒してPCRワークステーションを準備し、UVキャビネットを使用する場合は、開始の10分前にUVライトをオンにします。冷凍庫から試薬やプライマーを取り除いて解凍しますが、酵素ミックスは常に氷の上に保ちます。試薬と遠心分離機を短時間混ぜて液体を回収します。原稿の指示に従って、リサウイルスとベータアクチンのPCRマスターミックスを準備します。マスターミックスは、使用する準備ができるまで氷の上に残します。調製したマスターミックスを混合し、遠心分離 PCR マシン互換プレートまたはチューブストリップの関連ウェルに 19 マイクロリットルを分配します。別の部屋またはUVキャビネットに、調製したRNAの1マイクロリットルを慎重に加える。UV キャビネットを使用する場合は、開始の 10 分前に UV ライトをオンにします。テスト サンプルの後に、正のコントロールとテンプレートなしコントロールを追加します。マスターミックスにRNAを追加する場合は、正しいウェルにRNAが追加されていることを確認してください。この手順を支援するためにプレート計画を使用します。蓋がプレート全体に平らであることを確認するプレートをシールし、それを回転させ、井戸の底にあるすべての液体を収集します。各井戸が同じ量の液体を持ち、泡が見えないようにします。次に、サンプルを PCR マシンに移します。解離でSYBRグリーンを選択してプログラムを開きます。蛍光色素として未知の試料タイプを選択し、SYBRを選択して分析するウェルを選択します。プレートレイアウト上のウェルに、リッサウイルスLまたはβアクチンのアッセイがあるかどうかを含むサンプル情報でラベルを付けます。サーモプロファイルの設定をクリックし、原稿で指定された熱循環条件を変更します。[start] をクリックしてファイルを保存する場所を選択し、実行終了時にランプをオフにするチェックボックスをオンにします。ランプのウォームアップ前に開始するオプションが表示されたら、[今すぐ実行] をクリックしますが、ランプがウォームアップするまで 15 分未満であることを確認します。PCR の実行が完了したら、データ分析を続行します。まず、リッサウイルス増幅プロットを解析する。正のサンプルは指数ランプを表示し、負のサンプルには CT 値のないフラットな増幅プロットがあります。次に、試験サンプルのリサウイルス解離曲線結果を対照サンプルと一緒に解析する。リサウイルス陽性サンプルは、摂氏77度から80度の融解温度を有し、正のコントロールと重なります。次に、Β-アクチン増幅プロットと解離曲線を、コントロールと比較して解析し、全体の結果を解釈します。テキスト レポートを表示し、詳細を使用してコントロール カードにコントロール RNA で取得した CT 値と TM 値を記録して、実行が成功し、テスト サンプルの結果が報告されることを確認します。このプロトコルは、対照標準ウイルスのRNA希釈系列に対するパン・リサウイルスRT-PCRの感度を実証するために使用されます。増幅曲線は、Lyssavirusのピコグラムがわずか10個検出可能であり、解離曲線が製品の融解温度を検証できることを示しています。溶融温度は、アンプリコンがリサウイルス特異的であることを確認するために使用されます。この結果は、摂氏77.34~79.67度のリッサウイルス属にわたる融解温度範囲を示している。融解温度値が 76.8 以下または 80.2 を超えると、非特異的と見なされます。このRT-PCRアッセイの感度は、3つのリッサウイルス陽性脳サンプルからRNAを検出することによっても決定されます。3つのサンプルのうち2つについて、標的RNAのマイクロリットル当たりわずか0.1ピコグラムを検出できます。特に、すべての認識されたリサウイルス種の代表者は、このアッセイを使用して検出される。唾液やCSFなどの臨床サンプルからRNA抽出物を分析すると、宿主核酸がないためにβ-アクチンの結果が陰性になる可能性があります。外因性制御を追加すると、この問題が解決する場合があります。狂犬病感染の地理的および宿主の起源に関する追加情報を提供するために、リサウイルス陽性サンプルのシーケンシングが推奨される。リサウイルス陽性または疑わしい陽性サンプルの取り扱いは、地域の安全衛生ガイドラインに従う必要があります。抽出されたRNAは非感染性であるため、低封じ込めラボ内で取り扱うことができます。

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Detection of MicroRNAs in Microglia by Real-time PCR in Normal CNS and During Neuroinflammation

ノーマルCNSのリアルタイムPCRによると神経炎症時のミクログリアにおけるマイクロRNAの検出

Microglia are cells of the myeloid lineage that reside in the central nervous system (CNS)1. These cells play an important role in pathologies of many ...

Real-time Live Imaging of T-cell Signaling Complex Formation

複合体形成シグナリングT細胞のリアルタイムのライブイメージング

Protection against infectious diseases is mediated by the immune system 1,2. T lymphocytes are the master coordinators of the immune system, regulating ...

High-throughput Quantitative Real-time RT-PCR Assay for Determining Expression Profiles of Types I and III Interferon Subtypes

ハイスループット定量的リアルタイムRT-PCRアッセイのタイプIおよびIIIインターフェロンサブタイプの発現プロファイルを決定するための

Described in this report is a qRT-PCR assay for the analysis of seventeen human IFN subtypes in a 384-well plate format that incorporates highly specific ...

Real-time Quaking-induced Conversion Assay for Detection of CWD Prions in Fecal Material

リアルタイム揺れる誘起変換用糞便材料の CWD プリオンの検出

The RT-QuIC technique is a sensitive in vitro cell-free prion amplification assay based mainly on the seeded misfolding and aggregation of recombinant ...

A Real-time Potency Assay for Chimeric Antigen Receptor T Cells Targeting Solid and Hematological Cancer Cells

固体および造形癌細胞を標的とするキメラ抗原受容体T細胞のリアルタイム効力アッセイ

Chimeric antigen receptor (CAR) T-cell therapy for cancer has achieved significant clinical benefit for resistant and refractory hematological ...

In Vitro ELISA Test to Evaluate Rabies Vaccine Potency

狂犬病ワクチンの効力を評価するインビトロELISA試験

The growing global concern for the animal welfare is encouraging manufacturers and the National Control Laboratories (OMCLs) to follow the 3Rs strategy ...

Immunohistochemistry Test for the Lyssavirus Antigen Detection from Formalin-Fixed Tissues

ホルマリン固定組織からのリサウイルス抗原検出のための免疫組織化学試験

One of the primary diagnostic modalities for rabies is the detection of viral ribonucleoprotein (RNP) complex (antigen) in the infected tissue samples. ...

Monitoring Influenza Virus Survival Outside the Host Using Real-Time Cell Analysis

リアルタイム細胞解析を用いた宿主外でのインフルエンザウイルスの生存率のモニタリング

Methods for virus particle quantification represent a critical aspect of many virology studies. Although several reliable techniques exist, they are ...

Tools for the Real-Time Assessment of a Pseudomonas aeruginosa Infection Model

Tools for the Real-Time Assessment of a Pseudomonas aeruginosa Infection Model

緑膿菌感染モデルのリアルタイム評価ツール

Pseudomonas aeruginosa (Pa) is one of the most common opportunistic pathogens associated with cystic fibrosis (CF). Once Pa colonization is established, a ...