JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

نحن تقييم أثر كتلة العقدة متعاطفة مع سرطان عنق الرحم في إصلاح الأعصاب باستخدام قنوات العصبية الاصطناعية. الكلاب بيغل الذكور كانت بعضها مزروع مع العصبية اصطناعية عبر فجوة 10 ملم في العصب السنخية السفلي الأيسر؛ العقدة متعاطفة مع عنق الرحم الأيسر تم حظره بواسطة الحقن الإيثانول 99.5% عن طريق ثوراكوتومي الأفقي.

Abstract

Polyglycolic حمض الكولاجين (الشبكة-ج) أنابيب هي العصب الحيوي الامتصاص أنابيب مليئة بالكولاجين لهيكل الدائرة المتعددة، التي تتألف من الأفلام الكولاجين رقيقة. وتحققت النتائج السريرية الملائمة عند استخدام هذه الأنابيب لعلاج تلف الأعصاب السنخية أدنى (إيان). عامل حاسم لتجديد العصب الناجحة باستخدام أنابيب الشبكة-ج إمدادات الدم إلى الأنسجة المحيطة. كتلة العقدة متعاطفة مع عنق الرحم (كسجب) يخلق حصار متعاطفة في منطقة الرأس والرقبة، وبالتالي زيادة تدفق الدم في المنطقة. لضمان تأثير كاف، أن الحصار يجب أن تدار مع المخدرات الموضعية واحد لمرتين في يوم لعدة أسابيع متتالية؛ وهذا يشكل تحديا عند إنشاء نماذج حيوانية للتحقيق في هذا الأسلوب. لمعالجة هذا القيد، وضعنا كسجب التي يسببها الإيثانول في نموذج الكلاب البوليسية للزيادة في تدفق الدم في منطقة كفاءة على المدى الطويل. قمنا بفحص سواء إيان التجديد عن طريق غرس أنبوب الشبكة-C يمكن أن تتعزز بهذا النموذج. البيجل أربعة عشر كانت كل مزروع مع أنبوب ج الشبكة عبر فجوة 10 ملم في إيان الأيسر. إيان يقع داخل القناة محاطة بعظم الفك السفلي، ولذا اخترنا جراحة كهرضغطية، يتألف من الموجات فوق الصوتية، لمعالجة العظام، من أجل التقليل إلى أدنى حد من خطر الإصابة العصبية والسفينة. تم الحصول على نتيجة العمليات جراحية جيدة مع هذا النهج. أسبوع بعد الجراحة، سبعة من هذه الكلاب تعرضوا لليسار كسجب بحقن الإيثانول. المستحثة الإيثانول كسجب أسفر تجدد العصب محسنة، مما يوحي بأن زيادة تدفق الدم يعزز فعالية التجدد العصب في عيوب إيان. هذا النموذج الكلاب يمكن أن تساهم في إجراء المزيد من البحوث عن الآثار الطويلة الأمد كسجب.

Introduction

في كثير من الحالات، الإصابات الرضية للعصب السنخية أدنى (إيان) علاجية المنشأ، كثيرا ما الناجم عن استخراج المولى الثالثة أو موضع زراعة الأسنان1،،من23. إصابة إيان يمكن أن يؤدي إلى العجز في الحرارية وتلمس الأحاسيس، فضلا عن تنمل وديسيسثيسيا وهيبوسثيسيا واللودينيا. يتم التعامل مع إصابة العصب ليس فقط بالعلاج المحافظ ولكن أيضا غيرها من الأساليب، بما في ذلك خياطة وموضع أوتوجرافت. ومع ذلك، هذه الأساليب والعيوب، التي غالباً ما تتضمن عدم تحسن الأعراض وعيوب الجهاز العصبي في الجهات المانحة الموقع4،،من56.

العصبية الاصطناعية-أنبوب polyglycolic حمض-الكولاجين (الشبكة-ج) وضعت أصلاً في اليابان. وأنبوب امتصاص الحيوي مع التجويف الداخلية مليئة الكولاجين الاسفنجي7. في التجارب على الحيوانات، هذا الأنبوب كان يستخدم لتعزيز تجديد الأعصاب في الكلاب بيغل مع خلل العصب الشظوي، وتبين للنهوض بمستوى أعلى من الانتعاش من زرع الأعصاب الذاتي8. التطبيق السريري الأنبوب ج المنظمة بدأت في عام 2002 في المرضى الذين يعانون من إصابات الأعصاب المحيطية. وعلاوة على ذلك، تحققت نتائج سريرية إيجابية في علاج الاعتلال العصبي تريجمينل (إيان والعصبية اللغات)9،،من1011. عامل حاسم لتجديد العصب الناجحة باستخدام أنابيب الشبكة-ج إمدادات الدم إلى الأنسجة المحيطة بها8. كتلة العقدة متعاطفة مع عنق الرحم (كسجب) يخلق حصار متعاطفة في منطقة الرأس والرقبة، ويزيد من تدفق الدم إلى منطقة معصب كل منهما12؛ وهكذا، قد استخدمت في علاج متلازمة الإقليمية المعقدة الألم وعدم كفاية الدورة الدموية13،،من1415. ومع ذلك، كانت هناك فقط بضعة تحقيقات تجريبية على الفعالية من كسجب في تدفق الدم زيادة16،17. لضمان كفاءة كسجب كافية، الحصار يجب تطبيق جنبا إلى جنب مع المخدرات الموضعية مرة أو مرتين يوميا لعدة أسابيع، مما يشكل تحديا عند توليد نماذج حيوانية للتحقيق في هذا الأسلوب. لمعالجة هذا القيد، في دراسة سابقة، قمنا بتطوير نموذج الكلاب البوليسية للمدى الطويل زيادة تدفق الدم في المنطقة كفاءة18. النموذج تم إنشاؤها بواسطة أداء كسجب عن طريق حقن الإيثانول 99.5%. نحن تقييم تدفق الدم المخاطية الفموية ودرجة حرارة الجلد الآنف بالليزر دوبلر flowmetry والحراري والأشعة تحت الحمراء مرة واحدة في الأسبوع لمدة 12 أسبوعا. ووجدنا أن زاد تدفق الدم لمنطقة كفاءة لمدة 7 – 10 أسابيع في هذا النموذج.

في هذه الدراسة، ونحن تقييم آثار كسجب التي يسببها الإيثانول على تجديد الأعصاب.
تم زرع الأنبوب ج الشبكة في الكلاب بيغل عبر فجوة 10 ملم في إيان الأيسر. وبعد أسبوع، أجرى كسجب عن طريق حقن الإيثانول. ثلاثة أشهر بعد الجراحة، وأجرينا مجموعة متنوعة من الدراسات الكهربية وغذائها والمورفولوجية لتقييم آثار كسجب على تجديد الأعصاب. نحن نقدم بروتوكول مفصل للتعمير إيان باستخدام أنابيب الشبكة-ج والمستحثه الإيثانول كسجب.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

هذه الدراسة أجريت وفقا "المبادئ التوجيهية" لرعاية واستخدام الحيوانات ووافقت عليها اللجنة "بحوث الحيوانات التابع لجامعة كيوتو" (كيوتو، اليابان؛ ورقم الترخيص: R-16-16). بذل كل الجهود لتقليل معاناة الحيوانات، وجميع أجزاء هذا التقرير تلتزم سيصلون (بحوث الحيوان: الإبلاغ عن التجارب في فيفو ) المبادئ التوجيهية.

1-تصنيع أنابيب الشبكة-ج

  1. لاختلاق القناة العصبية الاصطناعية عن طريق أنبوب (PGA) حمض بوليجليكوليك قابلة لامتصاص، استخدام آلة جدل أنبوبي مجهزة بمغزل 48 وخمسة ألياف الشبكة، تتألف من حزم من خيوط 26 (الشكل 1)18.
  2. لتجعل سطح الشبكة أنبوب ماء، تعرض لتفريغ البلازما.
  3. استخدم 1% v/w أتيلوكولاجين في الحل هيدروكلوريد7.
    ملاحظة: أتيلوكولاجين هو المستخرج من جلد الخنزير عن طريق العلاج الإنزيم وإخضاعها لفحص فيروسات. أنه أساسا يتكون من نوع أنا (70-80 في المائة) واكتب الكولاجين الثالث، نسبة الذي وصف بالتفصيل في مكان آخر7. إعداد الحل الكولاجين بتذويب الكولاجين ز 1 في 100 مل محلول هيدروكلوريد (الرقم الهيدروجيني = 3.0). نظراً لكثافة الحل هيدروكلوريد حوالي 1.0، هو تركيز الكولاجين ث/ث تقريبا 1%.
  4. معطف الأنبوب مع طبقات الكولاجين التي تستنزف مرارا وتكرارا أن الحل هيدروكلوريد الكولاجين 1% 5 s في كل مرة.
    1. بعد الغمس، جاف الأنبوب على مقاعد البدلاء نظيف في درجة حرارة الغرفة. أداء غمس القادمة بعد التأكد من الأنبوب يجف تماما (حوالي 6 ح للتجفيف).
    2. كرر عملية طلاء 10 مرات.
  5. موضوع الأنبوب ج الشبكة إلى 140 درجة مئوية ح 24 تحت الفراغ (العلاج ديهيدروثيرمال)، بغية مراقبة بيو-الاستيعاب وكروسلينكينج من جزيئات الكولاجين. إجراء العملية بأكملها تحت ظروف معقمة.
    ملاحظة: هذا الإجراء بإنشاء أنبوب طول النهائي 14-مم وقطرها الداخلي 3 مم وسمك الجدار 50 ميكرومتر.

2-الجراحة الإعداد

  1. استخدام البيجل الذكور البالغين وزنها كيلوغرام 9.0 إلى 13.0.
    1. بيت الحيوانات في أقفاص منفصلة، تحت ظروف تربية الكلاب الخاضعة للرقابة (12-ح دورة الضوء والظلام).
    2. تقديم الأغذية الصلبة والمياه libitum الإعلانية.
  2. تزن البيجل.
  3. اﻷوتوكﻻف جميع الأدوات الجراحية.
  4. ارتداء قفازات معقمة وتطهير جميع الأسطح من الإعداد التشغيل مع حلاً إيثانول 80%. تجاهل القفازات المستخدمة.
  5. القيام بغسل اليدين الجراحي.
  6. وضع قناع جديد، ثوب، والقفازات المعقمة.

3-التخدير وإعداد الجلد

  1. تخدير مع خليط من هيدروكلوريد الكيتامين 5 مغ/كغ و 1 مغ/كغ إكسيلازيني الكلب بحقنه عضليا.
  2. التنبيب بأنبوب الرغامى من طول 25 سم وقطرها 7.5 مم.
  3. ضع الكلب على موقف الحق الأفقي. المحافظة على التخدير العام مع سيفوفلوراني 3.2% مع الأكسجين (1.0 لتر في الدقيقة).
  4. استخدم وسادة تدفئة للحفاظ على درجة حرارة الجسم عند 37 درجة مئوية.
  5. تنطبق جل العيون على السطح الأمامي للعيون لتجنب كشط القرنية.
  6. يحلق الحقل الجراحي (منطقة الصدر الجانب الأيسر) باستخدام مقص جراحي بعناية. رش كمية كبيرة من الحل الكحولية عبر الموقع من المنطوق. انتظر على الأقل 15 ثانية تكرار التطبيق 3 مرات.
  7. تسجيل معدل ضربات القلب وتشبع الأكسجين أثناء الجراحة.

4-أدنى السنخية العصب التعمير باستخدام الشبكة-ج أنبوب: تطوير نموذج إعادة البناء فقط

  1. حقن 3 مل يدوكائين 1% باستخدام إبرة ز 27 إلى لثة الفك السفلي الأيسر كمخدر موضعي ومسكن.
  2. تنفيذ شق عرضية 5 سم مع شفرة المبضع رقم 15 في لثة الفك السفلي الأيسر، للكشف عن مانديبليس للحيوان.
  3. استخدام الاهتزازات فوق الصوتية كهرضغطية لطحن الجانب الدانية للفك السفلي في مستطيل 8 مم × 3 سم من خلال الثقبة العقلي اللاحق.
    ملاحظة: قد تواتر الاهتزاز 28 \u2012 32 كيلو هرتز.
  4. إزالة جزء أمامي لصفيحة عظم الفك السفلي (الأبعاد، 3 سم × 8 مم) لفضح إيان (الشكل 2A) غادر18.
    ملاحظة: الموقع التعمير يتوافق مع ذروة الجذر المولى الأولى
  5. قطاع إيان مع مشرط لإزالة قطعة 10 ملم.
  6. إدراج جذوعها الدانية والبعيدة للعصب مقطوعة في الأنبوبة العصبية إلى عمق 2 مم.
  7. استخدام خيوط النايلون 8-0 وينتهي مجهر جراحي في 8 X التكبير خياطة أنبوب للعصب الدانية والبعيدة (الشكل 2)18.
  8. العودة لوحة العظام إلى موقعها الأصلي الفك السفلي.
  9. إغلاق الجرح بخيوط النايلون 4-0.
  10. يوم واحد بعد الجراحة، والتأكد من أن لوحة عظم الفك السفلي في موضعه الصحيح.
    1. 4.10.1 إجراء التصوير المقطعي (CT) في عظم الوجه تحت التخدير. تعيين معلمات CT كما يلي: 120 كفب، ماس 200، 0.5 mm/s، وسمك 0.5 ملم شريحة.
      1. إدارة التخدير باستخدام خليط من 5 مغ/كغ الكيتامين هيدروكلوريد و 1 مغ/كغ إكسيلازيني (الشكل 3).
  11. إدارة الأمبيسلّين (100 ملغ/يوم) كالمضادات الحيوية واسيتامينوفين (100 ملغ/يوم) كمسكن لمدة أسبوع بعد الجراحة.

5-الإيثانول الناجم عن كسجب: التنمية من التعمير + نموذج كسجب

  1. أداء إيان التعمير كما هو موضح في القسم 4، والسماح لمدة أسبوع للانتعاش.
  2. تخدير الحيوان مع سيفوفلوراني 1.5% في الأكسجين (4 لتر في الدقيقة) والهواء (6 لتر/دقيقة). الحلاقة وتنظيف الحقل الجراحي المقصود، كما هو موضح في القسم 3.
  3. وضع علامة على الخط شق مع علامة جلد جراحية من رسم خط في منطقة الصدر في الجانب الأيسر (الشكل 4، السطر شق 20 سم في الطول).
  4. ضخ 5 مل يدوكائين 1% باستخدام إبرة ز 21 إلى منطقة الصدر الجانب الأيسر كمخدر موضعي ومسكن.
  5. جداً الجلد الصدر الجانب الأيسر بشفرة المبضع رقم 10.
  6. جداً في طبقة الدهون مع دون مشرط كهربائي لفضح اللفافة العضلية.
  7. كشف سيراتوس فينتراليس العضلات والعضلات ساليناس.
  8. رفع سيراتوس فينتراليس العضلات والعضلات ساليناس من البطني إلى الظهرية لفضح الأضلاع الثانية والثالثة (الشكل 5).
  9. نفذ thoracotomy جانبي الأيسر في الفضاء ربية الثانية والثالثة لفضح العقدة متعاطفة مع عنق الرحم الأيسر (الشكل 6).
  10. حقن 0.2 مل من 99.5 ٪ إيثانول في العقدة متعاطفة مع عنق الرحم باستخدام إبرة ز 30 إطار التصور مباشرة (الشكل 7).
  11. إغلاق الفضاء ربية مع توقف 1-0 غرز قابلة للامتصاص.
  12. إغلاق الجلد بغرز النايلون توقف 3-0.
  13. إدارة الأمبيسلّين (100 ملغ/يوم) كالمضادات الحيوية واسيتامينوفين (100 ملغ/يوم) كمسكن لمدة أسبوع بعد الجراحة.
  14. في أسبوع واحد بعد كسجب، قياس درجة حرارة جلد الوجه مع الحراري والأشعة تحت الحمراء للتأكد من كسجب.

6-الكهربية التسجيلات

  1. لقياس إمكانات العمل العصبية الحسية (الإضافية) وسرعة التوصيل العصبية الحسية (SCV) لايان ثلاثة أشهر بعد إعادة الإعمار، تخدير الحيوانات كما هو موضح في القسم 3.
    ملاحظة: وينبغي قياس المفاجئة و SCV على الجانبين التحكم التجريبية والعادي لكل الكلب في كلتا المجموعتين في المعاملة.
  2. إجراء شق في لثة الفك السفلي الأيسر بشفرة المبضع رقم 10.
  3. بعناية إزالة لوحة عظم الفك السفلي لتجنب إتلاف العصب المجددة جسديا.
  4. حفز إيان استخدام زوج من أقطاب الإبرة، لتسجيل الأداة الإضافية و SCV.
    1. إدراج أقطاب بروكسيمالي لقناة العصب.
    2. تطبيق التحفيز الكهربائية 10 كيلوهرتز 20 مرة.
  5. تحليل النتائج.
    1. تحدد الأداة عن طريق حساب السعة متوسط الاستجابة للتحفيز الكهربائي.
    2. قياس زمن الذروة والسعة القصوى من تسجيلات المخطط.
    3. حساب مؤشر الاسترداد بالمعادلة التالية: السعة الذروة لايان الأيسر لإعادة الإعمار فقط أو التعمير + كسجب السعة المجموعة/الذروة لعنصر التحكم العادي (الجزء المركزي من إيان الحق في فريق إعادة الإعمار فقط)19 ،20.

7-نسيجية تحليل

  1. إعداد قسم
    1. إعادة الإعمار، بعد ثلاثة أشهر من الحصاد إيان الأيسر، بما في ذلك 1 سم للعصب على جانبي الموقع أعيد بناؤها.
    2. حصاد إيان الصحيح على الصعيد المقابل لموقع الحصاد على الجانب الأيسر.
    3. بادئة الأعصاب المقطوع بالانغماس في 2.5 ٪ glutaraldehyde في حل المخزن مؤقت كاكوديلاتي 0.1 M (درجة الحموضة 7.4، 48 درجة مئوية، ح 24).
    4. Postfix مع محلول أكسيد الاوزميوم 2% (48 درجة مئوية، ح 4) وفيروسيانيد البوتاسيوم في م 0.1 الفوسفات المخزن المؤقت الحل (درجة الحموضة 7.4، ح 2).
    5. يذوي الأعصاب مع سلسلة من حلول الإيثانول متدرج.
    6. تضمين في راتنج الإيبوكسي (البارافين).
    7. قسم العينات في سمك 0.5 \u2012 1.0 ميكرومتر.
  2. أزرق تولويدين المصبوغة والمورفولوجية التحليل
    1. وصمة عار الأقسام مع الحل تولويدين الأزرق.
    2. الحصول على صور مجهرية باستخدام مجهر ضوئي، في 400 X التكبير في المناطق التالية على طول العينات: ترك إيان، وسط الجزء المجددة ومم 2 ديستالي للسيجارة؛ إيان الحق، مركز إيان الجزء المقابل لموقع الحصاد على الجانب الأيسر.
    3. حدد الصور من جميع مناطق مع المجددة من الألياف العصبية.
      1. مجدد مختارة عشوائياً من مناطق \u2012 10 8 ميكرومتر 100 × 100 ميكرومتر التي تحتوي على الألياف العصبية.
      2. إجراء تحليل المورفولوجية لاستخدام برامج مناسبة لقياس البارامترات التالية: الألياف العصبية ميليناتيد القطر (ميكرومتر) والكثافة (العد/المنطقة)، الأعصاب نسبة الأنسجة، ونسبة-ز (إكسون myelinated قطر الألياف العصبية القطر/ميليناتيد ).
  3. إيمونوستينينج
    1. اتبع البروتوكولات القياسية لتلطيخ الباب البارافين.
    2. احتضان مع الأجسام المضادة الأساسي لمدة 30 دقيقة عند 25 درجة مئوية.
    3. يغسل مع الفوسفات مخزنة المالحة 3 مرات عند 25 درجة مئوية.
    4. احتضان مع الأجسام المضادة الثانوية المسمى مع الفجل-البيروكسيديز لمدة 30 دقيقة عند 25 درجة مئوية.
    5. الحصول على الصور باستخدام مجهر ضوء.
  4. مجهر إلكتروني (TEM)
    1. تعد الأعصاب كما هو موضح في الخطوة 7، 1.
    2. قسم الأعصاب في سمك 70 ميكرومتر 90 \u2012 باستخدام أولتراميكروتومي.
    3. وصمة عار الأقسام مع سترات الرصاص في رينولد واليورانيل.
    4. بحث وصورة مجهر إلكتروني.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

النتائج

لاحظنا زيادة في درجة حرارة جلد الوجه من الجانب المحظور 1 أسبوع بعد كسجب اليسرى (الشكل 8).

في إعادة إعمار ما بعد 3 أشهر، تم استيعاب الأنبوب ج المنظمة في مجال التعمير والتجديد للعصب السنخية أقل شأنا وقد لوحظ في إعادة الإعمار فق...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

نحن نقدم طريقة فعالة لتجديد إيان باستخدام أنبوب الأعصاب بيوابسوربابل في تركيبة مع كسجب التي يسببها الإيثانول. لهذه الدراسة استخدمنا الكلاب، منذ نماذج حيوانية أخرى، مثل الفئران والجرذان والأرانب، قصيرة العمر المتوقع وهيئة صغيرة الحجم، و وبالتالي لا يمكن استخدامها للقيام العمليات الجرا?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل بإدارة "الأجهزة بيوارتيفيسيال" في كيوتو المعهد الجامعي "العلوم الطبية الحدودية". نود أن نشكر موظفي الطب البيطري من معهد "العلوم الطبية الحدودية".

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
NMP Collagen PSNippon Meatpackers301-84621Atelocollagen extracted from young porcine skin by enzyme treatment
Surgical clippersRoboz Surgical Instrument CompanyRC-5903
Disposable scalpel (No.15)Kai medical219ABBZX00073000
VarioSurg3NakanishiVS3-LED-HPSC, E1133Piezoelectric surgery for bone processing
4-0 nylon suturesEthicon8881H
8-0 nylon suturesEthicon2775G
Isepamicin sulfateNichi-Iko620005641
Disposable scalpel (No.10)Kai medical219ABBZX00073000
30-gauge needleNipro1134
1-0 absorbable stitchesEthiconJ347H
3-0 Nylon stitchesEthicon8872H
Neo ThermoNEC AvioTVS-700Infrared thermography 
Neuropack ΣNIHON KOHDENMEB-5504Orthodromic recorder for electrophysiological recording
Toluidine BlueSigma-AldrichT3260-5G
Light microscopeKeyenceBZ-9000
Mouse anti-human neurofilament protein monoclonal antibodyDAKON1591
Polyclonal rabbit anti-S100 antibodyDAKOZ0311
Transmission electron microscopyHitachi High TechnologiesHitachi H-7000
Dynamic cell countKeyenceBZ-H1CSoftware for morphological evaluation

References

  1. Al-Sabbagh, M., Okeson, J. P., Bertoli, E., Medynski, D. C., Khalaf, M. W. Persistent pain and neurosensory disturbance after dental implant surgery: prevention and treatment. Dental Clinics of North America. 59 (1), 143-156 (2015).
  2. Chaushu, G., Taicher, S., Halamish-Shani, T., Givol, N. Medicolegal aspects of altered sensation following implant placement in the mandible. International Journal of Oral and Maxillofacial Implants. 17 (3), 413-415 (2002).
  3. Robinson, P. P., Loescher, A. R., Yates, J. M., Smith, K. G. Current management of damage to the inferior alveolar and lingual nerves as a result of removal of third molars. British Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 42 (4), 285-292 (2004).
  4. Gregg, J. M. Studies of traumatic neuralgia in the maxillofacial region: symptom complexes and response to microsurgery. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 48 (2), 135-140 (1990).
  5. Pogre, M. A. The results of microneurosurgery of the inferior alveolar and lingual nerve. Journal of Oral and Maxillofacial Sureryg. 60 (5), 485-489 (2002).
  6. Strauss, E. R., Ziccardi, V. B., Janal, M. N. Outcome assessment of inferior alveolar nerve microsurgery: a retrospective review. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 64 (12), 1767-1770 (2006).
  7. Nakamura, T., et al. Experimental study on the regeneration of peripheral nerve gaps through a polyglycolic acid-collagen (PGA-collagen) tube. Brain Research. 1027 (1-2), 18-29 (2004).
  8. Yoshitani, M., et al. Experimental repair of phrenic nerve using a polyglycolic acid and collagen tube. Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 133 (3), 726-732 (2007).
  9. Seo, K., et al. One-year outcome of damaged lingual nerve repair using a PGA-collagen tube: a case report. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 66 (7), 1481-1484 (2008).
  10. Seo, K., et al. Protracted delay in taste sensation recovery after surgical lingual nerve repair: a case report. Journal of Medical Case Reports. 7, 77(2013).
  11. Seo, K., Terumitsu, M., Inada, Y., Nakamura, T., Shigeno, K., Tanaka, Y. Prognosis after surgical treatment of trigeminal neuropathy with a PGA-c tube: report of 10 Cases. Pain Medicine. 17 (12), 2360-2368 (2016).
  12. Okuda, Y., Kitajima, T. Comparison of stellate ganglion block with intravascular infusion of prostaglandin e1 on brachial artery blood flow in dogs. Anesthesia and Analgesia. 84 (6), 1329-1332 (1997).
  13. Kohjitani, A., Miyawaki, T., Kasuya, K., Shimada, M. Sympathetic activity-mediated neuropathic facial pain following simple tooth extraction: a case report. Cranio. 20 (2), 135-138 (2002).
  14. Melis, M., Zawawi, K., al-Badawi, E., Lobo Lobo, S., Mehta, N. Complex regional pain syndrome in the head and neck: a review of the literature. Journal of Orofacial Pain. 16 (2), 93-104 (2002).
  15. Salvaggio, I., Adducci, E., Dell'Aquila, L., Rinaldi, S., Marini, M., Zappia, L., Mascaro, A. Facial pain: a possible therapy with stellate ganglion block. Pain Medicine. 9 (7), 958-962 (2008).
  16. Atsumi, M., Sunada, K. The effect of superior cervical ganglion resection on peripheral facial palsy in rats. Journal of Anesthesia. 30 (4), 677-683 (2016).
  17. Hanamatsu, N., Yamashiro, M., Sumitomo, M., Furuya, H. Effectiveness of cervical sympathetic ganglia block on regeneration of the trigeminal nerve following transection in rats. Regional Anesthesia and Pain Medicine. 27 (3), 268-276 (2002).
  18. Shionoya, Y., Sunada, K., Shigeno, K., Nakada, A., Honda, M., Nakamuram, T. Can nerve regeneration on an artificial nerve conduit be enhanced by ethanol-induced cervical sympathetic ganglion block? PLoS One. 12 (12), e0189297(2017).
  19. Suzuki, Y., Tanihara, M., Ohnishi, K., Suzuki, K., Endo, K., Nishimura, Y. Cat peripheral nerve regeneration across 50 mm gap repaired with a novel nerve guide composed of freeze-dried alginate gel. Neuroscience Letters. 259 (2), 75-78 (1999).
  20. Ichihara, S., et al. Development of new nerve guide tube for repair of long nerve defects. Tissue Engineering, Part C, Methods. 15 (3), 387-402 (2009).
  21. Grenga, V., Bovi, M. Piezoelectric surgery for exposure of palatally impacted canines. Journal of Clinical Orthodontics. 38, 446-448 (2004).
  22. Degerliyurt, K., Akar, V., Denizci, S., Yucel, E. Bone lid technique with piezosurgery to preserve inferior alveolar nerve. Oral Surgery, Oral Medicine, Oral Pathology, Oral Radiology, and Endodontology. 108 (6), e1-e5 (2009).
  23. Kotrikova, B., et al. Piezosurgery--a new safe technique in cranial osteoplasty? International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 35 (5), 461-465 (2006).
  24. Vercellotti, T. Piezoelectric surgery in implantology: a case report-a new piezoelectric ridge expansion technique. International Journal of Periodontics and Restorative Dentistry. 20 (4), 358-365 (2000).
  25. Stübinger, S., Kuttenberger, J., Filippi, A., Sader, R., Zeilhofer, H. F. Intraoral piezosurgery: Preliminary results of a new technique. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 63 (9), 1283-1287 (2005).
  26. Eggers, G., Klein, J., Blank, J., Hassfeld, S. Piezosurgery: an ultrasound device for cutting bone and its use and limitations in maxillofacial surgery. British Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 42 (5), 451-453 (2004).
  27. Hardy, P. A., Wells, J. C. Extent of sympathetic blockade after stellate ganglion block with bupivacaine. Pain. 36 (2), 193-196 (1989).
  28. Hogan, Q. H., Erickson, S. J., Haddox, J. D., Abram, S. E. The spread of solutions during stellate ganglion block. Regional Anesthesia. 17 (2), 78-83 (1992).
  29. Mullenheim, J., et al. Left stellate ganglion block has only small effects on left ventricular function in awake dogs before and after induction of heart failure. Anesthesia and Analgesia. 91 (4), 787-792 (2000).
  30. Tsujimoto, G., Sunada, K., Nakamura, T. Effect of cervical sympathetic ganglionectomy on facial nerve reconstruction using polyglycolic acid-collagen tubes. Brain Research. 1669, 79-88 (2017).
  31. Ghai, A., Kaushik, T., Kumar, R., Wadhera, S. Chemical ablation of stellate ganglion for head and neck cancer pain. Acta Anaesthesiologica Belgica. 67 (1), 6-8 (2016).
  32. Forouzanfar, T., van Kleef, M., Weber, W. E. Radiofrequency lesions of the stellate ganglion in chronic pain syndromes: retrospective analysis of clinical efficacy in 86 patients. Clinical Journal of Pain. 16 (2), 164-168 (2000).
  33. Ohno, K., Oshita, S. Transdiscal lumbar sympathetic block: a new technique for a chemical sympathectomy. Anesthesia and Analgesia. 85 (6), 1312-1316 (1997).
  34. Slappendel, R., Thijssen, H. O., Crul, B. J., Merx, J. L. The stellate ganglion in magnetic resonance imaging: a quantification of the anatomic variability. Anesthesiology. 83 (2), 424-426 (1995).
  35. Wang, Y. C., Wei, S. H., Sun, M. H., Lin, C. W. A new mode of percutaneous upper thoracic phenol sympathicolysis: report of 50 cases. Neurosurgery. 49 (3), 628-634 (2001).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

141 polyglycolic

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved