JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

הערכנו את ההשפעה של צוואר הרחם גנגליון סימפטי בלוק על תיקון עצב באמצעות תעלות העצבים מלאכותי. כלבי ביגל זכר אחד השתילו עם עצב מלאכותי מעבר לפער 10 מ מ העצב מכתשי נחות השמאלי; גנגליון אוהדים שמאל צוואר הרחם היה חסום על ידי הזרקת אתנול 99.5% באמצעות ניקור חזה לרוחב.

Abstract

Polyglycolic חומצה קולגן (PGA-C) הצינורות צינורות ביו-שנספג עצב מלא עם קולגן של מבנה לשכת רב, אשר מורכב של קולגן דקה סרטים. התוצאות הקליניות חיובית הושגו בעת שימוש הצינורות האלה לטיפול של נזק עצבי מכתשי נחות (איאן). גורם קריטי עבור התחדשות העצבים מוצלח באמצעות צינורות PGA-C הוא אספקת הדם אל הרקמה שמסביב. בלוק גנגליון סימפטי צוואר הרחם (CSGB) יוצר מצור סימפטי באזור הראש והצוואר ובכך הגברת זרימת הדם באזור. כדי להבטיח אפקט נאותה, המצור חייב להיות מנוהל עם הרדמה מקומית אחד עד שני פעמים ביום במשך מספר שבועות רצופים; זה מציב אתגר בעת יצירת מודלים בבעלי חיים עבור חוקרים בטכניקה זו. כדי לטפל מגבלה זו, פיתחנו CSGB אתנול-induced במודל של הכלבים של עלייה זרימת הדם באזור orofacial לטווח ארוך. בדקנו אם איאן התחדשות באמצעות PGA-C צינור השרשה יכול להיות מוגברת על ידי מודל זה. ביגל 14 אחד השתילו עם צינור PGA-C על פני פער 10 מ מ איאן השמאלי. איאן הינו ממוקם בתוך התעלה mandibular מוקף העצם, ולכן בחרנו פיזואלקטריים הניתוח המורכב של גלי אולטראסאונד, לעיבוד העצם, כדי למזער את הסיכון של פגיעה העצב ואת כלי. תוצאה כירורגית טובה הושג עם גישה זו. שבוע לאחר הניתוח, שבעה כלבים אלה היו נענשים CSGB שמאל על ידי הזרקה של אתנול. אתנול-induced CSGB הביא התחדשות העצבים משופרת, רומז כי זרימת דם מוגברת ביעילות מקדמת התחדשות העצבים באיאן פגמים. מודל הכלבים זה יכול לתרום מחקר נוסף על ההשפעות ארוכות הטווח של CSGB.

Introduction

במקרים רבים, פציעה טראומטית של עצב מכתשי נחות (איאן) הוא iatrogenic, נגרמת לעתים קרובות על ידי החילוץ של השן הטוחנת השלישית או את המיקום של שתלים דנטליים-1,-2,-3. פציעתו של איאן יכול להוביל לגירעונות תרמי ולגעת תחושות כמו גם נימול, dysesthesia, hypoesthesia ו- allodynia. עצב פציעה תטופל לא רק על ידי טיפול שמרני, אלא גם על ידי אחרים שיטות, כולל תפירה והמיקום בשתל. עם זאת, שיטות אלה יש חסרונות, אשר לעיתים קרובות כוללות העדר שיפור סימפטום, ליקויים נוירולוגיים5,64,האתר התורם.

העצב מלאכותית — polyglycolic חומצה-קולגן (PGA-C) שפופרת פותחה במקור ביפן. . זה צינור ביו-שנספג עם לומן הפנימי שלה מלא עם קולגן spongiform7. בניסויים על בעלי חיים, הצינור הזה שימש כדי לשפר את התחדשות העצבים ביגל כלבים עם שיתוק פגם, הוצגה לקדם רמה גבוהה יותר של התאוששות העצב עצמיים השתלת8. היישום הקליני של הצינור PGA-C החלו בשנת 2002 אצל חולים עם פגיעות במערכת העצבים ההיקפית. יתר על כן, הושגו תוצאות קליניות חיוביות בטיפול של טריגמינל נוירופתיה (איאן ועצבי לשוני)9,10,11. גורם קריטי עבור התחדשות העצבים מוצלח באמצעות צינורות PGA-C הוא אספקת הדם לרקמות שמסביב8. בלוק גנגליון סימפטי צוואר הרחם (CSGB) יוצר מצור סימפטי באזור הראש והצוואר ומגביר את זרימת הדם לאזור innervated12; לכן, זה נעשה שימוש בטיפול של תסמונת כאב אזורי מורכב ואי ספיקה הדם13,14,15. עם זאת, היו רק כמה ניסיוני חקירות על היעילות של CSGB16,זרימת הדם הגובר17. כדי להבטיח יעילות CSGB נאותה, המצור יש להחיל יחד עם הרדמה מקומית פעם או פעמיים ביום למשך מספר שבועות, ובכך פוזות אתגר בעת יצירת מודלים בעלי חיים כדי לחקור בטכניקה זו. כדי לטפל מגבלה זו, במחקר הקודם, פיתחנו מודל הכלבים של זרימת דם מוגברת ארוכת טווח אזור orofacial18. המודל נוצר על ידי ביצוע של CSGB על ידי הזרקת אתנול 99.5%. הערכנו את זרימת הדם דרך הפה הרירית ואת טמפרטורת עור האף על ידי לייזר flowmetry דופלר ו הדמאה תרמית אינפרא אדום פעם בשבוע, למשך 12 שבועות. . מצאנו זרימת הדם של האזור orofacial הוגדל במשך 7-10 שבועות במודל זה.

במחקר הנוכחי, הערכנו את ההשפעות של אתנול-induced CSGB על התחדשות עצבים.
הצינור PGA-C היה מושתל לתוך כלבי ביגל על פני פער 10 מ מ איאן השמאלי. שבוע לאחר מכן, CSGB בוצע על ידי הזרקת אתנול. שלושה חודשים לאחר הניתוח, לנו לבצע מגוון רחב של מחקרים אלקטרופיזיולוגיות, היסטולוגית, מורפולוגי כדי להעריך את ההשפעות של CSGB על התחדשות עצבים. אנו מספקים פרוטוקול מפורט עבור שחזור איאן באמצעות צינור PGA-C CSGB הנוצרות על-ידי אתנול.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

מחקר זה נערך בהתאם לעקרונות המנחים על טיפוח ועל השימוש של בעלי חיים ו אושרה על ידי הוועדה חיה מחקר של אוניברסיטת קיוטו (בקיוטו, יפן; מספר אישור: R-16-16). נעשה כל מאמץ כדי למזער את סבלם של בעלי החיים, ואת כל המקטעים של דו ח זה לדבוק יגיעו (חיה מחקר: דיווח של ניסויים in Vivo ) הנחיות.

1. ייצור של הצינור PGA-C

  1. כדי לפברק למוליך עצבי מלאכותי באמצעות שפופרת (PGA) חומצה polyglycolic שנספג, השתמש במחט צינורי במכונת מצוידים הצירים 48 סיבים PGA חמש, המורכב צרורות של חוטים 26 (איור 1)18.
  2. עיבוד פני השטח צינור PGA הידרופיליות, לחשוף אותם בפני פליטת פלזמה.
  3. השתמש atelocollagen v/w 1% פתרון הידרוכלוריד7.
    הערה: Atelocollagen מופק חזירי העור באמצעות אנזים טיפול, שעבר המחאה וירוס. זה בעיקר מורכב סוג אני (70-80 אחוז), הקלד קולגן III, היחס אשר מתואר בפירוט במקום7. להכין את הפתרון קולגן על ידי המסת 1 g קולגן 100 מ ל תמיסת הידרוכלוריד (ה-pH = 3.0). מאחר הצפיפות של הפתרון הידרוכלוריד היא כ 1.0, ריכוז w/w קולגן הוא כמעט 1%.
  4. מעיל הצינור עם השכבות קולגן בטבילת אותו שוב ושוב לתוך הפתרון הידרוכלוריד קולגן 1% עבור 5 s בכל פעם.
    1. לאחר טבילה, לייבש את הצינורית על ספסל נקיים בטמפרטורת החדר. לבצע טבילה הבא לאחר להבטיח הצינור יבש לחלוטין (בערך 6 h עבור air-drying).
    2. חזור על תהליך ציפוי פי 10.
  5. נושא הצינור PGA-C עד 140 מעלות צלזיוס במשך 24 שעות ביממה תחת ואקום (טיפול dehydrothermal), על מנת לשלוט ביו-הקליטה, crosslinking של מולקולות קולגן. לבצע את התהליך כולו בתנאים אספטי.
    הערה: הליך זה יוצר שפופרת של 14 מ מ אורך סופי הקוטר הפנימי של 3 מ מ, עובי הקיר 50-μm.

2. ניתוח הגדרת

  1. השתמש ביגל זכר בוגר במשקל של 9.0 כדי 13.0 ק ג.
    1. חיות הבית בכלובים נפרדים, בתנאים מבוקרים מלונה (12-h אור וחושך -מחזור).
    2. לספק מזון מוצק, מים ad libitum.
  2. שוקלים את ביגל.
  3. אוטוקלב כל כלי כירורגי.
  4. דון כפפות סטיריליים ולחטא את כל המשטחים של הגדרת הפעלה עם פתרון 80% אתנול. למחוק את הכפפות בשימוש.
  5. לבצע ניתוח רחיצת ידיים.
  6. לשים מסכה טריים, חלוק, כפפות סטריליות.

3. הרדמה והכנת העור

  1. עזים ומתנגד הכלב עם תערובת של 5 מ"ג/ק"ג קטמין הידרוכלוריד 1 מ"ג/ק"ג חריגות השירותים הווטרינריים על ידי זריקה תוך שרירית.
  2. לצנרר על ידי צינור הנשימה של 7.5 מ"מ קוטר ו- 25 ס מ אורך.
  3. מניחים את הכלב על העמדה הימנית. לשמור על הרדמה כללית עם 3.2% sevoflurane עם חמצן (1.0 L/דקה).
  4. השתמש כרית החימום כדי לשמור על טמפרטורת הגוף 37 מעלות צלזיוס.
  5. חלות של ג'ל אופטלמולוגיות מעל המשטח הקדמי של העין כדי למנוע שחיקה הקרנית.
  6. בזהירות לגלח לשדה כירורגי (באזור החזה צד שמאל) באמצעות קוצץ כירורגי. תרסיס כמות משמעותית של פתרון אלכוהוליים מעל האתר פעיל. חכה לפחות 15 סעיף חזור על היישום 3 פעמים.
  7. להקליט את קצב הלב ואת רווית חמצן במהלך הניתוח.

4. נחות מכתשי עצב שחזור באמצעות PGA-C צינור: פיתוח של המודל שחזור בלבד

  1. להזריק 3 מ"ל של לידוקאין 1% באמצעות מחט 27 G כדי gingiva הלסת השמאלית הרדמה מקומית, שיכוך כאב.
  2. לבצע חתך רוחבי של 5 ס מ עם להב סכין המספר 15 ב gingiva הלסת השמאלית, לחשוף את הלסת של החיה.
  3. השתמש ויברציות ultrasonic פיזואלקטריים כדי לטחון את ההיבט הפרוקסימלית של הלסת התחתונה לתוך מלבן 8 מ מ 3-ס"מ × דרך נקב הנפש האחורי.
    הערה: תדירות הרטט היה 28 \u2012 32 kHz.
  4. הסר את החלק הקדמי של צלחת עצם הלסת (מידות, 3 ס"מ × 8 מ מ) לחשוף את איאן (איור 2 א) השמאלי18.
    הערה: האתר שחזור מקביל בפסגת שורש השן הטוחנת הראשונה
  5. Transect את איאן עם איזמל להסיר מקטע 10 מ מ.
  6. הכנס גדמי הפרוקסימלית ו דיסטלי של עצב קטועה לתוך הצינור העצבי עד לעומק של 2 מ מ.
  7. השתמש התפרים ניילון 8-0 ומסתיים מיקרוסקופ כירורגי בהגדלה X 8 לתפור את הצינור כדי העצב לקרע, (איור 2B)18.
  8. להחזיר את הצלחת עצם לאתר המקורי שלו ללסת התחתונה.
  9. לסגור את הפצע עם התפרים ניילון 4-0.
  10. יום אחד לאחר הניתוח, לאשר הצלחת עצם הלסת במקומו הנכון.
    1. 4.10.1 לבצע הדמיה טומוגרפיה (CT) של העצם פנים תחת הרדמה. הגדר פרמטרים CT כדלקמן: 120 kVp 200 mAs, 0.5 מ מ/s, פרוסה 0.5 מ מ עובי.
      1. לנהל הרדמה בעזרת תערובת של 5 מ"ג/ק"ג קטמין הידרוכלוריד, 1 מ"ג/ק"ג חריגות השירותים הווטרינריים (איור 3).
  11. לנהל אמפיצילין (100mg/day) אנטיביוטיקה, פרצטמול (100 מ ג/יום) בתור מקבל במשך שבוע לאחר הניתוח.

5. אתנול-induced CSGB: פיתוח שיקום + דגם CSGB

  1. לבצע שחזור איאן כמתואר בסעיף 4 ולאפשר שבוע להתאוששות.
  2. עזים ומתנגד החיה עם sevoflurane 1.5% חמצן (4 L/דקה), אוויר (6 L/דקה). לגלח ולנקות השדה הכירורגי המיועד, כמתואר בסעיף 3.
  3. לסמן קו החתך עם סמן כירורגי העור על ידי ציור קו באזור החזה צד שמאל (איור 4, קו החתך הוא 20 ס מ אורך).
  4. להזריק 5 מ של לידוקאין 1% באמצעות מחט 21 G באזור החזה צד שמאל הרדמה מקומית, שיכוך כאב.
  5. פצעים וחתכים העור בחזה צד שמאל עם להב סכין מספר 10.
  6. פצעים וחתכים על שכבת השומן עם אזמל חשמלי לחשוף שרירים fascia.
  7. לחשוף את שריר המשור ventralis ואת scalenus השריר.
  8. הרימו את שריר המשור ventralis ואת scalenus מ הגחוני / שרירים כדי הגבי לחשוף את הצלעות השני והשלישי (איור 5).
  9. לבצע ניקור הלטראלי השמאלי ברווח הבין-צלעי השני והשלישי לחשוף את צוואר הרחם השמאלי סימפטי גנגליון (איור 6).
  10. להזריק 0.2 מ של 99.5% אתנול לתוך גנגליון סימפטי צוואר הרחם באמצעות מחט 30 G תחת פריט חזותי ישיר (איור 7).
  11. סגור לחלל הבין-צלעי עם תפרים שנספג קטע 1-0.
  12. סגור את העור עם תפרים ניילון קטע 3-0.
  13. לנהל אמפיצילין (100mg/day) אנטיביוטיקה, פרצטמול (100 מ ג/יום) בתור מקבל במשך שבוע לאחר הניתוח.
  14. ב 1 שבוע לאחר CSGB, למדוד טמפרטורת עור הפנים עם הדמאה תרמית אינפרא אדום כדי לאשר את CSGB.

6. אלקטרופיזיולוגיות הקלטות

  1. כדי למדוד פוטנציאל הפעולה עצבי חישה (SNAP), מהירות הולכה עצבי חישה (SCV) של איאן שלושה חודשים לאחר השיקום, עזים ומתנגד חיות כמתואר בסעיף 3.
    הערה: הצמד ו SCV יש למדוד בצדדים שליטה ניסויית נורמלי אצל כל כלב בשתי הקבוצות טיפול.
  2. לעשות חתך ב gingiva הלסת השמאלית עם להב סכין מספר 10.
  3. הסר בזהירות את הצלחת עצם הלסת כדי למנוע נזק פיזי העצב מחדש.
  4. לעורר את איאן באמצעות זוג אלקטרודות מחט, כדי להקליט את הצמד ואת SCV.
    1. הכנס האלקטרודות הציר הקרוב אל הצינור העצבי.
    2. החל גירוי חשמלי 10 kHz 20 פעמים.
  5. לנתח את התוצאות.
    1. לקבוע SNAP על ידי חישוב של משרעת התגובה הממוצע כדי גירוי חשמלי.
    2. למדוד את שיא השהיה ואת משרעת השיא מהקלטות תרשים.
    3. לחשב את האינדקס התאוששות עם המשוואה הבאה: משרעת השיא של איאן השמאלי של שחזור בלבד או שחזור + CSGB משרעת קבוצתי / מגיעות לשיא של הפקד נורמלי (מרכזי קטע איאן נכון בקבוצה שחזור בלבד)19 ,20.

7. ניתוח היסטולוגית

  1. סעיף הכנה
    1. שלושה חודשים לאחר שיקום, לקצור את איאן שמאל, כולל 1 ס מ של עצב משני צדדיו של אתר משוחזר.
    2. לקצור את איאן נכון ברמה המתאימה לאתר הקציר בצד שמאל.
    3. קידומת העצבים שנקטפו על ידי טבילה גלוטראלדהיד 2.5% בריכוז 0.1 M cacodylate מאגר (pH 7.4, 48 ° C, 24 שעות ביממה).
    4. Postfix עם 2% פתרון אוסמיום ארבע-חמצני (48 ° C, 4 h), אשלגן ferrocyanide ב 0.1 M בופר פוספט (pH 7.4, 2 h).
    5. מייבשים את העצבים עם סדרה של אתנול מדורגת פתרונות.
    6. להטביע שרף אפוקסי (פרפין).
    7. בסעיף דגימות-עובי של μm \u2012 1.0 0.5.
  2. טולדין כחולים מוכתמים וניתוח מורפולוגי
    1. כתם מקטעים עם פתרון טולדין כחול.
    2. להשיג כמה תמונות מיקרוסקופ נעזרת במיקרוסקופ אופטי, בהגדלה X 400-אזורים הבאים לאורך הדגימות: עזבו את איאן, המרכז של קטע regenerated, 2 מ מ יש את הגדם; ? איאן נכון, במרכז קטע איאן המתאים לאתר הקציר בצד שמאל.
    3. בחר תמונות של כל האזורים עם סיבי עצב מחדש.
      1. בחר באופן אקראי 8 \u2012 10 תחומי 100 μm × 100 μm המכיל מחדש סיבי עצב.
      2. לבצע ניתוח מורפולוגי באמצעות תוכנה מתאימה כדי למדוד את הפרמטרים הבאים: קוטר סיבי עצב סיבי העצב (μm) וצפיפות (ספירה/אזור), עצבים אחוז רקמת, יחס-G (סיבי העצב האקסון סיבי העצב/קוטר סיבי עצב קוטר ).
  3. Immunostaining
    1. בצע פרוטוקולים סטנדרטיים עבור צביעת סעיף פרפין.
    2. דגירה עם נוגדנים ראשי במשך 30 דקות ב 25 º C.
    3. לשטוף עם באגירה פוספט תמיסת מלח 3 פעמים ב 25 º C.
    4. דגירה עם נוגדנים משניים המסומנת חזרת-peroxidase למשך 30 דקות ב 25 º C.
    5. להשיג תמונות באמצעות מיקרוסקופ אור.
  4. במיקרוסקופ אלקטרונים הילוכים (TEM)
    1. להכין את העצבים כפי שמתואר בשלב 7.1.
    2. את העצבים-עובי של 70 \u2012 90 μm באמצעות ultramicrotome של מקטע.
    3. כתם מקטעים עם עופרת ציטראט של וריינולד ו uranyl.
    4. לבחון, תמונה מאת במיקרוסקופ אלקטרונים הילוכים.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

תוצאות

הבחנו עלייה טמפרטורת עור הפנים של הצד החסום 1 שבוע לאחר CSGB השמאלי (איור 8).

ב 3 חודשים שלאחר שיקום, הצינור PGA-C באזור השיקום נספג התחדשות של עצב מכתשי נחות נצפתה ב שחזור בלבד, שחזור + CSGB קבוצות (איור 9 א, ב'

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

אנו מציגים שיטה יעילה עבור התחדשות איאן באמצעות צינור העצבים bioabsorbable בשילוב עם אתנול-induced CSGB. במחקר זה השתמשנו בכלבים, מאז מודלים בבעלי חיים אחרים, כמו עכברים, חולדות, ארנבים, יש תוחלת חיים קצרה, גודל גוף קטן, ולכן לא ניתן להשתמש כדי לבצע את הניתוחים מדויק. כמו איאן ממוקם בתוך התעלה mandibular מוקף...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

המחברים אין לחשוף.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי המחלקה של Bioartificial האיברים בקיוטו המכון האוניברסיטאי למדעי הרפואה הגבול. ברצוננו להודות הצוות הוטרינרי של המכון למדעי הרפואה הגבול.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
NMP Collagen PSNippon Meatpackers301-84621Atelocollagen extracted from young porcine skin by enzyme treatment
Surgical clippersRoboz Surgical Instrument CompanyRC-5903
Disposable scalpel (No.15)Kai medical219ABBZX00073000
VarioSurg3NakanishiVS3-LED-HPSC, E1133Piezoelectric surgery for bone processing
4-0 nylon suturesEthicon8881H
8-0 nylon suturesEthicon2775G
Isepamicin sulfateNichi-Iko620005641
Disposable scalpel (No.10)Kai medical219ABBZX00073000
30-gauge needleNipro1134
1-0 absorbable stitchesEthiconJ347H
3-0 Nylon stitchesEthicon8872H
Neo ThermoNEC AvioTVS-700Infrared thermography 
Neuropack ΣNIHON KOHDENMEB-5504Orthodromic recorder for electrophysiological recording
Toluidine BlueSigma-AldrichT3260-5G
Light microscopeKeyenceBZ-9000
Mouse anti-human neurofilament protein monoclonal antibodyDAKON1591
Polyclonal rabbit anti-S100 antibodyDAKOZ0311
Transmission electron microscopyHitachi High TechnologiesHitachi H-7000
Dynamic cell countKeyenceBZ-H1CSoftware for morphological evaluation

References

  1. Al-Sabbagh, M., Okeson, J. P., Bertoli, E., Medynski, D. C., Khalaf, M. W. Persistent pain and neurosensory disturbance after dental implant surgery: prevention and treatment. Dental Clinics of North America. 59 (1), 143-156 (2015).
  2. Chaushu, G., Taicher, S., Halamish-Shani, T., Givol, N. Medicolegal aspects of altered sensation following implant placement in the mandible. International Journal of Oral and Maxillofacial Implants. 17 (3), 413-415 (2002).
  3. Robinson, P. P., Loescher, A. R., Yates, J. M., Smith, K. G. Current management of damage to the inferior alveolar and lingual nerves as a result of removal of third molars. British Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 42 (4), 285-292 (2004).
  4. Gregg, J. M. Studies of traumatic neuralgia in the maxillofacial region: symptom complexes and response to microsurgery. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 48 (2), 135-140 (1990).
  5. Pogre, M. A. The results of microneurosurgery of the inferior alveolar and lingual nerve. Journal of Oral and Maxillofacial Sureryg. 60 (5), 485-489 (2002).
  6. Strauss, E. R., Ziccardi, V. B., Janal, M. N. Outcome assessment of inferior alveolar nerve microsurgery: a retrospective review. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 64 (12), 1767-1770 (2006).
  7. Nakamura, T., et al. Experimental study on the regeneration of peripheral nerve gaps through a polyglycolic acid-collagen (PGA-collagen) tube. Brain Research. 1027 (1-2), 18-29 (2004).
  8. Yoshitani, M., et al. Experimental repair of phrenic nerve using a polyglycolic acid and collagen tube. Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 133 (3), 726-732 (2007).
  9. Seo, K., et al. One-year outcome of damaged lingual nerve repair using a PGA-collagen tube: a case report. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 66 (7), 1481-1484 (2008).
  10. Seo, K., et al. Protracted delay in taste sensation recovery after surgical lingual nerve repair: a case report. Journal of Medical Case Reports. 7, 77(2013).
  11. Seo, K., Terumitsu, M., Inada, Y., Nakamura, T., Shigeno, K., Tanaka, Y. Prognosis after surgical treatment of trigeminal neuropathy with a PGA-c tube: report of 10 Cases. Pain Medicine. 17 (12), 2360-2368 (2016).
  12. Okuda, Y., Kitajima, T. Comparison of stellate ganglion block with intravascular infusion of prostaglandin e1 on brachial artery blood flow in dogs. Anesthesia and Analgesia. 84 (6), 1329-1332 (1997).
  13. Kohjitani, A., Miyawaki, T., Kasuya, K., Shimada, M. Sympathetic activity-mediated neuropathic facial pain following simple tooth extraction: a case report. Cranio. 20 (2), 135-138 (2002).
  14. Melis, M., Zawawi, K., al-Badawi, E., Lobo Lobo, S., Mehta, N. Complex regional pain syndrome in the head and neck: a review of the literature. Journal of Orofacial Pain. 16 (2), 93-104 (2002).
  15. Salvaggio, I., Adducci, E., Dell'Aquila, L., Rinaldi, S., Marini, M., Zappia, L., Mascaro, A. Facial pain: a possible therapy with stellate ganglion block. Pain Medicine. 9 (7), 958-962 (2008).
  16. Atsumi, M., Sunada, K. The effect of superior cervical ganglion resection on peripheral facial palsy in rats. Journal of Anesthesia. 30 (4), 677-683 (2016).
  17. Hanamatsu, N., Yamashiro, M., Sumitomo, M., Furuya, H. Effectiveness of cervical sympathetic ganglia block on regeneration of the trigeminal nerve following transection in rats. Regional Anesthesia and Pain Medicine. 27 (3), 268-276 (2002).
  18. Shionoya, Y., Sunada, K., Shigeno, K., Nakada, A., Honda, M., Nakamuram, T. Can nerve regeneration on an artificial nerve conduit be enhanced by ethanol-induced cervical sympathetic ganglion block? PLoS One. 12 (12), e0189297(2017).
  19. Suzuki, Y., Tanihara, M., Ohnishi, K., Suzuki, K., Endo, K., Nishimura, Y. Cat peripheral nerve regeneration across 50 mm gap repaired with a novel nerve guide composed of freeze-dried alginate gel. Neuroscience Letters. 259 (2), 75-78 (1999).
  20. Ichihara, S., et al. Development of new nerve guide tube for repair of long nerve defects. Tissue Engineering, Part C, Methods. 15 (3), 387-402 (2009).
  21. Grenga, V., Bovi, M. Piezoelectric surgery for exposure of palatally impacted canines. Journal of Clinical Orthodontics. 38, 446-448 (2004).
  22. Degerliyurt, K., Akar, V., Denizci, S., Yucel, E. Bone lid technique with piezosurgery to preserve inferior alveolar nerve. Oral Surgery, Oral Medicine, Oral Pathology, Oral Radiology, and Endodontology. 108 (6), e1-e5 (2009).
  23. Kotrikova, B., et al. Piezosurgery--a new safe technique in cranial osteoplasty? International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 35 (5), 461-465 (2006).
  24. Vercellotti, T. Piezoelectric surgery in implantology: a case report-a new piezoelectric ridge expansion technique. International Journal of Periodontics and Restorative Dentistry. 20 (4), 358-365 (2000).
  25. Stübinger, S., Kuttenberger, J., Filippi, A., Sader, R., Zeilhofer, H. F. Intraoral piezosurgery: Preliminary results of a new technique. Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 63 (9), 1283-1287 (2005).
  26. Eggers, G., Klein, J., Blank, J., Hassfeld, S. Piezosurgery: an ultrasound device for cutting bone and its use and limitations in maxillofacial surgery. British Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 42 (5), 451-453 (2004).
  27. Hardy, P. A., Wells, J. C. Extent of sympathetic blockade after stellate ganglion block with bupivacaine. Pain. 36 (2), 193-196 (1989).
  28. Hogan, Q. H., Erickson, S. J., Haddox, J. D., Abram, S. E. The spread of solutions during stellate ganglion block. Regional Anesthesia. 17 (2), 78-83 (1992).
  29. Mullenheim, J., et al. Left stellate ganglion block has only small effects on left ventricular function in awake dogs before and after induction of heart failure. Anesthesia and Analgesia. 91 (4), 787-792 (2000).
  30. Tsujimoto, G., Sunada, K., Nakamura, T. Effect of cervical sympathetic ganglionectomy on facial nerve reconstruction using polyglycolic acid-collagen tubes. Brain Research. 1669, 79-88 (2017).
  31. Ghai, A., Kaushik, T., Kumar, R., Wadhera, S. Chemical ablation of stellate ganglion for head and neck cancer pain. Acta Anaesthesiologica Belgica. 67 (1), 6-8 (2016).
  32. Forouzanfar, T., van Kleef, M., Weber, W. E. Radiofrequency lesions of the stellate ganglion in chronic pain syndromes: retrospective analysis of clinical efficacy in 86 patients. Clinical Journal of Pain. 16 (2), 164-168 (2000).
  33. Ohno, K., Oshita, S. Transdiscal lumbar sympathetic block: a new technique for a chemical sympathectomy. Anesthesia and Analgesia. 85 (6), 1312-1316 (1997).
  34. Slappendel, R., Thijssen, H. O., Crul, B. J., Merx, J. L. The stellate ganglion in magnetic resonance imaging: a quantification of the anatomic variability. Anesthesiology. 83 (2), 424-426 (1995).
  35. Wang, Y. C., Wei, S. H., Sun, M. H., Lin, C. W. A new mode of percutaneous upper thoracic phenol sympathicolysis: report of 50 cases. Neurosurgery. 49 (3), 628-634 (2001).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

141polyglycolic

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved