JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Galleria mellonella يخدم كنموذج اللافقاريات لداء المبيضات نشرها. هنا، نحن بالتفصيل العدوى البروتوكول وتقديم البيانات الداعمة لفعالية هذا النموذج.

Abstract

أنواع المبيضات هي commensals الفطرية المشتركة للبشر استعمار الجلد والأسطح المخاطية، والجهاز الهضمي. تحت ظروف معينة، يمكن أن كسا المبيضات منافذها الطبيعية أدى المنهكة التهابات الأغشية المخاطية الانتانات الجهازية جيدا كما تهدد الحياة، ومحور رئيسي للتحقيق بسبب معدلات وفيات عالية المرتبطة بها. وتوجد نماذج حيوانية لنشر العدوى لدراسة تطور المرض وتشريح خصائص المبيضات الإمراضية. هذه، يوفر النموذج العدوى واكسوورم Galleria mellonella أداة تجريبية فعالة من حيث التكلفة للتحقيق الفائق من ضراوة الجهازية. كثيرة أخرى البكتيرية وحقيقية النواة العوامل المعدية تم فعالاً درسوا في ميلونيلا G. فهم الإمراضية، مما يجعل من نظام نموذج مقبول على نطاق واسع. حتى الآن، يمكن أن يغير النتائج المظهرية الاختلاف في الأسلوب المتبع لتصيب G. mellonella وتعقيد تفسير النتائج. هنا، فإننا مخطط مزايا وعيوب نموذج واكسوورم الدراسة النظامية المبيضات المرضية واتباع نهج لتحسين إمكانية تكرار نتائج بالتفصيل. تمييز نطاق حركية الوفيات في ميلونيلا G. نتائجنا وتصف المتغيرات التي يمكن أن تعدل هذه الحركية. في نهاية المطاف، يقف هذا الأسلوب كنهج الأخلاقية وسريعة وفعالة من حيث التكلفة لدراسة ضراوة في نموذج لداء المبيضات نشرها.

Introduction

أنواع المبيضات هي كومينسالس البشرية المشتركة التي قادرة على الظهور كمسببات الأمراض الانتهازية في خيم والمرضى ديسبيوتيك. على الرغم من أن العديد من أنواع المبيضات يمكن أن يسبب المرض، المبيضة السبب الأكثر شيوعاً لداء المبيضات نشرها1،2. الأمراض الجهازية النتائج من المبيضة الوصول إلى مجرى الدم عن طريق أما الاختراق المباشر من الحواجز المضيفة سابقا تقييداً أو مقدمة في مواقع العمليات الجراحية وانتهاكات أخرى ل الجسم3. أنواع المبيضات الاستفادة من مجموعة من العمليات المسببة للأمراض أن تسبب الأمراض الجهازية داخل البلد المضيف بما في ذلك فيلامينتيشن وتشكيل بيوفيلم والتهرب من الخلايا المناعية والهروب والحديد الكسح4. في المختبر النهج الموجودة للتحقيق في الآليات المسببة للأمراض الفردية، ولكن النماذج الحيوانية تواصل تقديم أفضل خيار للتحقيق بأكملها المرض نتيجة5،6. بحوث سابقة مفصلة حالات كثيرة واعدة في المختبر التحقيقات من ضراوة الفشل في إعادة إنتاج في فيفو7،8. وهكذا، نماذج حيوانية لا يزال يتعين تقييم فوعة المجراة في. معظم الأمراض نماذج تعتمد على الفئران لتكون بمثابة بديل للإصابات البشرية على الرغم من عجز المبيضة بطبيعة الحال استعمار أنظمة مورين ك commensal9. نماذج اللافقاريات لداء المبيضات نشرها تشمل ديدان أسطوانية ايليجانس كاينورهابديتيس، الثمرة ذبابة melanogaster المورفولوجية، وواكسورم Galleria mellonella، على الرغم من المخاوف حول الخلافات الأساسية في الفسيولوجيا الأساسية، أعاقت درجات حرارة الجسم المضيف، وطرق التعرض على قبول واسع10،11.

وفي الآونة الأخيرة، اتخذ نموذج العدوى واكسورم ميلونيلا G. لنموذج القدرة الإمراضية لمجموعة واسعة من مسببات الأمراض البكتيرية والفطرية12،،من1314. مزايا هذا النموذج تشمل تكلفة منخفضة نسبيا، وزيادة الإنتاجية، وسهولة الاستخدام، وتقليل الشواغل الأخلاقية فيما يتعلق بالحيوانات اللبنة مقارنة بنماذج مورين. للباحثين، وهذا يترجم إلى زيادة القدرة على اختبار متعددة المتغيرات وفواصل الثقة أقوى والتجريب أكثر سرعة وتجاوز بروتوكولات الحيوان. زاي-ميلونيلا كانت بمثابة منصة لتقييم سرعة الفوعة المبيضة بعد اضطراب الجينات المطلوبة لتنظيم بيوفيلم تشكيل، وفيلامينتيشن، والجينات عبر يعزل السريرية11،15 ،16. أدرجت الدراسات الأخيرة تحقيق الفعالية المضادة للفطور استخدام mellonella زاي- تقييم الدوائية لنشاط المخدرات والمقاومة تحت في فيفو الإعدادات، وهي تتحدى خلاف ذلك ومضيعة للوقت 17،18. حتى الآن، قد تعقدت دراسات ضراوة المبيضة في ميلونيلا زاي- يقال أن ارتفاع مستويات التباين داخل التجارب وبروتوكولات غير متناسقة بين المجموعات البحثية التي تنتج تباين فوعة تعمل بين الفئران وواكسورمس11،،من1319،،من2021. هنا، فإننا مخطط بروتوكول ميلونيلا G. لتوحيد المبيضة العدوى، زيادة إمكانية تكرار نتائج التجارب الفوعة، وإثبات الاتساق مع دراسات تم وصفه مسبقاً من ضراوة في الفئران نماذج.

أظهرت الدراسات السابقة أن ينظم المبيضة التزاوج مثل نوع (MTL) موقعا على الكروموسوم 5 هوية الخلية والتزاوج اختصاص مماثلة إلى Saccharomyces cerevisiae وغيرها الفطريات أسكوميسيتي22. أن غالبية عزل المبيضة متخالف في محور MTL ، ترميز واحد من كل من MTL و MTLα الآليلات (MTL/α)، و عقيمة وبالتالي15، 23 , 24-فقدان واحد من الآليلات MTL من خلال فقدان هيتيروزيجوسيتي (لوه) أو طفرة يؤدي إلى متماثل MTL أو سلالات α MTLالتي يمكن أن تخضع لتبديل المظهرية من الدولة 'أبيض' عقيمة التزاوج المختصة في الدولة 'معتمة'25. وقد أبرزت أعمال سابقة أن فقدان هيتيروزيجوسيتي MTL يقلل أيضا من ضراوة في نماذج موريني العدوى الجهازية عبر سلالة مختلفة الخلفيات26. هنا، نحن التفصيل نموذج ميلونيلا G. داء المبيضات نشرها باستخدام مجموعة تجريبية مماثلة وراثيا لتصور مساهمة هيتيروزيجوسيتي MTL بضراوة في ميلونيلا غ. نظهر أن التكوين MTL تتأثر القدرة الإمراضية المبيضة ، حيث كانت MTLα سلالات أقل ضراوة فيما يتعلق MTL/α و MTL الخلايا، مماثلة للنتائج التي توصل إليها ضمن نموذج العدوى موريني26.

Protocol

تعتمد على استخدام تستضيف اللافقاريات جميع الأساليب المذكورة ولا تتطلب موافقة "رعاية الحيوان المؤسسية" واستخدام اللجنة (إياكوك).

1-"اليرقات واكسورم" galleria mellonella

  1. ترتيب اليرقات من تجار الجملة والموردين أن عدم الأخذ بالهرمونات أو المضادات الحيوية، أو العلاجات الأخرى لليرقات، والتي هي قادرة على شحن وتسليم العينات الحية.
    1. تأكد من شراء جميع اليرقات من نفس المورد خلال فترة التجريب. كن حذراً عندما يأمر اليرقات خلال أشهر الصيف كما تنخفض درجات حرارة تزيد عن 30 درجة مئوية بقاء اليرقات.
    2. رصد درجات الحرارة عبر مسار الشحن المتوقعة ووفقا لخطة الشحن والتسليم أو اختر الشحن المعجل للحد من تعرضها للظروف البيئية.
  2. عند وصول اليرقات، فحص كل حاوية لضمان توجد يرقات سليمة وصحية. سوف تكون مغمورة تماما أسفل الفراش، تتحرك، اليرقات صحية وامتلاكها تلون الأصفر/تان خفيفة مع بعض اليرقات التي تحتوي على علامات سوداء أو تغيير الألوان على طول الجسم.
  3. تخزين اليرقات في الحاوية في مساحة التهوية في درجة حرارة الغرفة (25 درجة مئوية). اعتماداً على الشرط الأولى لليرقات، قد استخدموا لمدة تصل إلى أسبوعين.

2-الثقافة الإعداد للإصابة Galleria mellonella

ملاحظة: يجب أن تلبس الزي مختبر السليم في جميع أنحاء هذا الجزء من البروتوكول بما في ذلك القفازات ومعطف مختبر، وسلامة النظارات.

  1. جعل الخميرة ببتون سكر العنب لوحات السائل واجار (YPD). إعداد 1 × الفوسفات مخزنة المالحة (PBS) وحلول الإيثانول 70%.
  2. زراعة سلالات البيض جيم بالحقن بين عشية وضحاها في 3 مل YPD جديدة في أنابيب الثقافة القياسية على طبل الدورية في السرعة المتوسطة و 30 درجة مئوية.
  3. تدور الخلايا إلى الأسفل في 2,500 س ز لمدة 5 دقائق في أجهزة الطرد مركزي منضدية. من أجل إيقاف المادة طافية، مع الحرص على عدم تعكير بيليه الخلية.
    1. ريسوسبيند الخلايا تماما في 5 مل من برنامج تلفزيوني 1 x بيبيتينج أو فورتيكسينج المتكررة. كرر بالطرد المركزي واستثارة الخلايا في برنامج تلفزيوني أكثر مرتين لضمان إزالة كافة وسائط الثقافة.
  4. بعد أن يغسل نهائي، ريسوسبيند الخلايا في 1 مل من برنامج تلفزيوني وتحويلها إلى أنبوب ميكروسينتريفوجي.
  5. إجراء مجموعة من تخفيف المسلسل في برنامج تلفزيوني لتوليد 1: 100، 1:1، 000، وسلسلة تمييع 1: 100.000.
    ملاحظة: قد يكون تخفيف البديلة اللازمة للوصول إلى حساب الخلايا المطلوب.
    1. استخدام هيموسيتوميتير، عد الخلايا من 1: 100 أو إضعاف 1:1,000. في معظم الأحيان، يوفر تمييع 1:1,000 حساب الخلية المناسبة للثقافات المبيضة .
    2. حساب التركيز الكلي للخلايا داخل الثقافة الأولية باستخدام الرياضيات الشبكة من هيموسيتوميتير، تهدف إلى تحقيق بين 30-300 الخلايا حسابها في وسط الشبكة 5 × 5. عداد الآلي خلية يمكن أن تستخدم كبديل لذلك؛ ومع ذلك، استخدام الكثافة البصرية لتحديد عدد خلايا تم تخيف كخلية مورفولوجيا (الحجم، الشكل، إلخ) يمكن أن تؤثر تأثيراً كبيرا على دقتها.
  6. باستخدام عدد خلايا المقاسة، جعل إضعاف جديدة 2.5x107 خلايا/مل في برنامج تلفزيوني x 1 في أنبوب ميكروسينتريفوجي. تمييع هذا سيكون بمثابة الأساس لكل تلقيح ميلونيلا G. مع المبيضة. وسيتطلب كل حقن 10 ميليلتر من هذه العدوى لجرعة 250,000 المبيضة الخلايا معدية.
  7. تأكيد دقة الجرعة المعدية بطلاء وحدة التخزين الصحيحة لتمييع 1: 100.000 100 مستعمرة تشكيل وحدات (كفوس) في أجار YPD لكل ثقافة لاستخدامها في حالات العدوى.
  8. احتضان الخلية عدد لوحات من الخطوة 2.7 لمدة 48 ساعة (ح) عند 30 درجة مئوية وحساب عدد المستعمرات للوحة الواحدة. بين 80 و 120 المستعمرات يشكل نطاق مقبول للدقة في العدوى.

3-الإصابة بيرقات Galleria mellonella مع الثقافات المبيضات

ملاحظة: يجب أن تلبس الزي مختبر السليم في جميع أنحاء هذا الجزء من البروتوكول بما في ذلك القفازات ومعطف مختبر، وسلامة النظارات.

  1. إضافة 1 مل من الإيثانول 100% و 1 مل من 1 x برنامج تلفزيوني لأنابيب ميكروسينتريفوجي منفصلة اثنين. سيتم استخدام الإيثانول وبرنامج تلفزيوني لغسل إبرة حقن بين الإصابات.
  2. انتشار كمية صغيرة من الأسرة واكسورم في فارغة، طبق بتري معقمة 100 × 15 ملم، الذي سيضم اليرقات بعد التطعيم لكل سلالة مستقلة. بالإضافة للفراش يحد التزام قتلى ميلونيلا G. اليرقات على سطح طبق بيتري.
  3. تعقيم ز 26، 10 ميليلتر حقنه بتناول ومحو 10 ميليلتر من الإيثانول 70% تليها ثلاث مرات يغسل الثلاثة مع 10 ميليلتر من 1 x PBS. دوامة تمييع التطعيم المبيضة ويستغرق 10 ميليلتر للثقافة. التأكد من أن هناك لا فقاعات الهواء داخل محقن حقن الهواء يشجع الموت وستؤدي إلى تعقيد التحليل المتلقين للمعلومات.
  4. فتح حاوية عقد اليرقات ميلونيلا G. وعناية اقلب الفراش بأصبع للكشف عن يرقانات. حدد اليرقات وفي صحة جيدة كما حددتها حركة نشطة ولون ضوء الأصفر/تان، ونقص تصبغ أسود على جسم اليرقات. هذه اليرقات يجب من حجم مماثل عبر كامل التجريبية تعيين.
  5. تلتقط يرقات واحدة والاحتفاظ بها بلطف بين الإبهام والإصبع الأوسط مؤشر مماثل لعقد قلم رصاص. لفة اليرقات على ظهرها حتى الساقين هي مواجهة. عقد كامل طول الجسم بين الأصابع والإبهام حيث يكون غير قادر على الضفيرة أو سحب بعيداً عن الحقن اليرقات.
    ملاحظة: إذا رغبت في ذلك، تعقيم موقع الحقن باستخدام مسحه القطن غارقة في الإيثانول 100%.
  6. استدارة المحاقن حيث يواجه شطبه الإبرة وإدراج تلميح إبرة بما في ذلك طول المجسم مشطوف الحواف في الجسم عند التقاطع مع الساق اليسرى الجالسين ببطء. التأكد من أن الإبرة تخترق الجسم، ولا يدفع ببساطة جسم الداخل اليرقات. لا تستخدم القوة في اختراق الجسم كما الإبرة قد بيرس تماما عن طريق اليرقات بسرعة. وسيؤكد رفع بلطف مع الإبرة الاختراق مناسبة. حقن العدوى المبيضات ميليلتر الكامل 10 واستخراج الإبرة.
  7. كرر الخطوة 3، 3 إلى 3.5 لكل اليرقات. للحيلولة دون تسوية، دوامة المبيضات خلية الثقافات للتطعيم بعد كل حقن الثالثة. كعنصر تحكم، حقن مجموعة من ميلونيلا زاي- 10 ميليلتر من 1 X PBS.
  8. 10 البيت المشارك اليرقات حقن من نفس الثقافة المبيضات في كل طبق بيتري 100 × 15 ملم بعد التطعيم. احتضان اليرقات في 37 درجة مئوية لمدة ثمانية أيام، فحص يرقات كل 24 ساعة لرصد الموت.
    1. تقييم معدل الوفيات في البداية التي تصبغ مظلمة، وتشكيل هيئات، أو بقع سوداء، وانعدام الحركة. للتأكد من معدل الوفيات، استخدام الملقط للفة بلطف اليرقات المحتضرة على ظهورهم وكزه خفيفة الجانب السفلي اليرقات مع الملقط. هو سجل عدم الاستجابة كما لوحظ عدم وجود حركة الجسم أو الساق تظهر كالموت وتتم إزالة اليرقات من طبق بيتري.
  9. تسجيل وفيات اليرقات على مدى الزمن. اليرقات التي تبدأ في بوبات إلى العث يمكن تضمينها في التحليل ولكن ينبغي إزالتها إذا أنها تبدأ بتساقط. يمكن للرقابة اليرقات بوباتينج من نقطة نهاية تحليل الاختلافات ضراوة بين اليرقات وعذراء غير واضحة.
  10. تقييم الأهمية الإحصائية باستخدام اختبار الإحصائية رف-كوكس.

النتائج

هنا، علينا أن نظهر أسلوب استنساخه لاستخدام ميلونيلا G. واكسورمس للتحقيق في نموذج نشر داء المبيضات العدوى استخدام المبيضة. التخزين المناسبة، والصيانة، واختيار يرقات للعدوى عنصر حاسم في تأمين إمكانية تكرار نتائج في وفيات G. ميلونيلا (الشكل 1

Discussion

نموذج واكسورم ميلونيلا G. تقف كأداة فعالة لتحليل سريع واستنساخه من ضراوة المبيضة . هذا البروتوكول مفصلاً يعتمد على التسليم متسقة من جرعة المعدية المحددة إلى نفس الموقع عبر دفعة يرقات. الجرعة المعدية تأثيراً عميقا على وفيات ميلونيلا G. بينما استخدام اليرقات بين وصولهم الأولى ...

Disclosures

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

Acknowledgements

الكتاب تود أن تقر مساعدة واشنطن باميلا وأندرسون ليا في الحصول على Galleria mellonella لاستخدامها في هذه الدراسة.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Galleria mellonellaSnackworms.comBuy twice as many worms as expected to use
10 uL, Model 1701 N SYR Cemented needle, 26G, type 2 syringeHamilton80000
Petri dish, 100X15 mm, 500 packFisherFB0875712
Microcentrifuge tube, 1.7 mL, 500 packVWR87003-294
Phosphate Buffered Saline (Biotechnology grade), 500 mLVWR97062-818
Ethanol absolute, ≥99.5% pure, 500 mLMillipore SigmaEM-EX0276-1S
autoclaved ddH2O

References

  1. Kauffman, C. A., et al. Prospective multicenter surveillance study of funguria in hospitalized patients. The National Institute for Allergy and Infectious Diseases (NIAID) Mycoses Study Group. Clinical Infectious Diseases. 30 (1), 14-18 (2000).
  2. Horn, D. L., et al. Epidemiology and outcomes of candidemia in 2019 patients: data from the prospective antifungal therapy alliance registry. Clinical Infectious Diseases. 48 (12), 1695-1703 (2009).
  3. Pfaller, M. A., Diekema, D. J. Epidemiology of invasive candidiasis: a persistent public health problem. Clinical Microbiology Reviews. 20 (1), 133-163 (2007).
  4. Sardi, J. C., Scorzoni, L., Bernardi, T., Fusco-Almeida, A. M., Mendes Giannini, M. J. Candida species: current epidemiology, pathogenicity, biofilm formation, natural antifungal products and new therapeutic options. Journal of Medical Microbiology. 62, 10-24 (2013).
  5. Segal, E., Frenkel, M. Experimental in Vivo Models of Candidiasis. J Fungi (Basel). 4 (1), (2018).
  6. Conti, H. R., Huppler, A. R., Whibley, N., Gaffen, S. L. Animal models for candidiasis. Current Protocols in Immunology. 105, 11-17 (2014).
  7. Heymann, P., et al. The siderophore iron transporter of Candida albicans (Sit1p/Arn1p) mediates uptake of ferrichrome-type siderophores and is required for epithelial invasion. Infection and Immunity. 70 (9), 5246-5255 (2002).
  8. Priest, S. J., Lorenz, M. C. Characterization of Virulence-Related Phenotypes in Candida Species of the CUG Clade. Eukaryotic Cell. 14 (9), 931-940 (2015).
  9. Savage, D. C., Dubos, R. J. Localization of indigenous yeast in the murine stomach. J Bacteriol. 94 (6), 1811-1816 (1967).
  10. Ewbank, J. J., Zugasti, O. C. elegans: model host and tool for antimicrobial drug discovery. Disease Models & Mechanisms. 4 (3), 300-304 (2011).
  11. Amorim-Vaz, S., Delarze, E., Ischer, F., Sanglard, D., Coste, A. T. Examining the virulence of Candida albicans transcription factor mutants using Galleria mellonella and mouse infection models. Frontiers in Microbiology. 6, 367 (2015).
  12. Harding, C. R., Schroeder, G. N., Collins, J. W., Frankel, G. Use of Galleria mellonella as a model organism to study Legionella pneumophila infection. Journal of Visualized Experiments. (81), e50964 (2013).
  13. Jacobsen, I. D. Galleria mellonella as a model host to study virulence of Candida. Virulence. 5 (2), 237-239 (2014).
  14. Tsai, C. J., Loh, J. M., Proft, T. Galleria mellonella infection models for the study of bacterial diseases and for antimicrobial drug testing. Virulence. 7 (3), 214-229 (2016).
  15. Hirakawa, M. P., et al. Genetic and phenotypic intra-species variation in Candida albicans. Genome Research. 25 (3), 413-425 (2015).
  16. Dunn, M. J., Kinney, G. M., Washington, P. M., Berman, J., Anderson, M. Z. Functional diversification accompanies gene family expansion of MED2 homologs in Candida albicans. PLoS Genetics. 14 (4), (2018).
  17. Astvad, K. M. T., Meletiadis, J., Whalley, S., Arendrup, M. C. Fluconazole Pharmacokinetics in Galleria mellonella Larvae and Performance Evaluation of a Bioassay Compared to Liquid Chromatography-Tandem Mass Spectrometry for Hemolymph Specimens. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 61 (10), (2017).
  18. Mesa-Arango, A. C., et al. The non-mammalian host Galleria mellonella can be used to study the virulence of the fungal pathogen Candida tropicalis and the efficacy of antifungal drugs during infection by this pathogenic yeast. Med Mycol. 51 (5), 461-472 (2013).
  19. Brennan, M., Thomas, D. Y., Whiteway, M., Kavanagh, K. Correlation between virulence of Candida albicans mutants in mice and Galleria mellonella larvae. FEMS Immunology and Medical Microbiology. 34 (2), 153-157 (2002).
  20. Fuchs, B. B., O'Brien, E., Khoury, J. B., Mylonakis, E. Methods for using Galleria mellonella as a model host to study fungal pathogenesis. Virulence. 1 (6), 475-482 (2010).
  21. Kavanagh, K., Fallon, J. P. Galleria mellonella larvae as models for studying fungal virulence. Fungal Biology Reviews. 24 (1-2), 79-83 (2010).
  22. Hull, C. M., Johnson, A. D. Identification of a mating type-like locus in the asexual pathogenic yeast Candida albicans. Science. 285 (5431), 1271-1275 (1999).
  23. Legrand, M., et al. Homozygosity at the MTL locus in clinical strains of Candida albicans: karyotypic rearrangements and tetraploid formation. Molecular Microbiology. 52 (5), 1451-1462 (2004).
  24. Lockhart, S. R., et al. In Candida albicans, white-opaque switchers are homozygous for mating type. Genetics. 162 (2), 737-745 (2002).
  25. Miller, M. G., Johnson, A. D. White-opaque switching in Candida albicans is controlled by mating-type locus homeodomain proteins and allows efficient mating. Cell. 110 (3), 293-302 (2002).
  26. Wu, W., Lockhart, S. R., Pujol, C., Srikantha, T., Soll, D. R. Heterozygosity of genes on the sex chromosome regulates Candida albicans virulence. Molecular Microbiology. 64 (6), 1587-1604 (2007).
  27. Herrero, A. B., et al. KRE5 gene null mutant strains of Candida albicans are avirulent and have altered cell wall composition and hypha formation properties. Eukaryotic Cell. 3 (6), 1423-1432 (2004).
  28. Hall, R. A., et al. The Mnn2 mannosyltransferase family modulates mannoprotein fibril length, immune recognition and virulence of Candida albicans. PLoS Pathogens. 9 (4), 1003276 (2013).
  29. Wojda, I. Immunity of the greater wax moth Galleria mellonella. Journal of Insect Science. 24 (3), 342-357 (2017).
  30. Bergin, D., Reeves, E. P., Renwick, J., Wientjes, F. B., Kavanagh, K. Superoxide production in Galleria mellonella hemocytes: identification of proteins homologous to the NADPH oxidase complex of human neutrophils. Infection and Immunity. 73 (7), 4161-4170 (2005).
  31. Lange, A., et al. Genome Sequence of Galleria mellonella (Greater Wax Moth). Genome Announcements. 6 (2), (2018).
  32. Krappmann, S. Lightning up the worm: How to probe fungal virulence in an alternative mini-host by bioluminescence. Virulence. 6 (8), 727-729 (2015).
  33. Chowdhary, A., Voss, A., Meis, J. F. Multidrug-resistant Candida auris: 'new kid on the block' in hospital-associated infections. Journal of Hospital Infection. 94 (3), 209-212 (2016).
  34. Delarze, E., Ischer, F., Sanglard, D., Coste, A. T. Adaptation of a Gaussia princeps Luciferase reporter system in Candida albicans for in vivo detection in the Galleria mellonella infection model. Virulence. 6 (7), 684-693 (2015).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

141 Galleria mellonella

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved