إعداد استخراج البروتين و إعادة التأهيل المناعي المشترك من الإيغانات Caenorhabditis

Summary

يصف هذا الأسلوب بروتوكولا لإعداد استخراج البروتين عالي الإنتاجية من عينات Elegans Caenorhabditis وما تلاها من نقص المناعة.

Abstract

وكثيرا ما تستخدم أساليب الإفراط في المناعة لدراسة التفاعلات بين البروتين والبروتين. تأكيد التفاعلات البروتين البروتين المفترض أو تحديد جديدة يمكن أن توفر معلومات لا تقدر بثمن حول وظيفة البروتين من الفائدة. تتطلب بعض الطرق التقليدية لاستخراج التحضير في كثير من الأحيان تقنيات كثيفة العمالة وتستغرق وقتا طويلا. هنا، يوصف بروتوكول إعداد استخراج معدلة باستخدام متجانس مطحنة حبة والخرز المعدني كبديل سريع لأساليب إعداد البروتين التقليدية. تتوافق طريقة إعداد المستخلص هذه مع دراسات التأهب المشترك في المصب. على سبيل المثال، تم استخدام هذه الطريقة بنجاح في المشاركة في المناعة C. elegans ميكرورنا أرغونات ALG-1 واثنين من المتفاعلين المعروفين ALG-1: AIN-1، و HRPK-1. يتضمن هذا البروتوكول وصفا لجمع عينات الحيوانات، وإعداد الاستخراج، وتوضيح الاستخراج، و وبروتين مناعة. يمكن تكييف البروتوكول الموصوف لاختبار التفاعلات بين أي اثنين أو أكثر من البروتينات الذاتية المنشأ أو الموسومة داخليا أو المفروشة بشكل مفرط C. elegans في مجموعة متنوعة من الخلفيات الوراثية.

Introduction

يمكن أن يكون تحديد التفاعلات الجزيئية الكلية لبروتين مهم أمرا أساسيا لمعرفة المزيد عن وظيفته. يمكن استخدام تجارب التهيئة المناعية والمناعة المشتركة لتحديد التفاعل الكامل للبروتين من خلال النهج البروتيومية واسعة النطاق¹ أو لاختبار قدرة البروتين على وجه التحديد على الانسداد مع تفاعل مفترض. في C. elegans، تم استخدام كلتا الطريقتين بنجاح لمعرفة المزيد عن نشاط مجموعة متنوعة من البروتينات ، بما في ذلك تلك التي تعمل بشكل وثيق مع microRNAs لتنظيم التعبير الجيني^2و3و4. تتمتع تجارب نقص المناعة المشترك بميزة اختبار التفاعلات بين البروتين والبروتين في بيئتها الخلوية الأصلية ، ولكن إعداد الاستخراج يمكن أن يكون صعبا ويستغرق وقتا طويلا. من الضروري إجراء تحليل فعال للعينة ، ولكن يجب توخي الحذر لتقليل اضطراب التفاعلات بين البروتين والبروتين. أساليب مثل douncing⁵، سونيكيشن⁶، Balch^{التجانس 7}، وzirconia الخرز التجانس^8،9 وقد استخدمت لإعداد بنجاح مقتطفات البروتين الكلي C. elegans. هذه الأساليب، باستثناء تجانس حبة الزركونيا، لها قيود من حيث عدد العينات التي يمكن معالجتها في وقت واحد. المقدمة هي طريقة بديلة التي يمكن توسيعها بسهولة للسماح لارتفاع الإنتاجية، وإعداد استخراج البروتين السريع من عينات C. elegans تليها التهيئة المناعية المشتركة. على وجه التحديد، يمكن أن تعد هذه الطريقة ما يصل إلى 24 عينة في وقت واحد، مما يقلل إلى حد كبير من الوقت اللازم لاستخراج التحضير. وعلى النقيض من ذلك، على سبيل المثال، يسمح douncing عادة بإعداد عينة واحدة فقط في كل مرة. يمكن استخدام طريقة استخراج هذه لإعداد مقتطفات من أي مرحلة تنموية من C. elegans.

وصف هو إجراء خطوة بخطوة لجمع عينات الحيوانات، وإعداد استخراج، والمناعة، وعرض البيانات النشاف الغربية لتأكيد سحب البروتين الناجح والكشف عن البروتين المشترك من المناعية ذات الاهتمام. ولإثبات فعالية البروتوكول، أجريت تجربتان مشتركتان في مجال المناعة بين 1) ميكرورنا أرغونات ALG-1 و AIN-1، وهو متجانس GW182؛ و20000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000000 و 2) ALG-1 و HRPK-1، وهو التفاعل ALG-1 التي تم تحديدها حديثا². ALG-1 و AIN-1 هي البروتينات الأساسية التي تشكل مجمع إسكات الناجمة عن الحمض النووي الريبي الدقيق (miRISC) والتفاعل بين هذين البروتينين^{راسخة 10,11}. كان بروتوكول إعداد المستخلصات فعالا في تجربة التهيئة المشتركة للمناعة ALG-1-AIN-1. كما أكد هذا البروتوكول بنجاح التفاعل بين ALG-1 والمتفاعل الذي تم تحديده حديثا، HRPK-1^2.

باختصار، تصف المخطوطة بروتوكول إعداد استخراج C. elegans الذي يمكن توسيع نطاقه لمعالجة 24 عينة في وقت واحد إلى جانب بروتوكول التأهب المناعي المشترك الذي يمكن استخدامه لتحديد التفاعلات الجديدة أو المؤكدة المفترضة بين البروتينات. بروتوكول إعداد استخراج متوافق مع عدد من التجارب المصب، بما في ذلك البروتين المناعي² وmicroRNA الانسحابات¹². وعلاوة على ذلك، يمكن تكييف بروتوكول التهيئة المناعية لاختبار التفاعلات بين أي اثنين أو أكثر من البروتينات الذاتية المنشأ، الموسومة داخليا، أو المفروشة أكثر من قيمتها C. elegans في مجموعة متنوعة من الخلفيات الوراثية.

Protocol

1. جمع عينة دودة

1. مرحلة مختلطة البذور أو^{متزامنة 13} الديدان على لوحات صلبة NGM في درجة الحرارة المطلوبة والسماح للديدان أن تنمو حتى المرحلة المرجوة. للحصول على نمو وصيانة C. elegans الأساسي، يرجى الاطلاع على Stiernagle وآخرون وPorta-de-la-Rivaوآخرون.
2. جمع الديدان في أنبوب الطرد المركزي المخروطي 15 مل عن طريق غسل لوحات دودة مع العازلة M9.
3. بيليه الديدان عن طريق الطرد المركزي في 400 × ز في درجة حرارة الغرفة (RT) لمدة 2 دقيقة والتخلص من supernatant.
   ملاحظة: حجم بيليه الدودة لإعداد استخراج ما بين 100 ميكرولتر و 500 ميكرولتر. ويوصى بيليه 300 ميكرولتر من الديدان معبأة لتجارب المناعة المصب وعادة ما تسفر عن ~ 4.5 ملغ من البروتين الكلي، في حين أن بيليه 500 ميكرولتر سوف تسفر عن ~ 7.5 ملغ من البروتين الكلي.
4. قم بإجراء عمليات غسل إضافية من 3 إلى 5 باستخدام المخزن المؤقت M9 (انظر الجدول 1)أو حتى لا يعود الناسخة الفائقة غائمة.
5. إجراء غسل نهائي واحد مع DDH₂O.
6. نقل بيليه دودة فضفاضة إلى أنبوب الطرد المركزي 1.5 مل وتدور إلى أسفل في 400 × ز في RT لمدة 2 دقيقة. تجاهل ما تبقى من الناطقة للحصول على بيليه دودة معبأة والمضي قدما لاستخراج إعداد.
   ملاحظة: يمكن إيقاف البروتوكول مؤقتا هنا. الكريات دودة قد تكون فلاش المجمدة في النيتروجين السائل على الفور وتخزينها في -80 درجة مئوية أو في النيتروجين السائل. يرجى ملاحظة أنه لا يمكن إذابة الكريات الدودة إلا مرة واحدة ولا يمكن إعادة تجميدها.

2. استخراج إعداد بيليه دودة

ملاحظة: يجب إجراء إعداد المستخلص على الجليد أو عند درجة حرارة 4 درجات مئوية.

1. إذا تجمدت، إذابة دودة بيليه على الجليد.
   ملاحظة: إذا لم يتم الحصول على حجم الكريات دودة معبأة المطلوب من 300 ميكرولتر أثناء جمع العينة، يمكن الجمع بين الكريات أصغر متعددة حتى ما يكفي من المواد موجودة لمزيد من الاستخراج.
2. إضافة حجم متساو من الجليد الباردة 2x تحلل العازلة (60 mM HEPES، درجة الحموضة = 7.4، 100 مللي متر كلوريد البوتاسيوم، 0.1٪ تريتون X، 4 M M كلوريد المغنيسيوم، 10٪ الجلسرين، 2 MDTT مع مثبط RNase، مثبط البروتيز، ومثبطات فوسفاتاز؛ انظر الجدول 1)ودوامة أو ماصة صعودا وهبوطا لخلط. تدور أنبوب (ق) إلى أسفل لجمع الخليط في الجزء السفلي من الأنبوب.
3. نقل الخليط إلى أنبوب 1.5 مل RNase خالية تحتوي على الخرز المعدني (انظر جدول المواد)ووضع العينة في المتجانس مطحنة حبة (انظر جدول المواد) في 4 درجة مئوية. تأكد من أن يتم تشديد قبعات أنبوب والعينات متوازنة داخل المتجانس.
4. تجانس العينة بأعلى سرعة (ضبط 12) لمدة 4 دقائق.
5. قم بإزالة العينة من الخرز ووضعها في أنبوب طرد صغير جديد سعة 1.5 مل. بدلا من ذلك، يمكن استخدام مغناطيس مزود بالمتجانس لإزالة الخرز من العينة.
6. تدور أسفل استخراج في 19،000 × ز لمدة 20 دقيقة في 4 درجة مئوية لتوضيح استخراج البروتين.
7. نقل supernatant في أنبوب جديد 1.5 مل على الجليد، مع تجنب ترحيل الأبيض، عجل غائم أن يشكل على رأس العينة. العملاق هو الآن المقتطف الموضح.
   ملاحظة: حفظ 10 ميكرولتر من استخراج أوضح لتحديد تركيز البروتين الكلي.
8. استخدام استخراج فورا للتجارب التالية أو فلاش تجميد استخراج في النيتروجين السائل وتخزينها في -80 درجة مئوية.
   ملاحظة: قد يكون البروتوكول مؤقتا هنا. يمكن تخزين المستخلصات في درجة حرارة منخفضة للغاية (-80 درجة مئوية الفريزر أو النيتروجين السائل لمدة 6 أشهر تقريبا). يمكن إذابة المستخلصات المجمدة مرة واحدة ولا يمكن إعادة تجميدها.
9. تحديد تركيز البروتين الكلي للاستخراج باستخدام مجموعة اختبار تركيز البروتين المتوافقة مع المنظفات (انظر جدول المواد)وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.

3. التكفير المناعي

ملاحظة: يجب تنفيذ جميع خطوات التهيئة المناعية لإعداد المستخلص على الجليد أو عند درجة حرارة 4 درجات مئوية. فمن المستحسن استخدام 2 ملغ من البروتين الكلي لكل مناعة. ومع ذلك، تم إجراء رئاسات مناعية ناجحة مع 0.8-1 ملغ من البروتين الكلي. استخدم دائما مستخلصات البروتين الطازجة أو المذابة حديثا. ويرد البروتوكول التالي لأداء التوفير المناعي من 2 ملغ من البروتين الكلي، أو تجربة واحدة مناعة. يمكن زيادة كمية الخرز والأجسام المضادة أو تقليلها وفقا لذلك لعينات متعددة أو إذا تم استخدام كمية مختلفة من مستخلص البروتين.

1. ضع أو إذابة مستخلص البروتين على الجليد. يمكن تخفيف العينة إلى 10 ملغم /مل أو 5 ملغم/مل مع عازل تحلل 1x بارد الجليد (انظر الجدول 1).
2. Resuspend الخرز المغناطيسي عن طريق عكس ونقل 150 ميكرولتر من تعليق الخرز 50٪ في أنبوب 1.5 مل. ممغنطة الخرز على الجليد ضد موقف المغناطيسي لمدة 1 دقيقة أو حتى الحل واضح. تجاهل الناتنات الفائق.
3. قم بإزالة الأنبوب من الحامل المغناطيسي واغسل الخرز في مخزن تحلل 1x باستخدام مجلدين (أي 300 ميكرولتر) من ملاط الخرز. كرر غسل 2x لما مجموعه ثلاثة يغسل.
4. Resuspend الخرز في 150 ميكرولتر من الجليد الباردة تحلل العازلة.
5. نقل 75 ميكرولتر من الطين حبة إلى 2 ملغ من استخراج البروتين واحتضان في 4 درجة مئوية لمدة 1 ساعة مع التحريض لطيف. حفظ تعليق حبة المتبقية على الجليد لاستخدامها في وقت لاحق.
   ملاحظة: يتم تنفيذ هذه الخطوة لتقليل ربط البروتين غير محددة إلى حبات أثناء خطوة المناعة.
6. ضع الأنبوب مع عينة على الحامل المغناطيسي على الجليد لمدة دقيقة واحدة أو حتى يتم ممغنط الخرز بالكامل وتكون العينة واضحة. نقل supernatant إلى أنبوب 1.5 مل جديدة; لا تزعج الخرز. هذا هو ليسات البروتين المخلى مسبقا. حفظ 10٪ من العينة لتحليل لطخة الغربية.
7. إضافة 20 ميكروغرام من تقارب الأجسام المضادة المنقى إلى lysate precleared واحتضان في 4 درجة مئوية لمدة 1 ساعة مع التحريض لطيف.
   ملاحظة: كمية الأجسام المضادة المستخدمة في التكفير المناعي محددة للأجسام المضادة والبروتين ويجب تحديدها تجريبيا لضمان فعالية المناعة للبروتين المستهدف.
8. أضف المتبقية 75 ميكرولتر من تعليق الخرز مغسولة مسبقا (الخطوة 3.5) إلى خليط الأجسام المضادة / ليسات واحتضان لمدة 1 ساعة في 4 درجة مئوية مع التحريض لطيف.
9. ضع الأنبوب في الحامل المغناطيسي على الجليد لمدة دقيقة واحدة أو حتى يتم ممغنط الخرز بالكامل وتكون العينة واضحة. حفظ supernatant لتحليل لطخة الغربية (اختياري).
10. غسل الخرز التي تحتوي على 3x 3x المناعي في 450 ميكرولتر من عازلة غسل (30 mM HEPES، درجة الحموضة = 7.4، 100 mM كلوريد البوتاسيوم، 0.1٪ تريتون X، 2 MM كلوريد المغنيسيوم، 10٪ الجلسرين، 1 mM DTT؛ انظر الجدول 1) على الجليد.
    ملاحظة: يمكن إجراء عمليات غسيل إضافية إذا كانت ظروف الغسيل أكثر صرامة مفضلة.
11. Resuspend بيليه حبة في 20 ميكرولتر من 2x SDS / BME البروتين هلام تحميل العازلة (انظر جدول المواد)وdnature عن طريق الغليان في 95 درجة مئوية لمدة 5 دقائق قبل تحميل على هلام SDS-PAGE. بدلا من ذلك، يمكن تخزين عينات مشوهة في -20 درجة مئوية لعدة أشهر.
    ملاحظة: يمكن حفظ جزء من مناعة الخرز لعزل الحمض النووي الريبي المصب، إذا رغبت في ذلك.

4. غرب كشف بقعة من عينات الملكية الفكرية

1. تحميل عينات IP على هلام SDS-PAGE (انظر جدول المواد). تجنب نقل الخرز عن طريق وضع أنابيب IP على الحامل المغناطيسي لمدة دقيقة واحدة قبل طموح العينة.
2. تنفيذ النشاف الغربي^15،16 والأجسام المضادة^{تلطيخ 16} مع التعديلات التالية : تمييع الأجسام المضادة ALG - 1¹⁷ 1:500 في 5 ٪ الحليب الجاف غير الدهني (NFDM) ؛ تمييع الأجسام المضادة HRPK-1² 1:1,000 في 5٪ NFDM؛ وتمييع الأجسام المضادة AIN-1¹⁸ 1:10,000 في 5٪ NFDM. واستخدمت الأجسام المضادة الثانوية (انظر جدول المواد)وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
3. الكشف عن النطاقات مع chemiluminescence القائم على HRP (انظر جدول المواد).

النتائج

تم استخدام هذا البروتوكول (مخطط في الشكل 1)بنجاح للحصول على مقتطفات البروتين الكلي C. elegans (الشكل 2) لprecipitation المصب من عدة^{بروتينات 2} (الشكل 3 والشكل 4). وكان بروتوكول التجانس مطحنة حبة عرضت قابلة للمقارنة في استخراج البروتين الكلي لأساليب أساسها dounce (الشكل 2) واستخراجها بكفاءة النووية (COL-19::GFP(NLS) (الشكل 2) والبروتينات السيتوبلازمية (الشكل 3 والشكل 4). تم استخراج عينات متعددة من مختلف الأحجام في وقت واحد(الشكل 2). بروتينات الأرغونات تتفاعل مع أعضاء عائلة البروتين GW182، وتشكيل miRISCs التي تربط إلى RNAs رسول الهدف وقمع تعبيرهم¹⁰. ويبين الشكل 3 نجاح التوفير المناعي المشترك لمكونات الميكريسك الأساسية ALG-1 و AIN-1، بما يتفق مع التقارير السابقة^11و17. وفي الآونة الأخيرة، بذلت جهود لتحديد تفاعلات بروتينية إضافية من أرغونات^{ALG-1 3} من أجل معرفة المزيد عن كيفية تنظيم التكوين الحيوي والنشاط من قبل العوامل المساعدة. تم تحديد البروتين الرابط للجيش الملكي النيبالي HRPK-1 في ال 1 ALG-1 مناعة³. وقد تأكد هذا التفاعل مؤخرا في تجربة تبادل HRPK-1^{المناعية 2}. نجحت بروتوكولات استخراج والمناعة المعروضة في استعادة ALG-1 في البروتيبات المناعية المشتركة HRPK-1(الشكل 4). وبالإضافة إلى ذلك، تم اختبار التفاعل ALG-1-AIN-1 في مجموعة متنوعة من الخلفيات الوراثية وHRPK-1 تبين أن تكون غير ضرورية ل ALG-1/AIN-1 miRISC^{التجمع 2} (الشكل 3). وتقدم أرقام تكميلية لإظهار الغشاء الكامل بحث (الشكل التكميلي 1).

الشكل 1: تخطيط سير العمل ل C. elegans استخراج إعداد والمناعة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 2: مقارنة لطخة غربية ل GFP المترجمة النووية، COL-19::GFP(NLS)، ومستويات في عينات منسدلة ومتجانسة من 250 ميكرولتر و 100 ميكرولتر من الكريات دودة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 3: GW182 homolog AIN-1 الكوليسترول المناعي المشترك مع ALG-1. النشاف الغربي لبروتينات ALG-1 و AIN-1 في الكوليسترول المناعي ALG-1. ولم تتأثر نسبة المناعة المشتركة ALG-1/AIN-1 بغياب الهربك-1. الإدخال = 10٪ من الملكية الفكرية. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 4: الكوليسترول المناعي المشترك من ALG-1 مع HRPK-1. يظهر النشاف الغربي ل HRPK-1 و ALG-1 في الكوليسترول المناعي HRPK-1. الإدخال = 10٪ من الملكية الفكرية. * يشير إلى سلسلة الأجسام المضادة الثقيلة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

المخزن المؤقت M9 (1 لتر)
KH2PO4	3 جم
Na 2HPO4	6 جم
ناكل	5 جم
1 م مغسو4	1 مل
ddH2O	حتى 1 لتر
2x تحلل العازلة (5 مل)
HEPES (رقم الحموضة 7.4)	200 ميكرولتر
2 م كلكل	250 ميكرولتر
10٪ تريتونإكس	100 ميكرولتر
1 م م م2	20 ميكرولتر
100٪ الجلسرين	1 مل
ddH2O	حتى 5 مل
إضافة جديدة:
1 متر دي.ت.ت	20 ميكرولتر
مثبط بروتياز خالية من EDTA	1 قرص
كوكتيل مثبط فوسفاتاز 2	100 ميكرولتر
كوكتيل مثبط فوسفاتاز 3	100 ميكرولتر
1x تحلل المخزن المؤقت
تمييع 2x تحلل العازلة مع حجم متساو من ddH20.
1x غسل العازلة 10 مل)
HEPES (رقم الحموضة 7.4)	300 ميكرولتر
2 م كلكل	500 ميكرولتر
10٪ تريتونإكس	100 ميكرولتر
1 م م م2	20 ميكرولتر
100٪ الجلسرين	1 مل
ddH2O	حتى 10 مل
1 متر دي.ت.ت	20 ميكرولتر (أضف طازجا)

الجدول 1: وصفات

الشكل التكميلي 1- الزيادة في النسبة إلى 100 في المائة من ال تظهر الأغشية الغربية الكاملة المستخدمة لتوليد الأرقام 2-4. (أ) فحص غشاء الشكل 2. لاحظ أنه تم قطع الغشاء للسماح بالتحقيق المتزامن ل GFP و Tubulin ، مما يقلل من حجم البقعة الإجمالي. (ب) فحص غشاء الشكل 3. (ج) فحص الغشاء لل الشكل 3. * يدل على الأجسام المضادة سلسلة ثقيلة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Discussion

C. elegans هو نموذج ممتاز لدراسة الأسئلة الأساسية في الخلية والجزيئية والبيولوجيا التنموية¹⁹. بالإضافة إلى قوتها كنظام نموذج وراثي ، فإن C. elegans قابلة للنهج الكيميائية الحيوية ، بما في ذلك ، على سبيل المثال لا الحصر ، التكفير المناعي للبروتين وفرط المناعة. إحدى العقبات المحتملة عند إجراء تجارب السهب المناعي هي نقص الأجسام المضادة الخاصة بالبروتينات ذات الاهتمام. إذا لم يتوفر أي جسم مضاد، يمكن توليد أجسام مضادة مخصصة متعددة النسيلة أو أحادية النسيلة. ومع ذلك ، سمحت الابتكارات الأخيرة في تكنولوجيا تحرير الجينوم للباحثين بإدخال الطفرات بسرعة أو وضع علامة على جينات C. elegans الذاتية^20،21، مما يسهل الدراسات التي تكشف عن التفاعلات الوراثية والوظيفية والجسدية بين الجينات والبروتينات المشفرة. وعلى وجه التحديد، فإن وضع علامات بوساطة CRISPR/Cas9 لجينات سي إليغانس في الموضع الداخلي قد قلل من اعتماد تجارب التكسير المناعي على توافر الأجسام المضادة، مما جعل تجارب نقص المناعة المشتركة أكثر جدوى بكثير. C. يمكن وضع علامات على جينات elegans بمجموعة متنوعة من العلامات التي تتراوح بين علامات الفلورسنت مثل GFP أو mCherry إلى العلامات الصغيرة مثل FLAG و HA. الأجسام المضادة التي تعترف بهذه العلامات متاحة بسهولة تجاريا، مما يسهل دراسات التفاعلات البروتين البروتين عن طريق نهج السهونة المناعية.

ويمكن تنفيذ البروتوكول المقدم، المبين في الشكل 1،لعدد صغير من العينات أو توسيع نطاقه، مما يسمح بما يصل إلى 24 إعدادا للعينة في كل مرة. في حين أن التوصيفات الأولية للتفاعلات البروتين البروتين عن طريق المناعة وعادة ما تتم في خلفيات نوع البرية في ظل ظروف النمو العادية، ودراسات المتابعة تتطلب في كثير من الأحيان اختبار التفاعلات البروتين البروتين في مجموعة متنوعة من الخلفيات الوراثية أو في ظل ظروف نمو مختلفة. القدرة على إعداد مقتطفات متعددة في وقت واحد يوفر الوقت، والأهم من ذلك، يضمن استخراج اتساق إعداد بين عينات مختلفة. هناك حاجة دائما إلى التحكم السلبي ، مع كون التحكم المثالي طفرة فارغة في الترميز الجيني للبروتين المناعي المثير للاهتمام (انظر الشكل 3 والشكل 4 على سبيل المثال).

يسمح هذا البروتوكول استخراج لإعداد استخراج البروتين السريع من عينات C. elegans وقابلة للمقارنة مع التجانس القائم على حبة الزركونيوم⁸. يمكن توسيع نطاق تجانس الخرز بشكل عام إلى عدة تحضيرات عينة متزامنة باستخدام مجموعة متنوعة من متجانسات مطحنة الخرز أو معدات مماثلة. بعض التجانس مطحنة حبة أكثر اقتصادا قد يقلل من عدد العينات التي يمكن معالجتها في وقت واحد، ومع ذلك. بدلا من ذلك، بروتوكول استخراج المقدمة متوافق مع إعداد استخراج dounce القائم، والذي يمثل بديلا اقتصاديا. في حين لم يتم اختبار متجانسات مطحنة حبة مختلفة، ومعظمها من المرجح أن تكون متوافقة مع هذا البروتوكول استخراج البروتين، طالما يتم تحقيق تعطيل كامل للعينات C. elegans.

كما هو معروض، هذا البروتوكول إعداد استخراج متوافق مع تجارب المصب متعددة، بما في ذلك البروتين المناعي² وmicroRNA سحب أسفل¹² ويسمح لجمع المصب من كل من البروتين ومكونات الحمض النووي الريبي. كما أنه يستخرج بكفاءة كل من البروتينات النووية والسيتولازمية (الشكل 2، الشكل 3، والشكل 4). وبالمثل، يسمح بروتوكول التوفير المناعي المقدم بعزل الحمض النووي الريبي عن البروتين المرتبط بالمناعة. في حين تم تطوير بروتوكول التنامي في الأصل لتحديد تفاعل البروتين ALG-1 ، يمكن تكييف الطريقة لاختبار التفاعلات بين أي بروتينات ذات أهمية. في الواقع، عملت ظروف التهيئة المناعية المستخدمة بشكل جيد بنفس القدر ل ALG-1(الشكل 3)و HRPK-1(الشكل 4). هذا البروتوكول هو نقطة انطلاق ممتازة لتثبيط المناعة من البروتينات الحمض النووي الريبي ملزمة. ومع ذلك، تجدر الإشارة إلى أنه قد تكون هناك حاجة إلى بعض التغييرات في تكوين العازلة لبروتينات أخرى ذات أهمية. وقد تعتمد التغيرات على الخصائص الفيزيائية والكيميائية الحيوية للبروتين الذي يهم ويجب تنفيذها على أساس كل حالة على حدة.

بمجرد أن يتم إعادة سرعة البروتين المستهدف (هنا، ALG-1 أو HRPK-1) مناعة، يمكن استخدام النشاف الغربي لاختبار البروبروسيبات المناعية المشتركة لمتفاعلات بروتين محددة.

وبدلا من ذلك، يمكن أن تخضع البروسيبيتات المناعية المكروبة لتحليل الطيف الكتلي لتحديد جميع البروتينات المتفاعلة المفترضة. ويمكن بعد ذلك فحص التفاعلات المؤكدة بين التخصصات المناعية المشتركة في مجموعة متنوعة من الخلفيات أو الظروف الوراثية لتحديد التنظيم المحتمل للتفاعل المحدد. على سبيل المثال، لتحديد ما إذا كان HRPK-1 يلعب دورا في تجميع ALG-1/AIN-1 miRISC، تم تقييم ALG-1-AIN-1 coprecipitation في خلفية من النوع البري وفي غياب HRPK-1 (الشكل 3). تم العثور على hrpk-1 أن يكون الاستغناء عن ALG-1/AIN-1 التفاعل² (الشكل 3). وبالإضافة إلى ذلك، يمكن استخدام تكنولوجيا تحرير الجينوم CRISPR/Cas9 لتوليد طفرات حذف نقطة واحدة أو المجال في البروتينات ذات الاهتمام. إعادة اختبار قدرة المسوخ المولدة على الانسداد مع تفاعل البروتين يمكن أن تكشف عن المجالات أو المخلفات التي تتوسط التفاعل المادي. يمكن أن تسفر هذه الدراسات المستقبلية عن معلومات لا تقدر بثمن حول آلية وظيفة البروتين وتنظيمه. ويمكن لهذه النهج، إلى جانب قوة علم الوراثة C. elegans، أن توفر رؤى هامة في العمليات الجزيئية الأساسية التي تحكم نمو الحيوان والوظيفة الخلوية.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
15 mL tube	VWR	89039-664	STEP 1.2
2x Laemmli Sample Buffer	BioRed	1610737	STEP 3.11
4–20% Mini-PROTEAN TGX Precast Protein Gels	BioRed	4561096	STEP 4.1
anti-AIN-1 monoclonal antibody	custom generated	n/a	STEP 4.2, see ref. Zhang et al. 2007
anti-ALG-1 monoclonal antibody	custom generated by PRF&L	n/a	STEP 4.2
anti-HRPK-1 monoclonal antibody	custom generated by PRF&L	n/a	STEP 4.2
Bullet Blender Storm Homogenizer	MidSci	BBY24M	STEP 2.3
DL-Dithiothreitol (DTT)	Sigma	D9779-5G	Table 1
Dynabeads Protein A for Immunoprecipitation	Thermo Fisher	10002D	STEP 3.2
DynaMag-2 Magnet	Thermo Fisher	12321D	STEP 3.2
EDTA-free protease inhibitors	Roche	11836170001	Table 1
GFP antibody (FL)	Santa Cruz Biotechnology	sc-8334	Figure 2
Glycerol	Thermo Fisher	G33-500	Table 1
Goat Anti-Rabbit Secondary Antibody, HRP	BioRed	1662408	STEP 4.2
Goat anti-Rat IgG (H+L) Secondary Antibody, HRP	Thermo Fisher	31470	STEP 4.2
HEPES	Sigma	H4034-500G	Table 1
LICOR WesternSure PREMIUM Chemiluminescent Substrate, 100 mL Kit	LI-COR	926-95000	STEP 4.3
Magnesium chloride hexahydrate ACS	VWR	VWRV0288-500G	Table 1
Magnesium Sulfate Anhydrous	Thermo Fisher	M65-500	Table 1
Microcentrifuge Tubes, 1.5 mL	VWR	20170-333	STEP 1.6
N2 wild type	CGC
Navy RINO RNA Lysis Kit 50 pack (1.5 mL)	MidSci	NAVYR1-RNA	STEP 2.3
Phosphatase inhibitor cocktail 2	Sigma	P5726-1ML	Table 1
Phosphatase inhibitor cocktail 3	Sigma	P0044-1ML	Table 1
Potassium Chloride	Thermo Fisher	P217-500	Table 1
Potassium phosphate monobasic	Thermo Fisher	P285-3	Table 1
RC DC Protein Assay Kit I	BioRed	5000121	STEP 2.9
RNaseOUT Recombinant Ribonuclease Inhibitor	Thermo Fisher	10777019	Table 1
Sodium Chloride	Thermo Fisher	S271-500	Table 1
Sodium Phosphate Dibasic Anhydrous	Thermo Fisher	S374-500	Table 1
TritionX-100	Sigma	X100-500ML	Table 1
UY38 hrpk-1(zen17)	available upon request
VT1367 col-19::gfp(maIS105)	available upon request
VT3841 alg-1(tm492)	available upon request