احتشاء عضلة القلب عن طريق نشر لفائف الانصمام عن طريق الجلد في نموذج الخنازير

Summary

تعد النماذج الحيوانية لاحتشاء عضلة القلب (MI) التي تحاكي العملية الطبيعية للمرض لدى البشر حاسمة لفهم الآليات الفسيولوجية المرضية واختبار سلامة وفعالية العلاجات الناشئة الجديدة. هنا ، نصف نموذج الخنازير MI الذي تم إنشاؤه عن طريق نشر ملف الانصمام عن طريق الجلد.

Abstract

احتشاء عضلة القلب (MI) هو السبب الرئيسي للوفيات في جميع أنحاء العالم. على الرغم من استخدام العلاجات القائمة على الأدلة ، بما في ذلك إعادة التوعي التاجي وأدوية القلب والأوعية الدموية ، فإن نسبة كبيرة من المرضى يطورون إعادة تشكيل البطين الأيسر المرضي وفشل القلب التدريجي بعد MI. لذلك ، تم تطوير خيارات علاجية جديدة ، مثل العلاجات الخلوية والجينية ، من بين أمور أخرى ، لإصلاح وتجديد عضلة القلب المصابة. في هذا السياق ، تعد النماذج الحيوانية ل MI حاسمة في استكشاف سلامة وفعالية هذه العلاجات التجريبية قبل الترجمة السريرية. تفضل النماذج الحيوانية الكبيرة مثل الخنازير على النماذج الأصغر حجما بسبب التشابه الكبير بين الخنازير وقلوب البشر من حيث تشريح الشريان التاجي وحركية القلب وعملية الشفاء بعد MI. هنا ، كنا نهدف إلى وصف نموذج MI في الخنزير عن طريق نشر ملف دائم. باختصار ، فإنه يتألف من قنية الشريان التاجي الانتقائية عن طريق الجلد من خلال الوصول إلى الفخذ الرجعي. بعد تصوير الأوعية التاجية ، يتم نشر الملف في الفرع المستهدف تحت التوجيه الفلوري. أخيرا ، يتم تأكيد الانسداد الكامل عن طريق تصوير الأوعية التاجية المتكرر. هذا النهج ممكن ، قابل للتكرار بشكل كبير ، ويحاكي التسبب في MI البشري غير الوعائي ، وتجنب جراحة الصدر المفتوحة التقليدية والالتهاب اللاحق بعد الجراحة. اعتمادا على وقت المتابعة ، فإن هذه التقنية مناسبة لنماذج MI الحادة أو شبه الحادة أو المزمنة.

Introduction

احتشاء عضلة القلب (MI) هو السبب الأكثر انتشارا للوفيات والمراضة والعجز في جميع أنحاء العالم¹. على الرغم من التقدم العلاجي الحالي ، فإن نسبة كبيرة من المرضى يطورون إعادة تشكيل بطيني سلبي وفشل القلب التدريجي بعد MI ، مما يؤدي إلى سوء التشخيص بسبب ضعف البطين والموت المفاجئ²،^3،4. وبالتالي فإن الخيارات العلاجية الجديدة لإصلاح و / أو تجديد عضلة القلب المصابة تخضع للتدقيق ، وتعد النماذج الحيوانية MI الانتقالية حاسمة في اختبار سلامتها وفعاليتها. على الرغم من استخدام العديد من النماذج لأبحاث القلب والأوعية الدموية ، بما في ذلك الفئران ^5,6 ، والفئران ^7,8 ، والكلاب⁹ ، والأغنام 10 ، إلا أن الخنازير هي واحدة من أفضل الخيارات لنمذجة دراسات نقص تروية القلب بسبب تشابهها العالي مع البشر من حيث حجم القلب ، وتشريح الشريان التاجي ، وحركية القلب ، وعلم وظائف الأعضاء ، والتمثيل الغذائي ، وعملية الشفاء بعد MI^{11 ، 12,13,14,15}.

في هذا السياق ، تتوفر العديد من الأساليب الجراحية المفتوحة المختلفة وعن طريق الجلد لتطوير نماذج الخنازير MI. يتضمن نهج الصدر المفتوح إجراء بضع الصدر الجانبي الأيسر وهو مفيد في إجراء ربط الشريان التاجي الجراحي ^16,17 ، وإصابة عضلة القلب بالتبريد ، والكي 12 ، ووضع الشريان التاجي للسد الهيدروليكي¹⁸ أو مضيق أميرويد ¹⁹ ، من بين أمور أخرى. تم استخدام انسداد الشريان التاجي الجراحي على نطاق واسع لاختبار خيارات علاجية جديدة مثل هندسة أنسجة القلب والعلاج الخلوي ، لأنه يسمح بالوصول الواسع والتقييم البصري للقلب. ومع ذلك ، على النقيض من MI البشري ، يمكن أن يؤدي إلى التصاقات جراحية ، وندوب مجاورة ، والتهاب ما بعد الجراحة¹⁷. تعد الإصابة بالتبريد في عضلة القلب والكي من التقنيات القابلة للتكرار بسهولة ولكنها لا تعيد إنتاج تطور MI الفسيولوجي المرضي الذي لوحظ في البشر¹². من ناحية أخرى ، تم تطوير العديد من التقنيات عن طريق الجلد لإنتاج انسداد الشريان التاجي المؤقت أو الدائم. وتشمل هذه استئصال الإيثانول عبر الشريان التاجي أو داخل الشريان التاجي 20,21 ، أو الانسداد عن طريق رأب الأوعية بالبالون²² ، أو تسليم المواد الخثارية مثل حبات هلام الأغاروز²³ ، أو مخاليط الفيبرينوجين^{9 ،} أو انصمام الملف ^17,24. في حين أن رأب الأوعية بالبالون هو أكثر ملاءمة لدراسات نقص التروية / إعادة التروية ، فإن نشر الملف التاجي هو واحد من أفضل الخيارات لنمذجة MI غير الوعائية. هذا النهج عن طريق الجلد ممكن ، قابل للتكرار باستمرار ، ويتجنب جراحة الصدر المفتوح. يسمح بالتحكم الدقيق في موقع الاحتشاء ويؤدي إلى الفيزيولوجيا المرضية المشابهة لتلك الخاصة بالإنسان غير المنصهر. علاوة على ذلك ، فإن انصمام الملف مناسب لنمذجة MI الحاد أو شبه الحاد أو المزمن. قصور القلب الاحتقاني المزمن. أو مرض الصمامات¹⁷.

يهدف هذا البروتوكول إلى وصف كيفية تطوير نموذج خنازير MI عن طريق نشر ملف دائم. باختصار ، فإنه يتألف من قنية الشريان التاجي الانتقائية عن طريق الجلد من خلال الوصول إلى الفخذ الرجعي. بعد تصوير الأوعية التاجية ، يتم نشر ملف في الشريان الفرعي المستهدف تحت التوجيه الفلوري. أخيرا ، يتم تأكيد الانسداد الكامل عن طريق تصوير الأوعية التاجية المتكرر.

Protocol

تمت الموافقة على هذه الدراسة من قبل اللجنة الأخلاقية لوحدة التجارب على الحيوانات التابعة لمعهد البحوث الصحية الألماني Trias i Pujol (IGTP) والسلطات الحكومية (Generalitat de Catalunya; المدونة: 10558 و 11208)، وتمتثل لجميع المبادئ التوجيهية المتعلقة باستخدام الحيوانات في البحث والتدريس على النحو المحدد في دليل رعاية واستخدام المختبر²⁵.

1. إعداد ما قبل الإجراء للحيوانات

1. استخدم Landrace X الخنازير البيضاء الكبيرة (30-35 كجم) من كلا الجنسين.
2. حافظ على الحيوانات في حالة صيام لمدة 12 ساعة قبل الإجراء.

2. التخدير والتخدير والتسكين

1. تخدير الحيوان عن طريق الحقن العضلي (IM) من الكيتامين (3 ملغ / كغ) ، ميدازولام (0.3 ملغ / كغ) ، و dexmedetomidine (0.03 ملغ / كغ). انتظر لمدة 10-15 دقيقة تقريبا.
2. بمجرد تخدير الخنزير ، قم بتهويته بمزيج من الأكسجين (90-100٪) - الإيسوفلوران (1-2٪) وقناع الوجه لضمان التخدير الأمثل.
3. ضع مرهم بيطري على عيون الخنزير لمنع الجفاف.
   ملاحظة: كرر كل 20 دقيقة.
4. ضع عن طريق الوريد (IV) قسطرة 20 جم في وريد الأذن الجانبي. إدارة البروبوفول (1-2 مغ / كغ) للحث على التخدير.
5. بمجرد أن لا يكون لدى الخنزير منعكس على البلع ، قم بتنبيب الحيوان باستخدام أنبوب القصبة الهوائية (حجم 6.5-7.0 ل 30-35 كجم).
   ملاحظة: اضبط حجم أنبوب القصبة الهوائية وفقا لحجم الخنزير. يجب إجراء التنبيب بسرعة لمنع وجود مستوى مخدر أعمق وانقطاع النفس لفترات طويلة.
6. إدارة البوبرينورفين الوريدي (0.01 ملغم / كغم) للتسكين داخل الجراحة. استخدم رقعة الفنتانيل عبر الجلد (100 ميكروغرام / ساعة) لتسكين ما بعد الجراحة.
   ملاحظة: يتم تطبيق رقعة الفنتانيل على الجلد الإربي ، وهي نشطة لمدة 72 ساعة للحد من آلام ما بعد الجراحة. لا يبدأ تأثيره الدوائي مباشرة بعد الولادة ، وبالتالي تطبيقه قبل البدء في الإجراء.
7. إجراء تهوية وحدة كيس قناع مجرى الهواء (20 تضخما / دقيقة) أثناء نقل الخنزير إلى غرفة الأشعة التداخلية الوعائية (VIR).
8. قم بتوصيل أنبوب القصبة الهوائية بجهاز التخدير المجهز بمستشعر مجرى الهواء وتسجيل الكابنوغرافيا.
9. ابدأ تهوية الضغط الإيجابي الميكانيكي باستخدام FiO₂ 0.50 ، باستخدام حجم المد والجزر من 10 مل / كجم وتردد 16-20 نفسا / دقيقة. الحفاظ على التخدير مع الايزوفلوران (1-3 ٪).
   ملاحظة: لتأكيد مستوى التخدير الجراحي الصحيح ، يجب ألا يتنفس الحيوان تلقائيا ولا يكون لديه ردود فعل خفيفة في القرنية أو الحدقتين.

3. مراقبة الدورة الدموية وإعداد المنطقة الجراحية

1. ضع الحيوان على طاولة العمليات في وضع ضعيف وقم بتثبيت الأطراف على الطاولة بشريط أو ضمادة.
2. ضع مجسات تخطيط القلب الكهربائي (ECG) تحت الجلد في أطراف الحيوان لتسجيل التغيرات في الجزء ST وموجات T ومعدل ضربات القلب أثناء الإجراء التجريبي.
3. ضع مقياس التأكسج النبضي على اللسان أو زاوية من شفة الحيوان وكفة الضغط غير الغازية على الطرف الأمامي.
4. قياس درجة حرارة المستقيم / المريء مع مسبار.
5. نظف منطقة الفخذ اليمنى بالصابون الجراحي متبوعا بمحلول بوفيدون يودين مطهر بالتناوب والكحول 3 مرات تحت ظروف معقمة.
6. تأكد من أن الجراح يقوم بغسل اليدين جراحيا ويرتدي ثوبا معقما وقفازات معقمة.
7. تغطية الحيوان مع ستارة جراحية معقمة.
8. قم بإعداد الإبرة وغسلها بمحلول ملحي هيبارين، وغمد وعائي 6F، وسلك برأس J مقاس 0.035 بوصة، وقسطرة توجيه 6F JR4 90 سم، وسلك إرشادي مقاس 0.014 بوصة مقاس 200 سم، وقسطرة مجهرية بطول 150 سم/قطرها الداخلي 0.017 بوصة، ومجموعة مشعب الحقن المتوسط المتباينة.

4. الوصول إلى الأوعية الدموية

1. ثقب الشريان الفخذي الأيمن عن طريق اتباع نهج عن طريق الجلد مع ثقب موجه بالموجات فوق الصوتية. حدد موقع التشعب بين الشريان الفخذي السطحي والشريان الفخذي العميق.
2. ضع محول الطاقة 2-3 سم بالقرب من التشعب ، في الشريان الفخذي المشترك ، ومحاذاة مركز المحول مع الشريان الفخذي المشترك.
3. ضع الإبرة في وسط محول الطاقة وثقب الشريان عند دوران يبلغ حوالي 45 درجة. بعد ذلك ، أدخل غمد الأوعية الدموية 6F باستخدام تقنية Seldinger المعدلة²⁶.
   ملاحظة: في حالة حدوث تشنج كبير أو ورم دموي ، ينتقل إلى الشريان الفخذي المعاكس.
4. اغسل القسطرة بمحلول ملحي هيبارين. (5000 وحدة دولية الهيبارين غير المجزأ / 1000 مل من 0.9٪ NaCL).
5. إدارة الهيبارين من خلال غمد (300 وحدة دولية / كجم).

5. تصوير الأوعية التاجية

1. أدخل سلك J-tip في قسطرة توجيه JR4 وقم بإدخال السلك عبر الغمد إلى الشريان الأورطي الصاعد، ثم ضع القسطرة فوق سطح الصمامات.
2. قم بإزالة السلك وقم بتوصيل القسطرة بنظام مشعب الحقن. تطهير النظام بأكمله.
3. تحت التنظير الفلوري ، قم بإشراك القسطرة في الشريان التاجي الرئيسي الأيسر وحقن 10 مل من وسط التباين المعالج باليود لتصور نظام الشريان التاجي الأيسر (الشكل 1A ، C).
   ملاحظة: من المهم التأكد من عدم تثبيط الشكل الموجي للضغط الشرياني قبل الحقن لتجنب خطر تشريح الشريان التاجي.
4. قم بإجراء تصوير الأوعية الدموية في طريقتي نظر متعامدتين: الإسقاطات المائلة الأمامية اليسرى 40 درجة والإسقاطات المائلة الأمامية اليمنى 30 درجة.
5. قم بتطوير سلك إرشادي مقاس 0.014 بوصة تم تجميعه مسبقا على القسطرة الدقيقة إلى الشريان التاجي الأمامي التنازلي (LAD) أو الشريان التاجي المحيطي الأيسر البعيد (LCX) تحت التوجيه الفلوري.

6. زرع لفائف

1. تحت التوجيه الفلوري ، تقدم القسطرة الدقيقة عبر السلك إلى الموقع المطلوب حيث يجب نشر غرسة الملف. في حالة انسداد LAD ، ضع الملف البعيد إلى الفرع القطري الأول ، وبالنسبة ل LCX ، ضع الملف البعيد إلى الفرع الهامشي الأول.
   ملاحظة: النهج القريبة (قبل الفروع القطرية الأولى أو الهامشية الأولى) لها معدلات بقاء منخفضة للغاية.
2. قم بإزالة السلك وحدد الملف.
   ملاحظة: من المهم تحديد حجم الملف الأمثل وطوله. قد لا يكون الملف الصغير أو القصير في وضع جيد في تجويف الوعاء الدموي ولديه خطر كبير جدا للهجرة البعيدة بسبب حقن التباين أو التلقائية ، مما يؤدي إلى حجم احتشاء أصغر. قد يتدلى الملف الكبير أو الطويل بالقرب من الوعاء وينتج احتشاء أكبر من المطلوب. يعد اختيار الملف الصحيح مهما بشكل خاص إذا تم استخدام ملفات غير قابلة للكشف ، حيث لا يمكن إزالتها. الحجم الأمثل هو 1-2 مم أكبر من تجويف الوعاء المراد انسداده ، وعادة ما يكون الطول بين 20-60 مم كافيا للخنازير التي يتراوح وزنها بين 30 و 40 كجم.
3. قم بتوصيل الملف عبر القسطرة الدقيقة وحقن 5 مل ببطء من وسط التباين المعالج باليود تحت التنظير الفلوري لتصور الموضع الصحيح للملف.
4. قم بإزالة القسطرة الدقيقة داخل القسطرة الإرشادية ووضع الدليل في فرع جانبي لإجراء حقن التحكم وضمان الوصول إلى الشريان في حالة الحاجة إلى زرع ملف ثان.
5. انتظر حتى يتخثر الملف ويسد الشريان.
   ملاحظة: عندما يكون الشريان مسدودا، يمكن ملاحظة تغييرات في مخطط كهربية القلب. هناك طريقة أخرى للتحقق من انسداد الشرايين الكامل وهي إجراء حقن بطيئة للتباين المعالج باليود كل 10 دقائق (الشكل 1B ، D). إذا لم ينسد الشريان في غضون 20-30 دقيقة ، فقد تكون هناك حاجة إلى زرع ملف آخر.

7. نهاية الإجراء

1. بمجرد انسداد الشريان ، قم بإجراء ضخ وريدي مستمر من يدوكائين (50-100 ميكروغرام / كجم / دقيقة) لمدة 1 ساعة على الأقل لمنع نوبات عدم انتظام ضربات القلب.
2. قم بإجراء تصوير وعائي للتأكد من عدم وجود تدفق بعيد إلى الانسداد.
3. قم بإزالة السلك والقسطرة الدقيقة والقسطرة التوجيهية.
4. قم بإزالة الغمد وقم بإجراء الضغط اليدوي لمدة 20 دقيقة.

8. إجراء ما بعد الجراحة واستعادة الحيوانات

1. راقب الحيوان حتى يتم استرداده بالكامل ، باستخدام ECG ، ودرجة حرارة المستقيم ، وقياس التأكسج النبضي ، و capnography.
   ملاحظة: في حالة عدم انتظام ضربات القلب البطيني ، قم بإعطاء بلعة من يدوكائين (1.5-3.5 مجم / كجم).
2. إدارة حقن IM من tulathromycin (2.5 ملغ / كغ) كعلاج وقائي بالمضادات الحيوية بعد العملية الجراحية. بالنسبة للتسكين بعد الجراحة ، يتم إعطاء رقعة الفنتانيل عبر الجلد قبل الإجراء الجراحي (الخطوة 2.6).
3. قم بإيقاف تشغيل الأيزوفلوران والحفاظ على التهوية الميكانيكية حتى يبدأ الحيوان في التنفس تلقائيا.
4. عندما يستعيد الخنزير منعكس البلع ، قم بإزالة أنبوب القصبة الهوائية. ملاحظة: تحقق مما إذا كان الحيوان لديه SpO2 جيد (أكثر من 95٪) قبل وبعد التنبيب.
5. نقل الحيوان إلى قفص فردي. ضع الحيوان فوق بطانية ماء ساخن وقم بتغطيته بستارة حرارية لتجنب انخفاض حرارة الجسم بعد الجراحة.
   ملاحظة: لا تعيد الخنزير إلى صحبة الحيوانات الأخرى حتى يتعافى تماما.
6. راقب الحيوان حتى يستعيد وعيه الكافي للحفاظ على الاستلقاء الصارم.

9. تقييم ومراقبة الألم بعد العملية الجراحية

1. أثناء المتابعة بعد الجراحة ، راقب الحالة العامة للحيوانات ، بما في ذلك معدل التنفس ، وتناول الطعام والماء ، والنشاط والتفاعل مع الأفراد الآخرين ، ومظهر الجلد وتلوينه ، وتطور الجرح الجراحي.
2. تطبيق بروتوكول الإشراف اليومي وفقا لمعايير الدرجات التالية:- الوزن:
   0: عادي
   1: < 10٪ فقدان الوزن
   2: 10-20٪ فقدان الوزن
   3:> 20٪ فقدان الوزن
   
   - حالة الجسم:
   0: جيد: فقرات غير بارزة، عظام الحوض أو العمود الفقري
   2: منتظم: دليل على تجزئة العمود الفقري ، عظام الحوض واضحة
   3: الهزال : هيكل عظمي ملحوظ للغاية ، القليل من اللحوم أو لا يوجد لتغطية
   
   - السلوك:
   0: عادي: نشط وتفاعلي في بيئتك
   1: انخفاض طفيف في النشاط وأقل تفاعلية
   2: غير طبيعي: انخفاض واضح في النشاط ، معزول
   3: غير طبيعي: غير متحرك أو فرط النشاط ، واحتمال إيذاء النفس
   
   - المظهر الجسدي:
   0: عادي: الجلد / الشعر لامعة وعيون مشرقة
   1: يختفي التحنيط، والجلد / الشعر دون لمعان
   2: ضعف الجلد / إفرازات الأنف
   3: ضعف الجلد ، موقف غير طبيعي أو منحني
   
   - الاضطرابات السلوكية:
   0: لا شيء
   1: عدم القدرة على التحرك بشكل طبيعي
   2: غير قادر على الوصول إلى الطعام / الشراب ، معزول عن الحيوانات الأخرى
   3: نية الاختباء / الزاوية ، لا تستجيب للمحفزات (الموت)
   
   - العلامات السريرية:
   0: لا شيء
   1: انخفاض حرارة الجسم، والحمى، وفشل الجهاز التنفسي الخفيف
   2: عدوى الجرح الجراحي ، فشل الجهاز التنفسي المعتدل مع إفرازات مخاطية دموية
   3: قصور القلب ، فشل الجهاز التنفسي الحاد (زرقة ، الفم المفتوح)
   
   نقاط:
   - 1-5: الإشراف على الحيوانات مرة واحدة في اليوم.
   - 6-12: توفير العلاج الداعم إذا لزم الأمر.
   - سيتم قتل أي حاصل على درجة 3 في أي من المعلمات المذكورة أعلاه أو بدرجة إجمالية >12.
   
   ملاحظة: يجب مراقبة الحيوانات يوميا من قبل موظفي رعاية الحيوانات ومرتين في الأسبوع من قبل فريق البحث والفريق البيطري.
3. على الرغم من عدم توقع أي ألم أو ضيق من الإجراء ، إذا أظهر أي علامات الألم ، فقم بإعطاء علاج مسكن (ترامادول ، عن طريق الفم ، 2-4 مجم / كجم ، يوميا). إذا كان أي لا يستجيب للأدوية المسكنة ويظهر علامات الألم المزمن (احتمال منخفض جدا) ، فقم بالقتل الرحيم للحيوان بجرعة زائدة مخدرة (ثيوبينتال الصوديوم ، IV ، 200 مجم / كجم).
4. إذا أظهر الجرح الجراحي علامات العدوى (احتمال منخفض) على الرغم من العلاج بالمضادات الحيوية التي يتم إعطاؤها ، فقم بعلاج الجرح يوميا وابدأ نظاما جديدا للمضادات الحيوية (كبريتات سيفكينيوم ، IM ، 2 مجم / كجم ، يوميا).

10. طريقة القتل الرحيم

1. تحت التخدير والتخدير السابق ، كما هو موضح سابقا ، قم بإعطاء جرعة زائدة من ثيوبنتال الصوديوم الوريدي (200 مجم / كجم).
2. تأكد من توقف القلب والجهاز التنفسي والوفاة عن طريق مراقبة العلامات الحيوية (تخطيط القلب الكهربائي ، ضغط الدم ، الكابنوغرافيا).

النتائج

معدلات البقاء على قيد الحياة MI والموقع
خضع سبعة وخمسون خنزيرا لزرع ملف الشريان التاجي في الفرع الهامشي LCX (n = 25 ؛ 12 أنثى و 13 ذكرا) أو في LAD بين الفرعين القطريين الأول والثاني (n = 32 ؛ 16 أنثى و 16 ذكرا) من الشريان التاجي وتم متابعتهم لمدة 30 يوما. كان معدل بقاء الحيوانات المقدمة إلى MI في ال...

Discussion

يوفر الملف المنشور في الشريان التاجي نموذج MI غير قابل للتكرار ومتسق قبل السريرية في الخنازير يمكن استخدامه لتطوير واختبار استراتيجيات علاجية جديدة للقلب والأوعية الدموية.

في أيدينا ، كان معدل الوفيات عند المتابعة مرتبطا بنسبة 19٪ بمضاعفات MI ، معظمها خلال ال 24 ساعة الأولى م?...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
6-F JR4 0-71"guiding catheter	Medtronic	LA6JR40	6F JR4 90 cm Guiding catheter
Adrenaline 1 mg/mL	B.Braun	National Code (NC). 602486	Adrenaline
Atropine 1 mg/mL	B.Braun	NC. 635649	Atropine
Betadine	Mylan	NC. 694109-1	Povidone iodine solution
Bupaq 0.3 mg/mL	Richter Pharma AG	NC. 578816.6	Buprenorphine
Dexdomitor 0.5 mg/mL	Orion Pharma	NC. 576303.3	Dexmedetomidine
Draxxin	Zoetis	NC. 576313.2	Tulathromycin
EMERALD Guidewire	Cordis	502-585	0.035-inch J-tipped wire
External defibrillator	DigiCare	CS81XVET	Manual external defibrillator
Fendivia 100 µg/h	Takeda	NC. 658524.5	Fentanyl transdermal patch
Guidewire Introducer Needle 18 G x 7 cm	Argon	GWI1802	Introducer needle
Heparine 1%	ROVI	NC. 641647.1	Heparin
Hi-Torque VersaTurn F	Abbott	1013317J	0.014-inch 200 cm Guidewire
IsoFlo	Zoetis	50019100	Isoflurane
Ketamidor	Richter Pharma AG,	NC. 580393.7	Ketamine
Lidocaine 50 mg/mL	B.Braun	NC. 645572.2	Lidocaine
MD8000vet	Meditech Equipment	MD8000vet	Multi-parameter monitor
Midazolam	Laboratorios Normon	NC. 624437.1	Midazolam
Prelude.6F.11 cm (4.3").0.035" (0.89 mm).50 cm (19.7").Double Ended.Stainless Steel.6F.16	Merit	PSI-6F-11-035	6F Vascular sheath
Propovet Multidosis 10 mg/mL	Zoetis	NC. 579742.7	Propofol
RENEGADE STC-18 150/20/STRAIGHT/1RO	Boston Scientific	M001181370	150 cm length with 0.017-inch inner diameter Microcatheter
Ruschelit	Teleflex	112482	Endotracheal tube with balloon (#6.5)
SPUR II	Ambu	325 012 000	Airway mask bag unit-ventilation (AMBU)
Vasofix 20 G	B.Braun	4269098	20 G Cannula
Visipaque 320 mg/mL USB 10 x 200 mL	General Electrics	1177612	Iodinated contrast medium
VortX-18 Diamond 3 mm/3.3 mm	Boston Scientific	M0013822030	Coil
WATO EX-35	Mindray	WATO EX-35Vet	Anesthesia machine