A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Method Article
يوضح هذا البروتوكول بالتفصيل تجميع مصفوفات المفاعلات الحيوية الصغيرة لاستخدامها في زراعة التدفق المستمر لمجتمعات البراز المعقدة في ظل الظروف اللاهوائية. نناقش أيضا طرق تجميع المفاعلات وتلقيحها وأخذ عينات منها لمزيد من التحليل.
تستجيب الجراثيم ، وخاصة البكتيريا ، للتعرضات البيئية المختلفة مثل المغذيات الدقيقة والكبيرة ، والمركبات الدوائية ، والوسطاء الالتهابيين ، والتي تغير ديناميكيا تكوين المجتمع وإنتاج التمثيل الغذائي الميكروبي. إن فهم كيفية تأثير ظروف الثقافة الفسيولوجية على المجتمعات الميكروبية وتنوعها وقدرتها الأيضية سيساهم في معرفة مهمة بتأثيرها على الصحة والأمراض. هنا ، نقدم بروتوكولا مقتبسا من القالب الذي نشره Auchtung et al. لإنشاء مصفوفات مفاعلات حيوية صغيرة يمكنها زراعة مجتمعات البراز المعقدة ، وتحديد الاتحادات البكتيرية أو السلالات المفردة في ظل ظروف دقيقة ، بما في ذلك توافر المغذيات ودرجة الحرارة ومعدل التدفق ودرجة الحموضة ومحتوى الأكسجين. نصف عملية بناء نظام المفاعل الحيوي المصغر ، بما في ذلك التكيفات لتحسين القيود في البروتوكول المنشور. نناقش أيضا إعداد نظام المفاعل الحيوي المصغر في ظل ظروف لاهوائية باستخدام وسائط MEGA (مقتبسة من Han et al.) ، وهي وسائط غنية تدعم نمو البكتيريا المتنوعة. نصف تلقيح عينات براز الفأر المتوافقة مع البشر في نظام المفاعل الحيوي المصغر ، متبوعا بإنشاء ثقافات مجتمعية معقدة داخل نظام المفاعل الحيوي المصغر ، والتي يمكن زراعتها تحت التدفق المستمر مع أخذ عينات معقمة لمراقبة تكوين المجتمع. هذا النظام قابل للتكيف مع التغييرات الغذائية والتعديلات الثقافية الأخرى. تسمح التقنيات الموضحة هنا بتوصيف مجتمعات البراز المتنوعة والحساسة في ظل ظروف ديناميكية أو استجابة للاضطراب بمعزل عن العوامل المشتقة من المضيف.
الجراثيم الأمعاء هي شبكة واسعة من الكائنات الحية الدقيقة ، بما في ذلك البكتيريا والفطريات والعتائق والفيروسات ، والتي تحتوي على ذخيرة وراثية وأيضية ضخمة يفوق عددها بكثير عدد المضيف البشري1. تشتمل القدرة الأيضية الغنية للميكروبيوم على المستقلبات المنتجة من المعالجة البكتيرية للمغذيات الغذائية ، والمستقلبات المضيفة المعدلة كيميائيا بواسطة البكتيريا ، والمستقلبات التي يتم تصنيعها بشكل فريد بواسطة الجراثيم2. تتورط الجراثيم في جميع العمليات الحيوية للمضيف تقريبا ولكن أيضا في الحالات المرضية مثل مرض التهاب الأمعاء والسرطان واضطرابات التمثيل الغذائي وحتى الاضطرابات العصبية2،3. يعد تشريح مساهمة الكائنات الحية الدقيقة من مساهمة المضيف أمرا ضروريا لفهم دور الكائنات الحية الدقيقة المحددة أو المجتمعات المعقدة في الصحة والمرض. أحد الأساليب التي تمكن من هذا التشريح هو استخدام المفاعلات الحيوية الميكروبية ، التي تزرع مجتمعات ميكروبية متنوعة في ظل ظروف ديناميكية. هناك العديد من المفاعلات الحيوية المتاحة تجاريا والتي تسمح بنمو المجتمعات البكتيرية البرازية لأي غرض تقريبا ، بما في ذلك زراعة المنتجات الحيوية على نطاق واسع أو التحكم الدقيق في عوامل غذائية محددة لدراسة عمليات التمثيل الغذائي. ومع ذلك ، فإن هذه الأنظمة مكلفة للغاية وتتطلب إعدادا مكثفا ، ولا تمكن من فحص الظروف التجريبية المتنوعة بالتوازي. للحصول على نهج مبسط أقل تكلفة وأكثر قابلية للتكيف ويسمح بالعديد من الظروف المتوازية ، نقدم هنا بروتوكول إعداد واستخدام مصفوفة مفاعل حيوي صغير في ظل تدفق مستمر مقتبس من Auchtung et al.4.
يظهر الإعداد الكامل لنظام المفاعل الحيوي المصغر في الشكل 1 أ. يستخدم نظام المفاعل الحيوي المصغر هذا مصفوفات من 6 آبار مفاعلات ، وهي مستقلة تماما عن بعضها البعض ويتم إعدادها في غرفة لاهوائية تحت التدفق التمعجي لتمكين توصيل الوسائط وإزالتها بشكل مستمر (الشكل 1 أ). تقع كل مصفوفة مفاعل على لوحة تحريك مغناطيسية ذات 60 وضعا ، مع مضختين تمعجيين 48 كاسيت تحملان أنبوبا ثنائي التوقف لوسائط المصدر وتدفق النفايات (الشكل 1 أ). تم تجهيز الغرفة اللاهوائية بجهاز مراقبة لاهوائية CAM-12 لمحتوى الأكسجين ، وصندوق محفز لإزالة الأكسجين بسعة تسخين ، وعمود إزالة كبريتيد الهيدروجين لامتصاص الغازات الزائدة من التمثيل الغذائي البكتيري. تم تجهيز كل بئر مفاعل بمدخل وسائط المصدر ومخرج النفايات ومنفذ العينة ، مما يسمح بالتلقيح أو أخذ العينات من كل بئر مفاعل على حدة (الشكل 1 ب).
كما هو موضح ، يتيح نظام المفاعل الحيوي التحكم الديناميكي في درجة الحرارة واستهلاك الوسائط وتوافر المغذيات لدعم زراعة المجتمعات البرازية وصيانتها. يتم تعديل درجة الحرارة بواسطة صندوق محفز بسعة تسخين ، مما يتيح تنفيذ التغيرات في درجة الحرارة في جميع أنحاء الغرفة اللاهوائية بأكملها بسرعة. يتم تنظيم استهلاك الوسائط من خلال معدلات تدفق المضخة التمعجية ، والتي يمكن تعديلها لتغيير دوران الوسائط في المفاعلات. يمكن تخصيص معدل دوران الوسائط وفقا لأنواع المجتمعات التي يتم زراعتها في المفاعلات ، على سبيل المثال ، تكييفها مع السلالات المستهدفة بطيئة النمو أو سريعة النمو. أخيرا ، يمكن تعديل توافر المغذيات ديناميكيا عن طريق إضافة مكونات من خلال منافذ العينة الفردية لكل بئر مفاعل. الظروف الثابتة التي يمكن تعديلها في بداية التجربة ، ولكن ليس لها تحكم ديناميكي في النظام هي نوع الوسائط ومحتوى الأكسجين وعدد المفاعلات المتزامنة. يمكن للمحققين اختيار تنفيذ أي وسائط مصدر يرغبون فيها ، وبينما يتم وصف إحدى وسائل الإعلام هنا ، تم تنفيذ أنواع وسائط المصدر الأخرى التي لا حصر لها بنجاح. يمكن للمرء تشغيل المفاعلات في ظل ظروف هوائية أو دقيقة (اعتمادا على توافر غرفة ميكرووفيل للهوائي). أخيرا ، يمكن إنشاء أكبر عدد ممكن من المفاعلات حسب الحاجة اعتمادا على الاحتياجات التجريبية للمحقق. بينما تكون المفاعلات في مجموعات من ستة داخل مصفوفة ، يعمل كل مفاعل بشكل مستقل عن الآخرين ، ويمكن ربط كل مفاعل بمصدر مختلف إذا رغبت في ذلك.
يمكن إعداد نظام المفاعل الحيوي المعياري هذا بالكامل مقابل حوالي 25,000 دولار (لا يشمل الغرفة اللاهوائية أو المكونات الخاصة بالغرفة) ، مع الجزء الوحيد غير القابل لإعادة الاستخدام هو الأنبوب الذي يمكن استبداله بأقل من 100 دولار لكل تشغيل للنظام. النظام مؤتمت في الغالب ولكنه يتطلب فحصا يوميا لمستويات الوسائط حيث ستحتاج زجاجات مصدر الوسائط إلى التغيير عندما تكون فارغة. بالإضافة إلى ذلك ، يجب إكمال أي أخذ عينات يدويا ، ويجب بدء أي تغييرات شرطية ديناميكية في النظام يدويا (على سبيل المثال ، تغيير درجة الحرارة). من بروتوكول النظام الأصلي الذي نشره Auchtung et al. ، تم تنفيذ بعض التعديلات لتحسين الأداء العام والمنفعة4. أولا ، يتم تعديل مادة الطباعة ثلاثية الأبعاد لمجموعة المفاعلات الحيوية لتكون بلاستيك شفاف شفاف يشبه ABS لتحسين السلامة الهيكلية للنظام من خلال جولات متكررة من التعقيم. بالإضافة إلى ذلك ، بدلا من أنابيب OD PTFE مقاس 1/8 بوصة (3.2 مم) ، يتم استخدام أنابيب E-LFL ، 2.06 مم ID ، 100 قدم بدلا من ذلك بسبب المادة الأكثر ثباتا ، وهي أكثر مقاومة للانهيار ، مما قد يتسبب في انسداد التدفق في النظام. أخيرا ، يتم استخدام تركيبات إضافية باستخدام خيط 1/4 -28 مم لمحولات الذكور الشائكة لتقليل التغييرات في انزلاق الأنبوب من زجاجات مصدر الوسائط. من Han et al. ، توفر وصفة وسائط MEGA المعدلة وسائط غير محددة ومعقدة وغنية للغاية تمكن من زراعة الكائنات الحية الدقيقة اللاهوائيةالحساسة 5. تم تعديل الوسائط لاستخدام التحضير البديل لمكون الهيستيدين - الهيماتين ، حيث لم يعد الأصل متاحا تجاريا. يستخدم هيدروكسيد الصوديوم أيضا لدرجة الحموضة في الوسائط إلى 7.0 أو أي درجة حموضة مرغوبة. بشكل عام ، هذا النظام سهل الميزانية وسهل الاستخدام ومحسن ونقطة دخول ممتازة لأنظمة ثقافة التدفق المستمر.
في هذا البروتوكول ، نصف بالتفصيل إعداد نظام مصفوفة المفاعلات الحيوية المصغرة هذا ، بما في ذلك المواد ، وتعقيم النظام ، والاستخدام اللاحق لزراعة عينات براز الفئران المتوافقة مع البشر في الأمعاء. الهدف العام من هذه الطريقة هو بناء نظام مفاعل حيوي قابل للتكيف وفعال من حيث التكلفة يمكن استخدامه لزراعة المجتمعات الميكروبية في ظل ظروف خاضعة للرقابة. يتم توفير تخطيطي مفصل لسير العمل لتجميع نظام المفاعل الحيوي المصغر في الشكل 2 ويشار إليه في الخطوات المناسبة داخل البروتوكول. في مثالنا ، نقوم بتلقيح مفاعلين بنفس عينة البراز من فئران الأمعاء المتوافقة مع البشر ونصف بنية المجتمع الميكروبي تحت تدفق مستمر لوسائط MEGA.
الشكل 1: رسم تخطيطي لإعداد مصفوفة المفاعلات الحيوية المصغرة في الغرفة اللاهوائية. (أ) منظر كامل لإعداد مصفوفة المفاعلات الحيوية المصغرة المكتملة في الغرفة اللاهوائية. تقع مجموعة المفاعلات الحيوية المكونة من 6 آبار على لوحة التحريك المغناطيسية ذات 60 وضعا. يتم توصيل شبكة نقطة الإنطلاق المصدر بالوسائط المصدر على الجانب الأيسر من خلال غطاء الزجاجة ذو الفتحتين. تحمل مضختان تمعجيتان الأنبوب ذو المحطة الثانية من المصدر وشبكات النفايات على اليسار واليمين ، على التوالي. يتم تفريغ شبكة النفايات في زجاجة النفايات على الجانب الأيمن. يتم ترتيب المعدات الأساسية لتشغيل الغرفة اللاهوائية ، بما في ذلك شاشة CAM-12 ، وصندوق المحفز بسعة تسخين ، وعمود إزالة كبريتيد الهيدروجين ، داخل الغرفة حول نظام المصفوفة. (ب) منظر علوي لمنافذ المصدر والعينة والنفايات المتصلة ببئر مفاعل واحد مع وسائط على الارتفاع المناسب في المفاعل. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 2: رسم تخطيطي لسير عمل تجميع مصفوفة المفاعلات الحيوية المصغرة. (أ) عرض من أعلى إلى أسفل لمصفوفة المفاعل الحيوي المصغر ، يوضح اتجاه المصدر والنفايات ومنافذ العينة. (ب) منظر جانبي لمصفوفة المفاعل الحيوي المصغر مع عرض يوضح الخطوات 2.3-2.4 من البروتوكول. يتم إرفاق أنابيب وتركيب PTFE مقاس 1/8 بوصة (1) وإدخالها في منافذ النفايات والعينات. يتم إدخال التركيب (1) بدون PTFE في منفذ المصدر. (ج) منظر جانبي لمصفوفة المفاعلات الحيوية المصغرة التي توضح الخطوات 2.5-2.6 من البروتوكول. يتم إرفاق التركيب (2) بمنافذ المصدر والنفايات. يتم إرفاق التركيب (3) بمنفذ العينة ، ولذلك ، يتم إدخال التركيب (4) في الأعلى. (د) منظر جانبي لمصفوفة المفاعلات الحيوية المصغرة توضح الخطوات 2.9-2.11. يتم توصيل أنابيب E-LFL 2.06 مم بالمصدر ومنافذ النفايات ، ويتم توصيل الطرف الآخر بالتركيبات (5) ثم (6). ثم يتم توصيل الأنابيب ذات المحطة 2 من القطر المناسب بالتركيب (6). ثم يتم تكرار الاتصال العكسي في نهاية الأنبوب المكون من توقفين ، مع توصيل التركيب (6) بالأنبوب ذو التوقفين والتركيب (5) بذلك. أخيرا ، سيتم توصيل أنابيب E-LFL 2.06 مم بالتركيب (5) للاتصال بشبكة luer tee. (ه) عرض من أعلى إلى أسفل لمصفوفة المفاعلات الحيوية المصغرة التي تعرض إعداد شبكة نقطة الإنطلاق المصدر والنفايات الموصوفة في الخطوات 2.12-2.15. يتم استخدام أنبوب E-LFL 2.06 مم ينتهي بالتركيب (5) لتوصيل كل مفاعل بعدة تركيبات (7) ، يتم توصيل الفتحة الأخيرة منها بالغطاء الموجود على المصدر أو زجاجة النفايات. (و) منظر جانبي لمجموعة غطاء الزجاجة ذات الفتحتين الموصوفة في الخطوات 2.16-2.17. يتم توصيل فتحة واحدة في الغطاء بأنابيب PTFE الموضوعة داخل الزجاجة. إلى تلك الفتحة يتم إدخال التركيب (1) ، متبوعا بالتركيب (2) ، وأنابيب E-LFL 2.06 مم متصلة بالتركيب (5). يتم إرفاق هذا التركيب بالمصدر أو شبكة النفايات. إلى الفتحة غير المتصلة بأنبوب PTFE ، يتم إدخال التركيب (1) ، متبوعا بالتركيب (2) ، ويتم توصيل أنبوب E-LFL 2.06 مم بتركيب آخر (5). يتم تغطية هذه النهاية بورق الألمنيوم أثناء تعقيم الأوتوكلاف لتثبيتها في المستقبل بمرشح حقنة معقم 0.22 ميكرومتر. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
تم الحصول على عينات البراز المستخدمة في هذه الدراسة من التجارب المعتمدة من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدامه (IACUC) في جامعة فلوريدا (UF) وتم إجراؤها في مرافق رعاية في UF (بروتوكول IACUC #IACUC202300000005). باختصار ، نوع البرية المختلطة بين الجنسين الخالية من الجراثيم (GF WT; C57BL / 6) تم نقل الفئران (التي تم تربيتها وصيانتها في العوازل بواسطة قسم UF Animal Care Services Sec-free Vari) من عوازل التكاثر ووضعها في نظام الاستبعاد البيولوجي ISOcage P للسماح بالتلاعب الميكروبي. تم تجميع وحدات تشكيل مستعمرة متساوية (CFU) من براز المتبرع البشري للتزقيم في الفئران. بعد أسبوعين من التلقيح ، تم جمع عينات البراز من هذه الفئران بشكل تعقيم للتخزين والاستخدام اللاحق في هذا البروتوكول.
ملاحظة: الغرض من جمع عينات البراز وتحضيرها الموصوف هنا هو فقط كمثال على الإجراء الصحيح ، حيث يعتمد هذا الإجراء اعتمادا على نوع العينات التي تم جمعها (الإنسان ، الفأر ، الأخرى) وتخزين هذه العينات ، يمكن أن يختلف هذا الإجراء بشكل كبير. يجب على الأفراد الرجوع إلى الأدبيات المناسبة لتصميم بروتوكول لجمع عينات البراز وحفظها بناء على احتياجات الباحث الفردي.
1. التحضير النموذجي لعينات البراز لتخزين -80 درجة مئوية
2. بناء مجموعة مفاعلات 6 آبار
3. إعداد وسائط MEGA
4. إعداد المصفوفة في الغرفة اللاهوائية
ملاحظة: من الضروري تنظيف الجزء الداخلي من غطاء المحرك وقفازات غطاء المحرك بنسبة 3٪ بيروكسيد الهيدروجين متبوعا بشطف الماء منزوع الأيونات ثلاث مرات لضمان عدم تلوث السطح قبل التجميع. إذا تم إجراء التوصيلات بسرعة بعد إزالة الرقاقة ، ولم يتم إجراء اتصال مباشر مع الجزء الداخلي من التركيبات وقفازات الغرفة اللاهوائية ، فهناك فرصة ضئيلة للتلوث
5. تلقيح عينة البراز
6. جمع معقم للعينات من آبار المفاعلات
7. تفكيك وتنظيف نظام المفاعل الحيوي المصغر
تم جمع عينات البراز من الفئران المستعمرة بملاط البراز البشري بعد أسبوعين من التلقيح وتخزينها عند -80 درجة مئوية. تم إعداد نظام المفاعل الحيوي بتدفق وسائط MEGA المستمر لبئرين مفاعلين مكررين (الشكل 3 أ). تم تحضير الملاط البرازي من كريات براز ?...
يتيح نظام المفاعل الحيوي المصغر الموصوف في هذا البروتوكول زراعة مجتمعات البراز المستقلة للتجارب المتوازية. هذه القدرة على دراسة المجتمعات الميكروبية بمعزل عن العوامل المضيفة هي نهج أساسي لفهم القدرة الجوهرية للكائنات الحية الدقيقة على التكيف مع بيئتها. يمكن تكييف هذا...
لا يوجد تضارب في المصالح بين المؤلفين.
يعرب المؤلفون عن امتنانهم لجوزي غوتييه للمساعدة في تسلسل جين 16S rRNA. تم دعم هذا البحث ، جزئيا ، من قبل صناديق مركز السرطان الصحي UF (CJ) وصندوق جاتوريد التابع لوزارة الطب في جامعة فلوريدا (CJ). R.Z.G. تم دعمه من قبل أموال مركز UF الصحي للسرطان. تم دعم R.C.N. من قبل منحة تدريب المعاهد الوطنية للصحة TL1 في جامعة فلوريدا (TL1TR001428 ، UL1TR001427) ، والمعهد الوطني للسرطان التابع للمعهد الوطني للصحة القائم على فريق المعاهد الوطنية للصحة ، وجائزة برنامج التدريب على أبحاث السرطان متعدد التخصصات القائم على المعاهد الوطنية للصحة T32CA257923 ومركز UF الصحي للسرطان. تم دعم البحث الوارد في هذا المنشور من قبل مركز UF الصحي للسرطان ، مدعوما جزئيا باعتمادات الدولة المقدمة في فلوريدا. إحصائيات § 381.915 والمعهد الوطني للسرطان التابع للمعاهد الوطنية للصحة بموجب الجائزة رقم P30CA247796. المحتوى هو مسؤولية المؤلفين وحدهم ولا يمثل بالضرورة وجهات النظر الرسمية للمعاهد الوطنية للصحة أو ولاية فلوريدا. لم يكن للممولين أي دور في تصميم الدراسة وجمع البيانات وتحليلها. قرار النشر؛ أو إعداد المخطوطة.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
1 mL BD Slip Tip Syringe sterile, single use | Fisher Scientific | 309659 | |
1/4-28 mm thread to barbed male adaptor (3.2 mm), 5/pack | Cole-Parmer | 008NB32-KD5L | To build 1 6-well array, need 2 packs |
10M NaOH (Sodium Hydroxide) | Sigma | 72068-100ML | |
2.0ml Screw Cap Tube, NonKnurl, Skirted,Natural, E-Beam Sterile tube w/ attached cap | Fisher Scientific | 14-755-228 | |
2mag MIXdrive 60 Stirring Drive | 2mag | 40060 | 60-position magnetic stir plate (optional addition of heating capacity- cat# 40260) |
6-well reactor arrray, ABS-Like Translucent Clear plastic | Protolabs | Custom | See supplementary files for .stl file for 3D printing |
Absolute Ethanol (200 Proof) | Fisher Scientific | BP2818 | |
Acetic acid, glacial | Sigma | A6283 | |
Adapter, nylon, male luer to 1/4-28 thread, 25/pack | Cole-Parmer | EW-45505-82 | To build 1 6-well array, need 6 (1 pack) |
Aluminum foil | Fisher Scientific | 01-213-100 | |
Anaerobic chamber | Coy Lab Products | Type B | |
Bel-Art SP Scienceware Flea Micro Spinbar Magnetic Stirring Bars (1/pk) | Fisher Scientific | 22-261679 | To build 1 6-well array, need 6 |
Biosafety cabinet class 2 | Nuaire | ||
Butyric acid | Sigma | B103500 | |
CaCl2 · 2H2O (Calcium Chloride Dihydrate) | Sigma | C7902 | |
Clorox Healthcare Germicidal Wipes With Bleach, Unscented, 6" x 5", Pack Of 150 Wipes | Office Depot | 129202 | |
D-(-)-Fructose | Sigma | F0127-100G | |
D-(+)-Cellobiose | Sigma | C7252-100G | |
D-(+)-Glucose | Sigma | G8270-100G | |
D-(+)-Maltose monohydrate | Sigma | M5885-100G | |
Drill America Plug Hand Tap DWTP1/4-28 | Home Depot | 305699489 | |
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline, 1X without Ca and Mg, Sterile | Genesee | 25-508 | |
Female luer × 1/16″ hose barb adapter, Nylon, 25/pack | Cole-Parmer | EW-45502-00 | To build 1 6-well array, need 24 (1 pack) |
Female luer × 1/8″ hose barb adapter, Nylon 25/pack | Cole-Parmer | EW-45502-04 | To build 1 6-well array, need 6 (1 pack) |
Female luer × 3/32″ hose barb adapter, Nylon, 25/ pack | Cole-Parmer | EW-45502-02 | To build 1 6-well array, need 6 (1 pack) |
Female luer tee, Nylon, 25/pack | Cole-Parmer | EW-45502-56 | To build 1 6-well array, need 10 (1 pack) |
FeSO4 · 7H2O (Iron [II] Sulfate Heptahydrate) | Sigma | F8633 | |
Hematin | Sigma | H3281 | |
Histidine | Sigma | H7750 | |
Isovaleric acid | Sigma | 129542 | |
K2HPO4 dibasic (dipotassium hydrogen phosphate) | Sigma | P2222-1KG | |
KH2PO4 monobasic (potassium dihydrogen phosphate) | Sigma | P0662-500G | |
Large Orifice Pipet Tips | Fisher Scientific | 02-707-134 | |
L-Cysteine hydrochloride | Sigma | C1276-10G | |
Male luer with lock ring × 1/8″ hose barb adapter, Nylon, 25/pack | Cole-Parmer | EW-45505-04 | To build 1 6-well array, need 42 (2 packs) |
Meat extract | Sigma | 70164-500G | |
Med Vet International Exel Needle, 20G X 1", Hypodermic, 100/Box, 26417 | Fisher Scientific | 50-209-2532 | |
Menadione (Vitamin K3) | Sigma | M5625 | |
MgSO4 · 7H2O (Magnesium Sulfate Heptahydrate) | Sigma | M1880-500G | |
Milli-Q water | |||
NaCl (Sodium Chloride) | Sigma | S9888-500G | |
NaHCO3 (Sodium Bicarbonate) | Sigma | S5761-500G | |
Omnifi t Q-series two hole bottle cap | Cole-Parmer | 00945Q-2 | To build 1 6-well array, need 1 |
PMP IPC-N L 24CHNL 8RLR 115V | MasterFlex | ISM939C-115V | 24-channel peristaltic pump, require 1 for source and 1 for waste |
Precision Seal® rubber septa,white, 7 mm O.D. glass tubing (100/pk) | Millipore Sigma | Z553905-100EA | To build 1 6-well array, need 6 septa |
Propionic acid | Sigma | P5561 | |
Pump Tubing, 2-Stop, Tygon S3 E-Lab, 1.02 mm ID; 12/PK | VWR | MFLX96460-28 | To build 1 6-well array, need 6 (1 pack) |
Pump Tubing, 2-Stop, Tygon S3 E-Lab, 1.14 mm ID; 12/PK | VWR | MFLX96460-30 | To build 1 6-well array, need 6 (1 pack) |
Puritan Cary-Blair Medium, 5 ml | Fisher Scientific | 22-029-646 | |
PYREX 2L Round Media Storage Bottles, with GL45 Screw Cap | Fisher Scientific | 06-414-1E | |
Razor Blades | Genesee | 12-640 | |
Resazurin, sodium salt | ACROS Organics from ThermoFisher | AC41890-0010 | |
Soluble starch | Sigma | S9765-100G | |
Stainless Steel Micro Spatulas, spoon like blade | Fisher Scientific | S50823 | |
TBNG TYGON ELFL 2.06MMID 100' | VWR | MFLX06449-42 | To build 1 6-well array, need 205.5 cm |
Trace Mineral Supplement | ATCC | MD-TMS | |
Trypticase Peptone (BBL) | Fisher Scientific | B11921 | |
Tubing, PTFE, 1/8″ (3.2 mm) OD × 1.5 mm ID, 10 M | Cole-Parmer | 008 T32-150-10 | To build 1 6-well array, need 300 mm |
Tween 80 | Sigma | P1754 | |
Vitamin Supplement | ATCC | MD-VS | |
Yeast Extract (Bacto) | Fisher Scientific | DF0127-17-9 |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved