ويلكوم ترست لتوفير التمويل فتح الوصول إلى جامعة أكسفورد. روبرت الشماس هو عضو في مجموعة OXION أكسفورد، الذي تموله ويلكوم ترست منحة WT084655MA.

1. جهاز لجميع الاختبارات، ويتم وضعها على سطح مبطن لينة عند قاعدة جهاز لتخفيف أي الفئران التي تسقط. NB لا يظهر هذا في الأرقام، لكي لا يحجب أي جزء من الجهاز. خلال اختبار مئات من الفئران، على حد سواء طبيعية ومتحولة، لاحظنا أبدا أي إصابات تنجم عن السقوط من هذه الأجهزة، والذي هو عادة 30-50 سم ارتفاع. أيضا، تأكد من تنظيف وتعقيم المعدات بين كل فأر اختبار. 1.1 Rotarod هناك عدة نسخ تجارية من هذا الجهاز في السوق، ولكن بعض لها عيوب، مثل عدم التعجيل في سرعة كافية للكشف عن اتناسق موتور (بدلا من القدرة على التحمل). خطأ آخر شائع هو أن قضيب ليست عالية بما فيه الكفاية فوق قاعدة، مما أدى في الفئران تميل إلى إسقاط أو القفز. تم اتخاذ rotarod هو مبين في الشكل 1 لتصميمللمؤلف من قبل أقسام الهندسة من قسم الصيدلة، جامعة أكسفورد. قضيب هو 3 سم في القطر، وأيد 30 سم فوق قاعدة الجهاز. ومخرش السطح في سلسلة من التلال الموازية على طول المحور الطولي، وتمكين الفئران لقبضة بشكل فعال (الشكل 2). NB عمق التلال هو التفصيل الحيوية، وإذا كان الماوس لا يمكن الحصول على قبضة جيدة الاختبار سيكون أصعب بكثير جدا، ومن ناحية أخرى، إذا كانت قبضة جيدة جدا الماوس سوف &quot;عجلة العربة&quot; حول قضيب من خلال عقد بسلبية إلى ذلك. ل &quot;صناع rotarod الهواة&quot; قد يكون من المفيد أن نعرف أن dowelling خشبية مخرش من حجم مناسب بالنسبة للفئران يتوفر تجاريا، بل ستكون بالطبع تحتاج إلى أن تعامل مع الورنيش جيدة للماء قبل الاستخدام. يتم ضبط سرعة بدء إلى 4 دورة في الدقيقة، ومعدل التسارع إلى 20 دورة في الدقيقة / دقيقة. السرعة القصوى هي 40 دورة في الدقيقة. اثنين من الشفاه منع الماوس من مغادرة قضيب. هم 30 سم وقطرها (هذاربما يمكن أن تخفض إلى 20 سم). تم تعيين انفصالهما في 6 سم (كحد أقصى) ولكن قد تحتاج إلى تعديل أصغر للفئران دون الكبار إذا كانت تميل إلى الالتفاف على قضيب. 1.2 قضبان أفقية الثلاثي (الشكل 3) مصنوعة من قضبان النحاس، 38 سم، 49 سم عقد فوق سطح مقاعد البدلاء بواسطة عمود خشبي الدعم في كل نهاية. يتم تأمين الأعمدة إلى قاعدة خشبية ثقيلة. هي ثلاثة أقطار شريط المتاحة: 2 و 4 و 6 ملم. شريط 2 مم هو معيار واحد التي نستخدمها، ولكن العديد من الفئران وصول إلى أقصى درجات على هذا. ولذلك أدرجت قضبان قطرها أكبر في محاولة لصقل الاختبار، كما الفئران لا يمكن أن قبضة هذه على ما يرام. 1.3 قضبان ثابت خمسة المسامير خشبية أو قضبان من سماكة متفاوتة (35 (قضيب 1)، 28، 22، 15 و 9 (قضيب 5) ملم قطر) كل 60 سم يتم إصلاحها طويلة من قبل G-المشبك إلى رف مختبر من هذا القبيل أن قضبان تبرز أفقيا في الفضاء (الشكل 4). نهايةمن قضيب بالقرب من مقاعد البدلاء لديه علامة 10 سم من نهاية، للدلالة على خط النهاية. ارتفاع قضبان فوق الأرض هو 60 سم. إذا كنت بحاجة لاختبار أقصر وأقل تفصيلا، فقط استخدام أكبر وأصغر وقضبان الأوسط. فان بعجات وآخرون. 14 تستخدم فقط على قضيب واحد لتقييم التقدم من مرض هنتنغتون في الفئران. 1.4 القضبان المتوازية اثنين من قضبان الصلب موازية 1 م في الطول و 4 مم في القطر يتم إصلاحها 30 ملم (في مراكزها) وبصرف النظر على أعمدة خشبية دعم في غاياتهم (الشكل 5). قضبان هي 60 سم فوق الأرض. 2. إجراء لجميع الاختبارات، وجلب الفئران إلى الغرفة التجريبية 5-20 دقيقة قبل إجراء الاختبار، للتأكد من أنها مستيقظا تماما. كقاعدة عامة، للسماح للانتعاش من قوة العضلات والعودة إلى مستويات طبيعية من الإثارة، ضع الفئران عن طريق العودة إلى قفص المنزل بعد كل اختبار المحرك. &lt;/ P&gt; 2.1 Rotarod تعيين rotarod مع سرعة بدء من 4 دورة في الدقيقة، ومعدل التسارع 20 دورة في الدقيقة / دقيقة. عقد الماوس من ذيله، ووضعه على قضيب الدورية، التي تواجه بعيدا عن اتجاه دوران لذلك يجب أن السير إلى الأمام على البقاء في وضع مستقيم. هذا هو أسهل أن تفعل إذا تم جلب الفأر يصل نحو قضيب بزاوية 45 درجة أدناه الأفقي؛ سوف محاولة لخفض الماوس من فوق ينتج في انتشاره رجليه الخلفيتين واستيعاب حواف الشفاه. الافراج بسرعة الماوس عندما لمس تقريبا قضيب، فقط إلى الأمام من وفوق قضبان أعلى مركز ميت، مما مكنها من قبضة بسهولة قضيب. A (ربما أسهل وأكثر موثوقية) تقنية هو استخدام رقيقة (10-15 ملم) وتد. عقد الماوس في يد واحدة، خفضه إلى وتد، موازية للمحور طويلة. ومن زاوية وتد مع أسفل الرأس الماوس، حوالي 30 درجة لإعطائها المزيد من الوقت لقبضة rotarod مرة واحدة فإنه يتم تحريرها. خفض الماوس ووتد بين اله الشفاه من rotarod، ومرة ​​واحدة على قضيب الدورية للسحب أسفل وتد بعيدا عن الماوس، والتي سوف فهم قضيب والسير إلى الأمام. في 10 ثانية بعد وضع الماوس على قضيب، بدء التسارع (طالما الماوس تواجه إلى الأمام: إذا لم يكن كذلك، انتظر حتى أنه لا وجه إلى الأمام قبل بدء تسارع)، ونلاحظ السرعة التي الماوس يقع قبالة. إذا كان يقع قبالة قبل 10 ثانية، لاحظ وقت الخريف والمحاولة مرة أخرى، وتصل إلى ثلاثة مرات في المجموع، وتسجيل سرعة في سقوط الأول بعد نقطة ثانية 10. ومع ذلك، يقع قبل 5 ثوانى التي هي نتيجة لضعف الطرح من قبل المجرب لا ينبغي أن يتم تسجيلها. متوسط ​​السرعة في الخريف هو مسند؛ بدلا من استخدام الحد الأقصى للسرعة، وهذا يصحح لممارسة اضافية الماوس يتلقى خلال أشواط الفاشلة، التي يفترض أن تساعد الأداء. وهكذا ماوس الذي يقع قبل 10 ثانية مرة واحدة ثم يبقى على حتى 12 دورة في الدقيقة عشرات المرة الثانية (4 +12) / 2 = 8 دورة في الدقيقة. فأر السقوط مرتين ثمالبقاء على دورة في الدقيقة لمدة 10 درجات (4 +4 +10) / 3 = 6 دورة في الدقيقة. إذا فشل الماوس لقبضة في 10 ثانية ثلاث مرات تعيينه على درجة من 4 دورة في الدقيقة. مشكلة واحدة هي أن الفئران وقف أحيانا المشي إلى الأمام وقبضة قضيب بدلا بحزم، بحيث بسلبية شقلبة الجولة، على الرغم من أن تقع معظم نهاية المطاف قبالة. ولذلك قد يكون من المفيد أن نلاحظ أيضا سرعة عند حدوث أول تلك انقلاب. أحد الحلول الممكنة قد يكون استخدام قضيب التي يبلغ قطرها أكبر أو التلال أقل وضوحا. 2.2 قضبان أفقية كما الفئران تجد أن من الأسهل لفهم ضيق شريط 2 مم، فإنه من المستحسن أن يختبرهم أولا على هذا واحد. عقد الماوس من ذيله، وضعه على مقاعد البدلاء أمام الجهاز، الانزلاق بسرعة الى الوراء حوالي 20 سم (وهذا ينسجم أنه عمودي على شريط)، ورفع بسرعة ودعها فهم الشريط الأفقي في النقطة المركزية مع الأرجل الأمامية فحسب، والافراج عن الذيل، وتبدأ في وقت واحد stopclock. هذا جويكون من الصعب تحقيق كفاءة؛ بعض الفئران قبضة أفضل إذا تم الإفراج عن ذيل فجأة؛ اذا شعروا انهم لا تزال معتمدة أنها قد تفشل في قبضة. نقطة المعيار هو إما سقوط من شريط قبل الماوس تصل إلى واحد من الأعمدة نهاية الشريط، أو الوقت حتى forepaw واحد يمس عمود. وقت اختبار الحد الأقصى (قطع الوقت) هو 30 ثانية. إذا فشل الماوس لفهم شريط بشكل صحيح أول مرة، ويبدو أن هذا يعزى إلى تقنية المجرب، بدلا من الماوس، حاول مرة أخرى (بعد راحة قصيرة في حين يتم اختبار واحد أو اثنين من الفئران آخر) وعدم تسجيل هذا الخريف. إذا انخفض الماوس قبل 5 ثوانى وهذا على ما يبدو ليس بسبب ضعف الطرح من قبل المجرب، وتكرار ما يصل إلى ثلاث مرات في محاولة للحصول على&gt; 5 ثوانى النتيجة. إذا&gt; 5 ثانية في المحاولة الثانية، لا تفعل محاكمة ثالثة. اتخاذ أفضل النتيجة عندما مسند. A الفأر الذي فشل مرارا وتكرارا لدعم نفسها ل&gt; 5 درجات ثوانى فقط 1. إذا كان يتم استخدام الإصدار الثلاثي بار، إذا عشرات الماوس 5 على هذا أول شريط 2 مم وعندئذ يمكن اختباره على القضبان أكثر سمكا، وبعد فترة راحة قصيرة في حين يتم اختبار واحد أو اثنين من الفئران آخر. نظام التسجيل لل4 و 6 مم القضبان هو نفس لشريط 2 مم، والنتيجة النهائية هي مجموع المتراكمة. وهكذا ماوس أن عشرات 5 على شريط 2 مم ولكن يسقط من شريط 4 ملم بعد 13 ثانية عشرات 5 +3 = 8. 2.2.1 بتسجيله قضبان أفقية: فترات الأولين هي أقل بكثير من الماضي اثنين مرة واحدة كما الفئران تتقن البداية المهمة أنهم أقل عرضة للسقوط: الواقعة بين 1-5 ثانية = 1 تقع بين 6-10 ثانية = 2 الواقعة بين 11-20 ثانية = 3 الواقعة بين 21-30 ثانية = 4 السقوط بعد 30 ثانية = 5 وضع forepaw واحد على دعم شريط من دون الوقوع = 5 NB كما الاستخدام الاختياري لل4 و 6 مم القضبان هو إضافة جديدة إلى بروتوكول لدينا أننا لا نملك حتى الآن واسعةتجربة معهم. 2.3 قضبان ثابت ضع الماوس في نهاية بكثير من أوسع قضيب (طول الأنف طرف رئيس واحد من نهاية مثالية). اتخاذ إجراءين: دوام التوجه (الوقت المستغرق لتوجيه 180 درجة من نقطة الانطلاق نحو الجرف) وعبور الزمن (الوقت الذي يستغرقه السفر إلى نهاية الجرف (الأنف وراء سم علامة 10 من نهاية الرف للقضيب). التوجه يعتمد على الماوس البقاء تستقيم، وإذا كان يتحول رأسا على عقب ويتمسك تحت قضيب، تعيين تعسفا ذلك (لأغراض إحصائية) النتيجة التوجه الحد الأقصى من 120 ثانية. لا اختبار على قضبان أصغر؛ أيضا على وقت العبور يصبح الحد الأقصى للقيمة مثل الماوس التي تعبر تستقيم ومن الواضح أن أفضل تنسيقا من واحد التي تعبر في حين معلقة على رأسا على عقب. إذا، بعد توجيه، الماوس يسقط أو أن تصل إلى أقصى وقت الاختبار (ضبط تعسفي في 120 ثانية) لا اختبار على ققضبان maller. للأغراض الإحصائية، يتم تعيين الفئران تعيين هبوط 120 لأن قضيب خاص والمخططات اللاحقة، حيث يفترض أنها ستقع مرة أخرى من قضيب أضيق. إذا كان الماوس يتحول رأسا على عقب، لاحظ أيضا هذا الحدث؛ العبور الناجحة فضلا عن التوجه أنه يجب أن يبقى تستقيم على قضيب. تعيينه الدرجة القصوى خلاف ذلك. إزالة الماوس بعد أن تصل إلى نهاية قضيب أو السقوط. بعد إجراء تجارب على قضيب واحد عودة الماوس إلى قفص المنزل للراحة أثناء اختبار الماوس آخر. ثم وضعه على حجم المقبل قضيب أصغر واختباره في نفس الطريق مرة أخرى. وقف التجارب إذا كان الماوس يقع قبالة قضيب بعد أن عليه لأكثر من 5 ثوانى. إذا سقطت في أقل من 5 ثوانى يحل محله والسماح محاولة أخرى (كما تقع ضمن 5 ثانية يمكن أن يكون بسبب وضعها الخاطئ من قبل المجرب)، لمدة أقصاها ثلاث محاكمات، واستخدام أفضل نتيجة. 2.4 القضبان المتوازية ضع الماوس في تيانه مركز من القضبان اثنين مع عمودي على المحور الطولي إلى أن من القضبان، وينبغي أن يكون على حد سواء الجبهة الكفوف على شريط واحد، على حد سواء الكفوف الخلفيتين على شريط الأخرى. التهديف هو مماثلة لتلك التي لقضبان ثابتة. اتخاذ إجراءين: الوقت الذي يستغرقه حتى يوجه الماوس 90 درجة الى موضع بداية، والوقت حتى يصل في وقت لاحق واحدة من يدعم نهاية. إذا كان الماوس يتحول رأسا على عقب، لاحظ أيضا هذا الحدث. أما بالنسبة لقضبان ثابتة يجب أن يتحقق الاختبار، والتوجه والعبور دون أن تحول رأسا على عقب، وإلا تم تخصيص الحد الأقصى للوقت. فمن النادر بالنسبة للفئران سليمة بشكل معقول أن يسقط في أقل من 5 ثوانى، بل إذا كان هذا لا يحدث على الأرجح بسبب ضعف الطرح. وبالتالي تجاهل النتيجة وإعادة اختبار الماوس.

<ol>
	<li>Barclay, L. L., Gibson, G. E., Blass, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+string+test:+an+early+behavioral+change+in+thiamine+deficiency.">The string test: an early behavioral change in thiamine deficiency.</a> Pharmacol. Biochem. Behav. 14, 153-157 (1981).</li><li>Cain, D. P., Saucier, D., Boon, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Testing+hypotheses+of+spatial+learning:+the+role+of+NMDA+receptors+and+NMDA-mediated+long-term+potentiation.">Testing hypotheses of spatial learning: the role of NMDA receptors and NMDA-mediated long-term potentiation.</a> Behav. Brain Res. 84, 179-193 (1997).</li><li>Contet, C., Rawlins, J. N. P., Deacon, R. M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparison+of+129S2/SvHsd+and+C57BL/6JOlaHsd+mice+on+a+test+battery+assessing+sensorimotor,+affective+and+cognitive+behaviours:+implications+for+the+study+of+genetically+modified+mice.">A comparison of 129S2/SvHsd and C57BL/6JOlaHsd mice on a test battery assessing sensorimotor, affective and cognitive behaviours: implications for the study of genetically modified mice.</a> Behav. Brain Res. 124, 33-46 (2001).</li><li>Deacon, R. M. J., Brook, R. C., Meyer, D., Haeckel, O., Ashcroft, F. M., Miki, T., Seino, S., Liss, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behavioral+phenotyping+of+mice+lacking+the+KATP+channel+subunit+Kir6.2.">Behavioral phenotyping of mice lacking the KATP channel subunit Kir6.2.</a> Physiol. Behav. 87, 723-733 (2006).</li><li>Deacon, R. M. J., Croucher, A., Rawlins, J. N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hippocampal+cytotoxic+lesion+effects+on+species-typical+behaviors+in+mice.">Hippocampal cytotoxic lesion effects on species-typical behaviors in mice.</a> Behav. Brain Res. 132, 203-213 (2002).</li><li>Deacon, R. M. J., Thomas, C. L., Rawlins, J. N. P., Morley, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparison+of+the+behavior+of+C57BL/6+and+C57BL/10+mice.">A comparison of the behavior of C57BL/6 and C57BL/10 mice.</a> Behav. Brain Res. 179, 239-247 (2007).</li><li>Dunham, N. W., Miya, T. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+note+on+a+simple+apparatus+for+detecting+neurological+deficit+in+rats+and+mice.">A note on a simple apparatus for detecting neurological deficit in rats and mice.</a> J. Am. Pharm. Assoc. 46, 208-209 (1957).</li><li>Guenther, K., Deacon, R. M. J., Perry, V. H., Rawlins, J. N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Early+behavioural+changes+in+scrapie-affected+mice+and+the+influence+of+dapsone.">Early behavioural changes in scrapie-affected mice and the influence of dapsone.</a> Eur. J. Neurosci. 14, 401-409 (2001).</li><li>Jones, B. J., Roberts, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+quantitative+measurement+of+motor+inco-ordination+in+naive+mice+using+an+accelerating+rotarod.">The quantitative measurement of motor inco-ordination in naive mice using an accelerating rotarod.</a> J. Pharm. Pharmacol. 20, 302-304 (1968).</li><li>Kondziela, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eine+neue+method+zur+messung+der+muskularen+relaxation+bei+weissen+mausen.">Eine neue method zur messung der muskularen relaxation bei weissen mausen.</a> Arch. int. Pharmacodyn. 152, 277-2784 (1964).</li><li>Lindsey, J. R., Baker, H. J., Suckow, M. A., Weisbroth, S. H., Franklin, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Historical+foundations.">Historical foundations.</a> The laboratory rat. , (2006).</li><li>Metz, G. A., Whishaw, I. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cortical+and+subcortical+lesions+impair+skilled+walking+in+the+ladder+rung+walking+test:+a+new+task+to+evaluate+fore-+and+hindlimb+stepping,+placing,+and+co-ordination.">Cortical and subcortical lesions impair skilled walking in the ladder rung walking test: a new task to evaluate fore- and hindlimb stepping, placing, and co-ordination.</a> J. Neurosci. Met. 15, 169-179 (2002).</li><li>Sigurdsson, E. M., Brown, D. R., Daniels, M., Kascsak, R. J., Kascsak, R., Carp, R., Meeker, H. C., Frangione, B., Wisniewski, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunization+Delays+the+Onset+of+Prion+Disease+in+Mice.">Immunization Delays the Onset of Prion Disease in Mice.</a> Am. J. Pathol. 161, 13-17 (2002).</li><li>van Dellen, A., Blakemore, C., Deacon, R., York, D., Hannan, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Delaying+the+onset+of+Huntington's+in+mice.">Delaying the onset of Huntington's in mice.</a> Nature. 404, 721-722 (2000).</li><li>Vandeputte, C., Taymans, J. -. M., Casteels, C., Coun, F., Ni, Y., Van Laere, K., Baekelandt, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Automated+quantitative+gait+analysis+in+animal+models+of+movement+disorders.">Automated quantitative gait analysis in animal models of movement disorders.</a> BMC Neuroscience. 11, 92 (2010).</li></ol>

المؤلف لا يوجد لديه تضارب المصالح في الكشف عنها.

يرصد سلوك واضح من خلال العمل، والعمل يتطلب المهارات الحركية، بما في ذلك التنسيق من الجسم. تم تنفيذ واحدة من التجارب الأولى في تاريخ سلوك الحيوان بواسطة كولين ستيوارت، وهو طالب الدكتوراه في جامعة كلارك في الولايات المتحدة 11. قاس آخر من الفئران من خلال وضعها في أسطوانة وتحسب عدد المرات التي التفت. هذا الجهاز في وقت مبكر ربما كان رائد تشغيل الإطارات واختبار rotarod المستخدمة حاليا، وإن كان ذلك في جهاز ستيوارت كانت الفئران داخل البرميل، والحركة التي كان يقودها على الفئران، في حين أنه في rotarod يمشي الحيوان على السطح الخارجي لل طبل بالتناوب أو قضيب الذي هو بالمحركات. كان قضيب الأصلية المستخدمة من قبل دنهام وميا (1957) 7 سرعة مجموعة، ولكن في الوقت الحاضر تسريع الإصدارات (جونز وروبرتس 1968) 9 متوفرة. العيب من rotarod السرعة المحددة هي أن بعض الحيوانات مع ضعف التنسيق سوف تسقط فيبداية، في حين أن لتلك التي لا تبقى على، وسوف تبدأ قريبا اختبار لقياس القدرة على التحمل بدلا من التنسيق في حد ذاته. توزيع النسقين من نقاط البيانات الناتجة قد تكون غير طبيعية بما فيه الكفاية للحيلولة دون تحليل حدودي. عندما يتم استخدام rotarod التعجيل، خصوصا في حال تسارع فقط عندما يتم التوصل إلى معيار مجموعة، مثل البقاء لمدة 10 ثانية، وتوزيع بيانات من المرجح أن يكون التمويه. معدل التسارع يمكن تعديلها بحيث التعب موتور لا يلعب دورا هاما في الأداء؛ ماوس من غير المرجح أن يكون مرهق بشكل ملحوظ بعد فقط 2-3 وقت دقيقة على rotarod. &quot;اختبار سلسلة&quot; 1 &quot;، معطف شماعات اختبار&quot; أو الشريط الأفقي يقيس قوة forelimb والتنسيق. الصفات اثنين ونقلت الرجوع إلى تطويره؛ أصلا كانت تستخدم سلسلة، ولكن لاحظت في الكتاب أن الأداء يعتمد كثيرا على كيفية مشدود السلسلة كان، وتستخدم بالتالي المجربون المستقبل قضيب معدني، غالبا ما تكون شماعات معطف. لقد وجدنا أن قدرة الفأر لقبضة شريط يتناسب عكسيا مع قطرها، واستخدمت standardly بار 2 مم. في اختبار الأوزان (انظر البروتوكول إن الرب &quot;قياس قوة الفئران&quot;) سلك دقيق جدا من الفراء / حجم جامع غلاية يسمح أقوى الحيوانات لتأمين مثل هذا قبضة جيدة يتمكنوا من رفع أكثر من وزنهم جسده. ومع ذلك، باستخدام قضبان قطرها أكبر الأفقي يمكن أن يكون ميزة وحساسية الاختبار يحسن؛ فقط مع شريط 2 مم الأكثر طبيعية C57BL / 6 الفئران وصول إلى الأداء السقف. وبالتالي اعتمدنا مؤخرا جهاز ثلاثة بار، ويمكن للأشرطة يكون متبادل بسهولة لأنها تنسجم مع الشقوق يقتطع من قمم الأعمدة الداعمة. وتعقد القضبان تحت التوتر (مهم خصوصا لجعل شريط 2 مم جامدة) لأنها تناسب فقط الشقوق عند مستويات الدعم رسمها قليلا معا (مثل الأقواس الطويلة وسلسلة بها) (انظر الشكل 3). وكثيرا ما استخدمت قضبان ثابتة أو الحزملقياس التنسيق، ولكن كان يستخدم دائما حافزا إضافيا لإقناع الحيوانات لاجتياز قضيب. وبعد التفاوض على شعاع الأفقي للوصول إلى الهدف المنشود، مثل قفص المنزل، هربا من الضوء الساطع، أو الطعام (إذا أحرز أنها الجياع). ومع ذلك، في سياق التحقيق في هذا النوع من الاختبار، واكتشفت أن الفئران من شأنه أن يحول بشكل عفوي حول عند وضعه على &quot;فتح&quot; نهاية قضيب الكابولي، ومن ثم اجتياز ذلك حتى وصلوا إلى نهاية معتمد. هذا الأسلوب يلغي الحاجة للتدريب (ضروري في اختبار المتغيرات المذكورة سابقا) كرد فعل فطرية على فأرة الحاسوب ليتم وضعها بالقرب من نهاية قضيب مرتفعة هو محاولة للوصول الى نهاية معتمد. هذا لا، بطبيعة الحال، والقضاء على المشكلة التي تغييرات تحفيزية قد تؤثر على الأداء، الذي هو دائما مع إمكانية هذا النوع من الإجراء. في الوقت الحاضر تستخدم الأنفاق من الورق المقوى بكثير للمنزل قفص تخصيب البيئية، ولكن disad بهمالفضل في السياق الحالي هو أن حتما أن تمارس الحيوانات في التوازن على اسطوانات التي يمكن أن تمايل حول محور الطويل، ومحاكاة المهارات اللازمة لتحقيق التوازن على rotarod. وهكذا الرئيسية تخصيب قفص يحتمل أن تخفي النمط الظاهري السلوكية؛ مثال هو تحسين حال النمط الظاهري مرض هنتنغتون بواسطة تخصيب 14. الحيوانات أيضا في كثير من الأحيان السير على طول المحور الطويل من هذه الأنفاق، كما عند المشي على طول شعاع ثابت مرتفعة. ولذلك، فإنني شيدت زوج من القضبان المتوازية مرتفعة، وضعت الفئران في منتصف مع الأرجل الأمامية في شريط واحد وhindpaws من جهة أخرى، وهي حالة يمكن أن يكونوا قد واجه من قبل. كان الفئران للوصول الى يدعم نهاية المتوازيين في حين تبقى تستقيم لاجتياز الاختبار. وكان جهاز مماثل إلى حد ما سلسلة من المتوازيين وضعت في قفص الماوس لتقييم تطور سكرابي الناجم عن اختلال وظيفي للسيارات 13. لقد اختبرنا الآن عدة مئات منالفئران لسير السيارات في أكسفورد. تلقت هذه العلاجات المختلفة بما في ذلك وكلاء الدوائية، أو نقل السلبي من الأنسجة (البلازما) من البشر، ولكن في الغالب الحيوانات المعدلة وراثيا. وبعض الحيوانات أكثر ضعاف على قوة من مهام التنسيق والعكس بالعكس الآخرين. وكانت بعض الفئران أكثر ضعاف على rotarod من على ركائز ثابتة مثل قضبان ثابتة والمتوازيين، بالعكس الآخرين. وبالتالي فإن المادة والبروتوكول المرافق له إن الرب &quot;قياس قوة في الفئران&quot;) تصف كيفية توصيف طريقة العلاج والطفرات المختلفة يمكن أن تؤثر بشكل مختلف وظيفة الحركة في الفئران. وبصرف النظر عن rotarod الجهاز الموصوفة هنا هو بسيطة ورخيصة ومناسبة خاصة للمختبرات غير متخصصة لاختبار المهارات الحركية. لتحليل المشية على نطاق وغرامة، ونظام المنصة هو نظام أكثر تطورا من الأساليب القديمة مثل إقناع الماوس على المشي من خلال حمام الحبر ثم أسفل قطعة من الورق، بل هو مكلفهه قطعة من الجهاز. وقد صممت جميع هذه الاختبارات لقياس التنسيق بدلا من قوة، على الرغم من الواضح أن درجة الحد الأدنى من العضلات هو ضروري لمجرد الماوس لاستخدام أطرافه. لتقييم قوة، الإجراء الشاشة مقلوب 10 هو أكثر ملاءمة، أو، إذا كنت بحاجة لقياس أكثر متدرج، واختبار الأوزان أو لها الآلي شريط سحب ما يعادل (إن الرب هو موضح في البروتوكول &quot;قياس قوة في الفئران&quot;). والاستثناء هو اختبار شريط أفقي، الأمر الذي يتطلب على حد سواء قوة والتنسيق للأداء الناجح.

measuring motor coordination in mice

ويتزايد استخدام الفئران في علم الأعصاب السلوكي، لتحل محل إلى حد كبير الفئران والحيوان سلوكي في الاختيار. قبل يمكن تقييم جوانب السلوك مثل الانفعالية أو الإدراك، ومع ذلك، فمن الأهمية بمكان تحديد ما إذا كانت قدرات المحركات من مثل ماوس أو متحولة lesioned يسمح مثل هذا التقييم. قد يكون جيدا ضعف الأداء على مهمة المتاهة التي تتطلب قوة والتنسيق، مثل متاهة موريس المائية، في الماوس عن طريق السيارات، وبدلا من المعرفي، ضعف، لذلك فمن الضروري أن يشرح بشكل انتقائي وهذا الأخير من السابق. على سبيل المثال، تسبب العاهات الحسية التي أثبتت مضادات NMDA لإضعاف الأداء متاهة مائية 2. وقد جرت العادة على تقييم التنسيق الحركي في الفئران والجرذان من قبل الاختبار rotarod، التي وضعت للحيوان على قضيب أفقي التي تدور حول محورها الطويل؛ الحيوان يجب السير إلى الأمام لتبقى تستقيم ولا تسقط.كلا السرعة المحددة والإصدارات المتسارع للrotarod المتاحة. الاختبارات الثلاثة الأخرى المذكورة في هذه المقالة (شريط أفقي، وقضبان ثابتة والمتوازيين) كل التنسيق التدبير على جهاز ثابت. يتطلب شريط أفقي أيضا قوة للحصول على أداء ملائمة، ولا سيما من الأطراف الأمامية مثل الماوس السيطرة في البداية شريط فقط مع الجبهة الكفوف. الفئران الكبار لا يؤدون بشكل جيد في الاختبارات مثل قضبان ثابتة والمتوازيين (الملاحظات الشخصية)؛ تظهر منسقة بشكل أقل من الفئران. لقد اختبرت فقط ذكور الفئران، ومع ذلك، والفئران الذكور تبدو أقل عموما منسقة تنسيقا جيدا من الإناث. تظهر الفئران لديها أعلى قوة: نسبة الوزن من الفئران؛ اسم اللاتينية، المصحف العضلة، يبدو من المناسب تماما. وrotarod، يتم استخدام أشكال مختلفة من الاختبار خطأ القدم 12 أو المنصة (Noldus) 15 جهاز عموما لتقييم التنسيق الحركي في الفئران.

النتائج المتوقعة أسفر ذلك عن إصابة قضيب ثابت في الأصل تستخدم لرصد التقدم المحرز من مرض هنتنغتون في فئرانا معدلة وراثيا، مع أو من دون تخصيب البيئية في أقفاص وطنهم 14. برنامج تخصيب تأخرت بشكل كبير بداية من محرك اختلال وظيفي على قضيب، والذي توازيه تأخير في ظهور مخلب هند الشبك، علامة العامة للإعاقة للجهاز العصبي. وأظهرت الفئران المصابة سكرابي انخفاض في الأداء شريط أفقي من الأسبوع 16 بعد الحقن، في اختبار rotarod من الأسبوع 18، وقضبان ثابتة من أسبوع على الأقل 19 8 (لم يتم تنفيذ الاختبار في وقت سابق). تم ضعاف KATP قناة الوحيدات Kir6.2 الفئران KO على قضبان ثابتة وشريط أفقي، ولكن ليس على rotarod 4. كان آفات الحصين أي تأثير على أي قدر من القدرة الحركية 5، ولكن تم ضعاف الفئران 129S2/Sv نسبة إلى C57BL / 6 الضغط على قضبان rotarod وثابت 3. C57Bكان L/10 الفئران أيضا الأداء الحركي أسوأ من C57BL / 6 الفئران 6، وإن لم يكن بنفس القدر كما الفئران 129S2/Sv. <img alt="الشكل 1" src="/files/ftp_upload/2609/2609fig1.jpg" /> الشكل 1. وrotarod. <img alt="الشكل 2" src="/files/ftp_upload/2609/2609fig2.jpg" /> الشكل 2. التفاصيل من قضيب مخرش للrotarod. <img alt="الشكل (3)" src="/files/ftp_upload/2609/2609fig3.jpg" /> الشكل (3). أشرطة أفقية ثلاثة أضعاف شريط عقدت في الشقوق هي الأساسية 2 مم واحد؛. علق تحتها (لأغراض العرض التوضيحي فقط) هي مم القضبان 4 و 6. في الممارسة العملية، وفترة زمنية محددة شريط واحد فقط في وقت واحد في الدعم حقق. <imز ALT = &quot;الشكل 4&quot; SRC = &quot;/ files/ftp_upload/2609/2609fig4.jpg&quot; /&gt; الشكل 4. فأر عبور قضيب ثابت. <img alt="الرقم 5" src="/files/ftp_upload/2609/2609fig5.jpg" /> الشكل 5. لقد تم حذف A الماوس على المتوازيين. الحشو لأغراض العرض التوضيحي فقط.

Watch this Scientific Journal Video about Measuring Motor Coordination in Mice at JoVE.com

Measuring Motor Coordination in Mice

يتم عرض بروتوكولات لمهمتين أنشأت محرك التنسيق، وتسريع شريط rotarod والأفقي، أيضا اختبارين المتقدمة في أكسفورد مؤخرا، وقضبان ثابتة والمتوازيين. هذه الاختبارات يمكن الكشف عن الإعاقات الحركية يحتمل أن تكون ذات أهمية في حد ذاتها، فضلا عن كونه المتغيرات المحتملة في اختبارات مناطق أخرى من السلوك.

قياس التناسق الحركي في الفئران

Mice are increasingly being used in behavioral neuroscience, largely replacing rats as the behaviorist's animal of choice. Before aspects of behavior such ...

Research

JoVE Journal

Neuroscience

99.2K Views.  University of Oxford. يتم عرض بروتوكولات لمهمتين أنشأت محرك التنسيق، وتسريع شريط rotarod والأفقي، أيضا اختبارين المتقدمة في أكسفورد مؤخرا، وقضبان ثابتة والمتوازيين. هذه الاختبارات يمكن الكشف عن الإعاقات الحركية يحتمل أن تكون ذات أهمية في حد ذاتها، فضلا عن كونه المتغيرات المحتملة في ا?...

Video: Measuring Motor Coordination in Mice

Assessment of Motor Balance and Coordination in Mice using the Balance Beam

Brain injury, genetic manipulations, and pharmacological treatments can result in alterations of motor skills in mice. Fine motor coordination and balance can be assessed by the beam walking assay. The goal of this test is for the mouse to stay upright and walk across an elevated narrow beam to a safe platform. This test takes place over 3 consecutive days: 2 days of training and 1 day of testing. Performance on the beam is quantified by measuring the time it takes for the mouse to traverse the beam and the number of paw slips that occur in the process. Here we report the protocol used in our laboratory, and representative results from a cohort of C57BL/6 mice. This task is particularly useful for detecting subtle deficits in motor skills and balance that may not be detected by other motor tests, such as the Rotarod.

Deficits in fine motor coordination can be assessed with the balance beam test. Performance on the beam is quantified by the speed at which the beam is traversed and the number of times the mouse slips on the beam.

تقييم الرصيد موتور والتنسيق في الفئران باستخدام عارضة التوازن

Brain injury, genetic manipulations, and pharmacological treatments can result in alterations of motor skills in mice.  Fine motor coordination and ...

Measuring Circadian and Acute Light Responses in Mice using Wheel Running Activity

Circadian rhythms are physiological functions that cycle over a period of approximately 24 hours (circadian- circa: approximate and diem: day)1, 2. They are responsible for timing our sleep/wake cycles and hormone secretion. Since this timing is not precisely 24-hours, it is synchronized to the solar day by light input. This is accomplished via photic input from the retina to the suprachiasmatic nucleus (SCN) which serves as the master pacemaker synchronizing peripheral clocks in other regions of the brain and peripheral tissues to the environmental light dark cycle3-7. The alignment of rhythms to this environmental light dark cycle organizes particular physiological events to the correct temporal niche, which is crucial for survival8. For example, mice sleep during the day and are active at night. This ability to consolidate activity to either the light or dark portion of the day is referred to as circadian photoentrainment and requires light input to the circadian clock9. Activity of mice at night is robust particularly in the presence of a running wheel. Measuring this behavior is a minimally invasive method that can be used to evaluate the functionality of the circadian system as well as light input to this system. Methods that will covered here are used to examine the circadian clock, light input to this system, as well as the direct influence of light on wheel running behavior.

This article will review methods that can be used to determine circadian function and light responsiveness in mice.

قياس ردود الإيقاعية الخفيفة والحادة في الفئران باستخدام نشاط عجلة دوارة

Circadian rhythms are physiological functions that cycle over a period of approximately 24 hours (circadian- circa: approximate and diem: day)1, 2.  They ...

Extracellularly Identifying Motor Neurons for a Muscle Motor Pool in Aplysia californica

In animals with large identified neurons (e.g. mollusks), analysis of motor pools is done using intracellular techniques1,2,3,4. Recently, we developed a technique to extracellularly stimulate and record individual neurons in Aplysia californica5. We now describe a protocol for using this technique to uniquely identify and characterize motor neurons within a motor pool.
This extracellular technique has advantages. First, extracellular electrodes can stimulate and record neurons through the sheath5, so it does not need to be removed. Thus, neurons will be healthier in extracellular experiments than in intracellular ones. Second, if ganglia are rotated by appropriate pinning of the sheath, extracellular electrodes can access neurons on both sides of the ganglion, which makes it easier and more efficient to identify multiple neurons in the same preparation. Third, extracellular electrodes do not need to penetrate cells, and thus can be easily moved back and forth among neurons, causing less damage to them. This is especially useful when one tries to record multiple neurons during repeating motor patterns that may only persist for minutes. Fourth, extracellular electrodes are more flexible than intracellular ones during muscle movements. Intracellular electrodes may pull out and damage neurons during muscle contractions. In contrast, since extracellular electrodes are gently pressed onto the sheath above neurons, they usually stay above the same neuron during muscle contractions, and thus can be used in more intact preparations.
To uniquely identify motor neurons for a motor pool (in particular, the I1/I3 muscle in Aplysia) using extracellular electrodes, one can use features that do not require intracellular measurements as criteria: soma size and location, axonal projection, and muscle innervation4,6,7. For the particular motor pool used to illustrate the technique, we recorded from buccal nerves 2 and 3 to measure axonal projections, and measured the contraction forces of the I1/I3 muscle to determine the pattern of muscle innervation for the individual motor neurons.
We demonstrate the complete process of first identifying motor neurons using muscle innervation, then characterizing their timing during motor patterns, creating a simplified diagnostic method for rapid identification. The simplified and more rapid diagnostic method is superior for more intact preparations, e.g. in the suspended buccal mass preparation8 or in vivo9. This process can also be applied in other motor pools10,11,12 in Aplysia or in other animal systems2,3,13,14.

Extracellularly Identifying Motor Neurons for a Muscle Motor Pool in Aplysia californica

In animals with large identified neurons (e.g. mollusks), analysis of motor pools is done using intracellular techniques1,2,3,4. Recently, we developed a technique to extracellularly stimulate and record individual neurons in Aplysia californica5. We now describe a protocol for using this technique to uniquely identify and characterize motor neurons within a motor pool.

تحديد الخلايا العصبية الحركية خارج الخلية لعضلة حمام سباحة للسيارات في<em&gt; Aplysia californica</em

In animals with large  identified neurons (e.g. mollusks), analysis of motor pools is done using  intracellular techniques1,2,3,4. Recently,  we developed ...

Measuring Changes in Tactile Sensitivity in the Hind Paw of Mice Using an Electronic von Frey Apparatus

Measuring inflammation-induced changes in thresholds of hind paw withdrawal from mechanical pressure is a useful technique to assess changes in pain perception in rodents. Withdrawal thresholds can be measured first at baseline and then following drug, venom, injury, allergen,&#160;or otherwise evoked inflammation by applying an accurate force on very specific areas of the skin. An electronic von Frey apparatus allows precise assessment of mouse hind paw withdrawal thresholds that are not limited by the available filament sizes in contrast to classical von Frey measurements. The ease and rapidity of measurements allow for incorporation of assessment of tactile sensitivity outcomes in diverse models of rapid-onset inflammatory and neuropathic pain as multiple measurements can be taken within a short time period. Experimental measurements for individual rodent subjects can be internally controlled against individual baseline responses and exclusion criteria easily established to standardize baseline responses within and across experimental groups. Thus, measurements using an electronic von Frey apparatus represent a useful modification of the well-established classical von Frey filament-based assays for rodent mechanical allodynia that may also be applied to other nonhuman mammalian models.

Electronic von Frey measurements are an effective and improved alternative to classical von Frey filaments, as they allow rapid and precise measurement of changes in rodent mechanical withdrawal thresholds to continuously applied pressure stimuli before and after an inflammatory event.

Measuring inflammation-induced changes in thresholds of hind paw withdrawal from mechanical pressure is a useful technique to assess changes in pain ...

Measuring Spinal Presynaptic Inhibition in Mice By Dorsal Root Potential Recording In Vivo

Presynaptic inhibition is one of the most powerful inhibitory mechanisms in the spinal cord. The underlying physiological mechanism is a depolarization of primary afferent fibers mediated by GABAergic axo-axonal synapses (primary afferent depolarization). The strength of primary afferent depolarization can be measured by recording of volume-conducted potentials at the dorsal root (dorsal root potentials, DRP). Pathological changes of presynaptic inhibition are crucial in the abnormal central processing of certain pain conditions and in some disorders of motor hyperexcitability. Here, we describe a method of recording DRP in vivo in mice. The preparation of spinal cord dorsal roots in the anesthetized animal and the recording procedure using suction electrodes are explained. This method allows measuring GABAergic DRP and thereby estimating spinal presynaptic inhibition in the living mouse. In combination with transgenic mouse models, DRP recording may serve as a powerful tool to investigate disease-associated spinal pathophysiology. In vivo recording has several advantages compared to ex vivo isolated spinal cord preparations, e.g. the possibility of simultaneous recording or manipulation of supraspinal networks and induction of DRP by stimulation of peripheral nerves.

Measuring Spinal Presynaptic Inhibition in Mice By Dorsal Root Potential Recording In Vivo

GABAergic presynaptic inhibition is a powerful inhibitory mechanism in the spinal cord important for motor and sensory signal integration in spinal cord networks. Underlying primary afferent depolarization can be measured by recording of dorsal root potentials (DRP). Here we demonstrate a method of in vivo recording of DRP in mice.

قياس العمود الفقري قبل المشبكي في الفئران عن طريق تثبيط الظهرية جذر تسجيل المحتملة<em&gt; في فيفو</em

Presynaptic inhibition is one of the most powerful inhibitory mechanisms in the spinal cord. The underlying physiological mechanism is a depolarization of ...

The Neuromuscular Junction: Measuring Synapse Size, Fragmentation and Changes in Synaptic Protein Density Using Confocal Fluorescence Microscopy

The neuromuscular junction (NMJ) is the large, cholinergic relay synapse through which mammalian motor neurons control voluntary muscle contraction. Structural changes at the NMJ can result in neurotransmission failure, resulting in weakness, atrophy and even death of the muscle fiber. Many studies have investigated how genetic modifications or disease can alter the structure of the mouse NMJ. Unfortunately, it can be difficult to directly compare findings from these studies because they often employed different parameters and analytical methods. Three protocols are described here. The first uses maximum intensity projection confocal images to measure the area of acetylcholine receptor (AChR)-rich postsynaptic membrane domains at the endplate and the area of synaptic vesicle staining in the overlying presynaptic nerve terminal. The second protocol compares the relative intensities of immunostaining for synaptic proteins in the postsynaptic membrane. The third protocol uses Fluorescence Resonance Energy Transfer (FRET) to detect changes in the packing of postsynaptic AChRs at the endplate. The protocols have been developed and refined over a series of studies. Factors that influence the quality and consistency of results are discussed and normative data are provided for NMJs in healthy young adult mice.

The neuromuscular junction (NMJ) is altered in a variety of conditions that can sometimes culminate in synaptic failure. This report describes fluorescence microscope-based methods to quantify such structural changes.

على الموصل العصبي العضلي: قياس المشبك الحجم، التغييرات تجزئة ومتشابك الكثافة البروتين عن طريق متحد البؤر مضان المجهر

The neuromuscular junction (NMJ) is the large, cholinergic relay synapse through which mammalian motor neurons control voluntary muscle contraction. ...

Polygraphic Recording Procedure for Measuring Sleep in Mice

Recording of the epidural electroencephalogram (EEG) and electromyogram (EMG) in small animals, like mice and rats, has been pivotal to study the homeodynamics and circuitry of sleep-wake regulation. In many laboratories, a cable-based sleep recording system is used to monitor the EEG and EMG in freely behaving mice in combination with computer software for automatic scoring of the vigilance states on the basis of power spectrum analysis of EEG data. A description of this system is detailed herein. Steel screws are implanted over the frontal cortical area and the parietal area of 1 hemisphere for monitoring EEG signals. In addition, EMG activity is monitored by the bilateral placement of wires in both neck muscles. Non-rapid eye movement (Non-REM; NREM) sleep is characterized by large, slow brain waves with delta activity below 4 Hz in the EEG, whereas a shift from low-frequency delta activity to a rapid low-voltage EEG in the theta range between 6 and 10 Hz can be observed at the transition from NREM to REM sleep. By contrast, wakefulness is identified by low- to moderate-voltage brain waves in the EEG trace and significant EMG activity.

The recording of electroencephalogram (EEG) and electromyogram (EMG) in freely behaving mice is a critical step to correlate behavior and physiology with sleep and wakefulness. The experimental protocol described herein provides a cable-based system for acquiring EEG and EMG recordings in mice.

تسجيل الطباعة الداخلي لقياس النوم في الفئران

Recording of the epidural electroencephalogram (EEG) and electromyogram (EMG) in small animals, like mice and rats, has been pivotal to study the ...

Retrograde Neuroanatomical Tracing of Phrenic Motor Neurons in Mice

Phrenic motor neurons are cervical motor neurons originating from C3 to C6 levels in most mammalian species. Axonal projections converge into phrenic nerves innervating the respiratory diaphragm. In spinal cord slices, phrenic motor neurons cannot be identified from other motor neurons on morphological or biochemical criteria. We provide the description of procedures for visualizing phrenic motor neuron cell bodies in mice, following intrapleural injections of cholera toxin subunit beta (CTB) conjugated to a fluorophore. This fluorescent neuroanatomical tracer has the ability to be caught up at the diaphragm neuromuscular junction, be carried retrogradely along the phrenic axons and reach the phrenic cell bodies. Two methodological approaches of intrapleural CTB delivery are compared: transdiaphragmatic versus transthoracic injections. Both approaches are successful and result in similar number of CTB-labeled phrenic motor neurons. In conclusion, these techniques can be applied to visualize or quantify the phrenic motor neurons in various experimental studies such as those focused on the diaphragm-phrenic circuitry.

Here, we describe a protocol for identifying phrenic motor neurons in mice after intrapleural delivery of fluorophore conjugated cholera toxin subunit beta. Two techniques are compared to inject the pleural cavity: transdiaphragmatic versus transthoracic approaches.

تتبع نيورواناتوميكال إلى الوراء للخلايا العصبية الحركية فرنك في الفئران

Phrenic motor neurons are cervical motor neurons originating from C3 to C6 levels in most mammalian species. Axonal projections converge into phrenic ...

Evaluation of Hemisphere Lateralization with Bilateral Local Field Potential Recording in Secondary Motor Cortex of Mice

This article demonstrates complete, detailed procedures for both in vivo bilateral recording and analysis of local field potential (LFP) in the cortical areas of mice, which are useful for evaluating possible laterality deficits, as well as for assessing brain connectivity and coupling of neural network activities in rodents. The pathological mechanisms underlying Alzheimer&#39;s disease (AD), a common neurodegenerative disease, remain largely unknown. Altered brain laterality has been demonstrated in aging people, but whether or not abnormal lateralization is one of the early signs of AD has not been determined. To investigate this, we recorded bilateral LFPs in 3-5-month-old AD model mice, APP/PS1, together with littermate wild type (WT) controls. The LFPs of the left and right secondary motor cortex (M2), specifically in the gamma band, were more synchronized in APP/PS1 mice than in WT controls, suggesting a declined hemispheric asymmetry of bilateral M2 in this AD mouse model. Notably, the recording and data analysis processes are flexible and easy to carry out, and can also be applied to other brain pathways when conducting experiments that focus on neuronal circuits.

We present in vivo electrophysiological recording of the local field potential (LFP) in bilateral secondary motor cortex (M2) of mice, which can be applied to evaluate hemisphere lateralization. The study revealed altered levels of synchronization between the left and right M2 in APP/PS1 mice compared to WT controls.

تقييم التجانب في نصف الكرة الأرضية مع التسجيل الميداني المحلي الثنائي المحتمل في القشرة الحركية الثانوية للفئران

This article demonstrates complete, detailed procedures for both in vivo bilateral recording and analysis of local field potential (LFP) in the cortical ...

3D Kinematic Analysis for the Functional Evaluation in the Rat Model of Sciatic Nerve Crush Injury

Compared to the Sciatic Functional Index (SFI), kinematic analysis is a more reliable and sensitive method for performing functional evaluations of sciatic nerve injury rodent models. In this protocol, we describe a novel kinematic analysis method that uses a three-dimensional (3D) motion capture apparatus for functional evaluations using a rat sciatic nerve crush injury model. First, the rat is familiarized with treadmill walking. Markers are then attached to the designated bone landmarks and the rat is made to walk on the treadmill at the desired speed. Meanwhile, the posterior limb movements of the rat are recorded using four cameras. Depending on the software used, marker tracings are created using both automatic and manual modes and the desired data are produced after subtle adjustments. This method of kinematic analysis, which uses a 3D motion capture apparatus, offers numerous advantages, including superior precision and accuracy. Many more parameters can be investigated during the comprehensive functional evaluations. This method has several shortcomings that require consideration: The system is expensive, can be complicated to operate, and may produce data deviations due to skin shifting. Nevertheless, kinematic analysis using a 3D motion capture apparatus is useful for performing functional anterior and posterior limb evaluations. In the future, this method may become increasingly useful for generating accurate assessments of various traumas and diseases.

We introduce a kinematic analysis method that uses a three-dimensional motion capture apparatus containing four cameras and data processing software for performing functional evaluations during fundamental research involving rodent models.

3D تحليل الحركية للتقييم الوظيفي في نموذج الفئران من عرق النسا الأعصاب سحق الإصابة

Compared to the Sciatic Functional Index (SFI), kinematic analysis is a more reliable and sensitive method for performing functional evaluations of ...