A Wellcome Trust para a concessão de financiamento de Acesso Aberto para a Universidade de Oxford. Robert Deacon é um membro do grupo Oxion Oxford, financiado pelo Wellcome Trust concessão WT084655MA.

1. Aparelho Para todos os testes, uma superfície acolchoada macio é colocado na base do aparelho, para amortecer quaisquer murganhos que caem. NB Isto não é mostrado nas figuras, de modo a não obscurecer a qualquer parte do aparelho. Durante o teste de centenas de murganhos, tanto normais e mutante, que nunca observado qualquer dano causado pela queda de tais aparelhos, que é tipicamente 30-50 cm de altura. Além disso, certifique-se de limpar e esterilizar o equipamento entre cada rato testado. 1.1 Rotarod Existem diversas versões comerciais deste aparelho no mercado, mas têm alguns inconvenientes, tais como a não acelerar a uma velocidade adequada para a detecção de incoordenação motora (em vez de resistência). Outra falha comum é que a haste não é suficientemente elevada acima da base, o que resulta em ratinhos que tendem a deixar cair ou saltar. O rotarod mostrado na Figura 1, foi introduzida na concepçãodo autor pelos setores de engenharia do Departamento de Farmacologia da Universidade de Oxford. A haste é de 3 cm de diâmetro, suportados 30 cm acima da base do aparelho. A superfície é serrilhado em uma série de sulcos paralelos ao longo do eixo longitudinal, permitindo que os ratinhos a prender eficazmente (Figura 2). NB A profundidade dos sulcos é um detalhe vital, se o mouse não pode obter uma boa aderência, o teste será muito mais difícil, por outro lado, se a aderência é muito bom o mouse vai &quot;cambalhota&quot; em torno da haste passivamente segurando sobre a mesma. &quot;Para os fabricantes de rotarod amadores&quot;, pode ser útil saber que cavilhar madeira serrilhado de um tamanho adequado para ratos está disponível comercialmente, mas, evidentemente, precisa ser tratada com um bom verniz à prova d&#39;água antes do uso. A velocidade inicial é ajustado para 4 rpm, a taxa de aceleração de 20 rpm / min. A velocidade máxima é de 40 rpm. Duas flanges impedir o rato sair da haste. Eles são de 30 cm de diâmetro (istoprovavelmente poderia ser reduzido para 20 cm). A separação é fixado em 6 cm (máximo), mas podem ter de ser ajustada para o menor sub-ratinhos adultos quando eles tendem a girar em torno da haste. 1,2 barras horizontais triplos (Figura 3) As barras são feitas de latão, de 38 cm de comprimento, realizada 49 centímetros acima da superfície da bancada por uma coluna de sustentação de madeira em cada extremidade. As colunas são fixados a uma base de madeira pesada. Três diâmetros de barras estão disponíveis: 2, 4 e 6 mm. O bar de 2 mm é o padrão que usamos, mas muitos ratos atingir pontuação máxima sobre isso. Portanto barras de maior diâmetro têm sido incluídos em uma tentativa para refinar o teste, enquanto os ratos não podem agarrar estas tão bem. 1.3 hastes estáticos Cinco buchas de madeira ou perfis, de espessura variável (35 (haste 1), 28, 22, 15 e 9 (haste 5) mm de diâmetro) com 60 cm de comprimento são fixadas por uma G-braçadeira para uma prateleira de laboratório de tal modo que as hastes salientes horizontalmente para o espaço (Figura 4). A extremidadeda haste perto do banco tem uma marca de 10 cm da extremidade, para denotar a linha de chegada. A altura das hastes acima do chão é de 60 cm. Se for necessário um teste mais curtos e menos detalhada, utilize apenas os maiores e hastes menores e meio. Van Dellen et al. 14 utilizado apenas uma única haste de avaliar o progresso da doença de Huntington em ratinhos. 1.4 Barras paralelas Duas barras de aço paralelos 1 m de comprimento e 4 mm de diâmetro, são fixados de 30 mm (em seus centros) separados por colunas de apoio em madeira em suas extremidades (Figura 5). As barras são de 60 cm acima do chão. 2. Procedimento Para todos os testes, camundongos trazer para a sala experimental 5-20 min antes do teste, para garantir que eles são totalmente acordado. Como regra geral, para permitir a recuperação da força muscular e um retorno aos níveis normais de excitação, descansar os ratos por um retorno à jaula para casa depois de cada teste motor. &lt;/ P&gt; 2.1 Rotarod Definir o rotarod com uma velocidade inicial de 4 rpm, taxa de aceleração de 20 rpm / min. Segurando o rato pela cauda, ​​e colocá-lo na haste rotativa, de costas para o sentido de rotação por isso tem de andar para a frente para ficar em pé. Isto é mais fácil de fazer se o rato é trazido para cima para a haste segundo um ângulo de 45 ° abaixo da horizontal, a tentativa de diminuir o rato a partir de cima vai resultar em que espalha suas pernas traseiras e agarrar as extremidades dos flanges. Solte rapidamente o mouse quando ele está quase tocando a barra, apenas à frente e acima das barras de ponto morto superior, o que lhe permite agarrar facilmente a haste. Uma técnica (provavelmente mais fácil e mais fiável) é a utilização de um (10-15 mm) passador fino. Segurando o mouse em uma mão, baixe-o para o passador, em paralelo ao longo eixo. A cavilha é inclinada para baixo, com a cabeça de rato cerca de 30 ° para dar mais tempo para agarrar o rotarod, uma vez que é libertado. Abaixe o mouse e passador entre the flanges do rotarod, e uma vez sobre a haste rotativa a puxar o pino para baixo, longe do mouse, que irá captar a vara e andar para a frente. Aos 10 segundos depois de colocar o mouse sobre a barra, começar a aceleração (desde que o mouse é voltado para a frente, se não, espere até que ele faz para a frente antes de começar a aceleração), e observe a velocidade com que o mouse cai. Se ele cai antes de 10 segundos, observe o tempo de queda e tente novamente, até três vezes no total, registrando a velocidade com a primeira queda após o ponto 10 seg. No entanto, cai antes de 5 segundos que são devido à má colocação pelo experimentador não devem ser registrados. A velocidade média de queda é o dado, em vez de usar a velocidade máxima, isso corrige para a prática extra, o rato recebe durante as corridas fracassado, que é assumido ajudaria performance. Assim, um rato que cai antes de 10 segundos, em seguida, uma vez que permanece em até 12 rpm segundo contagens de tempo (4 +12) / 2 = 8 rpm. Um rato cair duas vezes, em seguida,permanecer por 10 rpm pontuação (4 +4 +10) / 3 = 6 rpm. Se um rato não pega em 10 segundos, três vezes atribuir uma pontuação de 4 rpm. Um problema é que os ratos às vezes parar de andar para a frente e segurar a vara com firmeza em vez disso, para que eles passivamente cambalhota rodada, embora a maioria, eventualmente, cair. Portanto, pode ser útil observar também a velocidade quando ocorre o primeiro tal inversão. Uma solução possível pode ser a utilização de uma haste com um diâmetro maior ou sulcos menos pronunciados. 2.2 As barras horizontais Como ratos encontrá-lo mais fácil de entender o estreito mm bar 2, é recomendável testá-los em primeiro lugar em um presente. Segurando o rato pela cauda, ​​colocá-lo no banco na frente do aparelho, deslize-o rapidamente para trás cerca de 20 cm (este alinha-perpendiculares ao bar), levante-se rapidamente e deixá-lo agarrar a barra horizontal no ponto central, com as patas dianteiras somente, e solte a cauda, ​​ao mesmo tempo iniciar o stopclock. Este cum ser difícil de alcançar de forma eficiente; alguma aderência camundongos melhor se a cauda é liberada de repente, se eles sentem que ainda são suportadas eles podem deixar de aderência. O ponto de critério é ou uma queda da barra antes de o rato atinge uma das colunas de extremidade da barra, ou o tempo até uma pata toca uma coluna. O tempo máximo de prova (tempo de corte) é de 30 segundos. Se o mouse não consegue alcançar a barra corretamente primeira vez e este parece ser atribuível a técnica do experimentador, ao invés do mouse, tente novamente (depois de um breve descanso, enquanto mais um ou dois ratos são testados) e não gravar esta queda. Se o rato cai antes de 5 segundos e isso não é, aparentemente, devido à má colocação pelo experimentador, repita até três vezes, na tentativa de obter a&gt; 5 seg pontuação. Se&gt; 5 seg na segunda tentativa, não fazer um terceiro ensaio. Tome a melhor pontuação como referência. Um rato que falha repetidamente para se sustentar durante&gt; 5 seg pontuação apenas um. Se a versão tripla barra está a ser utilizado, se o rato pontuações 5 mm nesta primeira barra 2 que pode então ser testada em barras grossas, após um breve período de repouso durante mais um ou dois ratinhos são testados. O sistema de pontuação para as barras 4 e 6 mm é o mesmo que para a barra 2 mm, o resultado final é o total acumulado. Assim, um rato que a pontuação 5 na barra de 2 milímetros, mas cai do bar 4 mm após 13 pontos seg 5 +3 = 8. 2.2.1 Marcar as barras horizontais: os primeiros dois intervalos são menos do que a última, uma vez de dois como os ratinhos foram inicialmente domina a tarefa que têm menos probabilidade de cair: Caindo entre 1-5 sec = 1 Caindo entre 6-10 seg = 2 Caindo entre 11-20 seg = 3 Caindo entre 21-30 seg = 4 Caindo depois de 30 segundos = 5 Colocar uma pata em um bar de apoio, sem cair = 5 NB como o uso opcional de 4 e 6 milímetros bares é uma nova adição ao nosso protocolo que ainda não têm uma vastaexperiência com eles. 2.3 hastes estáticos Posicione o mouse na extremidade da maior haste (comprimento do nariz ponta a cabeça a partir do final é o ideal). Tomar duas medidas: tempo de orientação (tempo necessário para orientar a 180 ° a partir da posição inicial para a prateleira) e do tempo de trânsito (o tempo necessário para percorrer a fim de prateleira (nariz para além da marca cm a partir da extremidade da haste de prateleira 10). Orientação é dependente do rato ficar na posição vertical, se ele vira de cabeça para baixo e se apega abaixo da haste, atribuí-lo arbitrariamente (para fins estatísticos) a pontuação máxima orientação de 120 seg. Não testá-lo em barras menores, também o tempo de trânsito torna-se o valor máximo como um rato que transita na vertical é, obviamente, melhor coordenação de um que transita enquanto pendurado de cabeça para baixo. Se, depois de orientar, o rato cai ou atingir o tempo máximo de prova (arbitrariamente fixado em 120 segundos) não testá-lo em shastes maller. Para fins estatísticos, os ratos atribuem queda são atribuídos 120 para aquela vara em particular e para os subsequentes, uma vez que é assumido que voltaria a cair a partir de uma haste estreita. Se o mouse vira de cabeça para baixo, observe também este evento, pois o trânsito de sucesso, bem como a orientação que deve ficar em pé sobre a haste. Caso contrário, atribuir-lhe a pontuação máxima. Remover o rato após atingir a extremidade da haste, ou cataratas. Depois de testar em uma haste de retornar o mouse para a gaiola para casa para descansar, enquanto você testar outro mouse. Em seguida, colocá-lo na próxima haste tamanho menor e testá-lo, da mesma forma novamente. Pare o teste se o rato cai uma haste depois de estar nele por mais de 5 segundos. Se ele caiu em menos de 5 segundos substituí-lo e permitir que outra tentativa (como cair dentro de 5 segundos pode ser devido a colocação defeituosa pelo experimentador), para um máximo de três ensaios, e usar o melhor resultado. 2.4 Barras paralelas Posicione o mouse na tele centro das duas barras, com o seu eixo longitudinal perpendicular ao das barras; ambas as patas dianteiras deve ser de um bar, ambas as patas traseiras no outro bar. A pontuação é semelhante ao das barras fixas. Tomar duas medidas: o tempo até o rato orienta 90 ° para a posição de início, e o tempo até que posteriormente atinge um dos suportes terminais. Se o mouse vira de cabeça para baixo, observe também este evento. Como para as hastes de ensaio estáticos, orientação e de trânsito devem ser conseguidas sem ela virado de cabeça para baixo, caso contrário, é atribuído o tempo máximo. É raro para ratos razoavelmente saudáveis ​​a cair em menos de 5 segundos, se isso acontecer provavelmente é devido à má colocação. Portanto descartar o resultado e testar novamente o mouse.

<ol>
	<li>Barclay, L. L., Gibson, G. E., Blass, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+string+test:+an+early+behavioral+change+in+thiamine+deficiency.">The string test: an early behavioral change in thiamine deficiency.</a> Pharmacol. Biochem. Behav. 14, 153-157 (1981).</li><li>Cain, D. P., Saucier, D., Boon, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Testing+hypotheses+of+spatial+learning:+the+role+of+NMDA+receptors+and+NMDA-mediated+long-term+potentiation.">Testing hypotheses of spatial learning: the role of NMDA receptors and NMDA-mediated long-term potentiation.</a> Behav. Brain Res. 84, 179-193 (1997).</li><li>Contet, C., Rawlins, J. N. P., Deacon, R. M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparison+of+129S2/SvHsd+and+C57BL/6JOlaHsd+mice+on+a+test+battery+assessing+sensorimotor,+affective+and+cognitive+behaviours:+implications+for+the+study+of+genetically+modified+mice.">A comparison of 129S2/SvHsd and C57BL/6JOlaHsd mice on a test battery assessing sensorimotor, affective and cognitive behaviours: implications for the study of genetically modified mice.</a> Behav. Brain Res. 124, 33-46 (2001).</li><li>Deacon, R. M. J., Brook, R. C., Meyer, D., Haeckel, O., Ashcroft, F. M., Miki, T., Seino, S., Liss, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behavioral+phenotyping+of+mice+lacking+the+KATP+channel+subunit+Kir6.2.">Behavioral phenotyping of mice lacking the KATP channel subunit Kir6.2.</a> Physiol. Behav. 87, 723-733 (2006).</li><li>Deacon, R. M. J., Croucher, A., Rawlins, J. N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hippocampal+cytotoxic+lesion+effects+on+species-typical+behaviors+in+mice.">Hippocampal cytotoxic lesion effects on species-typical behaviors in mice.</a> Behav. Brain Res. 132, 203-213 (2002).</li><li>Deacon, R. M. J., Thomas, C. L., Rawlins, J. N. P., Morley, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparison+of+the+behavior+of+C57BL/6+and+C57BL/10+mice.">A comparison of the behavior of C57BL/6 and C57BL/10 mice.</a> Behav. Brain Res. 179, 239-247 (2007).</li><li>Dunham, N. W., Miya, T. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+note+on+a+simple+apparatus+for+detecting+neurological+deficit+in+rats+and+mice.">A note on a simple apparatus for detecting neurological deficit in rats and mice.</a> J. Am. Pharm. Assoc. 46, 208-209 (1957).</li><li>Guenther, K., Deacon, R. M. J., Perry, V. H., Rawlins, J. N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Early+behavioural+changes+in+scrapie-affected+mice+and+the+influence+of+dapsone.">Early behavioural changes in scrapie-affected mice and the influence of dapsone.</a> Eur. J. Neurosci. 14, 401-409 (2001).</li><li>Jones, B. J., Roberts, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+quantitative+measurement+of+motor+inco-ordination+in+naive+mice+using+an+accelerating+rotarod.">The quantitative measurement of motor inco-ordination in naive mice using an accelerating rotarod.</a> J. Pharm. Pharmacol. 20, 302-304 (1968).</li><li>Kondziela, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eine+neue+method+zur+messung+der+muskularen+relaxation+bei+weissen+mausen.">Eine neue method zur messung der muskularen relaxation bei weissen mausen.</a> Arch. int. Pharmacodyn. 152, 277-2784 (1964).</li><li>Lindsey, J. R., Baker, H. J., Suckow, M. A., Weisbroth, S. H., Franklin, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Historical+foundations.">Historical foundations.</a> The laboratory rat. , (2006).</li><li>Metz, G. A., Whishaw, I. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cortical+and+subcortical+lesions+impair+skilled+walking+in+the+ladder+rung+walking+test:+a+new+task+to+evaluate+fore-+and+hindlimb+stepping,+placing,+and+co-ordination.">Cortical and subcortical lesions impair skilled walking in the ladder rung walking test: a new task to evaluate fore- and hindlimb stepping, placing, and co-ordination.</a> J. Neurosci. Met. 15, 169-179 (2002).</li><li>Sigurdsson, E. M., Brown, D. R., Daniels, M., Kascsak, R. J., Kascsak, R., Carp, R., Meeker, H. C., Frangione, B., Wisniewski, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunization+Delays+the+Onset+of+Prion+Disease+in+Mice.">Immunization Delays the Onset of Prion Disease in Mice.</a> Am. J. Pathol. 161, 13-17 (2002).</li><li>van Dellen, A., Blakemore, C., Deacon, R., York, D., Hannan, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Delaying+the+onset+of+Huntington's+in+mice.">Delaying the onset of Huntington's in mice.</a> Nature. 404, 721-722 (2000).</li><li>Vandeputte, C., Taymans, J. -. M., Casteels, C., Coun, F., Ni, Y., Van Laere, K., Baekelandt, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Automated+quantitative+gait+analysis+in+animal+models+of+movement+disorders.">Automated quantitative gait analysis in animal models of movement disorders.</a> BMC Neuroscience. 11, 92 (2010).</li></ol>

O autor não tem conflitos de interesse de divulgar.

Comportamento se manifesta pela ação, e ação requer habilidades motoras, incluindo a coordenação do corpo. Uma das primeiras experiências na história do comportamento animal foi realizado por Colin Stewart, uma estudante de doutorado na Universidade Clark, em os EUA 11. Ele mediu a atividade de ratos, colocando-os em um tambor e contou o número de vezes que ele se transformou. Este aparelho precoce era provavelmente o precursor de rodas de correr e o teste rotarod actualmente utilizados, embora o aparelho em Stewart foi o rato dentro do cilindro, o movimento do qual foi conduzido pelo de rato, enquanto que no rotarod o animal anda sobre o exterior um cilindro ou haste rotativa que é motorizado. A haste original usado por Dunham e Miya (1957) 7 tinha uma velocidade set, mas as versões atualmente acelerada (Jones e Roberts 1968) 9 estão disponíveis. A desvantagem de um rotarod velocidade definida é que alguns animais com má coordenação vai cair emo início, enquanto que para aqueles que não ficar, o teste vai em breve começar a medir a resistência em vez de coordenação per se. A distribuição bimodal resultante de pontos de dados pode ser suficientemente anormal de modo a impedir a análise paramétrica. Quando um rotarod aceleração for utilizado, particularmente se ela é acelerado apenas quando um critério conjunto, como ficar por 10 segundos, é alcançada, a distribuição de dados é mais provável que seja de Gauss. A taxa de aceleração pode ser ajustada de modo que a fadiga do motor não desempenha um papel significativo no rendimento, um rato é improvável que seja marcadamente desgastado depois de apenas 2-3 min tempo no rotarod. O &quot;test string&quot; 1 &quot;, teste cabide&quot; ou na barra horizontal mede a força e coordenação dos membros anteriores. Os dois epítetos citados referem-se ao seu desenvolvimento, originalmente foi utilizada uma corda, mas os autores observaram que o desempenho depende muito de como a corda foi esticada, portanto, futuros pesquisadores usaram uma barra de metal, muitas vezes, um cabide. Descobrimos que a capacidade de um rato para segurar a barra é inversamente proporcional ao seu diâmetro, e foram usados ​​de forma padrão bar de 2 mm. No teste de pesos (ver protocolo JOVE &quot;Medição da resistência de ratinhos&quot;), o fio muito fino de uma pele / escala chaleira colector permite que os animais mais fortes para garantir uma boa aderência tal que possam levantar mais do que o seu próprio peso corporal. No entanto, utilizando-se barras horizontais de diâmetro maior pode ser uma vantagem que a sensibilidade do ensaio de melhora, com apenas uma barra de 2 mm de ratinhos C57BL / 6 normais mais alcançar desempenho tecto. Daí que adoptaram recentemente um aparelho de três barras, as barras podem ser facilmente trocados como eles se encaixam em fendas cortadas em topos das colunas de sustentação. As barras são mantidas sob tensão (especialmente importante para fazer a barra de dois milímetros rígida), pois só cabem os entalhes quando os suportes são ligeiramente desenhadas em conjunto (como um arco e sua seqüência) (ver Figura 3). Hastes estáticos ou vigas têm sido muitas vezes usadopara medir a coordenação, mas motivação adicional sempre foi usado para convencer os animais a atravessar a haste. Eles negociaram uma viga horizontal para alcançar um objetivo desejado, como a gaiola, refúgio de uma luz brilhante, ou o alimento (se é que tem sido feito com fome). No entanto, no decurso da investigação neste tipo de teste, descobri que os ratos se virar-se espontaneamente quando colocado na posição &quot;aberto&quot; extremidade de uma barra em cantilever e, em seguida, atravessando-o até que se chegou ao final suportado. Esta técnica elimina a necessidade de formação (necessário nas variantes de ensaio mencionados anteriormente) que a reacção inata de um rato, para ser colocada perto da extremidade de uma haste de elevação é a tentativa de alcançar a extremidade suportada. Isso não significa, é claro, eliminar o problema de que as mudanças de motivação pode afetar o desempenho, o que é sempre uma possibilidade com este tipo de procedimento. Túneis de papelão são atualmente muito utilizado para casa gaiola enriquecimento ambiental, mas sua desvantagensvista no contexto atual é que os animais vão inevitavelmente ser praticado em equilíbrio em cilindros que podem tombar sobre o seu eixo longitudinal, imitando as habilidades necessárias para o equilíbrio do rotarod. Assim casa gaiola enriquecimento poderia mascarar um fenótipo comportamental, um exemplo é a melhoria do fenótipo da doença de Huntington por um enriquecimento de 14. Animais também muitas vezes a pé ao longo do eixo destes túneis, como ao caminhar ao longo de uma viga de estática elevada. Portanto, eu construí um par de elevados barras paralelas, e colocou os ratos no meio com as patas dianteiras sobre um bar e as patas traseiras por outro lado, uma situação que nunca teria encontrado antes. Ratos teve de chegar ao fim de suportar as barras paralelas, enquanto permanece em posição vertical para passar no teste. Um dispositivo um pouco semelhante foi uma série de barras paralelas colocadas em uma gaiola mouse para avaliar o desenvolvimento do tremor induzido por disfunção motora 13. Nós já testado várias centenascamundongos para o funcionamento do motor em Oxford. Estes recebeu vários tratamentos, incluindo agentes farmacológicos, ou a transferência passiva de tecido (o plasma) de seres humanos, mas principalmente animais geneticamente modificados. Alguns animais foram mais prejudicados em força do que as tarefas de coordenação, outros vice-versa. Alguns ratos foram mais comprometida em que o rotarod em substratos estáticas, tais como as hastes fixas e barras paralelas, outros vice-versa. Assim, o presente artigo e do protocolo JOVE acompanhamento &quot;Medição de força em ratos&quot;) descrevem como caracterizar a forma como diferentes tratamentos e mutações podem afetar diferencialmente a função motora em ratos. Além do rotarod o aparelho descrito aqui é simples, barato e particularmente adequado para os laboratórios não especializados para testar habilidades motoras. Para análise da marcha em escala fina, o sistema Catwalk é um sistema muito mais sofisticado do que os métodos mais antigos, como convencer um rato para percorrer um banho de tinta e, em seguida, por um pedaço de papel, mas é uma expensive elementos de aparelhos. Todos esses testes são projetados para medir a coordenação ao invés de força, embora, obviamente, um grau mínimo de tônus ​​muscular é necessário simplesmente para o mouse para usar seus membros. Para avaliação da força, o procedimento de ecrã invertido 10 é mais apropriada, ou, se uma medição mais gradual for necessário, o teste de pesos ou a sua barra automatizada-pull equivalente (descrito no protocolo JOVE &quot;Medição da força em ratinhos&quot;). A exceção é o teste da barra horizontal, que exige tanto força e coordenação para o desempenho bem sucedido.

measuring motor coordination in mice

Ratos são cada vez mais usados ​​em neurociência comportamental, em grande parte substituindo os ratos como animais de escolha do behaviorista. Antes de aspectos do comportamento, tais como emotividade ou a cognição pode ser avaliada, no entanto, é vital para determinar se as capacidades motoras de por exemplo, um rato mutante ou lesionado permitir que essa avaliação. Desempenho na tarefa do labirinto de uma necessidade de força e de coordenação, tal como o labirinto de água de Morris, bem poderia ser prejudicada em um rato pelo motor, em vez de cognitiva, deficiências, de modo que é essencial para dissecar selectivamente o último a partir da primeira. Por exemplo, sensório prejuízos causados ​​por antagonistas de NMDA tenham sido mostrados para prejudicar o desempenho do labirinto de água 2. Coordenação motora tem sido tradicionalmente avaliada em ratinhos e ratos pelo teste de rotarod, na qual o animal é colocado sobre uma haste horizontal que gira em torno do seu eixo longitudinal, o animal andar para a frente para permanecer na posição vertical e não cair.Tanto a velocidade definida e versões de aceleração do rotarod estão disponíveis. Os outros três testes descritos neste artigo (barra horizontal, barras estáticas e barras paralelas) toda a coordenação medida em aparelho estático. A barra horizontal também exige força para o desempenho adequado, principalmente dos membros anteriores como o rato, inicialmente, apertos do bar apenas com as patas dianteiras. Ratos adultos não têm bom desempenho em testes, como as hastes estáticos e barras paralelas (observações pessoais), eles parecem menos bem coordenadas do que os ratos. Eu testei apenas ratos machos, no entanto, e camundongos machos parecem geralmente menos bem coordenado que as fêmeas. Ratos parecem ter uma maior força: a relação peso do que os ratos, o nome em latim, Mus musculus, parece inteiramente apropriado. O rotarod, as variações do teste de falha 12 ou a pé (Noldus) 15 passarela aparelhos são geralmente usados ​​para avaliar a coordenação motora no rato.

Resultados Esperados Uma haste de estática foi inicialmente utilizado para monitorizar o progresso da doença de Huntington em ratinhos mutantes, com ou sem enriquecimento ambiental nas suas gaiolas 14. O programa de enriquecimento atrasou significativamente o início da disfunção motora na haste, que foi acompanhada por um atraso no início da pata traseira apertando, um sinal geral de comprometimento neurológico. Ratinhos infectados com scrapie mostraram uma diminuição no desempenho da barra horizontal a partir da semana 16 pós-injecção, em testes rotarod a partir da semana 18, e as hastes estáticos a partir de pelo menos 19 8 semanas (ensaio anterior, não foi realizada). Subunidade de canais de KATP Kir6.2 KO murganhos deficientes nas hastes estáticos e barra horizontal, mas não na rotarod 4. As lesões do hipocampo não teve qualquer efeito em qualquer medida da capacidade do motor 5, mas 129S2/Sv murganhos deficientes em relação à estirpe C57BL / 6 com as hastes de Rotarod e estático 3. C57BL/10 ratos também tiveram pior desempenho motor de ratinhos C57BL / 6 6, embora não no mesmo grau que 129S2/Sv ratinhos. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/2609/2609fig1.jpg" /> Figura 1. O rotarod. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/2609/2609fig2.jpg" /> Figura 2. Detalhe da haste serrilhada do rotarod. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/2609/2609fig3.jpg" /> Figura 3. As barras horizontais triplo do bar realizada nos entalhes é o básico 2 milímetros; uma. Pregado por baixo (apenas para demonstração) são as barras 4 e 6 mm. Na prática, apenas uma barra de cada vez é entalhado com entalhes nos apoios. <img alt = &quot;Figura 4&quot; src = &quot;/ files/ftp_upload/2609/2609fig4.jpg&quot; /&gt; Figura 4. Um rato que atravessa a haste estática. <img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/2609/2609fig5.jpg" /> Figura 5. Um rato nas barras paralelas. Padding foi omitido apenas para fins de demonstração.

Watch this Scientific Journal Video about Measuring Motor Coordination in Mice at JoVE.com

Measuring Motor Coordination in Mice

Protocolos são apresentados para duas tarefas estabelecidas coordenação motora, o bar rotarod e horizontal, acelerando também dois testes desenvolvidos em Oxford recentemente, as hastes estáticos e barras paralelas. Estes testes podem detectar deficiências motoras potencialmente de interesse em seu próprio direito, bem como possíveis variáveis ​​em testes de outras áreas do comportamento.

Medindo Coordenação Motora em Ratos

Mice are increasingly being used in behavioral neuroscience, largely replacing rats as the behaviorist's animal of choice. Before aspects of behavior such ...

Research

JoVE Journal

Neuroscience

99.6K visualizações.  University of Oxford. Protocolos são apresentados para duas tarefas estabelecidas coordenação motora, o bar rotarod e horizontal, acelerando também dois testes desenvolvidos em Oxford recentemente, as hastes estáticos e barras paralelas. Estes testes podem detectar deficiências motoras potencialmente de interesse em seu próprio direito, bem como possíveis variáveis ​​em testes de outras áreas do comportamento.

Vídeo: Measuring Motor Coordination in Mice

Assessment of Motor Balance and Coordination in Mice using the Balance Beam

Brain injury, genetic manipulations, and pharmacological treatments can result in alterations of motor skills in mice. Fine motor coordination and balance can be assessed by the beam walking assay. The goal of this test is for the mouse to stay upright and walk across an elevated narrow beam to a safe platform. This test takes place over 3 consecutive days: 2 days of training and 1 day of testing. Performance on the beam is quantified by measuring the time it takes for the mouse to traverse the beam and the number of paw slips that occur in the process. Here we report the protocol used in our laboratory, and representative results from a cohort of C57BL/6 mice. This task is particularly useful for detecting subtle deficits in motor skills and balance that may not be detected by other motor tests, such as the Rotarod.

Deficits in fine motor coordination can be assessed with the balance beam test. Performance on the beam is quantified by the speed at which the beam is traversed and the number of times the mouse slips on the beam.

Avaliação do Equilíbrio e Coordenação Motor em camundongos usando o feixe de equilíbrio

Brain injury, genetic manipulations, and pharmacological treatments can result in alterations of motor skills in mice.  Fine motor coordination and ...

Neurociência

Measuring Circadian and Acute Light Responses in Mice using Wheel Running Activity

Circadian rhythms are physiological functions that cycle over a period of approximately 24 hours (circadian- circa: approximate and diem: day)1, 2. They are responsible for timing our sleep/wake cycles and hormone secretion. Since this timing is not precisely 24-hours, it is synchronized to the solar day by light input. This is accomplished via photic input from the retina to the suprachiasmatic nucleus (SCN) which serves as the master pacemaker synchronizing peripheral clocks in other regions of the brain and peripheral tissues to the environmental light dark cycle3-7. The alignment of rhythms to this environmental light dark cycle organizes particular physiological events to the correct temporal niche, which is crucial for survival8. For example, mice sleep during the day and are active at night. This ability to consolidate activity to either the light or dark portion of the day is referred to as circadian photoentrainment and requires light input to the circadian clock9. Activity of mice at night is robust particularly in the presence of a running wheel. Measuring this behavior is a minimally invasive method that can be used to evaluate the functionality of the circadian system as well as light input to this system. Methods that will covered here are used to examine the circadian clock, light input to this system, as well as the direct influence of light on wheel running behavior.

This article will review methods that can be used to determine circadian function and light responsiveness in mice.

Medição Responses Luz circadianos e aguda em ratos usando Atividade Roda Executando

Circadian rhythms are physiological functions that cycle over a period of approximately 24 hours (circadian- circa: approximate and diem: day)1, 2.  They ...

Extracellularly Identifying Motor Neurons for a Muscle Motor Pool in Aplysia californica

In animals with large identified neurons (e.g. mollusks), analysis of motor pools is done using intracellular techniques1,2,3,4. Recently, we developed a technique to extracellularly stimulate and record individual neurons in Aplysia californica5. We now describe a protocol for using this technique to uniquely identify and characterize motor neurons within a motor pool.
This extracellular technique has advantages. First, extracellular electrodes can stimulate and record neurons through the sheath5, so it does not need to be removed. Thus, neurons will be healthier in extracellular experiments than in intracellular ones. Second, if ganglia are rotated by appropriate pinning of the sheath, extracellular electrodes can access neurons on both sides of the ganglion, which makes it easier and more efficient to identify multiple neurons in the same preparation. Third, extracellular electrodes do not need to penetrate cells, and thus can be easily moved back and forth among neurons, causing less damage to them. This is especially useful when one tries to record multiple neurons during repeating motor patterns that may only persist for minutes. Fourth, extracellular electrodes are more flexible than intracellular ones during muscle movements. Intracellular electrodes may pull out and damage neurons during muscle contractions. In contrast, since extracellular electrodes are gently pressed onto the sheath above neurons, they usually stay above the same neuron during muscle contractions, and thus can be used in more intact preparations.
To uniquely identify motor neurons for a motor pool (in particular, the I1/I3 muscle in Aplysia) using extracellular electrodes, one can use features that do not require intracellular measurements as criteria: soma size and location, axonal projection, and muscle innervation4,6,7. For the particular motor pool used to illustrate the technique, we recorded from buccal nerves 2 and 3 to measure axonal projections, and measured the contraction forces of the I1/I3 muscle to determine the pattern of muscle innervation for the individual motor neurons.
We demonstrate the complete process of first identifying motor neurons using muscle innervation, then characterizing their timing during motor patterns, creating a simplified diagnostic method for rapid identification. The simplified and more rapid diagnostic method is superior for more intact preparations, e.g. in the suspended buccal mass preparation8 or in vivo9. This process can also be applied in other motor pools10,11,12 in Aplysia or in other animal systems2,3,13,14.

Extracellularly Identifying Motor Neurons for a Muscle Motor Pool in Aplysia californica

In animals with large identified neurons (e.g. mollusks), analysis of motor pools is done using intracellular techniques1,2,3,4. Recently, we developed a technique to extracellularly stimulate and record individual neurons in Aplysia californica5. We now describe a protocol for using this technique to uniquely identify and characterize motor neurons within a motor pool.

Extracelularmente Identificar os neurônios motores de um pool do motor muscular em<em&gt; Aplysia californica</em

In animals with large  identified neurons (e.g. mollusks), analysis of motor pools is done using  intracellular techniques1,2,3,4. Recently,  we developed ...

Measuring Changes in Tactile Sensitivity in the Hind Paw of Mice Using an Electronic von Frey Apparatus

Measuring inflammation-induced changes in thresholds of hind paw withdrawal from mechanical pressure is a useful technique to assess changes in pain perception in rodents. Withdrawal thresholds can be measured first at baseline and then following drug, venom, injury, allergen,&#160;or otherwise evoked inflammation by applying an accurate force on very specific areas of the skin. An electronic von Frey apparatus allows precise assessment of mouse hind paw withdrawal thresholds that are not limited by the available filament sizes in contrast to classical von Frey measurements. The ease and rapidity of measurements allow for incorporation of assessment of tactile sensitivity outcomes in diverse models of rapid-onset inflammatory and neuropathic pain as multiple measurements can be taken within a short time period. Experimental measurements for individual rodent subjects can be internally controlled against individual baseline responses and exclusion criteria easily established to standardize baseline responses within and across experimental groups. Thus, measurements using an electronic von Frey apparatus represent a useful modification of the well-established classical von Frey filament-based assays for rodent mechanical allodynia that may also be applied to other nonhuman mammalian models.

Electronic von Frey measurements are an effective and improved alternative to classical von Frey filaments, as they allow rapid and precise measurement of changes in rodent mechanical withdrawal thresholds to continuously applied pressure stimuli before and after an inflammatory event.

Medindo Mudanças na Tátil sensibilidade na pata traseira de ratos utilizando um aparelho eletrônico von Frey

Measuring inflammation-induced changes in thresholds of hind paw withdrawal from mechanical pressure is a useful technique to assess changes in pain ...

Measuring Spinal Presynaptic Inhibition in Mice By Dorsal Root Potential Recording In Vivo

Presynaptic inhibition is one of the most powerful inhibitory mechanisms in the spinal cord. The underlying physiological mechanism is a depolarization of primary afferent fibers mediated by GABAergic axo-axonal synapses (primary afferent depolarization). The strength of primary afferent depolarization can be measured by recording of volume-conducted potentials at the dorsal root (dorsal root potentials, DRP). Pathological changes of presynaptic inhibition are crucial in the abnormal central processing of certain pain conditions and in some disorders of motor hyperexcitability. Here, we describe a method of recording DRP in vivo in mice. The preparation of spinal cord dorsal roots in the anesthetized animal and the recording procedure using suction electrodes are explained. This method allows measuring GABAergic DRP and thereby estimating spinal presynaptic inhibition in the living mouse. In combination with transgenic mouse models, DRP recording may serve as a powerful tool to investigate disease-associated spinal pathophysiology. In vivo recording has several advantages compared to ex vivo isolated spinal cord preparations, e.g. the possibility of simultaneous recording or manipulation of supraspinal networks and induction of DRP by stimulation of peripheral nerves.

Measuring Spinal Presynaptic Inhibition in Mice By Dorsal Root Potential Recording In Vivo

GABAergic presynaptic inhibition is a powerful inhibitory mechanism in the spinal cord important for motor and sensory signal integration in spinal cord networks. Underlying primary afferent depolarization can be measured by recording of dorsal root potentials (DRP). Here we demonstrate a method of in vivo recording of DRP in mice.

Medindo Spinal pré-sináptica Inibição em Ratos por raiz dorsal Gravação Potencial<em&gt; In Vivo</em

Presynaptic inhibition is one of the most powerful inhibitory mechanisms in the spinal cord. The underlying physiological mechanism is a depolarization of ...

The Neuromuscular Junction: Measuring Synapse Size, Fragmentation and Changes in Synaptic Protein Density Using Confocal Fluorescence Microscopy

The neuromuscular junction (NMJ) is the large, cholinergic relay synapse through which mammalian motor neurons control voluntary muscle contraction. Structural changes at the NMJ can result in neurotransmission failure, resulting in weakness, atrophy and even death of the muscle fiber. Many studies have investigated how genetic modifications or disease can alter the structure of the mouse NMJ. Unfortunately, it can be difficult to directly compare findings from these studies because they often employed different parameters and analytical methods. Three protocols are described here. The first uses maximum intensity projection confocal images to measure the area of acetylcholine receptor (AChR)-rich postsynaptic membrane domains at the endplate and the area of synaptic vesicle staining in the overlying presynaptic nerve terminal. The second protocol compares the relative intensities of immunostaining for synaptic proteins in the postsynaptic membrane. The third protocol uses Fluorescence Resonance Energy Transfer (FRET) to detect changes in the packing of postsynaptic AChRs at the endplate. The protocols have been developed and refined over a series of studies. Factors that influence the quality and consistency of results are discussed and normative data are provided for NMJs in healthy young adult mice.

The neuromuscular junction (NMJ) is altered in a variety of conditions that can sometimes culminate in synaptic failure. This report describes fluorescence microscope-based methods to quantify such structural changes.

A Junção Neuromuscular: Synapse Medir o tamanho, Mudanças de fragmentação e em Synaptic Density proteína utilizando microscopia de fluorescência confocal

The neuromuscular junction (NMJ) is the large, cholinergic relay synapse through which mammalian motor neurons control voluntary muscle contraction. ...

A Simple and Inexpensive Method for Determining Cold Sensitivity and Adaptation in Mice

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life. The cold plantar assay allows the objective and inexpensive assessment of cold sensitivity in mice, and can quantify both analgesia and hypersensitivity. Mice are acclimated on a glass plate, and a compressed dry ice pellet is held against the glass surface underneath the hindpaw. The latency to withdrawal from the cooling glass is used as a measure of cold sensitivity.
Cold sensation is also important for survival in regions with seasonal temperature shifts, and in order to maintain sensitivity animals must be able to adjust their thermal response thresholds to match the ambient temperature. The Cold Plantar Assay (CPA) also allows the study of adaptation to changes in ambient temperature by testing the cold sensitivity of mice at temperatures ranging from 30 &#176;C to 5 &#176;C. Mice are acclimated as described above, but the glass plate is cooled to the desired starting temperature using aluminum boxes (or aluminum foil packets) filled with hot water, wet ice, or dry ice. The temperature of the plate is measured at the center using a filament T-type thermocouple probe. Once the plate has reached the desired starting temperature, the animals are tested as described above.
This assay allows testing of mice at temperatures ranging from innocuous to noxious. The CPA yields unambiguous and consistent behavioral responses in uninjured mice and can be used to quantify both hypersensitivity and analgesia. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

The Cold Plantar Assay (CPA) measures cold responsiveness between 30 &#176;C and 5 &#176;C, and can also measure cold adaptation. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

Um método simples e barato para a determinação da sensibilidade Fria e Adaptação no Mice

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life.  The cold ...

Polygraphic Recording Procedure for Measuring Sleep in Mice

Recording of the epidural electroencephalogram (EEG) and electromyogram (EMG) in small animals, like mice and rats, has been pivotal to study the homeodynamics and circuitry of sleep-wake regulation. In many laboratories, a cable-based sleep recording system is used to monitor the EEG and EMG in freely behaving mice in combination with computer software for automatic scoring of the vigilance states on the basis of power spectrum analysis of EEG data. A description of this system is detailed herein. Steel screws are implanted over the frontal cortical area and the parietal area of 1 hemisphere for monitoring EEG signals. In addition, EMG activity is monitored by the bilateral placement of wires in both neck muscles. Non-rapid eye movement (Non-REM; NREM) sleep is characterized by large, slow brain waves with delta activity below 4 Hz in the EEG, whereas a shift from low-frequency delta activity to a rapid low-voltage EEG in the theta range between 6 and 10 Hz can be observed at the transition from NREM to REM sleep. By contrast, wakefulness is identified by low- to moderate-voltage brain waves in the EEG trace and significant EMG activity.

The recording of electroencephalogram (EEG) and electromyogram (EMG) in freely behaving mice is a critical step to correlate behavior and physiology with sleep and wakefulness. The experimental protocol described herein provides a cable-based system for acquiring EEG and EMG recordings in mice.

Procedimento de gravação Polygraphic para medição Sleep in Mice

Recording of the epidural electroencephalogram (EEG) and electromyogram (EMG) in small animals, like mice and rats, has been pivotal to study the ...

Retrograde Neuroanatomical Tracing of Phrenic Motor Neurons in Mice

Phrenic motor neurons are cervical motor neurons originating from C3 to C6 levels in most mammalian species. Axonal projections converge into phrenic nerves innervating the respiratory diaphragm. In spinal cord slices, phrenic motor neurons cannot be identified from other motor neurons on morphological or biochemical criteria. We provide the description of procedures for visualizing phrenic motor neuron cell bodies in mice, following intrapleural injections of cholera toxin subunit beta (CTB) conjugated to a fluorophore. This fluorescent neuroanatomical tracer has the ability to be caught up at the diaphragm neuromuscular junction, be carried retrogradely along the phrenic axons and reach the phrenic cell bodies. Two methodological approaches of intrapleural CTB delivery are compared: transdiaphragmatic versus transthoracic injections. Both approaches are successful and result in similar number of CTB-labeled phrenic motor neurons. In conclusion, these techniques can be applied to visualize or quantify the phrenic motor neurons in various experimental studies such as those focused on the diaphragm-phrenic circuitry.

Here, we describe a protocol for identifying phrenic motor neurons in mice after intrapleural delivery of fluorophore conjugated cholera toxin subunit beta. Two techniques are compared to inject the pleural cavity: transdiaphragmatic versus transthoracic approaches.

Rastreamento neuroanatômica retrógrado do frênico neurônios em ratos

Phrenic motor neurons are cervical motor neurons originating from C3 to C6 levels in most mammalian species. Axonal projections converge into phrenic ...

Evaluation of Hemisphere Lateralization with Bilateral Local Field Potential Recording in Secondary Motor Cortex of Mice

This article demonstrates complete, detailed procedures for both in vivo bilateral recording and analysis of local field potential (LFP) in the cortical areas of mice, which are useful for evaluating possible laterality deficits, as well as for assessing brain connectivity and coupling of neural network activities in rodents. The pathological mechanisms underlying Alzheimer&#39;s disease (AD), a common neurodegenerative disease, remain largely unknown. Altered brain laterality has been demonstrated in aging people, but whether or not abnormal lateralization is one of the early signs of AD has not been determined. To investigate this, we recorded bilateral LFPs in 3-5-month-old AD model mice, APP/PS1, together with littermate wild type (WT) controls. The LFPs of the left and right secondary motor cortex (M2), specifically in the gamma band, were more synchronized in APP/PS1 mice than in WT controls, suggesting a declined hemispheric asymmetry of bilateral M2 in this AD mouse model. Notably, the recording and data analysis processes are flexible and easy to carry out, and can also be applied to other brain pathways when conducting experiments that focus on neuronal circuits.

We present in vivo electrophysiological recording of the local field potential (LFP) in bilateral secondary motor cortex (M2) of mice, which can be applied to evaluate hemisphere lateralization. The study revealed altered levels of synchronization between the left and right M2 in APP/PS1 mice compared to WT controls.

Avaliação da lateralização do hemisfério com registro de potencial de campo local bilateral no córtex motor secundário de camundongos

This article demonstrates complete, detailed procedures for both in vivo bilateral recording and analysis of local field potential (LFP) in the cortical ...