الكتاب يرغب في الاعتراف بهؤلاء الموظفين والباحثين الذين شاركوا في دورات التعامل مع الأرانب والتدريب التخدير لردود فعلهم حين تعلم هذا الأسلوب تنبيب.

تنبيب الإجراء المبين أدناه أقرته لجنة الاستخدام ورعاية الحيوان المؤسسية عيادة مايو كلينيك.
 1-إعداد ( الشكل 1) <ol><li>الحصول على 5 قسطرة البوليبروبيلين فرنسية وقطع النهاية غير تقريب حيث يبلغ طوله الإجمالي 8-10 بوصة. الاحتفال بنهاية قطع الأنابيب تشير بوضوح إلى تحقيق هذه الغاية ينبغي عدم إدراجها في القصبة الهوائية (السهم، الشكل 1).</li>
	<li>وضع شفرة المنظار ميلر حجم 0 أو 1 على المنظار وتحقق من أنه يعمل على ضوء-</li>
	<li>رسم 0.25 مل ليدوكائين 2% في محقن مل 1-</li>
	<li>تطبيق مواد التشحيم العقيمة إلى نهاية أنبوب داخل الرغامى أونكوفيد حجم مناسب (عادة معرف 2.5 4.0 ملم)-</li>
	<li>إعداد اللوازم لتأمين أنبوب داخل الرغامى في مكان حالما يتم إدراج (مثل الحبل السري الشريط)-</li>
	<li>الحصول على جهاز للكشف عن تدفق الهواء في نهاية الإجراء للتأكد من نجاح تنبيب (#5، الشكل 1). هذا هو اختياري-</li>
</ol> 2. التخدير <ol><li>إدارة التخدير القابلة للحقن، مثل xylazine الكيتامين و 5 ملغ/كغ 35 مغ/كغ عضليا باستخدام 3 مل حقنه بإبرة قياس 25 في الفخذ عضلة الساق الخلفية حوالي 4 أشهر، 3.0 3.5 كغ، "الأبيض نيوزيلندا" أرنب- 
	ملاحظة: هذا النظام مخدر تركيبة حقن المستخدمة عادة في الأرانب بحوث الشباب، صحية، محددة خالية من مسببات الأمراض، ولكن استناداً إلى حالة سريرية و/أو أهداف تجريبية، بروتوكول آخر قد يكون أكثر ملاءمة.</li>
	<li>بعد تخديره من الأرانب، تطبيق مواد التشحيم العيون العقيمة إلى العيون للمحافظة على أنسجة القرنية.</li>
</ol> 3. التنبيب داخل الرغامى <ol><li>قياس أنبوب داخل الرغامى من القواطع للصدر مدخل تحديد الطول المناسب لإدخال أنبوب داخل الرغامى. موضع نهاية الأنبوب على مستوى مدخل الصدر يؤكد أن افتتاح أنبوب الماضي الحنجرة لكن الجمجمة إلى التشعب الرغامى.</li>
	<li>موقف الأرنب ستيرنالي في إعداد الجدول مع رئيسها مدد قليلاً على حافة الجدول ( الشكل 2). وينبغي أن يكون وضع الأرنب ساحة مع الرأس والعمود الفقري في محاذاة مستقيم.</li>
	<li>رفع الرأس، استخدم وسادة شاش لسحب الأرنب &#39; s اللسان الجانبي للأرنب &#39; s القواطع السفلية اليمنى (في دياستيما)، مع الحرص على تجنب الصدمات النفسية من القواطع.</li>
	<li>يمسك بالمنظار وبليد باليد اليمنى ووضعه في الفم خلف القواطع، دخول من الأرنب &#39; s غادر.</li>
	<li>اتبع سقف الفم بطرف الشفرة في اتجاه والذيلية حتى الحنك لينة مرئياً.</li>
	<li>باليد اليمنى، تلميح المنظار إلى الأمام (ثني المعصم، عقد المنظار إلى الأسفل) بينما تمتد الأرنب &#39; s الرأس إلى الوراء والرقبة إلى الأمام للحفاظ على مجرى الهواء مفتوحاً، وعرض الحنجرة ( الشكل 3 A). كما تلزم الاستراحات الآنف، ابيجلوتيس في كثير من الأحيان فوق الحنك الرخو، واستخدام هذه الطريقة يضغط قاعدة اللسان لتحل محل في ابيجلوتيس وفضح المزمار. لمنع الأوكسجين عدم التشبع، من المهم أن تبقى الرقبة الموسعة كما هو موضح للحفاظ على مجرى الهواء مفتوحاً خلال التنبيب.</li>
	<li>الإفراج عن اللسان والتبديل بليد المنظار في يده اليسرى لتحرير اليد اليمنى لوضع القسطرة الدليل.</li>
	<li>حين عقد المنظار والحفاظ على عرض المزمار ( الشكل 3 ب)، النهوض بتقريب طرف القسطرة الدليل من خلال فتح الماضي الحنجرة ( الشكل 4 ). سيأتي القسطرة لتوقف طبيعية عند التشعب الرغامى.</li>
	<li>مع الحفاظ على عقد القسطرة دليل، فهم أنبوب داخل الرغامى والخيط من خلال القسطرة، مع الحرص على عدم تطبيق القوة على القسطرة باصطياد فعلى الموصل أنبوب داخل الرغامى. دفع الأنبوب حتى يكون هناك مقاومة من الاحبال الصوتية ( الشكل 5).</li>
	<li>غرس 0.25 مل ليدوكائين 2% إلى افتتاح أنبوب داخل الرغامى. سوف يسافر ليدوكائين أسفل أنبوب داخل الرغامى لتخدير محلياً الاحبال الصوتية، منع لارينجوسباسم 22 ( الشكل 6).</li>
	<li>السماح لحوالي دقيقتين لتخدير موضعي تصبح نافذة المفعول، والمضي قدما بلطف التواء الأنبوب داخل الرغامى، النهوض بأنه من خلال الاحبال الصوتية ( الشكل 7). وبعد مرور الأنبوب الحبال الصوتية، إزالة شفرة المنظار والقسطرة، مع الحرص على عدم إزاحة الأنبوبة.</li>
	<li>التحقق من وضع أنبوب داخل الرغامى عن طريق مراقبة تدفق الهواء. هناك عدة طرق للقيام بذلك، بما في ذلك الموضع من الأنسجة أو الفراء في نهاية الأنبوب للكشف عن تدفق الهواء، تبحث عن التعفير للأنبوب أو التعفير للزجاج/مرآة في نهاية الأنبوب، والاستماع لتدفق الهواء. أجهزة مصممة للكشف عن تدفق الهواء 23 أو ريسبيريشنز كما يمكن استخدامها ( الشكل 8) تحديد ما إذا كان تنبيب الناجحة (انظر جدول المواد لخيارات). تأمين أنبوب داخل الرغامى استخدام طريقة مفضلة، مثل الشريط الحبل مربوطة حول الأنبوبة والرأس. إرفاق دائرة التخدير وأوسكولت كلا الجانبين من الصدر بينما تعطي نفسا لضمان التهوية لكلا الجانبين للرئة.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Quesenberry, K. E., Carpenter, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Ferrets, rabbits, and rodents : clinical medicine and surgery. 3rd edn . , (2012).</li><li>Dugdale, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Veterinary Anaesthesia: Principles to Practice. , (2010).</li><li>Yamamoto, Y., Inoue, S., Abe, R., Kawaguchi, M., Furuya, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Airway+management+with+the+laryngeal+tube+in+rabbits.">Airway management with the laryngeal tube in rabbits.</a> Lab animal. 36 (5), 33-35 (2007).</li><li>Belena, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laryngeal+mask,+laryngeal+tube,+and+Frova+introducer+in+simulated+difficult+airway.">Laryngeal mask, laryngeal tube, and Frova introducer in simulated difficult airway.</a> J Emerg Med. 48 (2), 254-259 (2015).</li><li>Smith, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endotracheal+tubes+versus+laryngeal+mask+airways+in+rabbit+inhalation+anesthesia:+ease+of+use+and+waste+gas+emissions.">Endotracheal tubes versus laryngeal mask airways in rabbit inhalation anesthesia: ease of use and waste gas emissions.</a> Contemp Top Lab Anim Sci. 43 (4), 22-25 (2004).</li><li>Kazakos, G. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+the+laryngeal+mask+airway+in+rabbits:+placement+and+efficacy.">Use of the laryngeal mask airway in rabbits: placement and efficacy.</a> Lab Anim (NY). 36 (4), 29-34 (2007).</li><li>Crotaz, I. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Initial+feasibility+investigation+of+the+v-gel+airway:+an+anatomically+designed+supraglottic+airway+device+for+use+in+companion+animal+veterinary+anaesthesia.">Initial feasibility investigation of the v-gel airway: an anatomically designed supraglottic airway device for use in companion animal veterinary anaesthesia.</a> Vet Anaesth Analg. 37 (6), 579-580 (2010).</li><li>Bateman, L., Ludders, J. W., Gleed, R. D., Erb, H. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+between+facemask+and+laryngeal+mask+airway+in+rabbits+during+isoflurane+anesthesia.">Comparison between facemask and laryngeal mask airway in rabbits during isoflurane anesthesia.</a> Veterinary Anaesthesia and Analgesia. 32 (5), 280-288 (2005).</li><li>Johnson, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endoscopic+intubation+of+exotic+companion+mammals.">Endoscopic intubation of exotic companion mammals.</a> The veterinary clinics of North America. Exotic animal practice. 13 (2), 273-289 (2010).</li><li>Tranquilli, W. J., Thurmon, J. C., Grimm, K. A., Lumb, W. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Lumb &amp; Jones' veterinary anesthesia and analgesia. 4th edn. , (2007).</li><li>Worthley, S. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+oral+endotracheal+intubation+with+a+fibre-optic+scope+in+rabbits:+a+simple+and+reliable+technique.">Rapid oral endotracheal intubation with a fibre-optic scope in rabbits: a simple and reliable technique.</a> Laboratory Animals. 34 (2), 199-201 (2000).</li><li>Miranda, A., Pego, J. M., Correia-Pinto, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+facility+videoendoscopic+intubation+station:+tips+and+tricks+from+mice+to+rabbits.">Animal facility videoendoscopic intubation station: tips and tricks from mice to rabbits.</a> Laboratory animals. , (2016).</li><li>Irazuzta, J., Hopkins, J., Gunnoe, P., Brittain, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simple+method+of+multipurpose+airway+access+through+percutaneous+tracheostomy+in+rabbits+(Oryctolagus+cuniculus).">Simple method of multipurpose airway access through percutaneous tracheostomy in rabbits (Oryctolagus cuniculus).</a> Lab Anim Sci. 47 (4), 411-413 (1997).</li><li>Bertolet, R. D., Hughes, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endotracheal+intubation:+an+easy+way+to+establish+a+patent+airway+in+rabbits.">Endotracheal intubation: an easy way to establish a patent airway in rabbits.</a> Lab Anim Sci. 30 (2), 227-230 (1980).</li><li>Gilroy, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endotracheal+intubation+of+rabbits+and+rodents.">Endotracheal intubation of rabbits and rodents.</a> J Am Vet Med Assoc. 179 (11), 1295 (1981).</li><li>Morgan, T. J., Glowaski, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Teaching+a+new+method+of+rabbit+intubation.">Teaching a new method of rabbit intubation.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 46 (3), 32-36 (2007).</li><li>Inglis, S., Strunk, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rabbit+anesthesia.">Rabbit anesthesia.</a> Lab Anim (NY). 38 (3), 84-85 (2009).</li><li>Falcao, S. C., Pereira Junior, J. R., Coelho, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Technique+of+blind+tracheal+intubation+in+rabbits+(Oryctolagus+cuniculi)+supported+by+previous+maneuver+of+esophageal+cannulization.">Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization.</a> Acta Cir Bras. 26 (5), 352-356 (2011).</li><li>Su, H. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+miniature+lighted+stylet+for+fast+oral+endotracheal+intubation+in+rabbits.">A miniature lighted stylet for fast oral endotracheal intubation in rabbits.</a> Vet J. 195 (2), 254-256 (2013).</li><li>Weinstein, C. H., Fujimoto, J. L., Wishner, R. E., Newton, P. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anesthesia+of+six-week-old+New+Zealand+White+rabbits+for+thoracotomy.">Anesthesia of six-week-old New Zealand White rabbits for thoracotomy.</a> Contemp Top Lab Anim Sci. 39 (3), 19-22 (2000).</li><li>Stephens DeValle, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Successful+Management+of+Rabbit+Anesthesia+Through+the+Use+of+Nasotracheal+Intubation.">Successful Management of Rabbit Anesthesia Through the Use of Nasotracheal Intubation.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 48, 166-170 (2009).</li><li>. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> A Guidance on the Use of Topical Anesthetics for Naso/Oropharyngeal and Laryngotracheal Procedures. , (2006).</li><li>Cook, R. T., Stene, J. K., Marcolina, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+a+Beck+Airway+Airflow+Monitor+and+controllable-tip+endotracheal+tube+in+two+cases+of+nonlaryngoscopic+oral+intubation.">Use of a Beck Airway Airflow Monitor and controllable-tip endotracheal tube in two cases of nonlaryngoscopic oral intubation.</a> Am J Emerg Med. 13 (2), 180-183 (1995).</li><li>Fish, R. E., Brown, M. J., Danneman, P. J., Karas, A. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals. , (2008).</li><li>Gografe, S. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Successful+management+of+long-term+general+anesthesia+in+rabbits+used+as+an+animal+model+of+human+disease.">Successful management of long-term general anesthesia in rabbits used as an animal model of human disease.</a> Contemp Top Lab Anim Sci. 42 (2), 16-19 (2003).</li><li>Nordin, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+trachea+and+cuff-induced+tracheal+injury.+An+experimental+study+on+causative+factors+and+prevention.">The trachea and cuff-induced tracheal injury. An experimental study on causative factors and prevention.</a> Acta Otolaryngol Suppl. 345, 1-71 (1977).</li><li>Phaneuf, L. R., Barker, S., Groleau, M. A., Turner, P. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tracheal+injury+after+endotracheal+intubation+and+anesthesia+in+rabbits.">Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 45 (6), 67-72 (2006).</li><li>Grint, N. J., Sayers, I. R., Cecchi, R., Harley, R., Day, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Postanaesthetic+tracheal+strictures+in+three+rabbits.">Postanaesthetic tracheal strictures in three rabbits.</a> Lab Anim. 40 (3), 301-308 (2006).</li><li>Squire, R., Siddiqui, S. Q., DiNunizio, G., Brodsky, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+study+of+the+tracheotomy+and+endotracheal+intubation+on+the+rabbit+tracheobronchial+tree.">Quantitative study of the tracheotomy and endotracheal intubation on the rabbit tracheobronchial tree.</a> Ann Otol Rhinol. , (1990).</li><li>Kumar, R. A., Boyer, M. I., Bowen, C. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+reliable+method+of+anesthesia+for+extensive+surgery+in+small+rabbits.">A reliable method of anesthesia for extensive surgery in small rabbits.</a> Lab Anim Sci. 43 (3), 265-266 (1993).</li></ol>

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

هنا نحن نقدم وصفاً مفصلاً لأرنب تنبيب التقنية التي يمكن أن يلم بسهولة في أي وضع السريرية. يشبه هذا الأسلوب إلى التصور مباشرة تم نشرها مسبقاً تقنيات10،15،،من2025 مع بعض التحسينات الإضافية، بما في ذلك استخدام أنبوب داخل الرغامى 3.5 مم أونكوفيد، 5 الفرنسية القسطرة البولية دليل لدينا المختار، الذي تم قطع ووضع علامة مع علامة دائمة في نهاية قص. أرنب القصبة الهوائية بسهولة عرضه للإصابة وذلك أوصت باستخدام أنابيب الرغامى أونكوفيد هو عموما عندما تنبيب الأرانب لمنع إلحاق ضرر الغشاء المخاطي الرغامى من ضغط الرباط. 26 القسطرة البولية الفرنسية 5 اخترنا كدليل صغيرة بما يكفي لتمرير بسهولة من خلال طيات صوتي دون عرقلة الرأي أثناء التصور المباشر للحنجرة. بينما الصغيرة، هذه القسطرة قاسية ما يكفي تبقى في مكانها كدليل لأنبوب داخل الرغامى. يتم تقريب طرف القسطرة القاصي للمساعدة في تقليل الصدمة عندما يتم التوصل إلى التشعب. يتم قطع الدانية نهاية القسطرة حيث أن القسطرة على طول عملي (ليست مفرطة في الطول)، وإزالة نهاية التي تتسع لمرفق لحقنه. يتم وضع علامة على نهاية قطع مع علامة دائمة كمؤشر مرئي عدم إدراج هذه الغاية في القصبة الهوائية، مما قد يسبب الضرر للغشاء المخاطي للقصبة الهوائية.
القيد الرئيسي من هذا الأسلوب أنه، نظراً لأنها تتطلب استخدام شفرة المنظار، قد لا يكون ممكناً للأرانب الصغار جداً أو السلالات صغيرة جداً بسبب حجم الفم أصغر. وبالإضافة إلى ذلك، قد لا يكون بعض مرافق هذا الحجم من المنظار بليد متاحة بسهولة. في المؤسسة لمقدم البلاغ، ويتم استخدام هذا الأسلوب "نيوزيلندا الأبيض" (إيه سيكس أسابيع) والأرانب "الهولندية مربوط" الكبار، ولكن لا حاولنا هذا الأسلوب في الحيوانات الأصغر سنا أو أصغر السلالات. في حالات حيث يكون المريض الأرانب الصغيرة، أو إذا لم يتوفر المنظار مع شفرة ميلر صغيرة، خيار بديل استخدام otoscope يده بدلاً من المنظار. 15 , 20 استخدام أوتوسكوبي بمنظار إذن #5، هو تصور الحنجرة، يتم وضع القسطرة دليل حسب التصور مباشرة، وهو إزالتها منظار قبل الشروع في اتباع نفس الخطوات كما هو مبين أعلاه.
من المهم استخدام عناية كبيرة عندما يتم وضع القسطرة دليل لتجنب إمكانية تسبب الصدمات النفسية أو bronchospasm نهاية القسطرة يمر إلى القصبة الهوائية ويمس التشعب الرغامى. ويمكن خفض خطر هذه المضاعفات أو تجنبها بتغذية القسطرة مع حركات لطيف جداً ووقف بمجرد أن هناك مقاومة، وتجنب حركة الرأس والرقبة مرة واحدة في مكان القسطرة. وبالإضافة إلى ذلك، عندما تقدم أنبوب داخل الرغامى عبر القسطرة، هناك احتمال للقسطرة للقبض على الموصل أنبوب داخل الرغامى. وبالتالي، من المهم للتأكد من أن القسطرة الشرائح عن طريق الرابط دون اصطياد؛ بدلاً من ذلك، يمكن إزالة الرابط واستبدالها عند تأمين داخل الرغامى أنبوب أو إرفاق إلى حلبة مخدر.
بأي طريقة التنبيب، وهناك احتمالات المضاعفات والآثار السلبية. استخدام أسلوب التصور مباشرة مع المنظار، يمكن الإدراج غير ملائمة بليد المنظار أو وضع أنبوب داخل الرغامى العدوانية تؤدي في الحنجرة، اللسان، أو الأسنان الإصابات. الموضع الصحيح للحيوان هو الخطوة الحاسمة الأولى في التقليل من الصدمات أثناء التصور الحنجرة. يجب أن يكون العمود الفقري مستقيم، مع الرأس في محاذاة مباشرة مع العمود الفقري؛ إذا كان الحيوان غير مباشرة، أو إذا هو الملتوية العنق إلى اليمين أو اليسار، هذا سيجعل التصور الحنجرة أكثر صعوبة وقد ينتج عن الصدمات المفرطة مع شفرة المنظار. مفتاح حاسم آخر للنجاح عند استخدام هذا الأسلوب هو اتباع سقف الفم نحو الحنجرة، وحالما يتم تصور الحنك لينة، تحول النصل إلى موقف سليم بالانحناء في المعصم. يبقى هذا الرأس في المكان، بينما تتحرك غيض من النصل إلى موقف العرض الأمثل للأحبال الصوتية، التي تقع البطني تماما في20،الأرنب24.
لأن التصور المباشر للحنجرة يمكن أن تكون صعبة إذا لم يتم اتباع تقنيات دقيقة أننا مخطط أعلاه، يمكن استخدام استراتيجيات تنبيب البديلة التي لا تتطلب التصور الحنجرة جذابة. على سبيل المثال، الأسلوب أعمى هو أحد الخيارات الممكنة التي لا تتطلب استخدام المنظار16،،من1718،،من1920. ومع ذلك، استخدام هذه التقنية تعتمد على القدرة على الكشف عن تدفق الهواء من خلال أنبوب داخل الرغامى من أجل توجيه وضع الأنبوب، وحالة الأنفاس للحيوان ضحلة جداً أو المقبوض عليهم، استخدام هذا الأسلوب لا يمكن الاعتماد عليها. كما يمكن النظر سوبراجلوتيك الأجهزة، منذ وضع هذه الأجهزة لا تتطلب التصور الحنجرة، وهم عموما من السهل جداً لوضع. هذه الأجهزة لا تدخل مباشرة في القصبة الهوائية، ومع ذلك، وهكذا هناك احتمال عدم التدفق المباشر لمجرى الهواء، وعجز عن يحققوا إذا طورت لارينجوسباسم، عدم وجود ختم ضيق ما يكفي للتهوية أثناء إجراءات فتح الصدر أو حالات الطوارئ الإنعاش والتنمية تطبل المعدة3،،من48. أحدث الأجهزة مصممة خصيصا للأرانب قد توفر بديلاً واعداً، ولكن يلزم إجراء مزيد من الدراسات لتقييم هذه الأجهزة، ولا تزال هناك شواغل بشأن عدم الدخول إلى القصبة الهوائية. يمكن أيضا أن تطبل المعدة مضاعفات محتملة في حيوان المنببين إذا تم وضع أنبوب داخل الرغامى بطريق الخطأ إلى المريء؛ ومع ذلك، استخدام تقنية التصور مباشرة يقلل خطر مضاعفات هذا بالتحقق من وضع القسطرة الدليل الصحيح في الحنجرة.
صدمة للغشاء المخاطي طرجهالي و/أو الرغامى مصدر قلق محتمل آخر عند إدخال أنبوب داخل رغامى، خاصة عند استخدام نفخ مكبلة أنابيب26،،من2728. وقد أصيب القصبة الهوائية في الأرانب بسهولة، مما يمكن أن يؤدي إلى مضاعفات مثل انتفاخ تحت الجلد، واسترواح الصدر، وحتى الموت10،27،،من2829. أثناء تنفيذ هذا الأسلوب يصف لنا هنا، ينبغي الحرص على منع إصابة القصبة الهوائية باستخدام أنابيب الرغامى أونكوفيد، وكفالة تقريب طرف القسطرة دليل يتم إدراجه في القصبة الهوائية، وعدم إجبار القسطرة دليل المزمار. وبالإضافة إلى ذلك، اختيار أنبوب داخل الرغامى حجم مناسب ذو أهمية حاسمة. حجم أنبوب داخل الرغامى ينبغي أن تكون نظرت مقابل حجم الحيوان، فضلا عن مقارنة بفتح مدخل الحنجرة حيث أنها أصغر في قطر من القصبة الهوائية. أنبوب داخل رغامى كبير جداً في قطر قد ينتج الصدمات طرجهالي الغشاء المخاطي أو الغضروف. من ناحية أخرى، يؤدي إلى مقاومة مجرى الهواء زيادة استخدام أنبوب داخل الرغامى أصغر ويزيد من الفرص للعرقلة بسبب المخاط أو شبك. ولهذا السبب، رصد الجهاز التنفسي مهم جداً في الأرانب المنببين. وبالإضافة إلى نبض oximetry، ينبغي قياس تدفق الهواء مونيتوريد مع كابنوجرافي؛ إذا لم يتوفر كابنوجراف، شاشات مجرى الهواء هي بديل الذي يمكن استخدامه للكشف عن تدفق الهواء (ولكن لم تقم بتوفير قياسات ثاني أكسيد الكربون الزفير). وبالإضافة إلى ذلك، يمكن توفير التهوية المساعدة القيمة، لا سيما في الحالات التي يكون فيها أنابيب قطرها أصغر يتم استخدامها24،30.
بالإضافة إلى فوائد استخدام هذا الأسلوب سبق ذكره، هو ميزة رئيسية أخرى لهذا الأسلوب أن فإنه يمكن أن يقوم بها فرد واحد دون الحاجة إلى مساعد، التي يمكن أن تكون هامة في إعداد سريرية مشغول. في هذه الحالة، من المهم جمع جميع اللوازم الضرورية، ويكون لهم في متناول اليد أثناء عملية تنبيب، لا سيما عندما القسطرة الدليل في مكان، وينبغي تجنب حركة الرأس.
يستخدم الأسلوب يصف لنا هنا موظفي الطب البيطري والبحوث في مؤسستنا لكل أرنب إينتوباتيونس، التي تبلغ ما يقرب من 200-400 إينتوباتيونس في السنة. يتم تدريسها بسهولة جداً في دورة تدريبية تخدير أرنب نموذجية، التي تستغرق حوالي 30 دقيقة. وقد وجدنا أنه من السهل نسبيا لمعرفة، مع طلاب التعلم من ضمن محاولاتهم الأولى 3 وقادرة بوجه عام تكرار هذه العملية بنجاح في محاولة إضافية التالية. للدراسة في المستقبل، سيكون من قيمة لمقارنة الوقت بالكفاءة والقدرة على الحفاظ على الكفاءة على مر الزمن لهذا الأسلوب مقارنة بالأساليب الأخرى تنبيب. بينما هذا درس لأشكال مختلفة من تقنيات المكفوفين16، تقييما شاملا لمنحنى التعلم لمجموعة متنوعة من تقنيات تنبيب لم يتم تنفيذ. ويمكن أن تشمل آخر الاتجاه المستقبلي المحتمل لدراسة مقارنة التنبيب داخل الرغامى مباشرة إلى مجرى الهواء إبلاغها سوبراجلوتيك أحدث الأجهزة، لا سيما فيما يتعلق بوظيفة أثناء التهوية بالضغط الإيجابي.
وفي الختام، تقنية تنبيب الأرانب يصف لنا هنا هو غير الغازية وموثوق بها ولا تتطلب استخدام معدات متخصصة، من السهل لإتقان ويمكن أن يقوم بها فرد واحد دون الحاجة إلى مساعد. جميع تقنيات الوصول إلى مجرى الهواء تقديم مستوى معين من المخاطر، ولكن باستخدام تقنية تصور مباشرة واتباع الخطوات التي يمكننا وصف أعلاه للتقليل من المضاعفات، المخاطر أقوى بكثير من فوائد وجود مجرى الهواء الكافي أثناء التخدير.

الأرانب لها تجويف ضيق وعميق الشفوية التي تحد من بروز الحنجرة التنبيب داخل الرغامى. لديهم أيضا على لسان لحمى كبيرة جداً وأسنان الخد التي، عندما يقترن بضيق تجويف الفم، يمكن أن يسبب مشاكل عند إدراج المنظار وتصور المزمار لإدراج أنبوب داخل رغامى1. ويجب إيلاء عناية كبيرة تجنب إلحاق الضرر بتجويف الفم ومجرى الهواء عند محاولة التنبيب. أنسجة الحنجرة جداً قابلة للتفتيت والصدمات المفرطة من المحاولات المتكررة التنبيب يمكن أن يسبب التهاب كبير، مما يجعل تنبيب أصعب2.
ولهذه الأسباب، قد وصف مجموعة متنوعة من التقنيات البديلة، وأبرزها سوبراجلوتيك مجرى الهواء الأجهزة بما في ذلك سرطانات أنبوب3،4، قناع حنجري مجرى الهواء (LMA)4،5، 6 وهو جهاز مجرى الهواء إبلاغها سوبراجلوتيك7. أنبوب حنجري يتكون من أنبوب مع اثنين من البالونات التي توجه تدفق الهواء إلى القصبة الهوائية: يشكل أكبر بالون في وسط الأنبوبة ختم في البلعوم العلوي وبالون الأصغر حجماً في نهاية القاصي الأختام مدخل المريء3. لما يتكون من أنبوب مع قناع بيضاوي في نهاية البعيدة التي هي مبالغ فيها بشكل ختم محكم على مدى5،،من4المزمار6. إبلاغها الجهاز هو أول سوبراجلوتيك إبلاغها البيطرية مجرى الهواء، المتاحة حاليا للقطط والأرانب، مصممة خصيصا لتناسب الهياكل التشريحية لكل الأنواع لخلق ضغط الختم في البلعوم7. ومع ذلك، نظراً لأن هذه الأجهزة لا تدخل مباشرة في القصبة الهوائية، أنها قد تنطوي على مخاطر المضاعفات مثل تطبل المعدة. عدم وجود ختم الصحيح داخل القصبة الهوائية يمثل مصدر قلق بشأن مدى ملاءمة لاستخدام هذه الأجهزة للتهوية بالضغط الإيجابي لدعم الجهاز التنفسي، وحالات الطوارئ، أو جراحة الصدر3،8. وبالإضافة إلى ذلك، عدم وجود تنبيب مباشرة من القصبة الهوائية قد يؤدي إلى تعرض الأفراد للنفايات غازات التخدير5.
العديد من الأساليب لمباشرة التنبيب داخل الرغامى قد وصف9،10،11،،من1213،،من1415. أسلوب شعبية واحد هو أسلوب الأعمى، الذي قد يقلل فرصة إصابة تجويف المكنسية منذ الإدراج المنظار ليس ضروريا16،17،،من1819 , 20-ويتطلب هذا الأسلوب كأسلوب لمكفوفين بصريا، رصد لتدفق الهواء من خلال أنبوب داخل الرغامى والتلاعب الدقيق لوضع دليل. على الرغم من أن هذا الأسلوب يستخدم عادة في البحوث والممارسة السريرية البيطرية، في الخبرة أصحاب، هذا الأسلوب يمكن أن تكون مضيعة للوقت ولم تكن ناجحة دائماً، وهكذا هو أكثر صعوبة لتعليم وقد تتطلب الجرعات الإضافية من وكلاء مخدر 9 , 10-وبالإضافة إلى ذلك، لأنه رصد للتنفس يستخدم لتوجيه الموضع الصحيح من الأنبوب، هذا الأسلوب سيكون أكثر صعوبة وأقل موثوقية أثناء اعتقال الجهاز التنفسي. طريقة شعبية أخرى استخدام تقنية المنظار التقليدي إلى التنبيب كما الحال مع الأنواع أكبر. ومع ذلك، يصعب تقنية المنظار التقليدي في الأرانب في هذا الرأي للأحبال الصوتية هو عرقلة عندما يتم إدخال أنبوب داخل الرغامى في الفم. ولذلك، يمكن أن يؤدي استخدام هذا الأسلوب في محاولات تنبيب المتكررة، وزيادة جرعات مخدر وإصابة تجويف ومجرى الهواء عن طريق الفم10.
وتوجد أيضا خيارات أكثر تكلفة وتحديا من الناحية التقنية التنبيب. يسمح المنظار اليافي الإدراج سهلة للأنبوب داخل الرغامى بإدراج الأنبوب المنظار وتصور الإدراج في القصبة الهوائية على شاشة. وبالمثل، يمكن استخدام المناظير لتصور منطقة الحنجرة وتوجيه وضع الأنبوب. ومع ذلك، كل من هذه الأساليب تتطلب استخدام معدات غالية الثمن التي قد لا تكون متاحة بسهولة في إعدادات السريرية النموذجية9،،من1112. تنبيب عبر تجويف الآنف هو طريقة بديلة قد وصفت، على الرغم من أن هذا يمثل خطرا إدخال مسببات الأمراض الانتهازية من تجويف الآنف إلى الرئتين، وبخاصة في الأرانب التي ليست خالية من مسببات الأمراض خاصة21. وأخيراً، أساليب الغازية أكثر من تنبيب نشرت أيضا، بما في ذلك إدخال قسطرة دليل إلى الوراء من خلال إبرة توضع يغرز في القصبة الهوائية، فضلا عن استخدام كريكوثيرويدوتومي إبرة متبوعاً بوضع سلك دليل، ديلاتور السفينة، وغمد المقدم13،14. كتقنيات الغازية، هذه الأساليب والمضاعفات المحتملة مثل الإجرائية بعد الألم والإصابة. الأسلوب يصف لنا هنا، باستخدام قسطرة المنظار والدليل، يمكن أن تدرس مع قدر ضئيل من التدريب بوقت قصير إلى الكفاءة، وهو غير الغازية، يمكن أن يقوم بها فرد واحد دون الحاجة إلى مساعد، ولا تتطلب استخدام المعدات المتخصصة.

<table><tbody><tr><td>Ketalar&lt;br/&gt; Ketamine HCl Inj.</td><td>JHP Pharmaceuticals</td><td>NDC 42023-113-10</td><td>35mg/kg IM in epaxial muscles or quadriceps muscle (preferred)</td></tr><tr><td>Anased&lt;br/&gt; Xylazine (100mg/ml)</td><td>Lloyd Labs</td><td>NADA #139-236</td><td>5mg/kg IM in epaxial muscles or quadriceps muscle (preferred)</td></tr><tr><td>Welch Allyn Laryngoscope Handle</td><td>Welch Allyn</td><td>60300</td><td>Requires 2 size C alkaline batteries</td></tr><tr><td>Size 0 or 1 Miller Laryngoscope Blade</td><td>Welch Allyn</td><td>68040</td><td></td></tr><tr><td>2.5 &amp;ndash; 4.0 mm ID uncuffed endotracheal tube</td><td>Jorgenson</td><td>J0149V</td><td>Suitable for 2.5-5 kg rabbits&lt;br/&gt; 3.5 mm most commonly used</td></tr><tr><td>Sovereign polypropylene catheter, 5 Fr x 22&amp;rdquo;</td><td>Medtronic</td><td>8890703310</td><td>Cut to 8-10 inches&lt;br/&gt; Mark the cut end with permanent marker to indicate which end not to insert</td></tr><tr><td>Lidocaine 2% HCL Inj</td><td>VetOne</td><td>L-2000-04</td><td></td></tr><tr><td>4-Ply Nonsterile, Bulk Packed Versalon Sponges (Gauze pads)</td><td>Covidien</td><td>KC9024A</td><td></td></tr><tr><td>Tape, Twill, Bleached &amp;frac12;&amp;rdquo; x 72 yds</td><td>Encompass Textiles</td><td>48210-025</td><td>Used for securing endotracheal tube</td></tr><tr><td>HR Lubricating Jelly</td><td>HR Pharmaceuticals</td><td>201</td><td>For lubricating endotracheal tube tip</td></tr><tr><td>Great Plains Ballistics: BAAM (Beck Airway Airflow Monitor) 22</td><td>BoundTree Medical</td><td>21410</td><td>For confirmation of successful intubation</td></tr><tr><td>Ambu Pediatric Co2 Detector</td><td>AMBU INC</td><td>172713</td><td>For confirmation of successful intubation</td></tr></tbody></table>

endotracheal intubation of rabbits using a polypropylene guide catheter

التنبيب داخل الرغامى في الأرانب يمكن أن تكون صعبة بسبب انتهاء التشريح غير عادية. تحقيق مجرى الهواء البراءات أثناء التخدير أمر بالغ الأهمية لتجنب عرقلة مجرى الهواء، منع تطبل المعدة، وإلى السماح بدعم التهوية. نظراً لصعوبة التنبيب، تم استكشاف طرق بديلة مثل استخدام قناع حنجري الخطوط الجوية أو أنابيب الحنجرة. بيد أن هذه الأساليب لا تؤدي إلى الوصول المباشر إلى القصبة الهوائية ومما قد تشكل خطرا لتنمية مضاعفات. وبالإضافة إلى ذلك، يمكن أن يؤدي عدم وجود تنبيب مباشرة من القصبة الهوائية تعرض الأفراد للنفايات الغازية مخدر. وقد وصف أساليب عديدة التنبيب داخل الرغامى، بما في ذلك الموضع أعمى، واستخدام موضع اليافي المنظار أو المنظار، وكريكويد. وعلى الرغم من هذه المنشورات العديدة، كثيرا ما زالت تكافح لتحقيق النجاح. هنا نقدم وصفاً مفصلاً لأسلوب تنبيب التي يمكن أن تدرس مع قدر ضئيل من التدريب بوقت قصير للكفاءة. بإيجاز، بعد إقامة التخدير عن طريق الحقن، وتحديد المواقع المناسبة للأرنب، يوضع قسطرة البوليبروبيلين في القصبة الهوائية بالتصور مباشرة المنظار باستخدام. ثم يتم استخدام القسطرة كدليل لتوجيه الأنبوب داخل الرغامى إلى القصبة الهوائية. هذا الأسلوب يسمح تنبيب دون الحاجة إلى معدات مكلفة ويمكن أن يقوم بها فرد واحد دون الحاجة إلى مساعد. وفي الختام، هذا الأسلوب يمكن بسهولة تدريسها وأداء تكلفة قليلة جداً في أي السريرية أو بحوث الإعداد.

في مؤسسة صاحبي، تدرس هذه التقنية عادة للعاملين في المختبرات والطب البيطري خلال دورات تدريبية على تقنيات التخدير والتعامل مع الأرانب. وتجري دورات التدريس مع الحيوانات مخصصة للتدريب. يوضح المدرب الأسلوب مرة واحدة وثم أداء المتدربين تقنية تحت إشراف المدرب. المتدربون عادة تحقيق النجاح ضمن محاولات 1-3. بعد أن كانوا قد بنجاح تنبيب الأرنب مرة واحدة، والأفراد مطالبون بإجراء تنبيب لمرة ثانية، وهي عادة قادرة على التنبيب بنجاح الأرنب مرة أخرى في أول محاولة إضافية. استمرار ردود الفعل خلال هذه الدورات التدريبية، وبخاصة من الأفراد الذين تلقوا تدريبا مسبقاً مع تقنيات بديلة، يتضمن تعليقات بشأن مدى سهولة هذا الأسلوب هو للتعلم وإكمال بنجاح.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig1.jpg"> 
الشكل 1. لوازم التنبيب داخل الرغامى: 1) المنظار مع حجم 0 أو 1 ميلر بليد المنظار أو الشريط 2) الحبل السري (أو اللوازم الأخرى لتأمين أنبوب داخل الرغامى)، 3) 0.25 مل يدوكائين 2%، 4) 5-الفرنسية القسطرة البوليبروبيلين قص إلى 8-10 بوصة مع علامة النهاية غير تقريب مع علامة دائمة لتشير بوضوح إلى عدم إدراج هي غاية في القصبة الهوائية (السهم)، 5) جهاز الكشف عن تدفق الهواء، 6) زيوت التشحيم العقيمة التي ستطبق على القاصي نهاية الأنبوب، 7) أونكوفيد أنبوب داخل الرغامى. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig1large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig2.jpg"> 
الشكل 2 : تحديد المواقع القصية التنبيب داخل الرغامى. يتم وضع الأرنب ستيرنالي مع الأمامية تمتد إلى نهاية الجدول. يتم تمديد أطرافه هند مرة أخرى، وتتم محاذاة الرأس للأرنب مع العمود الفقري. يتم استخدام اليد اليسرى لرفع رأسه في ملحق استعدادا للإدراج المنظار. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig2large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig3.jpg"> 
الشكل 3 : إدراج المنظار. A) ويتم إدراج المنظار دياستيما الأيسر استخدام اليد اليمنى، عقب سقف الفم بطرف النصل حتى الحنك لينة مرئياً. متى الحنك لينة مرئياً، المنظار يميل إلى الأمام بينما تمتد أرنب رأسه إلى الوراء والرقبة إلى الأمام لتصور الحنجرة. ب) التصور الحنجرة. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig3large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig4.jpg"> 
الشكل 4 : النهوض بالقسطرة الدليل. A) بعد تبديل شفرة المنظار في يده اليسرى، اليد اليمنى السلف تقريب طرف القسطرة الدليل من خلال فتح الماضي الحنجرة. ب يتم تمرير القسطرة دليل) عن طريق الحبال الصوتية مع التصور مباشرة. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig4large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig5.jpg"> 
الشكل 5 : النهوض بالانبوب الرغامى. أنبوب داخل الرغامى هي مترابطة عبر القسطرة دليل ومتقدمة حتى يكون هناك مقاومة من الاحبال الصوتية. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig5large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig6.jpg"> 
الرقم 6 : تقطير ليدوكائين. ليدوكائين (2%, 0.25 مل) هي تغرس في افتتاح أنبوب داخل الرغامى. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig6large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig7.jpg"> 
الشكل 7 : النهوض بأنبوب داخل الرغامى. دقيقتين بعد تقطير يدوكائين، أنبوب داخل الرغامى متقدمة بالتواء بلطف أن تمر من خلال الاحبال الصوتية. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig7large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig8.jpg"> 
الشكل 8 : تحقق تدفق الهواء من خلال أنبوب داخل الرغامى. يمكن استخدام جهاز الكشف عن تدفق الهواء للتحقق من تدفق الهواء من خلال أنبوب داخل الرغامى، أو مرآة أسنان قد تستعمل أيضا للكشف عن التكثيف من الأنفاس التي تشير إلى نجاح تنبيب. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig8large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>

Watch this Scientific Journal Video about Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter at JoVE.com

Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter

التنبيب داخل الرغامى في الأرانب يمثل تحديا بسبب انتهاء التشريح غير عادية. وهنا يقدم تقنية تنبيب مباشرة من القصبة الهوائية باستخدام قسطرة البوليبروبيلين كدليل. هذا الأسلوب يستخدم إمدادات رخيصة نسبيا وتتطلب الحد الأدنى من التدريب، ويمكن تنفيذها بسهولة في أي وضع السريرية.

التنبيب داخل الرغامى من الأرانب باستخدام قسطرة دليل البولي بروبلين

Endotracheal intubation in rabbits can be challenging due to their unusual anatomy. Achieving a patent airway during anesthesia is critical for the ...

endotracheal-intubation-rabbits-using-polypropylene-guide

Research

JoVE Journal

Biology

33.3K Views.  Mayo Clinic. التنبيب داخل الرغامى في الأرانب يمثل تحديا بسبب انتهاء التشريح غير عادية. وهنا يقدم تقنية تنبيب مباشرة من القصبة الهوائية باستخدام قسطرة البوليبروبيلين كدليل. هذا الأسلوب يستخدم إمدادات رخيصة نسبيا وتتطلب الحد الأدنى من التدريب، ويمكن تنفيذها بسهولة في أي وضع...

Video: Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter

Endotracheal Intubation in Mice via Direct Laryngoscopy Using an Otoscope

Mice, both wildtype and transgenic, are the principal mammalian model in biomedical research currently. Intubation and mechanical ventilation are necessary for whole animal experiments that require surgery under deep anesthesia or measurements of lung function. Tracheostomy has been the standard for intubating the airway in these mice to allow mechanical ventilation. Orotracheal intubation has been reported but has not been successfully used in many studies because of the substantial technical difficulty or a requirement for highly specialized and expensive equipment. Here we report a technique of direct laryngoscopy using an otoscope fitted with a 2.0 mm speculum and using a 20 G&#160;intravenous catheter as an endotracheal tube. We have used this technique extensively and reliably to intubate and conduct accurate assessments of lung function in mice. This technique has proven safe, with essentially no animal loss in experienced hands. Moreover, this technique can be used for repeated studies of mice in chronic models.

Endotracheal Intubation in Mice via Direct Laryngoscopy Using an Otoscope

We have developed a simple, reliable, and relatively inexpensive method for endotracheal intubation in mice via direct laryngoscopy using an otoscope with a 2.0 mm speculum. This technique is atraumatic and can be used for repeated measurements in chronic experiments. We find it superior to tracheostomy or previously reported nonsurgical techniques.

التنبيب الرغامي في الفئران<em&gt; عبر</em&gt; تنظير الحنجرة المباشر باستخدام منظار الأذن

Mice, both wildtype and transgenic, are the principal mammalian model in biomedical research currently. Intubation and mechanical ventilation are ...

Medicine

A Reversible, Non-invasive Method for Airway Resistance Measurements and Bronchoalveolar Lavage Fluid Sampling in Mice

Airway hyperreactivity (AHR) measurements and bronchoalveolar lavage (BAL) fluid sampling are essential to experimental asthma models, but repeated procedures to obtain such measurements in the same animal are generally not feasible.  Here, we demonstrate protocols for obtaining from mice repeated measurements of AHR and bronchoalveolar lavage fluid samples.  Mice were challenged intranasally seven times over 14 days with a potent allergen or sham treated.  Prior to the initial challenge, and within 24 hours following each intranasal challenge, the same animals were anesthetized, orally intubated and mechanically ventilated.  AHR, assessed by comparing dose response curves of respiratory system resistance (RRS) induced by increasing intravenous doses of acetylcholine (Ach) chloride between sham and allergen-challenged animals, were determined.  Afterwards, and via the same intubation, the left lung was lavaged so that differential enumeration of airway cells could be performed.  These studies reveal that repeated measurements of AHR and BAL fluid collection are possible from the same animals and that maximal airway hyperresponsiveness and airway eosinophilia are achieved within 7-10 days of initiating allergen challenge.  This novel technique significantly reduces the number of mice required for longitudinal experimentation and is applicable to diverse rodent species, disease models and airway physiology instruments.  

Repeated measurements of rodent respiratory physiology and sampling of airway inflammatory cells are desirable, but generally not feasible. Here we describe a repeatable method for orally intubating mice that permits repeated measurements of airway hyperreactivity and sampling of airway inflammatory cells.

A عكسية ، غير الغازية طريقة لقياس مقاومة مجرى الهواء وأخذ عينات السوائل غسل القصبات في الفئران

Airway hyperreactivity (AHR) measurements and bronchoalveolar lavage (BAL) fluid sampling are essential to experimental asthma models, but repeated ...

Blind Endotracheal Intubation in Neonatal Rabbits

The newborn rabbit is a useful animal model for various pathologies and procedures. Airway management of the rabbit is complex due to its anatomical characteristics, which is further complicated in the case of the newborn. Of the different methods of advanced airway management, endotracheal intubation is less aggressive than tracheostomy, and is more feasible than supraglottic management given the lack of supraglottic devices of such a small size. As direct glottis visualization is very difficult in animals this size, this blind intubation model is presented as an effective alternative, especially for experiments requiring prolonged anesthesia. Using this method, we performed blind intubations with a 90% success rate.

We describe a technique of endotracheal intubation in newborn rabbits after esophageal catheterization with a gastric tube.

التنابيب Endotracheal الأعمى في الأرانب حديثي الولادة

The newborn rabbit is a useful animal model for various pathologies and procedures. Airway management of the rabbit is complex due to its anatomical ...

Simplifying Transcutaneous Intratracheal Drug Delivery in the Newborn Preterm Rabbit

Intratracheal (IT) drug delivery allows the direct delivery of pharmaceutical substances to the lung, maximizing potential pulmonary benefit and minimizing systemic drug exposure. The transcutaneous technique is simple and allows for the IT delivery of substances to the lung of prematurely born rabbits shortly after birth. Newborn pups are anesthetized with inhaled Isoflurane before being placed in a supine position with the neck extended. The larynx is identified and stabilized before transcutaneous placement of a 26-gauge (G) catheter into the trachea. Following catheterization of the trachea, a 30 G blunt needle attached to a Hamilton syringe is introduced into the IT catheter and is used for delivering a precise volume into the trachea during spontaneous respiration. After the IT injection is completed, the needle and catheter are withdrawn, and the pup is allowed to recover from anesthesia. Transcutaneous IT injection delivers a large proportion of the injected substance to the lung, with the majority remaining in the lung 3 hours after the intervention. The injections are well tolerated from the day of birth and can be repeated for multiple consecutive days without influencing survival. This technique can be used to investigate the effect of pharmaceutical agents on lung development and in the prevention of neonatal lung injury in preterm rabbits.

Transcutaneous intratracheal injection allows for effective intrapulmonary drug delivery during spontaneous respiration. Single and multiple injections are well tolerated with no effect on survival. The technique is simple to perform and can examine the effect of substances on lung development and the prevention of lung injury in newborn rabbits.

Intratracheal (IT) drug delivery allows the direct delivery of pharmaceutical substances to the lung, maximizing potential pulmonary benefit and ...

Isolated Lung Perfusion System in the Rabbit Model

The isolated lung perfusion system has been widely used in pulmonary research, contributing to elucidate the lungs&#39; inner workings, both micro and macroscopically. This technique is useful in the characterization of pulmonary physiology and pathology by measuring metabolic activities and respiratory functions, including interactions between circulatory substances and the effects of inhaled or perfused substances, as in drug testing. While in vitro methods involve the slicing and culturing of tissues, the isolated ex vivo lung perfusion system allows to work with a complete functional organ making possible the study of a continuous physiological function while recreating ventilation and perfusion. However, it should be noted that the effects of the absence of central innervation and lymphatic drainage still have to be fully assessed. This protocol aims to describe the assembly of the isolated lung apparatus, followed by the surgical extraction and cannulation of lungs and heart from experimental lab animals, as well as to display the perfusion technique and signal processing of data. The average viability of the isolated lung ranges between 5-8 h; during this period, the pulmonary capillary permeability increases, causing edema and lung injury. The functionality of preserved pulmonary tissue is measured by the capillary filtration coefficient (Kfc), used to determine the extent of pulmonary edema through time.

The isolated rabbit lung preparation is a gold standard tool in pulmonary research. This publication aims to describe the technique as developed for the study of physiological and pathological mechanisms involved in airway reactivity, lung preservation, and preclinical research in lung transplantation and pulmonary edema.

عزل الرئة Perfusion النظام في نموذج الأرنب

The isolated lung perfusion system has been widely used in pulmonary research, contributing to elucidate the lungs&#39; inner workings, both micro and ...

Endotracheal Intubation Using a Flexible Intubation Endoscope as a Standardized Model for Safe Airway Management in Swine

Endotracheal intubation is often a basic requirement for translational research in porcine models for various interventions that require a secured airway or high ventilation pressures. Endotracheal intubation is a challenging skill,&#160;requiring a minimum number of successful endotracheal intubations to achieve a high success rate under optimal conditions, which is often unachievable for non-anaesthesiology researchers. Due to the specific porcine airway anatomy, a difficult airway can usually be assumed. The impossibility of establishing a secure airway can result in injury, adverse events, or death of the laboratory animal. Using a prospective, randomized, controlled evaluation approach, it has been shown that fiberoptic-assisted endotracheal intubation takes longer but has a higher first-pass success rate than conventional intubation without causing clinically relevant drops in oxygen saturation. This model presents a standardized regimen for endoscopically guided endotracheal intubation, providing a secured airway, especially for researchers who are inexperienced in the technique of endotracheal intubation via direct laryngoscopy. This procedure is expected to minimize animal suffering and unnecessary animal losses.

The use of pigs in research has increased in recent years. Nevertheless, pigs are characterized by difficult airway anatomy. By demonstrating how to perform endoscopically guided endotracheal intubation, the present protocol aims to further increase laboratory animals' safety to avoid animal suffering and unnecessary death.

التنبيب الرغامي باستخدام منظار التنبيب المرن كنموذج موحد لإدارة مجرى الهواء الآمن في الخنازير

Endotracheal intubation is often a basic requirement for translational research in porcine models for various interventions that require a secured airway ...

Model of Ischemia and Reperfusion Injury in Rabbits

The protocol here provides a simple, highly replicable methodology to induce in situ acute regional myocardial ischemia in the rabbit for non-survival and survival experiments. New Zealand White adult rabbit is sedated with atropine, acepromazine, butorphanol, and isoflurane. The animal is intubated and placed on mechanical ventilation. An intravenous catheter is inserted into the marginal ear vein for the infusion of medications. The animal is pre-medicated with heparin, lidocaine, and lactated Ringer&#39;s solution. A carotid cut-down is performed to obtain arterial line access for blood pressure monitoring. Select physiologic and mechanical parameters are monitored and recorded by continuous real-time analysis.
With the animal sedated and fully anesthetized, either a fourth intercostal space small left thoracotomy (survival) or midline sternotomy (non-survival) is performed. The pericardium is opened, and the left anterior descending (LAD) artery is located.
A polypropylene suture is passed around the second or third diagonal branch of the LAD artery, and the polypropylene filament is threaded through a small vinyl tube, forming a snare. The animal is subjected to 30 min of regional ischemia, achieved by occluding the LAD by tightening the snare. Myocardial ischemia is confirmed visually by regional cyanosis of the epicardium. Following regional ischemia, the ligature is loosened, and the heart is allowed to re-perfuse.
For both survival and non-survival experiments, the myocardial function can be assessed via an echocardiography (ECHO) measurement of the fractional shortening. For non-survival studies, data from sonomicrometry collected using three digital piezoelectric ultrasonic probes implanted within the ischemic area and the left ventricle developed pressure (LVDP) using an apically inserted left ventricle (LV) catheter can be continuously acquired for evaluating the regional and global myocardial function, respectively.
For survival studies, the incision is closed, a left needle thoracentesis is performed for pleural air evacuation, and postoperative pain control is achieved.

The present study demonstrates a highly reproducible animal model of acute regional myocardial ischemia and reperfusion injury in rabbits using a left mini-thoracotomy for survival cases or a midline sternotomy for non-survival cases.

نموذج لنقص التروية وإصابة التروية في الأرانب

The protocol here provides a simple, highly replicable methodology to induce in situ acute regional myocardial ischemia in the rabbit for non-survival and ...

<meta charset="utf8"></head><body>بروتوكول التنبيب الرغامي القائم على بضع القصبة الهوائية لنماذج الفئران غير الناجية

Endotracheal Intubation via Tracheotomy and Subsequent Thoracotomy in Rats for Non-Survival Applications

Endotracheal intubation and subsequent ventilation are often basic requirements for translational research in rat models for various interventions that require controlled or high ventilation pressures or access to the thoracic cavity and organs. Conventional endoorotracheal intubation using the anatomically existing route through the mouth is well suited for survival experiments. However, this procedure poses some challenges, including generally higher levels of the required experience and technical skill, more advanced equipment, and greater time effort with relevant intubation failure rates and complications such as tracheal perforation, temporary systemic hypooxygenation, and relevant aerial leakage.
This manuscript, therefore, presents a detailed step-by-step protocol for endotracheal intubation through tracheotomy in non-survival rat models when guaranteed intubation success, constant oxygenation levels, high ventilation pressures, or open thoracotomy are required.
The protocol emphasizes the importance of meticulous surgical technique to ensure consistent and reliable outcomes, especially for researchers who are inexperienced or lack routine in the technique of endoorotracheal intubation via direct laryngoscopy. This procedure is, therefore, expected to minimize animal suffering and unnecessary animal losses.

<meta charset="utf8"></head><body>التنبيب الرغامي عن طريق بضع القصبة الهوائية وبضع الصدر اللاحق في الفئران لتطبيقات عدم البقاء على قيد الحياة

Here we introduce a standardized procedure for endotracheal intubation via tracheotomy followed by thoracotomy in rats, aimed at enhancing the precision and reproducibility of non-survival applications requiring invasive ventilation and exposure of thoracic organs in in vivo rat models.

التنبيب الرغامي عن طريق بضع القصبة الهوائية وبضع الصدر اللاحق في الفئران لتطبيقات عدم البقاء على قيد الحياة

Endotracheal intubation and subsequent ventilation are often basic requirements for translational research in rat models for various interventions that ...

التنبيب داخل الرغامى من الأرانب باستخدام قسطرة دليل البولي بروبلين

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video

التنبيب الرغامي في الفئران

A عكسية ، غير الغازية طريقة لقياس مقاومة مجرى الهواء وأخذ عينات السوائل غسل القصبات في الفئران

التنابيب Endotracheal الأعمى في الأرانب حديثي الولادة

Simplifying Transcutaneous Intratracheal Drug Delivery in the Newborn Preterm Rabbit

عزل الرئة Perfusion النظام في نموذج الأرنب

التنبيب الرغامي باستخدام منظار التنبيب المرن كنموذج موحد لإدارة مجرى الهواء الآمن في الخنازير

نموذج لنقص التروية وإصابة التروية في الأرانب

التنبيب الرغامي عن طريق بضع القصبة الهوائية وبضع الصدر اللاحق في الفئران لتطبيقات عدم البقاء على قيد الحياة

التنبيب الرغامي عن طريق بضع القصبة الهوائية وبضع الصدر اللاحق في الفئران لتطبيقات عدم البقاء على قيد الحياة

التنبيب الرغامي عن طريق بضع القصبة الهوائية وبضع الصدر اللاحق في الفئران لتطبيقات عدم البقاء على قيد الحياة