يمكن لهذه الطريقة الإجابة على الأسئلة الرئيسية في نمو ومورفولوجيا stolons وrizomes من المحاصيل المختلفة مثل العشب والمروج والمراعي. والميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أن طول stolon و rhizome يمكن قياسه في عينات مع كمية كبيرة من الكتلة الحيوية التي الوزن هو المعلمة الوحيدة المستخدمة حاليا. جمع العينات باستخدام العينات الأساسية للتربة.
وتشمل الكتلة الحيوية الأرض المذكورة أعلاه وطبقة التربة مع عمق مناسب، اعتمادا على الأنواع لضمان جمع كل من stolons وrizomes. وبدلاً من ذلك، حدد مساحة السطح التي يجب جمعها بإطار وجمع العينات بمسديل. تسمية كل عينة مع شريط المختبر.
لتنظيف عينات الكتلة الحيوية، ضع العينة في منخل كبير مع فتحات 0.5 إلى 1.5 ملليمتر، اعتمادا على ستولتون أو حجم رهيزوم. يجب أن تكون الفتحات صغيرة بما يكفي للاحتفاظ بجميع ال stolons و rhizomes ، ولكنها كبيرة بما يكفي للسماح بإزالة جزيئات التربة. تنظيف العينات مع تيار من الماء مع ما يكفي من الطاقة لإزالة جزيئات التربة دون إتلاف النباتات.
استرداد العينات نظيفة ووضعها في علبة مع المناشف الورقية، مع الحرص على تسمية الصواني بشكل مناسب. مزيد من تنظيف العينات عن طريق إزالة الجذور ويترك مع مقص. خلال هذه العملية، فصل stolons وrizomes إذا لزم الأمر وتسجيل معلومات إضافية، مثل عدد النباتات، وتيلرس، وstolons لكل مصنع.
وضع stolons وrizomes في أكياس الورق المسمى. ضع العينة على صينية بلاستيكية شفافة من معدات المسح الضوئي القياسية WinRHIZO. ضع ال stolons وrizomes يدويًا باستخدام ملقط المختبر لتقليل التداخل.
قد تحتاج عينات كبيرة إلى تقسيمها إلى عينات فرعية. ضع الدرج على سطح الماسحة الضوئية، ثم قم بتشغيل الماسح الضوئي وابدأ تشغيل البرنامج. لمزيد من التحكم في صورة محفوظة، تحقق من نقطة فيو الصورة في القائمة صورة عن طريق تحديد الأمر Image Acquisition معلمة.
للحصول على تصنيف جيد للبكسل التي تنتمي إلى الأجهزة الممسوحة ضوئيًا، تحقق من العتبة والتحليل عن طريق تحديد تمييز الخلفية الجذر. تحقق من أن سطح الدرج بالكامل سيتم مسحه ضوئيًا في قائمة الصورة عن طريق تحديد الأمر Image Acquisition معلمة. الآن، تحقق من فئة القطر المعروضة لتوزيع الأعضاء لكل قطر في منطقة الرسم فوق الصورة الممسوحة ضوئياً.
حدد 20 فئة متساوية العرض بفواصل 0.1 مليمتر عن طريق النقر على الوصول الأفقي للرسم البياني. هذه الوظيفة تسمح باستبعاد البيانات التي تنتمي إلى الجذور أو الأعضاء الصغيرة عندما لم يتم تنظيف stolons أو رهيزوميس تماما. وتشير الأدبيات إلى أن معظم جذور أنواع العشب يقل قطرها عن 0.2 ملليمتر.
تشغيل أول عينة المسح والتحقق من أن تحرير يسمح للتحليل الجيد. اتبع إرشادات البرنامج لحفظ الصورة. وأخيرا ، معالجة الخيار تحليل التالية البرنامج وتسمية الصورة والتحليل مع تسمية العينة.
المضي قدما في المسح الضوئي لجميع العينات. لإجراء قياس الوزن الجاف، ضع العينات الممسوحة ضوئيًا في صينية ألومنيوم قطرية على توازن إلكتروني دقيق وسجل ها. كرر هذه الخطوة لكافة العينات الممسوحة ضوئياً.
إدراج جميع العينات في مجموعة في كثير من الأحيان إلى 105 درجة مئوية وتجفيفها لمدة 24 ساعة. في اليوم التالي، وإزالة العينات والانتظار حتى استقر وزن الأنسجة. ثم، تزن جميع العينات مع tare بهم.
طرح tare من الوزن المسجل للحصول على الوزن الصافي لكل عينة. مثال على نتائج تجربة ميدانية مقارنة كثافتي طول stolon و rhizome من أربعة أصناف برموداراس من نوع العشب. هناك اختلاف كبير في كثافة طول ال stolon بين الأصناف النباتية باتريوت وتيفواي ، والصنف المصنف لا بالوما ويوكون في العينات التي تم جمعها في يوليو 2014.
للرهيزومات، باتريوت يعرض أعلى كثافة طول، تليها Tifway، ولأصناف البذور. يظهر تطور كثافة طول sto باتريوت طوال فترة الدراسة زيادة من مارس 2014 إلى يوليو 2014 ولم تختلف من يوليو 2014 إلى يوليو 2015. ولم يُعثر على سوى عدد قليل من الرهيزوميات في العينات التي جُمعت في تشرين الأول/أكتوبر 2013 وآذار/مارس 2014.
تزداد كثافة طول رهيزومي في يوليو 2014، لتصل إلى أعلى القيم. ولكنها تنخفض مرة أخرى في أكتوبر 2014. عند محاولة هذا الإجراء، من المهم أن نتذكر لتحديد عينات تمثيلية، لتنظيف بدقة stolons وrizomes قبل التحليل، وتحديد عرض الطبقات قطر باستخدام خيارات البرامج لتشمل فقط stolons وrizomes في التحليل.
