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Method Article
克隆形成生殖可行性的评估检测的适用性已成立超过50年。在这里,我们展示了贴壁细胞进行克隆形成实验的一般程序。
克隆形成(或菌落形成)检测已建立了超过50年;,原文件,描述该技术是在1956年1出版。除了 记录方法,初步具有里程碑意义的研究产生的X射线照射哺乳动物细胞(HeLa细胞)培养1的辐射剂量反应曲线。从根本上讲,克隆形成实验,使生殖可行性的差异(细胞产生的后代的能力,即一个单细胞,形成了50个或更多细胞的殖民地)的评估,经历了各种治疗方法,如曝光控制未经处理的细胞和细胞之间的电离辐射,各种化学化合物(如细胞毒性药物)或在其他情况下的遗传操纵。该试剂盒已成为辐射生物学中最广泛接受的技术,并已被广泛用于评估不同的细胞系的放射敏感性。此外,克隆形成实验是常用的监测辐射修改化合物的疗效,并为确定集落形成能力,在不同的细胞系,细胞毒性药物和其他抗癌疗法的影响。一个典型的形成群落的生存实验,使用贴壁细胞线涉及到三个不同的组件,1)单层细胞在组织培养瓶中治疗,2)制备单细胞悬液,电镀适当数量的细胞在培养皿中和3),固定和染色菌落相关的潜伏期之后,范围从1-3周,这取决于细胞系。在这里,我们展示了执行与使用同一个永生化人角质形成细胞线(FEP - 1811)2贴壁细胞系的克隆形成实验的一般程序。此外,我们的目的是描述克隆形成实验的共同特征,包括细胞对辐射的暴露后的电镀效率和生存分数的计算,并体现与使用的一种天然抗氧化剂配方辐射响应的修改。
1。细胞培养和实验装置
单细胞悬液准备胰蛋白酶。细胞洗净,用磷酸盐缓冲液和0.05%胰蛋白酶/ EDTA 5-10分钟的解决方案孵育。当细胞开始变得圆润,3〜30%是分离的贝科的修改鹰含10%胎牛血清的介质卷被添加到中的胰蛋白酶。这些细胞被分离移液器向上和向下(20倍)。使用血球细胞计数。
接种相应的单元格的数字是根据细胞株人类FEP - 1811角质形成细胞(约20小时)的倍增时间。我们的目标是达到实验的日子〜90%汇合(〜10 6细胞每烧瓶) 。
12烧瓶组成的一个实验是为一个单一的克隆形成实验(6个未辐照的控制和六个照射烧瓶),它可以在大约四个小时完成的最佳选择。
2。治疗与辐射
通常情况下,六个烧瓶作为电镀效率(治疗)和药物只控制。其他六个烧瓶照射。
在这个例子中,被视为人类角化细胞与不同浓度Cinnulin公积金(CPF;诚信保健品国际,春山,TN,美国为20μg/ mL的下面是有代表性的数据),一种水溶性天然抗氧化剂配方1小时,在37 ° C细胞使用的137 Cs源(1000 Gammacell精英辐照; Nordion公司国际上,加拿大1.6 GY /分钟)与4 Gy的照射。
3。电镀
培养皿中被安排在一个加湿塑料克隆盒和5%的CO 2环境在37 ° C的集落形成。
集落形成的孵化时间,少则1-3周不同的细胞系,它被接受,必须相当于至少6个细胞分裂的时间。在这个例子中,对人类角质形成细胞的控制菜肴需要八天,以形成足够大的克隆,50个或更多的细胞组成。
4。固定和染色殖民地
在通风柜完成下列步骤。
5。菌落计数
体视显微镜
数码成像和点票的使用成像软件
细胞计数使用ImageJ(斐济版本1.44a)
对于这种图像格式,可以设置噪声容限为0。确保浅色背景“选项被勾选预览检测的最大值,以检查所有细胞克隆已正确注册。
在这个例子中,人类的FEP - 1811角质形成细胞处理不同浓度高达100微克/毫升的中央公积金;数据显示为20微克/毫升中央公积金为1小时37 ° C。治疗后细胞使用的137 Cs源(1000 Gammacell精英辐照; Nordion公司国际上,加拿大1.6 GY /分钟)与4 Gy的照射。对于控制未经处理和药物治疗只有100个细胞接种在每个培养皿中,细胞每盘1000辐照样品镀。正如上述表格中所指出的,使用立体显微镜或数码图像(图...
澳大利亚核科学与工程学院的支持,是公认的事实。 TCK的是AINSE奖项的收件人。表观医学实验室是支持由国家卫生和澳大利亚的医学研究理事会(566559)。人力资源是由澳大利亚的研究生和BakerIDI明亮的火花奖。生物医学成像发展有限公司(CRC投标),建立和澳大利亚政府的合作研究中心计划下支持,这项工作是由“儿童权利公约”。 CO是收件人澳大利亚研究生奖和一个CRC投标补充奖学金。
Name | Company | Catalog Number | Comments | |
Keratinocyte-serum free medium | Growth medium | Invitrogen | 17005042 | Supplemented with 2mM L-glutamine, 20μg/ml gentamicin, epidermal growth factor, bovine pituitary extract. |
Trypsin-EDTA | Invitrogen | 15400-054 | 0.05% trypsin / EDTA to detach adherent cells; 10 x stock diluted in PBS w/o Ca2+/Mg2+. | |
Dulbecco’s modified essential medium | Growth medium | Invitrogen | 11885-084 | Supplemented with 10% FBS and 20μg/ml gentamicin; used to neutralise trypsin/EDTA. |
0.09% Saline | Solution | Used to wash colonies. | ||
10% Neutral buffered formalin solution | Solution | Sigma-Aldrich | HT501128 | ~4% formaldehyde; used to fix colonies. |
Crystal violet | Powder | SPI Supplies | 02577-MB | 0.01% crystal violet solution, prepared in dH2O, used to stain colonies. |
Gammacell 1000 elite irradiator | Nordion International Inc. | |||
Petri dishes | 60 x 15 mm | Falcon BD | 353002 | |
Haemocytometer | Hawksley; Medical and Laboratory Equipment | AC1000 | ||
Cloning box | Plastic box with holes punched at opposite sides of lid; for storing petri dishes during prolonged incubation for colony formation. | |||
Stereomicroscope | Type 102 | Nikon Instruments | Used to count colonies consisting of >50 cells. |
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