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Method Article
生殖可能性を評価するためのクローン原性アッセイの適用は50年以上のために設立されました。ここでは、接着細胞とクローン原性アッセイを行うための一般的な手順を示しています。
クローン原性(またはコロニー形成)アッセイは、50年以上のために設立されました。テクニックを記述したオリジナルの論文は1956年1に掲載されました。離れて方法を文書化するから、最初の画期的な研究は、培養1のX線照射した哺乳類(HeLa細胞)細胞の最初の放射線線量応答曲線を生成する。 control未処理の細胞とそのような暴露などの様々な治療を受けた細胞の間で、基本的に、クローン原性アッセイは、生殖生存率の違い(50以上の細胞のコロニーを形成する単一のセル、すなわち子孫を生成する細胞の能力)のアセスメントが可能に電離放射線、様々な化学化合物(例えば、細胞毒性薬)や他の場合における遺伝子操作へ。アッセイは、放射線生物学で最も広く受け入れられている技術となっていると広く異なる細胞株の放射線感受性を評価するために使用されています。さらに、クローン原性アッセイは、一般的に化合物を変更する放射線の有効性を監視するために、異なる細胞株のコロニー形成能力、に細胞毒性薬と他の抗がん治療薬の効果を決定するために使用されます。接着細胞株を使用する典型的なクローン原性生存実験ではコロニーを固定し、染色つの異なるコンポーネントが、1)組織培養フラスコで細胞単層の治療、2)単一の細胞懸濁液の調製とペトリ皿と3に適切な数の細胞をプレーティング)を含む関連する潜伏期間の後、これは細胞株によっては、1〜3週間から範囲にすることができます。ここでは、不死化したヒトケラチノサイト細胞株(FEP - 1811)2の使用で接着性細胞株をクローン原性アッセイを行うための一般的な手順を示しています。また、私たちの目的は、放射線に対する細胞の曝露後のコロニー形成率と生存率の分数の計算を含むクローン原性アッセイの共通の特徴を記述するために、そして天然の抗酸化製剤の使用と放射線応答の変更を例示することがあります。
1。細胞培養と実験セットアップ
単一の細胞懸濁液をトリプシン処理によって調製される。細胞をリン酸緩衝生理食塩水で洗浄し、5〜10分間0.05%トリプシン/ EDTA溶液と共にインキュベートされています。細胞は丸くし、約30%が切り離されているになるために起動すると、10%ウシ胎児血清を含むダルベッコ改変イーグル培地の3倍量のトリプシンを中和するために追加されます。細胞は(20回)ピペッティングによって切り離されている。細胞を、血球計を使用してカウントされます。
適切な細胞数は細胞株の倍加時間(人間FEP - 1811ケラチノサイトで約20時間)に応じて播種されています。目的は、実験の日に〜90%コンフルエントに(フラスコあたり〜10 6細胞)を達成することです。
12フラスコから成る実験では約4時間で完了することができる、単一のクローン原性アッセイ(6非照射コントロールと6つの照射フラスコ)に最適です。
2。治療と照射
通常6フラスコは、コロニー形成率(未処理)と薬剤のみコントロールとして機能する。他の六フラスコが照射されています。
1時間、水溶性天然抗酸化製剤、(20μg/ mLのための代表的データを以下に示す;整合栄養補助食品国際、スプリングヒル、テネシー州、米国CPF)この例ではヒトケラチノサイトはCinnulin PFの様々な濃度で処理されています37℃細胞は、137 Csのソース(; Nordionインターナショナル、カナダ、ON、1.6 Gyの/分Gammacell 1000年エリート照射器)を使用して、4 Gyで照射されています。
3。メッキ
ペトリ皿は、加湿プラスチック製のクローニングボックスに配置し、℃でコロニー形成のために37℃、5%CO 2環境下でインキュベートする。
コロニー形成のためのインキュベーション時間は、異なる細胞株では1〜3週間で変化する、それは時間が少なくとも6つの細胞分裂と同等でなければならないことが受け入れられている。この例では、ヒトケラチノサイトの制御料理は、8日が50以上のセルで構成される十分な大きさのクローンを形成する必要があります。
4。コロニーを固定と染色
ドラフト内で、次の手順を実行します。
5。コロニー計数
実体顕微鏡
イメージングソフトウェアを使用して、デジタルイメージングとカウント
ImageJの(フィジーバージョン1.44A)を使用して細胞計数
この画像形式の場合は、ノイズ耐性は0に設定することができます。その明るい背景のオプションがチェックされていることを確認し、すべての細胞コロニーが正しく登録されていることを確認するために検出された最大値をプレビューします。
この例では、人間のFEP - 1811ケラチノサイトは、最大100μg/ mLのCPFへの種々の濃度で処理した、データは37℃で1時間に20μg/ mLのCPF℃であるために示されています治療後の細胞は、137 Csのソース(; Nordionインターナショナル、カナダ、ON、1.6 Gyの/分Gammacell 1000年エリート照射器)を使用して、4 Gyで照射した。制御のために未処理と薬剤のみの治療法100個の細胞は、それぞれのペトリ皿に播...
オーストラリア原子科学技術学会のサポートが認められています。 TCKはAINSE賞を受賞しました。エピ医学研究所は、国立保健オーストラリアの医学研究評議会(566559)でサポートされています。 HRは、オーストラリアの大学院とBakerIDI明るい火花の賞でサポートされています。この作品は、オーストラリア政府の共同研究センタープログラムの下で設立された、サポートされている医学開発株式会社(CRC - BID)、のためのCRCによって運営されている。 COは、オーストラリアの大学院賞とCRC - BIDの補足奨学金受取人です。
Name | Company | Catalog Number | Comments | |
Keratinocyte-serum free medium | Growth medium | Invitrogen | 17005042 | Supplemented with 2mM L-glutamine, 20μg/ml gentamicin, epidermal growth factor, bovine pituitary extract. |
Trypsin-EDTA | Invitrogen | 15400-054 | 0.05% trypsin / EDTA to detach adherent cells; 10 x stock diluted in PBS w/o Ca2+/Mg2+. | |
Dulbecco’s modified essential medium | Growth medium | Invitrogen | 11885-084 | Supplemented with 10% FBS and 20μg/ml gentamicin; used to neutralise trypsin/EDTA. |
0.09% Saline | Solution | Used to wash colonies. | ||
10% Neutral buffered formalin solution | Solution | Sigma-Aldrich | HT501128 | ~4% formaldehyde; used to fix colonies. |
Crystal violet | Powder | SPI Supplies | 02577-MB | 0.01% crystal violet solution, prepared in dH2O, used to stain colonies. |
Gammacell 1000 elite irradiator | Nordion International Inc. | |||
Petri dishes | 60 x 15 mm | Falcon BD | 353002 | |
Haemocytometer | Hawksley; Medical and Laboratory Equipment | AC1000 | ||
Cloning box | Plastic box with holes punched at opposite sides of lid; for storing petri dishes during prolonged incubation for colony formation. | |||
Stereomicroscope | Type 102 | Nikon Instruments | Used to count colonies consisting of >50 cells. |
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