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Method Article
La aplicabilidad del ensayo para evaluar la viabilidad clonigénicas reproductiva se ha establecido desde hace más de 50 años. Aquí se demuestra el procedimiento general para llevar a cabo el ensayo clonogénico con células adherentes.
El clonigénicas (o formadoras de colonias) de ensayo se ha establecido desde hace más de 50 años, el documento original que describe la técnica se publicó en 1956 1. Aparte de la documentación del método, el estudio de referencia inicial generó la primera dosis de radiación curva de respuesta de rayos X irradiados mamíferos (HeLa) las células en cultivo 1. Básicamente, el ensayo clonogénico permite una evaluación de las diferencias en la viabilidad de la reproducción (la capacidad de las células para producir descendencia, es decir, una sola célula para formar una colonia de 50 o más células) entre las células control no tratadas y las células que han sido sometidos a diversos tratamientos, como la exposición a las radiaciones ionizantes, diversos compuestos químicos (por ejemplo, agentes citotóxicos) o en otros casos la manipulación genética. El ensayo se ha convertido en la técnica más ampliamente aceptada en biología de la radiación y ha sido ampliamente utilizada para evaluar la sensibilidad a la radiación de las diferentes líneas celulares. Además, el ensayo clonogénico se utiliza comúnmente para controlar la eficacia de los compuestos de la radiación y la modificación para determinar los efectos de los agentes citotóxicos y otras terapias contra el cáncer en la capacidad de formación de colonias, en diferentes líneas celulares. Un típico experimento clonigénicas supervivencia utilizando líneas de células adherentes consta de tres componentes distintos: 1) el tratamiento de la monocapa celular en frascos de cultivo de tejidos, 2) la preparación de suspensiones de células individuales y las planchas de un número adecuado de células en placas de Petri y 3) la fijación y la tinción de las colonias después de un período de incubación correspondiente, que podría oscilar entre 1-3 semanas, dependiendo de la línea celular. Aquí se demuestra el procedimiento general para llevar a cabo el ensayo clonogénico con líneas de células adherentes con el uso de un inmortalizado línea celular humana de queratinocitos (FEP-1811) 2. Además, nuestros objetivos son describir las características comunes de los ensayos clonogénicos incluyendo el cálculo de la eficiencia de plaqueo y las fracciones de la supervivencia después de la exposición de las células a la radiación, y para ejemplificar la modificación de la radiación de respuesta con el uso de una formulación antioxidante natural.
1. Cultivo de células y experimental puesta en marcha
Suspensiones de células individuales son preparadas por tripsinización. Las células se lavan con tampón fosfato salino y se incubaron con un 0,05% de tripsina / EDTA durante 5-10 minutos. Cuando las células empiezan a ser redondeados y aproximadamente el 30% son separados, 3 volúmenes de Dulbecco modificado medio de Eagle con 10% de suero fetal bovino se agrega para neutralizar la tripsina. Las células se separan por pipeteando arriba y abajo (20 veces). Las células se contaron usando un hemocitómetro.
Un número adecuado de células son clasificados de acuerdo con el tiempo de duplicación de la línea celular (aproximadamente 20 horas para el consumo humano FEP-1811 queratinocitos). El objetivo es lograr la confluencia de ~ 90% (~ 10 6 células por frasco) en el día del experimento.
Un experimento que consta de 12 frascos es óptimo para un solo ensayo clonogénico (seis de control no irradiados y seis frascos irradiados) que puede ser completado en aproximadamente cuatro horas.
2. El tratamiento y la irradiación
Por lo general seis frascos servir como eficiencia de plaqueo (sin tratamiento) y los controles de drogas solamente. Los otros seis frascos son irradiados.
En este ejemplo, los queratinocitos humanos son tratados con distintas concentraciones de Cinnulin PF (CPF; Nutracéuticos Internacional de Integridad, Spring Hill, TN, EE.UU., los datos representativos de 20 mg / ml se muestra a continuación), soluble en agua formulación antioxidante natural, durante 1 hora a 37 ° C. Las células son irradiadas con 4 Gy utilizando una fuente de 137 Cs (Gammacell 1000 irradiador Elite; Nordion Internacional, ON, Canadá; 1,6 Gy / min).
3. Enchapado
Placas de Petri están dispuestos en una caja de plástico de la clonación humidificado y se incubaron en un 5% de CO2 el medio ambiente a 37 ° C para la formación de colonias.
El tiempo de incubación para la formación de colonias varía de 1-3 semanas para las líneas celulares diferentes, se acepta que el tiempo debe ser equivalente a por lo menos seis divisiones celulares. En este ejemplo, los platos de control de los queratinocitos humanos requieren ocho días para formar clones lo suficientemente grande que consta de 50 o más células.
4. Fijación y tinción de las colonias
Complete los siguientes pasos en una campana extractora.
5. Recuento de colonias
Estereomicroscopio
La imagen digital y contar con software de imágenes
Conteo de células con ImageJ (Fiji Versión 1.44a)
Para este formato de imagen, la tolerancia al ruido puede ser ajustado a 0. Asegúrese de que la opción de fondo claro está marcada y vista previa de la máxima detectada para comprobar que todas las colonias de células se han registrado correctamente.
En este ejemplo humano FEP-1811 queratinocitos fueron tratadas con diferentes concentraciones de hasta 100 mg / mL ACB, se muestran los datos de 20 mg / ml ACB durante 1 hora a 37 ° C. Después de celdas de tratamiento fueron irradiados con 4 Gy utilizando una fuente de 137 Cs (Gammacell 1000 irradiador Elite; Nordion Internacional, ON, Canadá; 1,6 Gy / min). Para los tratamientos de control no tratado sólo de drogas y 100 células fueron sembradas en cada placa de Petri y 1000 células por placa se coloca...
El apoyo del Instituto Australiano de Ciencia Nuclear e Ingeniería se reconoce. TCK es el ganador de premios AINSE. Laboratorio de Medicina epigenómico el apoyo de la Nacional de Salud y Consejo de Investigación Médica de Australia (566.559). HR es apoyado por un australiano de post-grado y premios BakerIDI brillante chispa. Este trabajo está financiado por el CRC de Imágenes Biomédicas Development Ltd (CRC-BID), creado y apoyado en cooperación del gobierno australiano de investigación del programa de Centros. CO es el receptor de un australiano de post-grado de premios y una beca complementaria CRC-BID.
Name | Company | Catalog Number | Comments | |
Keratinocyte-serum free medium | Growth medium | Invitrogen | 17005042 | Supplemented with 2mM L-glutamine, 20μg/ml gentamicin, epidermal growth factor, bovine pituitary extract. |
Trypsin-EDTA | Invitrogen | 15400-054 | 0.05% trypsin / EDTA to detach adherent cells; 10 x stock diluted in PBS w/o Ca2+/Mg2+. | |
Dulbecco’s modified essential medium | Growth medium | Invitrogen | 11885-084 | Supplemented with 10% FBS and 20μg/ml gentamicin; used to neutralise trypsin/EDTA. |
0.09% Saline | Solution | Used to wash colonies. | ||
10% Neutral buffered formalin solution | Solution | Sigma-Aldrich | HT501128 | ~4% formaldehyde; used to fix colonies. |
Crystal violet | Powder | SPI Supplies | 02577-MB | 0.01% crystal violet solution, prepared in dH2O, used to stain colonies. |
Gammacell 1000 elite irradiator | Nordion International Inc. | |||
Petri dishes | 60 x 15 mm | Falcon BD | 353002 | |
Haemocytometer | Hawksley; Medical and Laboratory Equipment | AC1000 | ||
Cloning box | Plastic box with holes punched at opposite sides of lid; for storing petri dishes during prolonged incubation for colony formation. | |||
Stereomicroscope | Type 102 | Nikon Instruments | Used to count colonies consisting of >50 cells. |
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