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本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
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  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

皮肤纹身是一个强大的和安全的方式来传递DNA疫苗皮内。在这里,一个DNA质粒EGFP交付纹身实验室小鼠的皮肤,和EGFP在皮肤细胞中的表达,然后通过激光共聚焦显微镜检查。

摘要

基于核酸的疫苗接种是一个主题的日益增长的兴趣,特别是质粒DNA(pDNA的)编码免疫学上重要的抗原。工程质粒DNA疫苗给药后,它被转录和翻译成免疫原的蛋白质,可以从免疫系统引起的反应。提供DNA疫苗的方法很多被调查,但每次送货路线都有自己的优点和缺陷。皮肤纹身是一种新的技术是安全的,符合成本效益,方便的。此外,穿刺针造成,也可以作为一种有效的佐剂。在这里,我们a)表现出增强型绿色荧光蛋白的质粒DNA编码的皮内交付(PCX-EGFP)在小鼠模​​型中,使用纹身的移动设备和b)在皮肤细胞中,使用共聚焦显微镜,确认有效的EGFP表达。

研究方案

1。质粒DNA纯化

  1. 变换到DH5α 大肠杆菌感受态细胞的真核质粒DNA编码EGFP(PCX-EGFP)。空PCX载体也可以使用作为阴性对照。
  2. 文化和收获DH5α 大肠杆菌细胞和纯化的质粒DNA根据到的Qiagen公司EndoFree的质粒纯化手册"。
  3. 筛选pDNA的溶液通过0.22μm的PVDF无菌过滤器,并将其储存在-20℃直到使用。

2。纹身系统准备

  1. 手持式单元和控制踏板连接到电源单元,按照制造商的说明书。
  2. 设置针的振荡频率约为100赫兹。我们选择了纹身的设备(隐形旋转纹身系统),表盘上的电源应设置为4伏。请参阅用户手册或其他纹身系统的技术支持。
  3. 消毒针头AR使用光前。我们建议您使用一个针阵列的每个动物。用肥皂水清洗和高压灭菌后可重复使用的针。
  4. 针阵列安装到手持设备和松散连接的塑料把手。
  5. 针深度调整到一个适当的设置,通过向上或向下移动的塑料的抓地力。我们使用我们的小鼠实验深度大约为0.5毫米的针。
  6. 正确设置时,进针深度,拧紧塑料把手和纹身系统是可以使用的。

3。动物剃毛

  1. 选择网站纹身的治疗。该网站应该是一个相对稳固,平坦的,和肉质部位的皮肤,例如,动物的后腿侧。
  2. 与氯胺酮(90毫克/千克)和赛拉嗪(5毫克/公斤),根据动物的体重的混合物麻醉的BALB / c小鼠。对于其他动物,请参阅您的机构的麻醉指引。
  3. 检查动物的反射,按捏它的脚,以确认动物是适当的麻醉。
  4. 使用电剪修剪下来的头发,动物的后肢慢慢地,仔细地。从计划的纹身现场及周边地区的去除毛发。
  5. 去除残留的短发的一次性使用的安全剃须刀。注意不要剪动物的皮肤。需要注意的是,可以使用脱毛膏脱毛作为一种替代方法;然而,我们宁愿剃须超过脱毛膏。
  6. 删除杂散切下的毛发从皮肤如有必要,用压缩空气。

4。质粒DNA的纹身交货

  1. 如果先前已建立的免疫协议,剂量和要应用的DNA溶液的体积应据此计算。我们建议您使用尽可能小的体积为实际使纹身的过程中更易于管理。在这EGFP示范,我们使用7.5μlDNA溶液在CON对中的0.25毫克/毫升,施加到一个纹身面积约1厘米2。用于免疫的实验中,更高的质粒DNA浓度可能需要诱导强烈的免疫反应1,2。
  2. 纹身的网站上移液直接应用DNA解决方案。可替换地,加载到塑料把手的DNA溶液通过移液,因此针和塑料把手的前端之间的液体悬浮。一个用于演示的视频。我们已观察到的两种方法之间没有明显的区别。然而,加载溶液倒入塑料把手可能是有利的垂直的皮肤表面上,例如。
  3. 启动针振荡和放置针阵列与动物的皮肤纹身的站点上的压力的光。然后将振荡针轻轻地,慢慢地以线性方式提供质粒DNA在整个纹身区。维持一个90度角之间的针和皮肤上,以免皮肤割伤。
  4. 观察皮肤。磨损和炎症是正常的。如果出血情况时,停止纹身的过程中,减少进针深度。
  5. 继续针运动约1分钟,然后停止纹身的过程。
  6. 用干净的棉签涂抹一层薄薄的局部止痛纹身的网站上。如磺胺嘧啶银乳膏(SSD霜)或抗生素软膏软膏外用止痛药可以帮助减轻疼痛或痛苦的动物,因此建议申请前的麻醉消退。第二天观察动物的疼痛或痛苦的步态变化,缺乏运动的迹象。如果仍然存在的迹象,重新应用止痛膏。

5。确认抗原的表达

  1. 纹身的治疗后48小时内(注意,不同的质粒DNA结构可能需要不同的表达时间),鼠标CO 2麻醉安乐死。对于其他动物安乐死的指引,你的机构。
  2. 剖析在纹身的部位,并修复皮肤组织4%多聚甲醛4℃过夜。
  3. 用70%乙醇冲洗组织,并将其转移到的1X PBS中,用于成像。
  4. 检查整个组织使用激光共聚焦显微镜检查EGFP信号。另外,皮肤组织可以被嵌入在石蜡中,并在荧光显微镜下检查节。

结果

在小鼠皮肤细胞中可以观察到在488nm和发射峰在509 nm处的激发峰的EGFP的表达。从1.875μg剂量的DNA,含有约3×10 17个拷贝的质粒,我们通常观察到10-20的EGFP信号在1厘米2纹身面积。这种相对较低的转染细胞的数量是先前的研究3的结果相一致。 EGFP表达( 图1)提供的证据表明,EGFP质粒被输送到动物的皮肤细胞,使用的DNA纹身技术。

讨论

DNA疫苗比传统的疫苗接种策略,被认为是更安全,因为它不要求操作,或暴露疫苗,活的或减毒的病原体。然而,DNA疫苗接种的结果,在很大程度上依赖于配送路线。皮肤是丰富的抗原呈递细胞,如朗格汉斯细胞和树突状细胞1,从而在一个理想的站点用于免疫的免疫原性和易于访问5,6。其结果是,皮内接种策略是用于DNA疫苗的最流行的选择之一。在这个视频中,DNA纹身是一个简?...

披露声明

没有利益冲突的声明。

致谢

我们想感谢所有成员的香港实验室和邓焰博士为的显微镜核心,办公室协同科学,NYUMC他们的援助和技术支持。这项工作是支持的试点补助金从纽约大学艾滋病研究中心(CFAR,美国国立卫生研究院授予AI027742)。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
的试剂/材料名称公司目录编号评论
PCX-EGFP质粒DNA Clontech公司
STEALTH旋转纹身系统全球纹身器材 STEALTH-L
纹身针全球纹身器材 1207RSB
EndoFree质粒试剂盒 Qiagen公司 12362
0.22微米PVDF无菌过滤器密理博 SLGV013SL
电发剪市售
一次性使用的安全剃须刀市售
银磺胺嘧啶霜沃森 NDC 0591-0810-55
氯胺酮HCL NDC 0856-2012-01
Zylazine无菌溶液 NADA 139-236

参考文献

  1. Bins, A. D. A rapid and potent DNA vaccination strategy defined by in vivo monitoring of antigen expression. Nat Med. 11, 899-904 (2005).
  2. Pokorna, D., Rubio, I., Muller, M. DNA-vaccination via tattooing induces stronger humoral and cellular immune responses than intramuscular delivery supported by molecular adjuvants. Genet. Vaccines Ther. 6, 4 (2008).
  3. van den Berg, J. H. Optimization of intradermal vaccination by DNA tattooing in human skin. Hum. Gene Ther. 20, 181-189 (2009).
  4. Liu, M. A. DNA vaccines: a review. J. Intern. Med. 253, 402-410 (2003).
  5. Koide, Y., Nagata, T., Yoshida, A., Uchijima, M. DNA vaccines. Jpn. J. Pharmacol. 83, 167-174 (2000).
  6. Peachman, K. K., Rao, M., Alving, C. R. Immunization with DNA through the skin. Methods. 31, 232-242 (2003).
  7. Verstrepen, B. E. Improved HIV-1 specific T-cell responses by short-interval DNA tattooing as compared to intramuscular immunization in non-human primates. Vaccine. 26, 3346-3351 (2008).
  8. Potthoff, A. Immunogenicity and efficacy of intradermal tattoo immunization with adenoviral vector vaccines. Vaccine. 27, 2768-2774 (2009).
  9. Quaak, S. G. DNA tattoo vaccination: effect on plasmid purity and transfection efficiency of different topoisoforms. J. Control Release. 139, 153-159 (2009).
  10. Pokorna, D. Vaccination with human papillomavirus type 16-derived peptides using a tattoo device. Vaccine. 27, 3519-3529 (2009).

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