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  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
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  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

We describe the detailed steps of a high-throughput chemical assay in the nematode Caenorhabditis elegans used to assess germline toxicity. In this assay, disruption of germline function following chemical exposure is monitored using a fluorescent reporter specific to aneuploid embryos.

摘要

识别数以千计的出现在我们的环境中的化学物质的生殖毒性已经在环境健康领域中最诱人的挑战之一。这部分对模型系统,可以(1)准确地概括生殖过程的键的功能和(2)这样做的一个中高通量方式的缺乏是由于,而不需要大量的脊椎动物的。

我们在这里描述的线虫C.化验线虫 ,它允许快速鉴定生殖系毒物通过监测非整倍体胚胎的诱导。通过利用GFP报告线,在染色体分离从种系的破坏而导致的错误很容易可视化并用自动荧光显微镜定量。由此一组特定于它的毒性化合物的筛选可以在96至384孔板格式在几天之内进行。积极H第二分析其可以被执行以确定是否染色体异常起源于减数分裂中断或从早期胚胎染色体分离错误。总之,此法代表了一个快速第一遍战略的生殖功能障碍的化学品接触的快速评估。

引言

有在美国注册的商业约87000化学品,但只有一小部分,这些已经过测试,潜在的健康影响1。那些已被测试过的,仅一部分被评定为生殖健康的影响,部分原因是在确定改变哺乳动物早期生殖活动的困难,特别是在雌性生殖细胞发育和分化。事实上,第一减数分裂事件发生期间,在雌性哺乳动物胚胎发育的早期阶段,因此难以进入并收集在适于筛选目的号码。

生殖细胞提供了两代人之间的关键环节,其相应的功能是依赖于细胞和染色体分裂的复杂程序的精确执行称为减数分裂。减数分裂过程的失调可导致减少的生育力和生产配子和胚胎染色体数目异常,这种情况被称为非整倍体。减数分裂中染色体分离错误是高度相关的人体健康。染色体异常是常见的,具有一个频率的1在150个活产,21三体,18和13以及X和Y染色体的误差是最普遍的类型2,3。此外,先天性畸形,包括那些染色体来源的,是婴儿死亡的首要原因,在美国4中的环境影响可以影响染色体分离和行为的概念并不是新的5,但仍知之甚少。因此,关键是要考察其引入到我们的环境中的化学物质会干扰人的生育能力,早期的发展和整体生殖健康。

在光的哺乳动物模型的这些限制,我们开发了一种高通量筛选测定法中的蛔虫,以测试生殖毒性温度。线虫。我们已动员本常用的遗传模型系统提供了几个重要的功能,例如它的尺寸小,成本低,短的再现周期,生殖细胞的比例高,并易于操作6。蠕虫可以生长在96孔板或在高容量液体培养物并由于其透明性,可直接上成像板检测荧光报道的。下面所描述的实验利用了这些特点优势,以含荧光记者Pxol-1 :: GFP检测生殖干扰和诱导胚胎非整倍体的虫株的优势。

使用该报告菌株的是基于通常罕见的男性在一个主要雌雄同体蠕虫人口。这些男性(<0.2%),自然地从错误中X染色体7的隔离起源。然而,由于种系破坏经常导致错误的常染色体的偏析heterochromosomes的和,它与雄性表型(Ⅹmissegregation)以及胚胎致死(常染色体missegregation)升高的发病率相关两者。容易地检测男性的感应而绕过胚胎致死的问题,一个雄性特异性启动子(XOL-1)用于驱动的GFP表达在早期胚胎仍含有蠕虫的子宫内。因此,表达GFP的胚胎的外观被用作用于非整倍体胚胎的存在的代理。此方法已被以前用于确定基因牵连种系维护和减数分裂8,9。适用于化学筛选,这株被采用在中高通量筛选。重要的是,应变忠实报告的化学品的aneugenicity,因此相关的哺乳动物的生殖端点10。这里描述的检测将是特别有用的毒理学家医药和化工等行业的设置看迅速评估朝生殖端点的化学品的毒性。此外,此法完全对准了毒性,在21 世纪11报告强调了政府的优先事项。

研究方案

1.准备喂食细菌

注意:本节介绍喂食细菌( 大肠杆菌菌株OP50)的准备。

  1. 隔离大肠杆菌的单个菌落从LB培养基(LB)琼脂平板上,并在无菌条件下大肠杆菌菌株OP50接种入300ml高压灭菌的LB肉汤。
  2. 允许接种培养过夜在摇床在200rpm和37℃下生长,直到达到饱和。
  3. 转移OP50成6无菌,预先称重的50ml锥形管中。通过在6000转(5000 XG)离心5分钟沉淀细菌。
  4. 弃去上清液,并用50ml无菌的M9洗细菌。重复两次。
  5. 第二次洗涤后除去残留的M9,确保没有M9被留在管中。
  6. 通过称量含有细菌沉淀管确定粒料的重量,并减去在50ml锥形管中的重量。
  7. 悬浮颗粒我Ñ​​M9以100mg / ml的浓度。
  8. 储存在4℃的OP50溶液,直到它被用于蠕虫培养。

2.制备线虫生长培养基(NGM)培养皿

注意:这部分描述NGM培养皿的制备,这是所述板,其中所述C。线虫蠕虫例行维持在实验室。

  1. 高压灭菌的NGM琼脂培养基。
  2. 使用无菌的程序,免除17毫升的NGM琼脂溶液倒入用蠕动泵6厘米培养皿。
    注:琼脂中平板恒定量减少了需要从一个板切换到另一个时再聚焦显微镜。
  3. 离开所述板在室温下放置2-3天使用前,让琼脂固化,允许多余的水分蒸发。
  4. 种子用无菌技术的NGM板。应用1-2滴OP50液体培养物并扩散用玻璃棒。确保不一路蔓延细菌草坪到板的边缘。
  5. 允许OP50草坪在室温下用板成长蠕虫之前生长1-2天。

3.准备一个同步蠕虫人口

:C。的生命周期线虫是由萌芽阶段,四幼虫阶段(L1-L4)和成年。本节描述了蠕虫的时代同步人口的制备。所有的材料来在漂白处理后与线虫接触必须是无菌的。

  1. 第1天-妊娠蠕虫人口的制备
    1. 使用NGM板中的大多数蠕虫人口由饿死L1幼虫。
    2. 收集L1幼虫用消毒虫挑,并将它们转移到新鲜6厘米NGM板接种OP50。孵育约65小时,在20℃,直到大部分的蠕虫是妊娠成人。到避免板拥挤并允许蠕虫未耗尽的细菌生长,不L1幼虫多于一个或两个簇转移到每个新鲜NGM板。
  2. 4日-建立同步L1幼虫人口
    1. 通过与M9 1-2毫升冲洗它们收集来自NGM板的妊娠蠕虫和它们转移到一个锥形15ml试管。
    2. 让妊娠蠕虫沉淀到15毫升锥形管的底部为约5-10分钟。去除上清,而不会干扰病毒颗粒。
    3. 该蠕虫病毒颗粒转移到2-4离心管,并添加了漂白剂/氢氧化钠溶液1ml。孵育在室温2-3分钟。监视立体显微镜下的反应的进行,以确认所有的蠕虫都死了。不要漂白超过5分钟,因为胚胎会死亡。
    4. 通过在3000转(900 XG)离心1分钟收集蠕虫。除去上清液,并添加无菌的M9 1ml至中和反应。
    5. 通过在3000转(900 XG)离心1分钟洗两次的蠕虫。
    6. 除去上清液,并添加M9与高达100-200微升。
    7. 使用玻璃巴斯德吸管加一滴蠕虫/ M9混合以清除NGM板孵育它们至少24小时,在20℃,以允许胚胎孵化。
      注:没有食物的幼虫的生长将在L1阶段停止。
  3. 5日-建立同步L4幼虫人口
    1. 通过洗涤该板用1-2的M9毫升收集来自明确NGM板在L1幼虫,并将它们传送到一圆锥形15ml试管。
    2. 让死成虫沉淀到15毫升锥形管的底部为约5分钟。
    3. 收集上清液,其中所述L1蠕虫,在一个新的锥形15ml试管,并通过在2600转(1000 XG)离心2分钟沉淀出蠕虫。
    4. 除去上清液乐AVING约500微升。
    5. 通过滴用立体显微镜计数在10微升的蠕虫数目确定在M9溶液蠕虫的浓度。计数至少5滴。
    6. 调整蠕虫的浓度为20-25蠕虫/微升,添加50微升的蠕虫/ M9混合物来接种OP50 NGM板。
    7. 孵育65小时,在15℃(用于通过周末孵育),以允许在L1同步的人口增长,直到它们到达L4阶段。

4.暴露蠕虫在化学物质在96孔板

注:本节介绍了使用Pxol1的含:: C.绿色荧光蛋白的转录记者线虫菌株筛选非整倍体的诱导。

  1. 通过洗涤该板用1-2的M9毫升收集来自明确NGM板的L4幼虫,并将它们传送到一圆锥形15ml试管。
  2. 让L4蠕虫沉积物的底部的15毫​​升锥形管中大约5-10分钟。去除上清,而不会干扰病毒颗粒。
  3. 加3-5的M9毫升,并确定由滴用立体显微镜计数在10微升的蠕虫数目,在M9溶液蠕虫的浓度。计数至少5滴每个样品。
  4. 重悬在蠕虫中的M9 1000蠕虫/ ml的浓度。
  5. 从稀释第1 OP50细菌10倍与M9。确保悬浮的细菌达到室温,因为较低的温度会影响蠕虫的发展。
  6. 使用多道移液器,先添加100微升蜗杆/ M9混合物(来自步骤4.4)中,然后添加400微升的稀释OP50菌(来自步骤4.5),以对一个2毫升深圆底96孔板各孔中。在结束时,每个孔将具有在500μl100蠕虫。
  7. 加入0.5微升的任一测试的化学品或适当的控制,以所期望的孔,以实现一个建议的最终精矿100μMATION,浓度一般在C.化学屏幕中使用线虫 12。暴露乙醇或DMSO溶剂对照为0.1%的最终浓度。
    注意:我们建议使用诺考达唑(100μM)作为阳性对照。
  8. 封用粘接膜的板。一定要密封板以及防止井之间的交叉污染。
  9. 包装板用铝箔。
  10. 板转移到适当的温度的摇床(170-180转)为适当长度的时间(24或65小时)。室内的温度影响的蠕虫的生长;维持20℃左右的温度下进行。

在384孔板5.图像采集妊娠蠕虫

注意:这部分描述了使用具有高含量的显微镜图像的露出Pxol1 :: GFP蠕虫,可视化在成人雌雄同体的子宫内的胚胎的GFP的表达。为每384孔板进行筛选,用从4×96孔板蠕虫。

  1. 在摇床化学暴露后,让96孔板休息10-15分钟,以允许成虫沉降到板的底部。
  2. 使用多道移液器,去除350微升的M9的,是非常小心,不要打扰蠕虫在板的底部。
  3. 1毫升M9和重复步骤5.1洗蠕虫。
  4. 使用多道移液器,去除1毫升了M9的,是合租小心,不要打扰蠕虫在板的底部。
  5. 使用多道移液器,悬浮蠕虫在剩余M9和收集100微升的蠕虫/ M9混合物从96孔板中,并将其加载到一个黑色壁/透明底384孔板的孔中。重复使用蠕虫从4×96孔板的过程中,直到已加载该384孔板的所有孔中。
    注意:这是重要的,所有的孔中,以具有相同的体积,以便增加效率和自动聚焦的速度在图像采集过程中。每口井应该包含在80到100蠕虫。
  6. 加入1μl左旋咪唑(100μM)的每个孔中,让蠕虫孵育大约30分钟。
    注:左旋咪唑充当乙酰胆碱受体激动剂和固定不变的蠕虫。
  7. 板块转移到能够提供自动成像的广角含量高的显微镜。
  8. 进行图像采集,使用根据制造商的指导方针的高含量的图像采集和分析软件。选择4X目标收购每孔1的图像。
  9. 启动图像采集前,调整GFP成像参数到45毫秒的曝光和图像分辨率为2,160 X 2,160的。
  10. 收集数据作为GFP阳性蠕虫蠕虫的总数在井分割数,后者被测量井之间相对一致。

结果

曝光Pxol-1 :: GFP报告菌株的化学试剂,如微管毒物诺考达唑( ​​图1)导致了表达GFP的胚胎中相比DMSO对照露出成年雌雄同体的子宫高比例的诱导。 GFP阳性胚胎是比在其他胚胎以及自发荧光,在动物的肠道观察中观察到的弱的背景荧光显著亮。暴露蠕虫被直接成像在384孔板和蠕虫的含有至少一个GFP阳性胚胎的数量以及计算每个井和归由该蠕虫的总数。从化学屏幕正击中意味着诱...

讨论

此处所描述的方法构成第一大规模策略种系毒物的鉴定。它需要使用一个GFP转基因Pxol-1含有应变:: GFP的忠实报告非整倍体的诱导,其中用作种系功能障碍的代理早期胚胎。该方法涉及一个C的仔细同步线虫蠕虫人口和蠕虫暴露于化学品中的96孔格式接着GFP阳性蠕虫通过自动化高含量显微镜成像。

几个步骤这个协议是至关重要的结果的一致性。首先,?...

披露声明

The authors declare that they have no competing financial interests.

致谢

The authors would like to thank the following funding sources NIH ES020353 and the Colgate-Palmolive Alternative Research Grant award for making this work possible.

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
60 mm Vented, sharp edge Petri dishesTritechT3315
AgarApex20-274
Axygen 96-well clear round bottom 2 ml polypropylene deep well plateCorningP-DW-20-C-S
BactopeptoneApex20-261
Bacto-tryptoneFisher ScientificBP1421-2
BleachClorox
Calcium chloride (CaCl2)VWRAA12316-A1
CholesterolFisher ScientificICN10138225
DMSOVWRIC19018680
E. coli (OP50)Caenorhabditis Genetics Centerhttp://www.cbs.umn.edu/cgc
Ethanol 200 proofVWREM-4455S
Greiner CELLSTAR 384 well platesSigma-AldrichM1937-32EA
ImageXpress Micro XLS SystemMolecular Devices
Levamisole hydrochlorideFluka31742
Magnesium sulfate anhydrous (MgSO4)VWR97061-438
MetaXpress High Content Image Acquisition & Analysis SoftwareMolecular Devices
Potassium phosphate monobasic (KH2PO4)Sigma-AldrichP5655
Rayon films for biological culturesVWR60941-086
Sodium chloride (NaCl)Sigma-AldrichS5886
Sodium hydroxide (NaOH)Fisher ScientificS318
Sodium phosphate dibasic (Na2HPO4)VWRBDH0316
StereomicroscopeNikonSMZ 745This microscope has a total magnification form 3.35X to 300X. Any microscope with similar characteristics will work.
TY2441 C. elegans, Pxol-1::GFP reporter strainCaenorhabditis Genetics Centerhttp://www.cbs.umn.edu/cgc
Yeast extractBecton Dickinson212750

参考文献

  1. Office, U. G. A. Report No. GAO-06-1032T. Actions are needed to improve the effectiveness of EPA’s chemical review program. Testimony before the Committee on Environment and Public Works. US Senate. , (2009).
  2. Fragouli, E., Wells, D., Delhanty, J. D. Chromosome abnormalities in the human oocyte. Cytogenet Genome Res. 133 (2-4), 107-118 (2011).
  3. Hassold, T., Hunt, P. A., Sherman, S. Trisomy in humans: incidence, origin and etiology. Curr Opin Genet Dev. 3 (3), 398-403 (1993).
  4. Heron, M., Hoyert, D. L., Murphy, S. L., Xu, J., Kochanek, K. D., Tejada-Vera, B. Deaths: final data for 2006. Natl Vital Stat Rep. 57 (14), 1-134 (2009).
  5. Hunt, P. A. Meiosis in mammals: recombination, non-disjunction and the environment. Biochem Soc Trans. 34 (Pt 4), 574-577 (2006).
  6. Brenner, S. The genetics of Caenorhabditis elegans. Genetics. 77 (1), 71-94 (1974).
  7. Hodgkin, J., Horvitz, H. R., Brenner, S. . Nondisjunction Mutants of the Nematode CAENORHABDITIS ELEGANS.Genetics. 91 (1), 67-94 (1979).
  8. Nicoll, M., Akerib, C. C., Meyer, B. J. X-chromosome-counting mechanisms that determine nematode sex. Nature. 388 (6638), 200-204 (1997).
  9. Kelly, K. O., Dernburg, A. F., Stanfield, G. M., Villeneuve, A. M. Caenorhabditis elegans msh-5 is required for both normal and radiation-induced meiotic crossing over but not for completion of meiosis. Genetics. 156 (2), 617-630 (2000).
  10. Allard, P., Kleinstreuer, N. C., Knudsen, T. B., Colaiacovo, M. P. A Screening Platform for the Rapid Assessment of Chemical Disruption of Germline Function. Environ Health Perspect. 121 (6), 717-724 (2013).
  11. National Research Council. . Toxicity Testing in the 21st Century: A Vision and a Strategy. , (2007).
  12. Boyd, W. A., Smith, M. V., Kissling, G. E., Freedman, J. H. Medium- and high-throughput screening of neurotoxicants using C. elegans. Neurotoxicol Teratol. 32 (1), 68-73 (2010).

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