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摘要

We report a concise procedure of fluorescence in situ hybridization (FISH) in the gonad and embryos of Caenorhabditis elegans for observing and quantifying repetitive sequences. We successfully observed and quantified two different repetitive sequences, telomere repeats and template of alternative lengthening of telomeres (TALT).

摘要

Telomere is a ribonucleoprotein structure that protects chromosomal ends from aberrant fusion and degradation. Telomere length is maintained by telomerase or an alternative pathway, known as alternative lengthening of telomeres (ALT)1. Recently, C. elegans has emerged as a multicellular model organism for the study of telomere and ALT2. Visualization of repetitive sequences in the genome is critical in understanding the biology of telomeres. While telomere length can be measured by telomere restriction fragment assay or quantitative PCR, these methods only provide the averaged telomere length. On the contrary, fluorescence in situ hybridization (FISH) can provide the information of the individual telomeres in cells. Here, we provide protocols and representative results of the method to determine telomere length of C. elegans by fluorescent in situ hybridization. This method provides a simple, but powerful, in situ procedure that does not cause noticeable damage to morphology. By using fluorescently labeled peptide nucleic acid (PNA) and digoxigenin-dUTP-labeled probe, we were able to visualize two different repetitive sequences: telomere repeats and template of ALT (TALT) in C. elegans embryos and gonads.

引言

端粒可以防止异常融合和降解染色体末端。哺乳动物端粒是由G-丰富的六聚体重复,TTAGGG和shelterin复合物。线虫的端粒重复序列是相似的哺乳动物(TTAGGC)的。大多数真核生物利用端粒酶端粒重复添加到他们的染色体末端。然而,10 -癌细胞的15%利用端粒酶独立的机制,被称为端粒(ALT)3的替代延长。此前,我们报道了端粒重复序列及其相关序列,命名为TALT,端粒酶的突变系存活的关键不育2端粒扩增。

端粒长度通过定量PCR或通过Southern印迹,其中提供总端粒-4,5,6,7-的平均长度测量。在全基因组测序数据端粒重复的读取次数也总端粒8含量的指标。虽然仙GLE端粒长度分析(STELA)可以提供一个单一端粒的长度,它不能提供端粒9的空间信息。而POT-1 :: mCherry报告蛋白提供在体内的端粒的空间信息,它不能代表双链端粒长度为POT-1是一个单链端粒结合蛋白10。

而上述的方法提供了重复序列的平均信息,原位杂交(FISH)荧光允许观察染色体规模的量和感兴趣的个体的序列的空间图案。代替的DNA的纯化,组织或细胞被固定到保持在FISH本地空间信息。因此,鱼为个别重复序列,如端粒重复序列的观察定量和定性的工具。

这个协议提供了两个TELO同时检测的有效方法基于从先前描述的方法11,12的改进仅仅是与其它重复。C.线虫幼虫或成虫多细胞生物体具有高度分化的细胞。细胞的异质性阻碍对大量端粒斑点的定量分析。为了最大限度地提高了分析的细胞数,胚胎分离并散布在用于FISH聚赖氨酸包被的载玻片。此外,该协议也可以与免疫结合。

作为该协议的工作证明,我们表明,它是可能的观察和量化两个不同的重复序列。针对TALT1 DNA探针,用简单的PCR结合地高辛的dUTP产生。那么这个TALT1探针和荧光标记的端粒PNA探针杂交同时进行。随后,地高辛被规范的免疫荧光法检测。我们在座的地方TALT1在TRT-1共定位与端粒的代表图像幸存者。

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研究方案

1.标记探针与地高辛的dUTP通过PCR

  1. 用含地高辛的dUTP 10X dNTP混合物,如前所述13进行PCR标记。
  2. 根据制造商的指令用旋转柱纯化纯化PCR产物。
    1. 如果探针是短于200碱基对,除去游离的地高辛的dUTP从反应混合物自旋柱色谱法,而不是旋转柱纯化。

2.准备聚赖氨酸涂层幻灯片

注意:整个过程大约需要2小时。大多数的步骤都在室温下,除了在干燥步骤完成。

  1. 清洁幻灯片
    1. 放置载玻片在一个塑料容器和漂洗载玻片简要地用蒸馏水​​(DW)。除去水和用含有1%玻璃清洁剂DW填充容器。
    2. 搅拌15分钟载玻片在室温下(RT)50的转速。用DW洗涤3幻灯片次在RT每次5分钟。
    3. 洗用70%乙醇的幻灯片搅拌15分钟。丢弃70%的乙醇,然后将玻片65℃的干燥块和风干15分钟上。
  2. 多井载玻片的聚赖氨酸涂层
    注:玻璃片聚赖氨酸涂层是重要的一步,因为它提供了在整个染色过程中样品的附着力。差的涂覆的滑动将导致样品的损失。
    1. 稀释聚赖氨酸原液〜0.01%(重量/体积)在蒸馏水。添加的稀释0.01%20微升(重量/体积)聚赖氨酸到干净的载玻片上的孔中。
    2. 在室温下孵育5分钟载玻片。
    3. 放置在幻灯片的65℃的干体和空气干燥1小时上。
    4. 存放在无尘箱聚赖氨酸幻灯片。

3.在载玻片上蠕虫固定(图1)

  1. 准备胚胎FISH
    注:嘉实蠕虫所有T之前他细菌食物被看显微镜下生长培养基消耗。饥饿减少产蛋成虫并增加卵孵化。详细方法在14,15进行说明。
    1. 根据标准方法14生长的蠕虫在50mM培养皿。
    2. 所有的细菌食物消耗后,切琼脂培养基在季度锅铲。切割,以防止污染前消毒锅铲。
    3. 把所有的一块琼脂上100mm的线虫生长介质(NGM)板。打开琼脂片倒挂的蠕虫到达新鲜食品的细菌。
    4. 经过48〜72小时,收集与M9的缓冲区蠕虫。加入3 - 上NGM板5毫升M9的缓冲区中。 NGM的表面上吸移管的M9缓冲洗蠕虫。
    5. 收集蠕虫的液体,并添加到15毫升管。
      注意:如果在30%的蔗糖溶液的收获,离心后的蠕虫琼脂碎片。虽然碎片成团,虫子浮在的表面上。
    6. 添加M9的缓冲区,以弥补体积到15ml。沉淀通过离心蠕虫在300×g离心3分钟,并除去大部分的M9缓冲液中。重复此步骤2次以上。
      注意:如果蠕虫离心后仍然漂浮,设置离心机的制动电平为值= 1。
    7. 吸M9的缓冲区。添加漂白解决蠕虫。每0.5ml蠕虫,添加6.5毫升的DW,将2ml次氯酸盐,加入1ml的5M的KOH。
    8. 在50rpm在RT摇动3分钟孵育蠕虫。 15秒涡虫以机械剪切蠕虫和暴露的蛋。
    9. 观察漂白过程中解剖显微镜下的管中。确保蠕虫切成两半和鸡蛋被释放。当最成年体的溶解,添加的M9缓冲液补足体积至15ml。
    10. 离心在300×g离心3分钟。吸大部分的M9和补充新鲜M9的缓冲区,以弥补体积到15ml。重复洗涤步骤3次。
      注意:避免使用蠕虫过量,因为它们妨碍漂白过程。保持整个反应时间不超过8分钟,直到洗涤。过度漂白鸡蛋产生强烈的自体荧光。
    11. 添加具有聚山梨醇酯20(PBST)的磷酸缓冲盐水高达200微升和200微升4%低聚甲醛(PFA),以使2%的PFA。
      注意:由于PFA是致癌物质,穿防护服,手套和眼罩使用PFA之前。
    12. 添加40微升在2%PFA中的鸡蛋到聚赖氨酸涂覆的滑动的良好。
    13. 放置载玻片在潮湿室中,并在室温下孵育15分钟。关闭潮湿室的幻灯片被放在里面之后。
      注意:鸡蛋沉降到滑动件的底部而被固定。
  2. 准备FISH解剖性腺
    1. 嘉实成虫吹打1毫升M9缓冲生长在50毫米NGM板。细菌性食物前收获蠕虫被耗尽。
    2. 从任何细菌机智洗净虫体^ h M9的缓冲区,日2次。
      注:残余细菌可能粘附到聚赖氨酸包被的载玻片与解剖性腺干扰。
    3. 颗粒离心蠕虫在300×g的。删除M9和微量转移蠕虫空NGM板。
    4. 加入30微升含有聚赖氨酸上的处理幻灯片的好2毫米左旋咪唑M9缓冲。
    5. 加入500微升的M9缓冲液中至1毫升管中。使用该缓冲区口吸管转移的蠕虫。
    6. 通过将毛细管在含有M9的缓冲区1毫升管填充M9缓冲嘴吸管尖。
    7. 在解剖显微镜,把口吸管尖刚刚在成虫并拖动口吸管的头前,使蠕虫的头进入口腔吸管。一旦蠕虫的头部进入尖端,蠕虫的整个主体将被吸引到吸头。
    8. 转移蠕虫使用吸管口聚赖氨酸涂层幻灯片。
    9. 使用剃刀,切F中的头部或幻灯片上蠕虫的尾部的尖端。当蠕虫被切断,性腺就会弹出。性腺会坚持到幻灯片。
      1. 在一口井至少准备30蠕虫。多个孔可以用于另外30蠕虫。
    10. 把幻灯片在潮湿的室内和吸掉用口吸液管M9的缓冲区。
    11. 通过在湿润室中在室温下加入20微升2%的PFA的15分钟固定的样品。

4.固定和透

  1. 放置在干冰上的铝块,并将其存储在深冷冻机(-80℃)。商店甲醇和丙酮在-20℃。
  2. PFA固定步骤3.1.15或3.2.11后,用微量留下〜5微升固定液除去固定液。
  3. 放在样品载玻片另一聚赖氨酸涂层幻灯片。除去用纸巾固定液如果溶液是过分的。一旦它们粘在一起,不要移动幻灯片。
  4. 冻结幻灯片在铝块至少15分钟。
    注:样品可以贮存至少2 - 3天。
  5. 虽然被冻结的幻灯片,放冷含有甲醇和丙酮冰的罐子。
  6. 就拿滑出并扭转他们冻结破解样本。丢弃上滑动。立即浸泡滑入冰冷甲醇5分钟。
  7. 转移的幻灯片到冰冷的丙酮5分钟。
  8. 洗玻片用PBST 3次,每次5分钟,以去除残留的固定剂。继续进行下一步骤,或在100%乙醇的幻灯片储存于4℃。
    注:样品可以贮存至少2 - 3天。

5.修正了杂交细胞

  1. 添加的RNA酶溶液20微升(含10微克/毫升RNA酶A PBST)。孵育在潮湿室中的滑动,在37℃1小时。
  2. 在2×盐水和柠檬酸钠与聚山梨酯20(2×SSCT),每次15分钟,洗涤载玻片两次。
  3. 添加20杂交液微升,把湿热试验箱在37℃培养箱。 1小时后,除去通过移液杂交溶液。
  4. 去除杂交液之前,准备探头。如果探针双链DNA,通过加热在95℃的干块上5分钟变性探针。加热后,在冰上冷却简要探头。
  5. 加入10微升含探针与样品的杂交溶液。对于PNA探针,使用浓度以1:1的比例:2,000和DIG标记的探针,使用浓度以1:200的比例。盖上盖玻片样品。
  6. 放与水的热块(80℃)上浸湿的纸巾。把热块的塑料盒盖以保持湿度和温度。
  7. 加热块的温度稳定(80℃)后,放置在加热的纸巾样品载玻片,盖上塑料盒盖的样品。变性样品3分钟。
  8. 公司乌瓦特在潮湿室中的载玻片在37℃下过夜。

6.清洗和免疫

  1. 预热杂交洗涤溶液(2×SSC,50%甲酰胺)至37℃。
  2. 在RT洗在PBST样品两次5分钟。取下玻璃盖。
  3. 在37℃下洗杂交洗涤溶液中的样品30分钟。
  4. 洗在PBST中的样品玻片3次在RT。注:在室温下进行的湿热试验箱所有的后续步骤。
  5. 加入20μl阻断溶液并在室温下孵育在潮湿的腔室1小时。
  6. 除去封闭溶液,加入FITC缀合的抗洋地黄毒苷抗体溶液(1:200),3小时在RT或过夜,在4℃。

7.安装和观测

  1. 用PBST洗样品玻片2次,每次15分钟。
  2. 加10μl用DAPI安装的解决方案。把玻璃盖,并轻轻按下。删除多余的解决方案用纸巾。
  3. 为了防止安装溶液的蒸发,密封玻璃盖指甲油的边缘。
  4. 共聚焦显微镜下观察。排除与高背景胚胎。注重与4场 - 20核。
  5. 根据制造商的使用100X物镜指令拍摄图像。
    注:激发样品与405 nm激光为DAPI,555纳米激光的Cy3,与488纳米激光FITC。

8.端粒信号的量化

注意:定量分析如先前16描述的进行。所有要被比较的图像,也可以采取包括曝光时间和光源相同的设置。

  1. 在.TIF格式导出图像。
  2. 下载并安装图像分析软件。
  3. 执行图像分析软件,点击同意按钮。
  4. 单击打开按钮。通过双击图像文件打开端粒FISH图像。
  5. 点击[编辑] - [选择加工区域],通过左键单击并拖动选择感兴趣的区域。排除所有的非特异性染色。
  6. 点击[措施] - [现货光密度],选择端​​粒信号通道,输入文件名保存在.txt文件的结果。
    注:结果列在顺序如下:现货荧光,现货和现货领域的背景强度。
  7. 复制值和斑点的荧光斑点减去背景强度。值现在可以进行统计学分析。

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结果

据报道,此前ALT幸存者可以从端粒酶缺陷的突变通过复制内部本地化'ALT的模板"(TALT)的端粒维持2序列出现,TRT-1(ok410),在低频。使用PNA探针,我们能够想象在解剖性腺( 图2A)的端粒。微弱的信号端粒检测无论是在TRT-1(ok410)和ALT幸存者。模糊信号被重叠只用DAPI,这表明它们可能不是自发荧光。间质性端粒样重复(ITR)的TRF分?...

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讨论

我们的协议的主要优点是过程的,但无细胞结构的形态明显损坏的简单性。几个步骤C.进行了优化线虫 FISH在此协议。成功鱼的关键步骤包括探针标记,胚胎和渗透固定。地高辛的dUTP标记方法提供了通过PCR或缺口转译一个易于使用的标记方法。要标记长的靶序列,缺口平移是首选。在这种情况下,探头应用适当的限制性酶消化,以促进探针的渗透。不推荐生物素-dUTP标记,因为生物素...

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披露声明

The authors have nothing to disclose.

致谢

Mutant worm strains were kindly provided by the Caenorhabditis Genetics Center. This research was supported by a grant of the Korea Health Technology R&D Project through the Korea Health Industry Development Institute (KHIDI), funded by the Ministry of Health & Welfare, Republic of Korea (grant number: HI14C1277).

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材料

NameCompanyCatalog NumberComments
PNA probePANAGENEcustom order
Anti-Digoxigenin-Fluorescein, Fab fragmentsRoche11207741910use 1:200 diluted in PBST
Digoxigenin-dUTPRoche11573152910
Bovine serum albuminSIGMA-ALDRICHA-7906
ParaformaldehydeSIGMA-ALDRICHP-6148prepare 4% paraformaldehyde by heating in DW with few drops of NaOH. add 0.1 volume of 10x PBS.
VectashieldVector LaboratoriesH-1200
Hybridizaiton solution3x SSC, 50% formamide, 10% (w/v) dextran sulfate, 50 μg/ml heparin, 100 μg/ml yeast tRNA , 100 μg/ml sonicated salmon sperm DNA
Hybridizaiton wash solution2x SSC, 50% formamide
FormamideBIONEERC-9012toxic
MethanolCarlo Erba
AcetoneCarlo Erba
HeparinSIGMA-ALDRICHH3393make 10 mg/ml for stock solution
Dextran sulfateSIGMA-ALDRICH67578
10x PBSFor 1 L DW : 80 g NaCl, 2.0 g KCl, 27 g Na2HPO4•7H2O, 2.4 g KH2PO
PBST1x PBS, 0.1% tween-20
Polysorbate 20SIGMA-ALDRICHP-2287Commercial name is Tween-20
Poly-L-Lysine solution (0.1% w/v)SIGMA-ALDRICHP-8920prepare fresh 0.01% w/v solution before use
M93 g KH2PO4, 6 g Na2HPO4, 5 g NaCl, 1 ml 1 M MgSO4, H2O to 1 L
Bleaching solution20% sodium hypochlorite, 0.5 M KOH
Antibody buffer1x PBST, 1 mM EDTA, 0.1% BSA, 0.05% Sodium azide (toxic)
Blocking solutionAntibody buffer with 5% bovine serum albumin (BSA)
illustra Microspin G-50GE healthcare27-53310-01
20x SSCTo make 1 L, 175.3 g of NaCl, 88.2 g of sodium citrate, H2O to 1 L, adjust pH to 7.0
2x SSCT2x SSC, 0.1% tween-20
10x digoxigenin-dUTP mix1 mM dATP, 1 mM dGTP, 1 mM dCTP, 0.65 mM dTTP, 0.35 mM DIG-11-dUTP
PCR purification columnsCosmo genetechCMR0112
Glass cleaner / ULTRA CLEANDukssan pure chemicals8AV721
Multi-well glass slideMP biomedicals96041205
Nematode growth mediaTo make 1 L, 3 g of NaCl, 17 g of agar, 2.5 g of peptone, H2O to 974 ml. Autoclave and cool the flask. Add 1 ml of 1 M CaCl2, 1 ml of 4 mg/ml cholesterol in ethanol, 1 ml of 1 M MgSO4, 25 ml of 1 M KPO4.
LevamisoleSIGMA-ALDRICH196142
RazorFeatherblade No. 11
Rnase AEnzynomics
BSASIGMA-ALDRICHA7906
Confocal microsopeZeissLSM 510EC Plan-Neofluar 100X was used as objective lens.
Humid chamberPlastic box filled with paper towel soaked in DW
Image Analysis Software Dr. Peter LandsdorpTFL-telohttp://www.flintbox.com/public/project/502

参考文献

  1. Reddel, R. R., Bryan, T. M., Murnane, J. P. Immortalized cells with no detectable telomerase activity. A review. Biochemistry-Moscow. 62, 1254-1262 (1997).
  2. Seo, B., et al. Telomere maintenance through recruitment of internal genomic regions. Nat Commun. 6, 8189(2015).
  3. Cesare, A. J., Reddel, R. R. Alternative lengthening of telomeres: models, mechanisms and implications. Nat Rev Genet. 11, 319-330 (2010).
  4. Meier, B., et al. trt-1 is the Caenorhabditis elegans catalytic subunit of telomerase. Plos Genetics. 2, 187-197 (2006).
  5. Cawthon, R. M. Telomere measurement by quantitative PCR. Nucleic Acids Res. 30, 47(2002).
  6. Raices, M., Maruyama, H., Dillin, A., Karlseder, J. Uncoupling of longevity and telomere length in C. elegans. PLoS Genet. 1, 30(2005).
  7. Southern, E. M. Detection of Specific Sequences among DNA Fragments Separated by Gel-Electrophoresis. Journal of Molecular Biology. 98, 503(1975).
  8. Lee, M., et al. Telomere extension by telomerase and ALT generates variant repeats by mechanistically distinct processes. Nucleic Acids Res. 42, 1733-1746 (2014).
  9. Cheung, I., et al. Strain-specific telomere length revealed by single telomere length analysis in Caenorhabditis elegans. Nucleic Acids Res. 32, 3383-3391 (2004).
  10. Shtessel, L., et al. Caenorhabditis elegans POT-1 and POT-2 repress telomere maintenance pathways. G3. 3, Bethesda. 305-313 (2013).
  11. Duerr, J. Immunohistochemistry. WormBook (The C. elegans Research Community). , (2006).
  12. Phillips, C. M., McDonald, K. L., Dernburg, A. F. Cytological analysis of meiosis in Caenorhabditis elegans. Meiosis: Volume 2, Cytological Methods. , Springer. 171-195 (2009).
  13. Emanuel, J. R. Simple and efficient system for synthesis of non-radioactive nucleic acid hybridization probes using PCR. Nucleic acids research. 19, 2790(1991).
  14. Stiernagle, T. Maintenance of C. elegans. WormBook. , 1-11 (2006).
  15. Porta-de-la-Riva, M., Fontrodona, L., Villanueva, A., Ceron, J. Basic Caenorhabditis elegans methods: synchronization and observation. J Vis Exp. , e4019(2012).
  16. Poon, S. S. S., Martens, U. M., Ward, R. K., Lansdorp, P. M. Telomere length measurements using digital fluorescence microscopy. Cytometry. 36, 267-278 (1999).
  17. Ferreira, H. C., Towbin, B. D., Jegou, T., Gasser, S. M. The shelterin protein POT-1 anchors Caenorhabditis elegans telomeres through SUN-1 at the nuclear periphery. J Cell Biol. 203, 727-735 (2013).
  18. Lee, M. H., Schedl, T. RNA in situ hybridization of dissected gonads. WormBook. , 1-7 (2006).
  19. Tabara, H., Motohashi, T., Kohara, Y. A multi-well version of in situ hybridization on whole mount embryos of Caenorhabditis elegans. Nucleic Acids Res. 24, 2119-2124 (1996).
  20. Poon, S. S., Lansdorp, P. M. Quantitative fluorescence in situ hybridization (Q-FISH). Curr Protoc Cell Biol. 18, Unit 18 14(2001).

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