在缺血样条件下监测星形胶质细胞的反应性和增殖体外

摘要

缺血性中风是一个复杂的事件, 其中星形胶质细胞对受氧葡萄糖剥夺 (OGD) 影响的脑区的具体贡献是很难研究的。本文介绍了一种获取孤立星形胶质细胞的方法, 并研究了其在 OGD 条件下的反应性和增殖。

摘要

缺血性中风是一种复杂的脑损伤, 血栓或栓子阻碍血液流向大脑的部分。这导致了缺氧和葡萄糖的匮乏, 导致能量衰竭和神经元死亡。在缺血性中风的侮辱, 星形胶质细胞成为反应和增殖周围的伤害现场, 因为它的发展。在这种情况下, 很难研究星形胶质细胞对缺血脑区的特定贡献。因此, 本文介绍了一种方法, 研究原星形胶质细胞的反应性和增殖在一个体外模型的缺血样环境, 称为氧葡萄糖剥夺 (OGD)。星形胶质细胞是从1-4 岁的新生大鼠中分离出来的, 并通过胶质纤维酸性蛋白 (胶质细胞) 和细胞核染色对非特异性星的数量进行评估。星形胶质细胞受 OGD 条件的时间可以定制, 以及他们所接触到的氧气的百分比。这种灵活性允许科学家在不同的细胞组体外描述缺血样状态的持续时间。本文讨论了诱导星形胶质细胞反应性、肥大形态学和增殖细胞核抗原 (PCNA) 免疫荧光法测定 OGD 的时间范围。星形胶质细胞除增殖外, 还具有能量和氧化应激, 并通过释放可溶性因子而对 OGD 反应。这种培养基可以收集并用于分析星形胶质细胞释放的分子在没有细胞相互作用的原代神经细胞中的作用。总之, 这种原细胞培养模型可以有效地用于了解孤立星形胶质细胞在损伤中的作用。

引言

中风被定义为 "急性神经功能障碍的血管来源, 无论是突然或快速发展的症状和体征, 对应于大脑中的重点领域的参与"^1,2。有两种类型的中风: 出血和缺血性。当血管功能障碍是由动脉瘤或动静脉故障引起的, 伴有动脉后破裂的减弱, 这称为出血性中风³ , 在大多数情况下, 导致死亡。当血栓或栓子阻碍血流, 导致暂时剥夺氧气和葡萄糖的大脑区域, 它被称为缺血性中风⁴。不滋养细胞周围的受影响地区或缺血核心导致了自我平衡和代谢失衡, 精力充沛的功能障碍, 神经元死亡和炎症⁵, 这可能导致 life-long 残疾患者的⁶。

缺血性中风是一种多因素损伤, 涉及多种类型的细胞, 在不同的时间点反应和发挥作用。许多相互作用为研究单个细胞的行为创造了一个困难的环境。那么, 我们如何研究一个特定的细胞类型在如此复杂的环境下的贡献呢？一个接受的体外模型的缺血包括暴露细胞到氧和葡萄糖剥夺 (OGD), 在一定时期内, 然后恢复细胞到常环境。该系统模拟缺血性中风后再灌注血。在这种方法中, 细胞或组织被暴露在一个无糖的介质中, 在一个净化氧气的环境中, 使用一个专门的缺氧室。OGD 潜伏期可以从几分钟到24小时不等, 这取决于要测试的假说。研究表明, 根据 OGD 和常环境的时间, 可以实现中风的特定表型 (即、急性或亚慢性)。主要孤立星形胶质细胞, 暴露于 OGD 后恢复到常条件, 是一个研究细胞模型模拟中风体外⁷。利用 OGD 可以在脑卒中的环境下揭示孤立细胞的独立分子机制。

随着我们对星形胶质细胞生物学知识的增加, 它已经变得明显, 它们对于维持突触和维持神经修复、发育和可塑性是至关重要的⁸。在正常情况下, 星形胶质细胞释放和反应的因子, 因子, 生长因子和 gliotransmitters, 保持代谢平衡和内稳态的突触^5,9。在急性 neuroinflammation, 如缺血性中风, 这些细胞可以成为反应, 显示长期过度表达的胶质纤维酸性蛋白 (胶质), 并显示肥大在其形态学^5,10,11,12. 随着缺血性梗塞的发展, 星形胶质细胞所提供的稳态对正常的谷氨酸摄取、能量代谢、活性分子的交换和抗氧化活性的影响, 如¹³。

重新激活的星形胶质细胞在梗塞组织周围增殖, 而白细胞则向损伤区域¹⁴迁移。星增殖可以用标记物如增殖细胞核抗原 (PCNA)、Ki67 和尿 (BrdU)¹⁵来测量。这种增殖反应是以时间为根据的方式产生的, 它有助于形成胶质瘢痕, 一组不可逆转的反应性星形胶质细胞沿受损部位的软组织损伤后⁹。这个疤痕的初始功能之一是限制免疫细胞外渗从这个地区。然而, 研究表明, 疤痕成为一个物理障碍的轴突延长, 因为他们释放分子抑制轴突生长, 并创建一个物理屏障, 防止轴突在受伤地区的延伸¹⁶。然而, 有科学证据表明, 脊髓损伤后, 完全防止胶质瘢痕形成会损害轴突的再生¹⁷。因此, 必须在所研究的伤害的框架内考虑具体的星反应的背景。

所提出的方法可用于研究星形胶质细胞在缺氧性葡萄糖剥夺后的个体化功能, 并可根据研究者想要回答的问题进行修正。例如, 除了形态学变化和在不同 OGD 时间表达的标记, 清星形胶质细胞暴露于 OGD 可以进一步分析, 以确定这些细胞释放出的可溶性因子, 或作为条件介质来评估其在其他脑细胞中的作用。这种方法可以研究星形胶质细胞的反应性, 这可能导致解释的因素, 控制和调节他们的反应在缺血性中风的情况。

研究方案

产后大鼠 (大) 1-4 天后被用来分离皮质。安乐死的方法是斩首, 由 NIH 的指南批准.

1. 准备手术用的仪器和材料

1. 灭菌釜中的仪器 (温度: 121 和 #186; C、压力:15 psi, 时间:30 分钟) 使用钢盒或即时密封灭菌袋。请参阅 材料表 中的材料.

2。完整的 DMEM 准备

1. 在包含700毫升蒸压水的一公升烧杯中, 在室温下添加 Dulbecco 和 #39 的改性鹰和 #39;
2. 添加3.7 克/升碳酸氢钠, 而溶液用磁力搅拌器搅拌.
3. 调整 pH 值为 7.4, 用蒸压水将容积调到1升, 然后过滤。为了培养目的, 用 10% FBS 和1% 青霉素/链霉素来补充所需的培养基容量, 并在37和 #730 加热;请参阅 材料表 中的材料.
   注意: ph 值被调整到7.4 通过插入 ph 计电极入媒介。媒体必须搅拌, 然后慢慢添加1M 氢氧化钠使用滴管.

3。原星形星形胶质细胞培养

注意: 播种后, 必须每三天更改一次单元格, 并且单元格可以长到 70-100 (11-13 天)。在第三天, 轻敲烧瓶几次, 以解除胶质细胞和胶质祖细胞的文化, 删除所有的和 #39; 老 #39; 媒体, 洗两次使用10毫升的 pbs, 吸 pbs, 然后添加新鲜的新媒体。请参阅 材料表 中的材料.

1. 新生鼠脑解剖
   1. 在组织培养罩中进行解剖。获得1-4 天的新生大鼠幼崽 (2 只老鼠大脑使用每 75 cm ² 烧瓶).
   2. 准备三 60 mm 的培养皿和吸管5毫升的完整 DMEM.
      注意: 他们可以划分如下: #1 为每只老鼠的大脑, #2 所有大脑皮层的大脑, 和 #3 所有的去皮皮质 (没有脑膜).
   3. 抓住小狗和喷雾70% 乙醇。斩首它, 并丢弃在一个小的生物危害废物容器的身体.
   4. 使用微解剖镊子, 按住头部并将头部的皮肤切开以露出颅骨.
   5. 用另一把剪刀, 使 #34; #34; 从头骨后部向鼻子的切口开始。用一副镊子轻轻取下颅骨.
   6. 用镊子将裸露的大脑取出, 并将大脑放在以前充满培养基的培养皿中.
   7. 为后续步骤使用另一组无菌仪器.
   8. 使用微解剖钳将一个大脑轻轻地放在一个 60 mm 培养皿的倒盖上。当培养皿放在无菌纱布上时, 可以清晰地观察大脑, 更容易解剖.
   9. 用微解剖钳将大脑稳定下来, 用微解剖钳的锋利的一端轻轻地沿着中线裂, 将脑半球分开.
   10. 偏转和剥离皮层, 留下白质, 并转移到培养皿, 以前标记 #2。重复所有的大脑的过程, 结合所有的解剖皮层的培养皿标记 #2.
   11. 从每个皮层下方取出海马体并丢弃它.
   12. 使用微解剖镊子和 a 和 #160; 60 mm 培养皿从单个皮质叶轻轻剥离脑膜, 并将其放入标记为 #3 的培养皿中.
2. 组织分离: 均质搅拌器方法
   1. 将组织/中型悬浮液 (大脑的去皮皮层) 倒入无菌的搅拌机袋中, 并添加足够的介质以使袋子中的总容积为5毫升.
   2. 将包放入均质搅拌机中, 将大约2厘米的袋子放在关闭的门上方。细胞离解是做在2.5 分钟的高速.
      注意: 或者, 这可以通过关闭袋子和轻轻地敲打它与一个烧杯在引擎盖。确保在袋和烧杯之间使用布, 以避免摩擦.
   3. 将电池悬浮液倒入数字60和 #160; 网筛, 然后将过滤过的流倒入100筛, 使其能够按重力进行过滤.
   4. 使用15毫升管, 离心机的细胞悬浮在 200 x g 在临床离心机 (优选摆动斗转子) 5 分钟.
   5. 将上清液倒入烧杯中, 然后使用血清吸管, re-suspend 并将细胞颗粒与5毫升的培养基分离.
3. 单元计数
   与微, 收集100和 #181; 1.5 毫升离心管中的细胞悬浮, 并添加100和 #181;
   1. 插入10和 #181; L 在例中收集到的悬浮物, 并计算在正方形的四角中所有可行的细胞.
   2. 在准备烧瓶前计算细胞密度的公式为:
      
      
   3. 每 25 cm ² 烧瓶中添加至少50万单元格。每瓶 DMEM 5 毫升的吸管。混合物不应到达烧瓶的颈部。把它们放在37和 #176; C 孵化器在 5% CO _2, 为3天, 然后更改媒体.
4. 星形胶质细胞纯化技术: 介质变化, 机械和化学策略
   注: 胶质细胞的代谢率比其他类型的高, 因此, 在营养缺乏条件, 这些细胞在几天后显示出低的生存率。与星形胶质细胞不同的是, 在这种环境中, 小胶质物质不受营养缺乏和增殖的影响 ¹⁸ 。为了保持胶质细胞数量的减少, 作者每3天改变形细胞培养介质。这种在细胞介质中的不断变化也会减少胶质的种群, 在星细胞单层的顶部可以生长在 ¹⁹ 烧瓶中。
   1. 使用巴斯德吸管将每个烧瓶中的换药胶质细胞吸入介质。用滴的方式 (5 毫升/烧瓶) 清洗残留在每个烧瓶中的碎片.
   2. 在每个烧瓶 (5 毫升/烧瓶) 中添加无菌过滤 DMEM (带有抗生素和胎儿牛血清) 滴。在圆周运动中轻轻地搅动以覆盖整个表面.
   3. 将单元格放置在37#176;C 孵化器在 5% CO ₂ 为8-10 天, 直到烧瓶达到 70-100 (和 #62; 95% 板覆盖).
      注意: 几项协议表明, 当星形胶质细胞到达 70-100, 机械方法, 例如摇晃文化从2到 24 h, 导致细胞的分离在这些星形胶质细胞膜顶端, 主要小胶质和前体细胞 ^{19 , 20} .
   4. 非星细胞在培养中通过在 180 rpm 30 分钟的轨道晃动而减少。在清液中去除细胞后, 新鲜的培养基被 pipetted 到烧瓶中 (~ 15 毫升).
   5. 消除胶质祖细胞, 增加震动速度为 200 rpm 为 6 h ^{21 , 22 , 23} , 吸气上清, 和吸管新鲜媒体.
      注意: 为了减少小胶质细胞在培养中的存在, 两种化学方法在原代培养方法中可以连续 (不同时) 使用: 糖胞嘧啶 (胞苷-C) 和 l-亮氨酸甲酯 (LME) ²⁴ .
   6. 立即当细胞到达 70-100 (100%), 3-4 天后, 机械去除小胶质细胞, 这些电池可以处理8和 #181; M 的有丝分裂化合物糖胞嘧啶 (胞苷-c) 在 DMEM 5 天 (变化到新鲜的糖胞苷-c 在 DMEM 日报).
      注意: 添加阿糖胞苷的时间点是至关重要的, 因为这种化合物是一种有丝分裂药物, 它可以减少快速分裂的细胞的数量, 如小胶质物质 ^{19 , 25} 和成纤维细胞 ²⁶.与小胶质细胞相反, 当汇合时, 星形胶质停止通过接触抑制增殖 ²⁷ .
   7. 允许2天的细胞从胞苷-C 处理恢复.
   8. 为了进一步减少胶质的污染, 在细胞到达70-100 后, 使用50毫米的 l-亮氨酸甲酯 (LME) 在 DMEM 固定在 pH 7.4, 1 h at 37 和 #730; C.
      注意: LME 穿过细胞膜和细胞器, 经过水解, l-亮氨酸在这些细胞的溶酶体中积累。这种氨基酸的积累导致渗透肿胀和溶酶体的破裂 ^{28 , 29} 。LME 在消除小胶质细胞方面是非常有效的, 与其他单元相比 ^{20 , 30} 。

4。6井板中培养星形胶质细胞的研究

1. 涂层片与多聚-d-赖氨酸
   1. 在每个 35 mm 的 petri 盘中放入一个片, 然后添加100和 #181; 稀释的聚 d-赖氨酸溶液对每个片和等待 1 h.
   2. 取出聚 d-赖氨酸, 用2毫升无菌水冲洗两次.
   3. 移除水并等待片在引擎盖内晾干。将片存储在-20 和 #176; C 最多两周.
      注意: 冷冻稀释的聚-d-赖氨酸溶液;它可以存储长达两周.
2. Trypsinization
   1. 使用巴斯德吸管, 从烧瓶中吸取培养基。添加5毫升/瓶消毒过滤 PBS 轻轻冲洗细胞.
   2. 从 PBS 中吸出, 然后添加5毫升/烧瓶的无菌过滤0.25% 胰蛋白酶和0.5 毫米 EDTA 溶液。将烧瓶放置在37和 #730; C, 5% CO ₂ 孵化器为 10 min.
      注意: 当细胞孵化, 温暖5毫升/烧瓶新鲜完整的 DMEM 在37和 #176; C.
   3. 经过10分钟的孵化, 鼓动, 以确保所有的细胞都解除了烧瓶。快速添加5毫升的温暖完整的 DMEM 每瓶, 以中和的胰蛋白酶.
   4. 轻轻地将单元格向上和向下移几次以分解任何 #34; 丛 #34;将悬浮细胞从两个烧瓶转移到15毫升圆锥离心管.
   5. 离心5分钟, 在 200 x g 收集细胞颗粒。在500和 #181 中重新悬浮颗粒, 然后将细胞放入烧瓶中.
      注意: 用细胞进行分析的例子: 1) 反转录聚合酶链反应 (rt-pcr) 分析基因表达;2) 免疫印迹评价蛋白质表达;3) 流式细胞仪分析, 定量的神经祖细胞和感兴趣的蛋白质的数量;4) 免疫荧光分析蛋白质的表达和定位.
3. 播种星形胶质细胞
   在处理主星形胶质细胞与胰蛋白酶 (参见
   1. 4.2 ) 后, 收集100和 #956; 1.5 毫升离心管中的细胞悬液, 并添加100和 #956; 0.5% 台台盼蓝.
   2. 添加10和 #956; 我收集的悬浮在台盼蓝例和计数所有的细胞是可行的.
   3. 在准备烧瓶前, 使用步骤3.3 中的公式计算单元格的密度.
   4. 在每个井中加入一个无菌、多聚 d-赖氨酸涂层片, 准备井的菜肴。吸管5万细胞和填充其余的体积在每个井菜与新鲜培养基 (约2毫升).
   5. 将井盘放入37和 #730; C 恒温箱 5% CO ₂ , 在5-7 天后, 星形胶质细胞可能生长并覆盖片的整个表面.

5。主星形胶质细胞 OGD 协议

1. OGD 培养基准备
   1. 补充 Dulbecco 和 #39; 改良的鹰和 #39 的无培养基葡萄糖, 3.7 克/升碳酸氢钠, 1% 青霉素/链霉素。请参阅 表 4 中的材料.
   2. 用 95% N ₂ /5% CO ₂ 在10分钟的流量中清除20毫升的葡萄糖自由介质 (用流量计表示), 方法是将血清吸管插入介质中的气体系统.
      注意: 在清除氧气介质后, 将 pH 值调整为 7.4 (请参阅步骤 2.1 中的说明).
   3. 使用50毫升管过滤系统过滤清除无糖培养基.
      注意: 为每项实验制作新鲜的 OGD 培养基, 在使用前冒泡 95% N ₂ /5% CO ₂ , 以确保细胞暴露在氧气清除的环境中.
2. 实验过程
   在组织培养罩内, 从先前准备好的片中删除星形胶质细胞 (参考步骤 4.3.5), 并用蜂窝 PBS 清洗两次, 以去除电池上的葡萄糖.
   2. 添加2毫升的 OGD 介质对每个井并且安置井盘在缺氧室里面与他们的盖子.
   3. 将气体混合物连接到入口阀门, 并使出口阀门保持打开状态。用 95% N ₂ /5% CO ₂ 的气体混合物冲洗腔室, 在15升/分为 5 min.
   4. 停止气体流量, 首先关闭出口阀门上的夹具, 然后关闭气体入口阀门导管上的夹具.
      注意: 通过用肥皂水覆盖密封室, 确保不漏气。如果密封牢固, 则不应形成气泡.
   5. 将整个房间置于37和 #176 的细胞培养箱中; C 为 OGD 1 小时或6小时.
   6. 孵育时间结束后, 吸气 OGD 介质, 并仔细吸管2毫升的完整 DMEM, 每4.67 和 #160; cm ² 常进程 24 h.

6。原星形星形胶质细胞免疫荧光制剂的协议

注意: 要评估星形胶质星的纯度, 不同的脑神经元, 如神经细胞, 小胶质, 和突可以被检测使用不同的细胞标记进行免疫荧光。增殖标志物、PCNA、碘碘 (PI) 可用于 OGD 后常条件下的原发性星形胶质细胞。请参阅 材料表 中的材料.

1. 免疫荧光制剂
   注: 这是一种通用的免疫荧光协议, 可以进行较小的修改以达到最佳的信号 ( 如 , 更长的潜伏期,孵化温度)。 表 1 中的每个标记都可以根据制造商和 #39 的协议使用。
   1. 要评估细胞的生存能力, 细胞可以孵育5分钟, 在37和 #176; C 与 PI (5 和 #181; M 在完全 DMEM) 和洗涤两次与2毫升 PBS 为 5 min. 显示 PI 染色的细胞是不可行的.
      注意: 使用步骤5.2.6 中处理的单元格.
   2. 在 PI 染色后固定细胞, 每4.67 和 #160 增加2毫升4% 福尔马林; cm ² 好, 20 分钟4和 #730; C。对于标有 PCNA 的样品, 优选的固定溶液为甲醇10分钟, 在4和 #730; C.
      警告: 福尔马林和甲醇是有毒的.
      注意: 始终检查每个公司的特定抗体协议.
   3. 用2毫升 PBS 清洗细胞5分钟, 重复此步骤3次.
   4. 在室温下孵育细胞 (0.5% 非离子表面活性剂, 10% FBS 在 PBS 中), 温度为30分钟, 温和摇动.
   5. 用2毫升 PBS 清洗细胞5分钟, 重复洗涤3次.
   6. 在 PBS 的 1% FBS 的溶液中孵育4和 #176; C, 过夜 (16 小时), 与原抗体 (PCNA, 胶质蛋白).
   7. 删除主抗体溶液, 用2毫升 PBS 洗涤细胞5分钟, 并重复此步骤3次.
   8. 在 PBS 中与荧光结合的二次抗体孵育, 在 1% FBS 的溶液中, 在室温下为 1 h.
   9. 用2毫升 PBS 清洗细胞5分钟, 重复此步骤3次。添加1和 #181; DAPI (4 和 #39;, 6 和 #39;-diamidino-2-phenylindole) 为5分钟, 染色细胞核.
   10. 2 毫升 pbs 5 分钟清洗细胞, 重复此步骤两次, 并保持 pbs.
   11. 使用安装介质在显微镜幻灯片上准备片.
2. 共焦显微镜
   设置显微镜后, 将片侧放在显微镜台上。
   1. 使用该软件, 选择 543nm GFAP-Cy3 共轭抗体的激光束.

7。细胞活力测定方法

1. 处理和量化星形胶质细胞, 按照步骤4.3 和 4.4.
2. 添加 1x10 ⁴ 单元格/好到 96-井板, 并将它们长到 70-100.
3. 使用步骤5中的方法, 将培养的96井板暴露为常 1 h OGD 或 6 h OGD.
4. 在 OGD 治疗后, 常培养基被添加到所有的细胞中 24 h, 并使用 MTT 试剂测定法测定其生存能力 (作为制造商和 #39 的指示).
5. 从5毫克/毫升的 mtt 溶液, 增加10% 的总体积每井和孵化3小时, 在37和 #730; C 与 MTT 试剂.
6. 使用200和 #181 去除介质和重晶体; L 二甲基亚砜。在 570 nm 的分光光度计上阅读该板.
   注意: 相对于控制细胞而言, 减少吸光度将与生存能力降低相关.

结果

主要的关注之一星文化是存在的其他细胞, 如神经元, 突, 成纤维细胞, 和小胶质。在图 1中, 从大鼠皮层分离出来的细胞每3天就有一次改变, 或者未经治疗或在 1 h. 24 小时后被添加 LME, 细胞被 immunostained 为胶质蛋白和 1-4 DAPI。未经处理的细胞显示平均39% 非胶质细胞阳性, 而 LME 治疗的细胞显示8%。这些结果表明, LME 的治疗和媒介的变化有效地减少了非胶...

讨论

本协议描述了从大鼠皮层星形胶质细胞的分离。在这种方法, 这是至关重要的, 以减少污染与其他细胞类型, 如小胶质, 突, 和成纤维细胞。为了减少小胶质细胞的数量, 可以采取几个步骤: 改变介质, 轨道震动和化学处理。一旦通过选择性细胞标记或最突出的细胞污染物, 通过免疫荧光证实了培养纯度, 就可以进行实验。例如, 抗电离钙结合剂分子 1 (Iba-1) 抗体可以用来检测小胶质细胞。神经元死亡在?...

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Instruments for Surgery - Step 1
Operating scissor 5.5”	Roboz Company	RS-6812	Tools used to decapitate the rats.
Curved forceps 7”	Roboz Company	RS-5271	Holds the skin of the rat while the skull is removed.
Micro-dissecting scissors 4”	Roboz Company	RS-5882	Cuts both the skin and skull of the rat.
Micro-dissecting forceps 4” angled, fine sharp	Roboz Company	RS-5095	Holds the skin of the rat while the skull is removed.
Micro-dissecting forceps 4” slightly curved 0.8	Roboz Company	RS-5135	Tool used to separate cortices.
Micro-dissecting tweezers	Roboz Company	RS-4972	Peels brain meninges.
Dissection microscope	Olympus	SZX16	Important for removing the meninge from the cortices.
DMEM Preparation - step 2
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium (DMEM)	GibCo. Company	11995-065	Supports the growth of cells.
Sodium bicarbonate	Sigma-Aldrich Company	S7277	Supplement for the cell culture media.
Fetal bovine serum (FBS)	GibCo. Company	10437-010	Serum-supplement for the cell culture.
Penicillin-Streptomycin	GibCo. Company	15140-148	Inhibits the growth of bacterias in the cell culture.
Filter System 1L with 0.22um pore	Corning	431098
Astrocyte culture - step 3
Serological pipets 5mL	VWR	89130-896	To pipette DMEM to containers with cells.
Serological pipets 10mL	VWR	89130-898	To pipette DMEM to containers with cells.
Serological pipets 25mL	VWR	89130-900	To pipette DMEM to containers with cells.
Centrifuge conical tube 15mL	Santa Cruz Biotechnology	sc-200250
Safe-lock tube 1.5mL	Eppendorf	022363204
Barrier Tips 200 uL	Santa Cruz Biotechnology	sc-201725
Barrier Tips 1 mL	Santa Cruz Biotechnology	sc-201727
Biohazard Orange Bag 14 x 19"	VWR	14220-048
60mm petri dishes	Falcon	351007
Sterile gauze pads	Honeywell Safety	89133-086
Stomacher 80 Biomaster	Sewar Lab System	030010019	Triturate the brain tissue.
Stomacher 80 Blender Sterile Bags	Sewar Lab System	BA6040	Sterile bag for the stomacher cell homogenizer.
Beaker 400mL	Pyrex	1000
Sterile cell dissociation sieve, mesh #60	Sigma-Aldrich Company	S1020	To obtain a uniform single cell suspension.
Sterile cell dissociation sieve, mesh #100	Sigma-Aldrich Company	S3895	To obtain a uniform single cell suspension.
Invert phase microscope	Nikon	Eclypse Ti-S	Verify cells for contamination or abnormal cell growth.
75cm2 sterile flasks	Falcon	353136
Multi-well plate	Falcon	353046
Micro cover glasses (coverslips), 18mm, round	VWR	48380-046
Bright-Line hemacytometer	Sigma-Aldrich Company	Z359629
Pasteur pipettes	Fisher Scientific	13-678-20D
Ethyl alcohol	Sigma-Aldrich Company	E7023
L-leucine methyl ester hydrochloride 98% (LME)	Sigma-Aldrich Company	L1002	Promotes the elimination of microglia cells in the primary cortical astrocyte cultutre.
Cytosine β-D-arabinofuranoside (Ara-C)	Sigma-Aldrich Company	C1768
Poly-D-Lysine Hydrobromide, mol wt 70,000-150,000	Sigma-Aldrich Company	P0899
Trypsin/EDTA	GibCo. Company	15400-054
Trypan Blue	Sigma-Aldrich Company	T8154
Phosphate buffer saline (PBS) tablets	Calbiochem	524650
Sterile Water	Sigma-Aldrich Company	W3500
OGD Medium Preparation - step 5
Centrifuge conical tube 50 mL	VWR	89039-658
Dulbecco’s modified Eagle’s medium-free glucose	Sigma-Aldrich Company	D5030	Supports the growth of cells.
Sodium bicarbonate	Sigma-Aldrich Company	S7277	Supplement for the cell culture media.
Penicillin-Streptomycin	GibCo. Company	15140-148	Inhibits the growth of bacterias in the cell culture.
200mM  L-glutamine	GibCo. Company	25030-081	Amino acid that supplements the growth of cells.
Phospahet buffer saline (PBS) tablets	Calbiochem	524650
Filter System 50mL with 0.22um pore	Corning	430320
Centrifuge conical tube 50 mL	VWR	89039-658
Single Flow Meter	Billups-Rothenberg	SMF3001	Measure gas flow in oxygen purge.
Hypoxia Incubator Chamber	StemCell	27310	Generates a hypoxic environment for the cell culture.
Traceable Dissolved Oxygen Meter	VWR	21800-022
95% N2/ 5% CO2 Gas Mixture	Linde		Purges the environment of oxygen.
primary astrocyte immunofluorescence - step 6
Phosphate buffer saline (PBS) tablets	Calbiochem	524650
Formaline Solution Neutral Buffer 10%	Sigma-Aldrich	HT501128	Solution used to fix cells.
Methanol	Fisher	A4544	Solution used to fix cells.
Non-ionic surfactant (Triton X-100)	Sigma-Aldrich	T8787
Fetal bovine serum (FBS)	GibCo. Company	10437-010	Serum-supplement for the cell culture.
Anti-NeuN	Cell Signaling	24307	Detects mature neurons, serves to validate the astrocytic culture.
Anti-PCNA	Cell Signaling	2586	Detects proliferating cells.
Propidium Iodide (PI)	Sigma-Aldrich Company	P4170	Apoptosis staining.
Anti-Olig1	Abcam	AB68105	Detects mature oligodendrocytes.
Anti-Iba1+	Wako	016-20001	Detects microglial cells.
Anti-GFAP Conjugated with Cy3	Sigma-Aldrich Company	C9205	Detects reactive astrocytes in the treated cells.
Alexa Fluor 488	Molecular Probe Life Technology	A1101	Anti-Mouse Secondary Antibody
Alexa Fluor 555	Molecular Probe Life Technology	A21428	Anti-Rabbit Secondary Antibody
4’,6’-diamidino-2-phenylindole (DAPI)	Sigma-Aldrich Company	D9542	Nuclear staining
Confocal microscope	Olympus