细胞周期变化的可视化和核测定心肌出生后

摘要

To distinguish cell division from cell cycle variations in cardiomyocytes, we present protocols using two transgenic mouse lines: Myh6-H2B-mCh transgenic mice, for the unequivocal identification of cardiomyocyte nuclei, and CAG-eGFP-anillin mice, for distinguishing cell division from cell cycle variations.

摘要

Cardiomyocytes are prone to variations of the cell cycle, such as endoreduplication (continuing rounds of DNA synthesis without karyokinesis and cytokinesis) and acytokinetic mitosis (karyokinesis but no cytokinesis). Such atypical cell cycle variations result in polyploid and multinucleated cells rather than in cell division. Therefore, to determine cardiac turnover and regeneration, it is of crucial importance to correctly identify cardiomyocyte nuclei, the number of nuclei per cell, and their cell cycle status. This is especially true for the use of nuclear markers for identifying cell cycle activity, such as thymidine analogues Ki-67, PCNA, or pHH3. Here, we present methods for recognizing cardiomyocytes and their nuclearity and for determining their cell cycle activity. We use two published transgenic systems: the Myh6-H2B-mCh transgenic mouse line, for the unequivocal identification of cardiomyocyte nuclei, and the CAG-eGFP-anillin mouse line, for distinguishing cell division from cell cycle variations. Combined together, these two systems ease the study of cardiac regeneration and plasticity.

引言

心肌细胞核和细胞周期状态的正确识别是对心肌的营业额和再生的决心至关重要。这是一种使用核标记物，如pHH3，Ki-67的，或胸苷类似物，用于识别细胞周期活动的情况尤其如此。如成年哺乳动物的心肌细胞的增殖能力是非常小的^图1中 ，核阳性心肌细胞核的增殖标志物可以使在一个增殖试验的结果的一个关键差的误识别。此外，心肌细胞很容易在细胞周期的变化，如核内复制和acytokinetic有丝分裂，这导致多倍体和多核细胞，而不是在细胞分裂。为此，对常见的细胞周期标记物的抗体染色的解释不是在所有情况下定论。

在这里，我们提出了直forwa方法小鼠心肌细胞的RD承认和其核的明确的身份标识在产后和成年阶段的本土分离出的细胞和厚厚的组织切片的nuclearity。为此目的，与MYH6启动子（MYH6-H2B-MCH）的控制下，由人类组蛋白H2B和mCherry融合蛋白的特异性心肌表达的转基因小鼠品系使用^2。杂交育种用的转基因增殖指示剂鼠标线这个鼠标线，其中一个的eGFP-anillin融合蛋白的表达是与CMV增强无处不鸡肌动蛋白启动子的控制下（CAG-EGFP-anillin），允许测定的细胞周期状态。支架蛋白anillin在细胞周期特异性表达的活性细胞^3，和在细胞周期中其差的亚细胞定位允许活跟踪细胞周期进程用高分辨率的M-相EF"> 4，因此，双转基因小鼠可用于增殖心肌细胞和那些经历细胞周期的变化来区分。这证明在筛选用于体外增殖诱导物质特别有用。

研究方案

该协议涉及动物的所有程序均符合波恩大学的道德标准，并从2010年指令欧洲议会/ 63 / EU的用于科学目的的动物保护准则的规定。

1. 在产后心肌细胞周期活动的体外可视化

1. 产后心肌细胞分离
   1. 实验前准备工作
      1. 制备培养基（IMDM，1％青霉素/链霉素，1％非必需氨基酸，0.1％β巯基乙醇）;介质1:加FCS至2％;介质2:添加FCS至20％。
      2. 涂层的96孔培养皿（半生长面积:15 ^平方毫米）用在PBS中的溶液0.1％明胶。
   2. 心脏解剖
      1. 制备培养皿用15mL PBS中，并将其存储在冰上。通过把它们放在干燥的玻璃珠灭菌消毒2镊子和小剪刀。
      2. 断头牺牲新生转基因小鼠（CAG-EGFP-anillin / MYH6-H2B-MCH）。打开胸腔，解剖心脏出来，如Ehler 等人。 ，2013（J显示精通;（79）:50154 DOI:10.3791 / 50154），并转移到冰冷的PBS。移动到下一个鼠标。
      3. 如果使用非纯合子繁殖对，确定与荧光显微镜转基因心。放入PBS的心在荧光显微镜下。检查EGFP-anillin表达式（例:488纳米; EM:509纳米），H2B-MCH表达（例:587纳米; EM:610纳米）用适当的过滤器设置。
   3. 心肌隔离
      1. 通过新生儿心脏分离试剂盒分离选定的心。孵育酶混合物1在37℃下5分钟。要获得1毫升最终酶混合物，加酶混合物1 945μL到酶混合物2的55微升。
      2. 传送到从P1 4心 - P3小鼠或多达从P4 2的心 - P6小鼠的1.5mlř含1毫升酶混合物反应的影响管切的心脏切成小块，用剪刀。转移溶液加到15mL反应管中。
      3. 孵育在37℃下15分钟。为了最大限度地提高组织与酶之间的接触，把15毫升的管几乎水平在孵化器。用5毫升吸管10倍上下 - 吹打5混合。重复此步骤三次。
      4. 添加7.5毫升介质2（20％FCS）中的以停止酶反应。通过一个70微米的细胞滤网过滤细胞悬浮液。冲洗用3mL介质2的细胞过滤网。
      5. 离心在300×g的15分钟的细胞悬浮液并丢弃上清液。悬浮在介质1的500微升沉淀;不需要进一步的实验红细胞裂解。吸管10细胞悬液到细胞计数室的微升和确定细胞的数量。
      6. 对于一个96孔板:种子，每孔10,000个细胞的120微升培养基1（2％FCS）中。地点将细胞成培养箱中（37℃和5％的CO _2），并立即进行转染。
2. 乳鼠心肌细胞的转染的siRNA或miRNA的
   1. 请用核糖核酸酶净化解决方案的长凳去除RNA酶。请用核糖核酸酶净化解决方案如下材料:10μL，100μL和200μL的移液器和冰盒。解冻的siRNA股票等份（100μM）在冰上。
   2. 准备SI / miRNA的2μM工作库存降低血清培养基（血清培养基减少+ 2的siRNAμL100微米股票的98微升）。工作股价应在当天使用。不建议冻结。
   3. 至用血清培养基减少6微升加入4微升的2微米的库存，以0.5毫升的反应管（量对于一个96孔;最后SI / miRNA的浓度在140微升:〜57纳米）。选择为井的数量适当体积，以具有一定的SI / miRNA的被转染。
   4. 准备转染试剂的主结构。使用10μL（0.6μL转染试剂+ 9.4μL降低血清培养基的），每口井孔（96个）。
   5. 添加SI /混合的miRNA的转染试剂混合。孵育在冰上5分钟。吸管20微升到每个孔中。孵育所述细胞在37℃下48小时和5％的CO _2，然后与介质1的120微升替换介质中的每个井24小时或更长时间后，继续执行固定和免疫荧光染色。
3. 固定和免疫荧光染色
   1. 除去培养基并用PBS洗一次细胞。覆盖20分钟4％甲醛溶液中的细胞。脱下甲醛溶液，并用PBS洗一次细胞，然后用PBS覆盖它们用于存储或进行免疫染色。
   2. （根据制造商的说明浓度）在0.2％的Triton-X和5％驴血清为至少2小时，用第一抗体孵育。如果染色α辅肌动蛋白（稀释1:400;单克隆抗α辅肌动蛋白），染色过夜，在4℃。
   3. 除去第一抗体并用PBS洗涤3次。稀释二级抗体在Hoechst的溶液1:400和在室温下孵育1小时避光。除去抗体，用PBS洗涤3次，并覆盖用PBS将细胞储存于4℃。
4. 共聚焦显微镜的视频
   1. 使用共聚焦显微镜用于图像采集。打开图像处理软件。打开"A1plus设置"，然后检查是否有CH1，CH2，CH3和箱子。通过单击下拉菜单上的CH1设置为DAPI，CH2到绿色荧光蛋白，CH3为Cy3的，和CH4为CY4。
      1. 对于每个通道，点击HV和通过使用滑动条其设置为80。通过使用滑动条设置偏移量为0，然后点击"主页"按钮来设置针孔位置。通过单击下拉菜单中的扫描尺寸为1024×1024。
      2. 点击优化开"XYZ尺寸设置"窗口。检查下"建议的步骤（Z）""完美体素"框。增加激光强度，直到画面既不是曝光不足，也不过度。
         注:例如， CH1（DAPI）:16％，CH 2（EGFP）:12％，CH 3（Cy3标记）:100％，CH 4（Cy5的）:1％。设置偏移所有通道为0。
   2. 以使用20倍的目标（200倍）的照片。扫描一个大的图像，包括平铺图像（ 例如，3×3）。
      1. 在成像软件，进入"获取"，然后从下拉菜单中选择"扫描大的图像"。在"区域"，选择"当前位置是左上角的"从下拉菜单中，并设置为3×3，点击"在X和Y字段数"，"扫描"。
5. 图像分析
   1. 通过计数H2B-CH信号和心肌细胞的通过计数α辅肌动信号的数目限定心肌细胞核的数目。
      <李>点击"测量"，然后从下拉菜单中选择"手动测量"。选择从下一个下拉菜单"计数"。点击与H2B-MCH信号核，由此标记和计数它们。执行相同的α辅肌动蛋白阳性细胞以获得心肌细胞的数目。
   2. 算上S /核EGFP-anillin信号（EGFP-anillin + / H2BmCh +核）G2期心肌细胞。点击"测量"，然后从下拉菜单中选择"手动测量"。选择从下一个下拉菜单"计数"。标记通过点击与EGFP-anillin信号和H2B-MCH信号核。
   3. 计数具有特定的有丝分裂-EGFP-anillin信号（ 例如， 图1F和G），例如胞质信号，收缩环和midbodies的心肌细胞。点击"测量"，然后从下拉菜单中选择"手动测量"。从下一个PUL选择"计数"ldown菜单。马克通过点击特定的有丝分裂-EGFP-anillin信号（ 例如， 图1F和G），细胞质信号，收缩环和midbodies心肌细胞。

2.确定核成人的心肌Langendorff离被解离和厚组织切片

1. 通过分离的Langendorff成人的心肌细胞的分离
   1. 心脏解剖前的准备工作
      1. 填充胰岛素注射器（30G针）与肝素（20单位/ g体重）。由颈背把握鼠标。提起并打开鼠标向后揭露注射腹部。
      2. 执行腹膜内注射。把肝素鼠标背部入笼，并开始清扫心脏前等待至少15分钟。冲洗并用5通风Langendorff装置上 - 灌注缓冲液的10毫升（灌注缓冲液:135毫摩尔NaCl，4mM的氯化钾，1mM的氯化镁_2，2.5毫米的HEPES，5毫米的葡萄糖和25毫米BDM在DDH ₂ O，调节pH至7.4用NaOH）。
   2. 心脏解剖
      1. 制备一个10厘米的培养皿用冷（4℃）PBS中并放置在冰上。填充和通风用PBS 1毫升注射器连接到套管（20号）。修正了在培养皿的边框造型粘土套管。放置插管尖端略低于PBS表面。
      2. 颈椎脱位牺牲鼠标。擦拭用70％乙醇溶液中的腹部。建立从中期腹部手术剪胸骨切口。取出膜片，用手术剪剪双侧胸腔。
      3. 抬起并用20号针头固定胸骨，打开胸腔，并与解剖钳轻轻抓住心脏。提起心脏和切割流出道的血管从肺部和血管取出。
         注意:要识别主动脉，心脏与定位其腹侧。这减少两个心房之间的距离，因此与它的分支主动脉可以心房之间找到。取决于个体心脏结构，分支可以如主动脉的主要分支仍然足够长被移除。
      4. 的心脏转移到含冷冻PBS 10厘米的培养皿（见步骤2.1.2.1）。通过拉动一个G20x1半注射插管，这是由一个振荡的多工具钝化，以避免组织损伤升主动脉导管插入心脏。修复主动脉与上套管的线程。轻轻地用PBS冲洗心脏推注射器活塞，去除多余血液。的心脏有轻微的扩大应该是可见的。
   3. 的Langendorff心脏分离
      1. 快速连接心脏插管来在的Langendorff灌流露儿锁适配器。灌注用30mL充氧的灌注缓冲液中的心脏，在37℃进行5分钟，1滴/秒的流速。钍È流率可以通过使用减压阀（0和200毫巴之间的压力）调节的Langendorff装置内的O ₂流量进行调整。
      2. 6ü胶原酶B，10000台胰蛋白酶，和50μM _氯化钙灌注缓冲液:使用前立刻准备消化缓冲液。除去灌注缓冲液，并通过添加30毫升温水（37℃）和含氧消化缓冲液开始酶消化。
         注意:需要胶原酶B的量取决于不同批次的活性被滴定。
      3. 调节流量以1滴/秒的速率和消化心脏为10 - 13分钟。为了避免污染，不要再使用外排。的心脏转移到一个10厘米的培养皿用5ml消化缓冲液中。用一对镊子举行的心脏，并使用另一对到心脏撕裂成小块，用钳子手动解剖组织。
         注意:在这一步，心房可以分离，切成小件（与虹膜剪），并且为了获得分离的心房细胞消化在培养箱消化缓冲液750微升30分钟，在37℃。要使用1毫升吸管得到纯净的心房心肌细胞，吸管上下几次。停止加入终止液750微升的酶反应。
      4. 加入5毫升的终止溶液（含5％FBS和50μM的_氯化钙灌注缓冲液）停止消化。使用血清吸管，通过100微米的细胞滤网过滤细胞悬浮液收集细胞，在50-mL离心管中。离心过滤的细胞悬浮液在80 XG在室温下1分钟。
      5. 弃去上清液，并用10毫升血清吸管轻轻重悬细胞沉淀在10ml的终止溶液。离心细胞悬浮液，在80×g离心在室温下1分钟。
      6. 离心后，弃上清，重悬细胞在1mL培养基（IMDM的用20％的FCS，0.1mM非必需氨基酸，50微克/毫升每青霉素和链霉素和0.1mMβ巯基乙醇）用于培养。另外，继续执行步骤2.2，"免疫荧光染色"，并修复细胞。
      7. 在37℃下固定于24孔板，每孔8微克/毫升层粘连蛋白涂层的盖玻片分离的细胞的板10,000用培养基的500微升24孔板和5％CO ₂的至少3小时。
2. 在悬挂的Langendorff隔离心肌细胞免疫荧光染色
   1. 固定的Langendorff隔离心肌在1mL 4％PFA的PBS，pH为7.4，在室温下15分钟。离心细胞悬浮液以800×g离心在室温下2分钟，除去固定剂，并用PBS洗细胞两次。
   2. 重悬在固定心肌在1mL PBS中，要么与免疫荧光染色进行或将它们存储在PBS 500微升每孔上在4℃的24孔板中。细胞悬液转移的一部分（〜100 - 200微升）到微量离心管中。离心细胞悬浮液以800×g离心在室温下2分钟，弃上清。
   3. 通透，块，并通过加入稀释的1初级抗体的200μL的染色用抗α辅肌动蛋白一抗细胞:在PBS 400与0.2％的Triton X-100和5％驴血清，在室温下1小时。
   4. 离心以800 xg离心在室温下2分钟，弃上清。用PBS洗细胞沉淀和离心以800 xg离心在室温下2分钟。弃去上清液，并在200微升的Alexa-氟结合的第二抗体（抗小鼠IgG1）孵育稀释1:在室温下1小时后，避光:在Hoechst的染料400（1微克/毫升工作溶液）。
   5. 离心以800 xg离心在室温下2分钟，弃上清。重复此步骤。避光样品。 - [Resuspend将细胞在200 - 的PBS500μL，并传送100 - 细胞悬浮液的300μL到一个显微腔室的孔中。关闭室的盖子，将细胞在4℃下保存，直到成像。避光。
3. 的Langendorff隔离心肌细胞nuclearity分析
   1. 取从α辅肌动蛋白染色的心肌细胞的图像用25X物镜，对应于250X放大倍数。计数仅在经常由α辅肌动蛋白染色，并显示出典型的棒状的形态，因此被认为是完整的那些心肌H2B-MCH +核的数目。
   2. 算从三个不同心的至少100心肌细胞。计算单核，双核，三核和心肌细胞的百分比。
      注意:通常情况下，双核细胞应该弥补约80 - 90％，而三核细胞和那些与原子核的更大数目是罕见的（在的Langendorff隔离心肌<1％，<在厚片3％）。心房心肌比心室肌显著较小。通常情况下，单核细胞占90％，占总人口的。
4. 隔离，固定，和成人的心冷冻保存为厚片准备
   1. 用50毫升的注射器连接到带有一个海德堡延伸管和一个第二的三通旋塞3路阀组装的固定用灌注装置。固定在使得通流通过重力使能的方式在一个支架上的注射器。填充系统15毫升的PBS。
   2. 按照步骤2.1.2.1-2.1.2.4，"心脏的准备。"在G20x1½注射导管与心脏连接到无气泡-PBS填充灌注设备的鲁尔锁适配器，用PBS灌注它。填充系统10 - 15毫升的4％甲醛的PBS中，然后通过心脏灌注。浸没在4％甲醛溶液固定心脏过夜。
   3. 更换4％甲醛用PBS溶液，并在150rpm下洗在PBS的心脏在水平摇动器在室温下8小时。交换的PBS，用20％的蔗糖溶液，以在4℃下过夜脱水心脏。
   4. 冻结冷冻包埋剂的心脏在一个小型模具。
      1. 设置填充有2-甲基丁烷的烧杯中，并将其放置在与干冰的盒子。把心脏到以前一半装满冷冻包埋剂的冷冻模具和低温包埋剂完全覆盖。小心地将模具放入冷水的烧杯中，防止与2-甲基丁烷的冷冻包埋剂的接触。在-80°C，直到使用存储冰冻组织。
5. 厚片心脏的制备
   1. 使用在一个cryotome以下设置:-18至-20℃的物体的温度，-21至-23℃的室中的温度，对4°刀架结算角，和羽毛R35切片机刀片。
   2. 就拿冻存Ø从冷冻集装箱rgan并修复它使用速冻架样品盘与冷冻嵌入媒体上。的心脏在切片开始在心尖这样的位置。
   3. 直到均匀切割平面是实现和器官变得可见修剪掉50微米的薄片。通过使用在手动模式下cryotome用慢速度，并与放置在刀防卷板切50微米的组织切片。在盐水处理显微镜载玻片山片。让切片干燥，在室温下30分钟，并在载玻片在-80直接存储℃或污点。
6. 厚心脏切片染色（细胞核和细胞膜）
   1. 在37℃下处理在洗涤缓冲液（0.5M氯化钠，0.1M的Tris pH值7.5，和50mM EDTA）中与RNA酶A（20微克/毫升）心脏切片的反应杯1小时。孵育在洗涤缓冲液中的0.2％的Triton-X的切片在室温下30分钟。洗片两次，每次5分钟，在洗涤缓冲液中在比色皿在室温下水平摇床。
   2. 染色过夜用1μM的TO-PRO3碘（661分之642）和荧光素偶联麦胚凝集素（WGA，1:100），在洗涤缓冲液中于4℃。洗切片三次，每次用洗涤缓冲液在试管5分钟在水平摇动器并用聚乙烯醇安装介质与抗褪色试剂和玻璃盖玻片覆盖。
7. 图像采集
   1. 理想情况下，使用配有40X / 1.15 NA水浸渍目标倒置激光共聚焦显微镜。通过眼睛搜索，由纵向内衬心肌细胞的切片内的区域;为此目的，荧光素WGA信道（例如:488纳米）是最适合。
      注意:此步骤是必不可少的，作为心肌细胞的上限和下限应的Z堆叠购买分析中可见。作为成像深度被限制到〜30纳米和切片的厚度为50μm，它是不可能的即时这些细胞的年龄截面（单元长度:〜120微米）。
   2. 调整成像软件中的设置。打开图像处理软件。打开A1plus的设置和检查CH2，CH3和CH4的箱子。设置通道2通过单击下拉菜单上的EGFP，CH3为Alx546和CH4为Alx647。
      1. 对于每个通道，点击HV和通过使用滑动条其设置为80。设置使用滑动条偏移量为0。点击"主页"按钮设置针孔的位置。通过单击下拉菜单中的扫描尺寸为1024×1024，单击优化，打开"XYZ尺寸设置"窗口。检查下"建议的步骤（Z）"中的"完美体素"框。
   3. 点击"扫描直播"，并通过点击单个通道滑动条调整激光的强度。检查的"收购ND"窗口中的"Z系列"复选框，然后单击"按上面的按钮定义"对话框。限定的顶部和通过点击相应的按钮调整焦点显微镜后的z堆栈按钮。的z步长设定为0.5微米。
      注意:与z堆栈的深度由组织和信噪比内的光穿透的限制。
   4. 进入"A1plus设置"，然后单击下拉菜单上设置的线路平均/积分为2-4。微调激光强度;针孔应，以便尽可能小，以图像的焦平面。
8. 核分析
   1. 打开图像分析软件和加载的兴趣的z栈。
   2. 通过叠层的不同的层，以便确定该堆栈内完全位于细胞滚动手动确定在Z堆叠核;是这种情况时，WGA染色是在所有维度中可见。算核的数量（其中大部分将是双核），并通过在软件的注释标记分析细胞。
   <利>确定的CM核（H2B-MCH +）和在3D重建的单个信道（ 图2D）总核（TO-PRO3 +）的数量。在成像软件，点击"二进制"，然后从下拉菜单中选择"定义阈值3D"。选择从信道下拉菜单或Alx546，CM为原子核或Alx647的总核数目的数目。通过单击相应的箭头，设置程序"平滑4倍"，清洁1x和ON填充孔。检查"大小"框，并使用滑块将其设置为5微米。通过使用滑块，直到单独的对象出现设置阈值。
   注:施加破碎后，结果窗口显示量化事件和图像的着色的碎片的表。如一些细胞核彼此直接接触，手动校正双峰，这可能不是由软件正确地分离出的自动测量结果。

结果

为了分析的siRNAs / miRNA的体外产后心肌细胞，双转基因MYH6-H2B-MCH / CAG-EGFP-anillin小鼠心肌细胞的细胞周期活动的影响被隔绝在3日龄（P3）和与转细胞周期活动诱导miR199 ^5，P27的siRNA，和siRNA Fzr1。相比于阴性对照（ 图1A），miR199-（ 图1B）和siRNA p27-（ 图1C）的照片转染心肌细胞表现出细胞周期活性的诱导。在EGFP-anil...

讨论

有一个争论的心肌细胞是否能够重新进入细胞周期和损伤后和组织稳态期间分割。对于心肌细胞的基本成交值已被赋予在范围为^1％1和80％的⁷之间。还心脏损伤后，细胞周期活性的诱导和新的心肌细胞的产生已经报道在边界区，具有值^0.0083％8和25之间- ^40％7。这些差异可部分通过不同的实验方法进行说明，以确定心肌细胞核，...

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
10 cm Petri dish	Sarstedt	821472
100 µm cell strainer	Becton Dickinson GmbH/Falcon	352360
2,3-Butanedione monoxime (BDM)	Sigma-Aldrich	B0753
G20x1 ½ injection cannula, Sterican	Braun, Melsungen	4657519
20 gauge needle	Becton Dickinson GmbH	301300
24-well plates	Becton Dickinson GmbH/Falcon	353047
2-Methyl-butane	Carl Roth GmbH + Co. KG	3927.1
37% formaldehyde solution	AppliChem GmbH	A0936,1000
3-way stopcock	B. Braun Medical Inc.	16494C
50 mL syringe	B. Braun Medical Inc.	8728810F
70% ethanol	Otto Fischar GmbH	27669
Alexa-Fluor-conjugated secondary antibody	Jackson ImmunoResearch	115-605-205
Alpha-Aktinin EA-53, Mouse IgG	Sigma-Aldrich, Steinheim	A7811
CaCl2	Sigma-Aldrich	C4901
Cell Culture Microplate, 96 Well, Half Area	Greiner bio-one	675986
Collagenase B	Roche	11088815001
confocal microscope Eclipse Ti-E	Nikon
cryostat CM 3050S	Leica
donkey serum	Jackson Immuno Research, Suffolk, GB	017-000-121
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline	Sigma-Aldrich	D8537
EDTA	Sigma-Aldrich	E4884
fetal calf serum	PromoCell, Heidelberg
Formaldehyde solution (4%)	PanReac AppliChem	A3697
Gelatine from porcine skin, Type A	Sigma-Aldrich, Steinheim	G2500
glass coverslips	VWR	631-0146
Glucose	Sigma-Aldrich	G7021
Heidelberger extension tube	IMPROMEDIFORM GmbH	MF 1833
Heparin-Natrium	Ratiopharm	5394.02.00
HEPES	Sigma-Aldrich	H3375
HistoBond microscope slides	Marienfeld	0810000
Hoechst 33342 (1 mg/mL)	Sigma Aldrich, Taufkirchen	B2261
Insulin syringe	Becton Dickinson GmbH	300334
Iscove’s ModifiedDulbecco’s Medium (IMDM)	Gibco/Life Technologies, Darmstadt	21980-032
KCl	Sigma-Aldrich	P9333
Laminin	Corning	354221
Laser Scanning Mikroskop Eclipse Ti	Nikoninstruments, Düsseldorf
Lipofectamine RNAiMAX	Invitrogen/Life Technologies, Darmstadt	13778075
Mouse IgG Cy5 (donkey)	Jackson ImmunoResearch	715-175-151
MgCl2	Sigma-Aldrich	M8266
microcentrifuge tube	Sarstedt	72690
Mini shaker	VWR	12620-940
mirVana miRNA mimic, hsa-miR199a-3p	Ambion/Thermo Fischer Scientific	4464066
Biopsy Mold	Sakura Finetek/ VWR	4565
M-slide 8-well ibiTreat	ibidi	80826
NaCl	Sigma-Aldrich	S9888
NaOH	Merck Millipore	567530
negative control(scrambled RNA)	Ambion/Thermo Fischer Scientific	AM4611
Neonatal Heart Dissociation Kit	Miltenyi Biotech, Bergisch Gladbach	130-098-373
NIS Elements AR 4.12.01-4.30.02-64bit	Nikoninstruments, Düsseldorf
Non essential amino acids, NEAA	Gibco/Life Technologies, Darmstad	11140-035
Opti-MEM, Reduced Serum Medium	Gibco	51985-026
P21-siRNA	Ambion/Thermo Fischer Scientific	4390771
P27-siRNA	Ambion/Thermo Fischer Scientific	4390771
Penicillin/Streptomycin	Gibco/Life Technologies, Darmstadt	15140-122
Phosphate buffered saline (PBS)	Sigma-Aldrich, Steinheim	14190-094
Polyvinyl alcohol mounting medium with DABCO®, antifading	Sigma-Aldrich	10981
RNase A	Qiagen	1007885
RNaseZap	Invitrogen/Life Technologies, Darmstadt	AM9780
sample containers	Vitlab	80731
Serological pipette	Greiner	607180
software NIS Elements	Nikon
Sucrose	Sigma-Aldrich	S0389
Tissue-Tek O.C.T. Compound	Sakura Finetek/ VWR	25608-930
ToPro3 iodide (642/661)	Molecular probes/ThermoFisher Scientific	T3605
Tris	Sigma-Aldrich	T1503
Triton X	Fluka	93418
Triton X-100	Fluka	93418
Trypsin	Sigma-Aldrich	T1426
Wheat germ agglutinin (WGA) Fluorescein labeled	Vector Laboratories	VEC-FL-1021-5
α-actinin antibody	Sigma-Aldrich	A7811
β-Mercaptoethanol	Sigma-Aldrich, Steinheim	M3148