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摘要

Here, we describe a human blood-brain barrier model enabling to investigate lymphocyte transmigration into the central nervous system in vitro.

摘要

淋巴细胞外渗到中枢神经系统（CNS）是免疫监视的关键。淋巴细胞渗出的疾病相关的变化，可能会导致在中枢神经系统的病理生理改变。因此，淋巴细胞迁移的调查中枢神经系统重要的是要了解炎性中枢神经系统疾病和开发新的治疗方法。在这里，我们提出了人类血脑屏障的体外模型来研究淋巴细胞渗出。人脑微血管内皮细胞（HBMEC）的汇合生长在多孔聚对苯二甲酸乙酯的Transwell插入到模拟血脑屏障的内皮。屏障功能是由紧密连接免疫组织化学，跨内皮电阻（TEER）的测量以及伊文思蓝渗透的分析验证。这种模式使罕见的淋巴细胞亚群血细胞渗出的调查，如CD56 亮 CD16 暗淡/ - NK细胞。 Furtherm矿石，其他细胞，细胞因子和趋化因子，疾病相关的改变，以及对淋巴细胞迁移能力不同治疗方案的效果进行研究。最后，炎性刺激对内皮屏障的影响，以及不同的治疗方案可以被分析。

引言

从血液进入组织的细胞迁移是免疫监视的关键。特定分子相互作用的序列确保位点特异性外渗到小肠，皮肤，淋巴结，中枢神经系统（CNS），以及其他组织1。在淋巴细胞迁移的改变都参与了许多的广泛传播疾病2的病理生理学。迁移到免疫豁免CNS是被严格调控，因此，该过程的改变参与CNS相关的疾病，如脑脊髓炎3，视神经，中风和多发性硬化（MS）2，4，5，6，7。因此，研究淋巴细胞渗出，以更好地了解疾病的病理生理机制，并制定一个工具，它是非常重要的疾病负担8，9，10，11，12的土壤改良。

淋巴细胞通过不同的路线迁移进入CNS。外渗通过毛细血管小静脉成可经由脉络丛内和跨血脑屏障血-脑脊液屏障蛛网膜下腔已经描述1，13，14，15。跨过血-脑屏障迁移是由淋巴细胞的内皮细胞14的相互作用进行。与此相反，以内皮细胞在外围，CNS的内皮细胞表达大量紧密连接的分子，从而严格限制细胞和蛋白质能够穿过血脑屏障的量小姑娘= "外部参照"> 16。炎症导致紧密连接的松动，并且诱导的粘附分子的表达;因此，增强淋巴细胞迁移进入CNS 1，17，18。

通过血 - 脑屏障外渗是一个多步骤过程。淋巴细胞系链对内皮细胞，然后沿着主要由选择素1，15介导的过程的内皮上滚动。随后，在淋巴细胞上表达由内皮分泌的趋化因子和相应的趋化因子受体之间的相互作用诱导整联的构象变化，从而促进牢固粘附到内皮细胞1。最后，无论是淋巴细胞针对沿着血流内皮屏障抓取transmigrating进入血管周围空间中之前，或立即和直接传动和失速igrate在牢固粘附1，19，20的部位。淋巴细胞外渗所有这些步骤都可以在体外使用不同技术21进行分析。延时录像显微镜用于研究的初步圈养及压延15。粘附分析提供关于牢固停滞的详细信息内皮障碍22。如这里演示轮回测定允许免疫细胞轮回21，23，24，25，26，27，28，29的分析。

使用体外血脑屏障模型的人，我们可以最近表明，较高的MIGRCD56 明亮的 CD16的atory容量暗淡/ - NK细胞相比，他们的CD56 暗淡 CD16 +同行通过在鞘内室21这NK细胞子集的优势体现。因此，我们的实验装置似乎是适用于模拟体内的情况。

研究方案

1.细胞人脑微血管内皮细胞的培养（HBMEC）

  1. 细胞培养烧瓶的涂层
    1. 为了制备纤连蛋白溶液，加入10毫升PBS至15mL离心管中。加入150μL纤维连接蛋白拌匀。
    2. 以覆盖所述底部的T-25细胞培养瓶添加2毫升纤连蛋白溶液。在孵化器中孵育的细胞培养瓶为至少3个小时在37℃下。纤连蛋白包被的烧瓶可以在37℃/ 5％CO 2中可以储存2周。
  2. 播种和HBMEC的细胞培养
    1. 从细胞培养烧瓶的底部吸出纤连蛋白溶液。添加7.2×10 4 HBMEC /平方厘米悬浮于6mL ECM-B培养基（= ECM-B补充有5％胎牛血清，1％青霉素/链霉素和1％的内皮细胞生长补充物）。孵育在37℃/ 5％CO 2。每天检查细胞生长用显微镜。
    2. 改变介质每3天。收获或分裂的细胞，当HBMEC达到大约80％汇合。 HBMEC应通道1和15之间使用，以避免生理特性的损失。
  3. 收获HBMEC。
    1. 制备通过在1:1的比例混合，用PBS ACCUTASE（1×）ACCUTASE溶液:1。保持在水浴中在37℃下ACCUTASE溶液直至进一步使用。
    2. 从细胞培养烧瓶转移ECM-B培养基至15mL离心管中。通过添加5mL PBS到细胞培养瓶的底部洗HBMEC。吸PBS和重复洗涤步骤两次以上。
    3. 加入2毫升预热ACCUTASE溶液。孵育在37℃下2分钟。此后，HBMEC被牢牢地拍打细胞培养瓶数次重悬。细胞剥离用显微镜控制
    4. 预先存储在一个15毫升管中的ECM-B-介质只要HBMEC开始分离加回到细胞培养瓶。冲洗瓶的底部，直到大部分是HBMEC重新悬浮。
    5. 细胞悬液转移到15毫升离心管中。离心机中以300×g于室温下10分钟。弃上清，重悬在1mL ECM-B培养基的细胞。计数细胞并稀释细胞悬浮液，以实现每毫升ECM-B培养基3×10 5的HBMEC终浓度。

2.细胞培养插入的制备

  1. 细胞培养插入物的涂层
    重要提示 :避免接触细胞培养插入的膜。
    1. 添加100μL的纤连蛋白溶液（参见1.1.1），以每个细胞培养插入物（ 图1A）和96孔平底平板的一个孔（光控制孔）。孵育在37℃下至少3个小时。孵育后，吸出纤维连接蛋白的解决方案。
    2. 加入100μLHBMEC悬浮到细胞培养插入和光控制井。 600μl的ECM-B培养基添加到该单元的下部隔室培养插入。孵育3 - 4日，在37℃/ 5％CO 2，直到屏障完整性（ 图1B）到达，检查由HBMEC的显微镜评价细胞生长在光控制井。注意:不建议细胞生长超过四天。
    3. 可选:为了模仿炎性病症抽吸从下部隔室中的培养基，并用补充有500U / mL的IFN-γ/ TNF-α前24个小时的迁移测定ECM-B培养基更换。

3.质量控制的伊文思蓝在轮回试验的当天

  1. 伊文思蓝溶液的制备
    1. 使用15mL离心管用200μlB27补充剂制备PBS / B27溶液混合10毫升PBS中。稀伊文思蓝原液（20毫克/毫升PBS）1:1000用PBS / B27。
  2. 伊文思蓝的渗透性测定
    1. 从下部隔室，随后上部隔室吸出介质的含有汇合的单层HBMEC一个细胞培养插管。加入100μL伊文思蓝解决细胞培养插管。
    2. 添加600μLPBS / B27到下部隔室，并在37℃/ 5％CO 2孵育60分钟。小心使用镊子取出细胞培养插管。
  3. 伊文思蓝测量
    1. 从下部室中取出PBS / B27以各100μL转移到黑色聚苯乙烯96孔平底板的两个孔。在Tecan无限临M200读板器插入板和确定最佳的z位置。
    2. 的伊文思蓝使用相应的设置测量的激发（例如:激发:620纳米，发射:680纳米，激发带宽:9 nm，发射带宽:20纳米，175x的增强，25个闪烁，积分的时间:20微秒）。
    3. 为了确定HBMEC屏障功能比较所获取的数据与标准曲线描绘跨越HBMEC伊文思蓝渗透在种子后不同的时间点荷兰国际集团的细胞（ 图1B，右侧）。

4.迁移分析

  1. 外周血单核细胞（PBMC）的制备。
    1. 加入10 mL RPMI到15mL离心管中，加入200μL的B27补充剂。计数PBMC和离心细胞以300×g离心5分钟。重新悬浮PBMC以5×10 6个细胞/ mL RPMI / B27以终浓度。
  2. 移民法的建立
    1. 从下部隔室，接着含有汇合的单层HBMEC（ 图1A）的细胞培养插入物的上部隔室吸出培养基。每个供体添加每个100μL的PBMC悬浮液与细胞培养插入并且还每一个24孔板的一个孔中（ 体外控制）。
    2. 添加600μLRPMI / B27的细胞培养插入和500微升的体外控制的PBMC的下部隔室，并在37℃/ 5％CO 2孵育6小时。
  3. 迁移PBMC的收获
    1. 使用镊子取出细胞培养插管并仔细冲洗用400微升PBS底部不接触膜。弃细胞培养插管。
    2. 加入20μL流数荧光微（大约1,000珠/μL）向细胞培养物的下部隔室插入以及到体外控制拌匀。吸取1 mL所得PBMC悬浮液至流式细胞仪管。

5.流式细胞仪

  1. 样品制备
    1. 离心机PBMC在300×g下在室温下5分钟。
    2. 通过加入荧光标记的抗体，以100μL的制备抗体溶液流式细胞仪缓冲液（PBS / 1％BSA / 2mM EDTA）中，每个样品。对于下面给出1μLCD4-FITC的结果，1μLCD3-PerCP / Cy5.5的，1μL的CD56-PC7，1μL的CD8-A700，和1μlCD16-A750每个样品使用。
    3. 重新暂停PBMC在100μL的抗体溶液中，并在4℃下温育30分钟。
    4. 加入250μL流式细胞仪缓冲液中并离心，在300×g离心5分钟。
  2. 样品采集
    1. 以所需的量再悬浮PBMC（取决于流式细胞仪中使用的流）流式细胞仪缓冲液中。
    2. 使用流式细胞仪用525和700nm的波长之间的有源检测器，检测流数荧光微获得染色PBMC（激发488 nm，发射525 - 700纳米）。
      （下面的步骤是，如果使用GALLIOS流式细胞仪用克鲁札G软件操作的示例:（1）启动计算机（2）当操作系统被完全加载时，通过按"上流式细胞仪"按钮血细胞计数开始流动通过按下"开放协议"按钮。（3）装入相应的获取协议。（4）选择所需的协议并选择"打开"。（5）由与右点击复制为每个样本的协议在协议中虚拟转盘和在球场上"重复"左击鼠标可见按钮。 （6）标签在样品列表中的每个样本。 （7）传送所述样本以转盘的指示位置和开始采集。）
  3. 样品分析
    1. 使用相应的软件开所得的流式细胞术数据。确定的来自体外对照孔为transmigrated PBMC兴趣以及细胞亚群的数目，并使用相应的分析软件计数流动荧光微。
      （门控策略的一个例子在结果部分中给出（ 图1 C:为了分析NK细胞亚群的轮回，首先在一个侧向散射信道（SSC）相对于前向散射信道（FSC）情节选择淋巴细胞淋巴细胞是。然后在CD3对CD56情节和CD56 + CD3显示- NK细胞被选择为NK细胞亚群之间进行区分，NK细胞都显示在一个CD56与CD16的情节和CD56 明亮的 CD16 暗/ -以及CD56 暗淡 CD16 + NK细胞被选择。此外，流数荧光微是从FSC相对于SSC情节选择并随后在信道的带525个700纳米与时间的关系，以确定它们的数目之间的发射的曲线图显示。）
    2. 来计算每个样品的总细胞数，使用流数荧光微正常化的细胞的检测数:
      figure-protocol-3955
    3. 确定迁移的细胞作为总迁移的细胞和总细胞在体外控制之间比率的百分比。

结果

示出NK细胞和使用人的血脑屏障模型（ 图1A）的T细胞亚群的轮回代表性的结果示。的HBMEC单层的完整性是由紧密连接分子ZO-1，跨内皮电阻（TEER）的测量，和伊文思蓝渗透（ 图1B）的染色验证。以下3 -第4天的培养HBMEC表达的紧密连接分子ZO-1（ 图1B，左）。此外，HBMEC增长在表现出跨内皮电阻（ 图1B中）以及降低的渗透为伊?...

讨论

在这里，我们提出了一种技术，调查淋巴细胞跨越人类血脑屏障的轮回。 在淋巴细胞迁移至CNS的体外分析是很重要的学习淋巴细胞渗出，潜在的疾病相关的变化，以及新的治疗方法的基本过程。

血 - 脑屏障模型的若干修改是可能的。例如，从上室细胞可以解析，调查了未迁移细胞群的组合物。此外，治疗的HBMEC单层与测定前24小时IFN-γ和TNF-α的可以用来模仿发炎...

披露声明

The author(s) declared the following potential conflicts of interest with respect to the research, authorship, and/or publication of this article: A.S.-M. and U.B. have no financial disclosures. T. S.-H. received travel and conference expenses from Biogen. N.S. received speaker and advisory board honoraria from Biogen and Novartis Pharma, as well as travel expenses from Biogen. H.W. received compensation for serving on Scientific Advisory Boards/Steering Committees for Bayer Healthcare, Biogen, Merck Serono, Novartis, and Sanofi-Genzyme. He also received speaker honoraria and travel support from Bayer Vital GmbH, Bayer Schering AG, Biogen, CSL Behring, Fresenius Medical Care, Glaxo Smith Kline, GW Pharmaceuticals, Lundbeck, Merck Serono, Omniamed, Novartis, and Sanofi-Genzyme. He received compensation as a consultant from Biogen, Merck Serono, Novartis, and Sanofi-Genzyme. H.W. received research support from Bayer Vital, Biogen, Genzyme, Merck Serono, Novartis, Sanofi-Aventis Germany, and Sanofi US. C.C.G. received speaker honoraria and travel expenses for attending meetings from Genzyme, Novartis Pharma GmbH, and Bayer Health Care.

致谢

This study has been supported by the Collaborative Research Centre CRC TR128 "Initiating/Effector versus Regulatory Mechanisms in Multiple Sclerosis-Progress towards Tackling the Disease" (Project A9 to H.W. and C.C.G., project B1 to N.S.).

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
PBSGibco14190-094without CaCl2 or MgCl2
Fibronectin 1 mg/mLSigmaF1141-5MGfrom bovine plasma
T-25 cell culture flaskGreiner BioOne690160
HBMECScienCell1000
PelobiotechPB-H-6023
AccutaseSigmaA6964-100ML
ECM-bScienCell1001-b
FBSScienCell1001-b
Penicillin/StreptomycinScienCell1001-b
Endothelial cell growth supplementScienCell1001-b
TranswellCorning3472clear, 6.5 mm diameter, 3.0 µm pore size
96-well flat bottom plateCorning3596
Evans blueSigmaE2129-10Gstock solution: 1 g/50 mL PBS
B27Gibco17504-04450x concentrated
Infinite M200ProTecan
96-well black flat bottom plateGreiner BioOne675086
48-well plateCorning3526
RPMI 1640Gibco61870-010
Flow Count FluorospheresBeckman Coulter7547053
Na-EDTASigmaE5134
BSASigmaA2153
Gallios 10-color flow cytometerBeckman Coulter
Kaluza 1.5aBeckman Coulter
TNF-αPeprotech300-01A
IFN-γPeprotech300-02
CD3-PerCP/Cy5.5Biolegend300430clone UCHT1
CD56-PC7Beckman CoulterA21692clone N901
CD16-A750Beckman CoulterA66330clone 3G8
CD4-FITCBiolegend300506clone RPA-T4
CD8-A700Beckman CoulterA66332clone B9.11

参考文献

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