一种快速高效的解剖蛹翅的方法, 适用于 Immunodetections 或 PCR 检测

摘要

在果蝇组织中准确检测转录和蛋白质的能力对于研究它们与发展过程有关的丰度和定位是至关重要的。这里是一个简单的过程解剖蛹翅膀的描述。这些翅膀可以作为样品在一些技术 (免疫组织化学, PCR 检测,等)。

摘要

在果蝇的机翼发育是研究组织层形态发生的理想模型。这些附属物从胚胎发育过程中形成的一组叫做翼形象的细胞发展而来。在幼体阶段, 形象椎间盘生长, 增加细胞数量, 形成 monolayered 上皮结构。在蛹的情况下, 形象盘芽和折叠成双层沿一条线, 成为未来的翼缘。在这一过程中, 纵 primodia 脉在翼的准背和腹面上起源于静脉细胞。在蛹阶段, 每个表面的静脉细胞的条纹, 以产生致密管;与此同时, cross-veins 开始形成。

在适当的分子标记的帮助下, 它是可能的确定主要元素构成翼在它的发展期间。由于这个原因, 能够准确地检测到该结构中的转录或蛋白质, 对于研究它们的丰度和定位与机翼的发展过程是至关重要的。

这里介绍的过程集中在操纵蛹翼, 提供详细的说明如何解剖机翼在蛹阶段。蛹组织的解剖比它们在第三龄幼虫中的表现更难。这就是为什么这种方法的发展, 以获得快速和高效的高质量样品。有关如何免疫和安装这些机翼样品, 让蛋白质或细胞成分可视化的细节, 在协议中提供。由于缺乏专业知识, 可以在短时间内收集8-10 高品质的蛹机翼。

引言

果蝇机翼是从机翼形象盘中开发的。在胚胎发育过程中, 这些翼盘的原始性被放在一边, 作为20-30 形象细胞的小基团, 从胚胎上皮 invaginate。当幼虫生长到第三个龄期时, 有丝分裂发生在形象细胞在特定的特征时间提高其数量 (约50000细胞), 形成翼盘^{1,2,3, 4}。当细胞增殖时, 它们会形成管状上皮, 形成 self-folding 的致密螺旋。在蛹期间, 圆盘上皮望远镜形成二层翼和纵脉开始作为他们之间的空白, 在翼发展期间发生两次^5,6。

静脉的排列总是有相同的图案;能够很容易地识别血管形成中的每一个变化, 使得突变非常明显 (例如缺失或额外的静脉, 静脉位置的变化,等)。有趣的是, 表型变化通常是已知或新奇的信号传导通路的突变的证据, 它们与机翼的发育有关。在确定位置和维持静脉和交错区域中扮演角色的一个途径是刺猬 (Hh) 路径^6,7,8。

考虑到蛹机翼作为一个模型系统的重要性, 获得高质量的样品是很重要的。过去, 科学家们已经发布了解剖果蝇翅膀的协议, 但并没有给出合适的指南来获得可行的样本。没有研究员的教导你不可能清楚地形象化过程。在这些交替的解剖方法中, 蛹被一分为二, 将机翼与周围的组织隔开, 并反复洗涤以除去碎片。这种方法声称离开机翼的污染, 但由于以往的经验的过程是较慢的, 有更大的机会破坏脆弱的机翼结构⁹。

这里描述的程序是根据需求找到一种快速和有效的方法获得蛹翼样本, 适合检测特定的蛋白质或抄本使用免疫协议或聚合酶链反应 (PCR) 化验。为了说明这一点, 在蛹翼样本中检测到了已修补的 (Ptc 或 Hh 通路的典范受体) 的表达和定位, 提供了包含相关细节的协议, 以成功地完成 程序.

研究方案

1天

1. 收集和培养蛹。

1. 在蛹形成 (APF) 或蛹后, 使用湿的画笔从培养的小瓶中取出0小时, 并将它们放入新的瓶子中, 以几乎完成开发期 (见2.1 和 2.2)。
   注意:应该使用标准的培养规程来维护健康的苍蝇种群。在产卵三或四天后, 成人可以从小瓶中取出, 以使个体得到最佳的发育。他们保持在恒定的温度, 直到第三个幼虫开始蛹。幼虫/蛹的转变是以蛹的形成为标志的, 被认为是 0 h APF。蛹是一个不动的白色幼虫, 有一个长方形, 圆形, 突出前气孔。

2天

2. 转移、解剖和固定。

1. 将蛹 (2 小时前的开发时间完成) 与一支画笔, 到显微镜幻灯片与双面胶带坚持它。使蛹形成一排背侧和头端朝向同一方向。
2. 将显微镜幻灯片返回到恒定温度, 并允许蛹完成适当的发育时间 (即24-30 h APF)。
   注意:与双面胶带的显微镜滑动将是一个暂时的解剖平台, 以消除蛹的情况下 (见下文)。显微镜滑动 (瓶外) 的时间推移有助于干燥蛹的情况下, 使其容易破碎的钳子。
3. 用镊子将盖从蛹箱中取出。
4. 用钳子 (如视频中所示) 打破这一情况, 沿着蛹的一侧到它的尾端线。有了适当的光照, 就可以检测蛹的内部形状, 使其在蛹翼的铰链上方有一个明显的空间。这个空间作为一个指南, 以执行开放, 而不损害蛹。
5. 删除部分的情况下, 拾起他们在打开的边界, 并携带他们到对面的双面胶带将举行他们。在解剖的最后, 蛹几乎是 "赤裸", 只有一小部分的情况下将覆盖后端。
   注: 在上尾端留下少量的情况是为了确保从机箱上平滑地释放到带有双面胶带的滑块上。这一行动背后的原因是, 如果你删除太多的情况下, 你很大的风险损害蛹。另一方面, 如果你删除太少, 蛹将不容易来摆脱的情况。
6. 用镊子把箱子的其余部分往下推。这一运动将提高蛹的前端, 使头部和胸部保持在一个优先地位, 以坚持和转移在随后的步骤。
7. 用双面胶带将新的幻灯片翻转到蛹或蛹排。我们建议采取这种方法, 观察运动的帮助下, 显微镜防止蛹的破坏。
8. 稍微按压一下, 使蛹粘在胶带上, 然后轻轻地滑动, 以便从其余的病例中取出蛹。倒置显微镜幻灯片: 蛹将被卡在背侧的水平, 他们的头部/胸部区域。
9. 覆盖所有的裸蛹与4% 甲醛和等待10分钟。根据我们的经验, 这种固定的时间的推移有助于改变角质层的一致性, 使其牢固, 不粘, 易于处理。
   注意:为了执行核糖核酸 (RNA) 提取, 替代甲醛的磷酸盐缓冲盐水 (PBS) 制成的核糖核酸自由水和删除的蛹翅膀作出削减 (借助剪刀) 的铰链点附近的每个附属物。用镊子将蛹翼转移到离心管上, 用1毫升的硫氰酸胍和苯酚试剂。收集了总共50-80 个机翼后, 将离心管存储在-80 ° c, 直到执行 RNA 提取^10,11。
10. 在机翼的铰链区域或靠近它的地方做一个小切口。使定影液到达翼上皮。在机翼上使用吸管 (p200) 冲洗定影液。当冲洗取代被污染的执着与新。冲洗后, 将机翼固定在定影液中5分钟。
    注意:虽然这种机动有助于清除大部分的污染组织, 一些血和脂肪滴可能仍然被困在背部和腹侧上皮层之间的机翼 (见图 1A)。
11. 撕裂与钳子从角质层边界 (如在视频中所示) 扩大孔, 并使释放的翼上皮从角质层囊。一旦机翼组织被释放, 留在甲醛溶液中完成30分钟的固定。
12. 将固定翼转移到一个满是 PBST (海卫 X-100 0.05%) 的4溢的塑料碟中。在4° c 过夜。

3天

3. 主要抗体的培养。

1. Permeabilize 的组织孵化蛹翼在 PBST (海卫 X-100 0.2%) 为15分钟使用摇摆平台, 以促进温和的液体介质运动。
   注意:在安装这些示例之前, 应使用摇摆平台执行这些步骤。
2. 使用 PBSTA (BSA 3%, 海卫 X-100 0.1%) 为1小时阻止样品。
3. 使用相同的缓冲液来稀释主抗体 (小鼠抗 Ptc, 1:100), 在4° c 的夜间孵育蛹翅。

4天

4. 二级抗体培养。

1. 洗涤样品 4 x 10 min 每个与 PBST (海卫 X-100 0.05%)
2. 孵育与二次抗体 (例如, anti-mouse 共轭到荧光) 稀释到适当的集中在 PBSTA (BSA 3%, 海卫 X-100 0.1%) 在室温下在黑暗中, 为 2 h。
   注意:如果合适, 使用 4 ", 6-diamidino-2-吲 (DAPI) 和/或笔 counterstain 的组织。将这些探针与二次抗体结合, 考虑到荧光的发射波长, 以防止信号重叠。
3. 洗涤样品 4 x 10 min 每个与 PBST (海卫 X-100 0.05%)

5. 安装

1. 在显微镜上放置4点透明指甲油, 准备一个样品幻灯片, 就好像它们是正方形的顶点一样。

他们将是片将休息, 帮助避免粉碎组织的点。

放置30µL 的安装介质 (甘油/三-HCl 80%) 在广场中心的点, 用指甲油, 而不触及任何角落 (点)。取一个带有黄色裁剪尖端的吸管, 装上一些安装介质, 然后用几个蛹的翅膀画出。

将蛹的机翼转移到显微镜滑轨上的安装介质的点上。在尖端的帮助下, 传播安装媒体和下沉蛹的翅膀, 以防止他们漂浮。当盖上玻璃被放置时, 如果机翼保持平坦, 组织的形态将保持不变。在放置盖子玻璃之前, 除去气泡。

将片放在样品上, 试图防止气泡的产生。这一运动可以借助镊子来完成。

结果

该协议提供了一个简单的方法获得蛹翼样本, 保留了熟悉的机翼形态。从这些准备工作中, 可以获得一堆可能被投射为2维或3维的图像, 以研究在机翼分化过程中蛋白质的分布和/或丰富度。类似的协议 (见2.9 的说明) 可以用来收集大蛹翼样本 (涉及50-80 蛹翼) 合成互补脱氧核糖核酸 (cDNA), 用于 PCR 反应的模板。

讨论

该视频中所描述的解剖方法可用于为许多类型的技术 (如,免疫荧光法, cDNA 合成, PCR 检测) 制备高质量的果蝇蛹翅的样品. 体外翼发育)。根据这种方法, 科学家们使用了 24-30 h 型 APF。然而, 在解剖年轻或年长的蛹的关键步骤中, 不应有任何障碍。可能必须作出改变, 以适应较小的阶段蛹。

该协议可以进行解剖一个蛹或几个蛹在同一时间。这有助于加快过程, 使...

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Stereomicroscope with cool light illumination	Nikon	SMZ1000
Rocking platform	Biometra (WT 16)	042-500
Microscope slides	StarFrost	8037/1
Cover glasses (24 x 32 mm)	Deltalab	D102432
Forceps	F.S.T	11252-00
Scissors	Lawton	63-1400
Multi-well plastic dish	Thermo Scientific	144444
p100 or p200 pipette	Finnpipette (Labsystems)	9400130
1X PBS (Dulbecco)	Gibco	21600-010
4% paraformaldehyde	Sigma	158127
Triton X-100	Sigma	T8787
BSA	Bio Basic INC.	9048-46-8
Glycerol	Mallinckrodt	5092
Tris	Amresco	497
TRIzol Reagent	Ambion	15596026
DEPC treated water	MO.BIO	17011-200
Alexa Fluor 546 goat anti-mouse IgG (H+L), 2 mg/mL (working dilution 1/800)	Invitrogen	A11030
Monoclonal anti-Ptc (Apa-1) 54 μg/mL (working dilution 1/100)	Developmental Studies Hybridoma Bank (DSHB)		By Isabel Gerrero from DSHB under the auspices of the NICHD and maintained by The University of Iowa, Department of Biological Sciences, Iowa City, IA 52242.
DAPI, 1 mg/mL (working dilution 1/5000)	Invitrogen	62248
Phalloidin conjugated to Alexa 488, 300 U/1.5 mL methanol (1/600 working dilution)	Invitrogen	A12379
Canton S (fly stock)	Bloomington Drosophila Stock Center