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摘要

在这里, 我们提出了被动清晰度和3D 重建方法的适应性, 可视化卵巢血管和卵泡毛细血管在完整的小鼠卵巢。

摘要

卵巢是雌性生殖系统的主要器官, 对雌性配子的生产和内分泌系统的控制至关重要, 但复杂的结构关系和三维 (3D) 的血管结构卵巢不是很好描述。为了形象化3D 连接和结构的血管在完整的卵巢, 第一个重要的步骤是使卵巢光学清晰。为了避免组织萎缩, 我们使用了水凝胶固定的被动清晰度 (透明脂质交换丙烯酰胺-杂交刚性成像/免疫/原位杂交-相容组织水凝胶) 的协议方法清除完整的卵巢.免疫, 先进的多共聚焦显微镜, 和3D 图像重建, 然后用于可视化卵巢血管和卵泡毛细血管。采用这种方法, 我们发现卵泡毛细血管长度与卵泡壁容积之间存在显著的正相关 (P < 0.01)。

引言

卵泡是卵巢的基本结构和功能单位, 其发育与卵巢内的血管高度相关。血管为卵泡提供营养和荷尔蒙, 从而在卵泡的生长和成熟中发挥重要作用1。

包括选择性血管标记、转基因小鼠模型和药物开发在内的各种技术的结合, 增加了我们对卵巢血管网络、血管生成和血管功能的认识。卵泡.卵巢被称为活动器官, 因为它在卵泡和排卵期间改造各种组织和血管网络。在血管的大小和结构的这种积极重塑是需要的生物功能的发展和招募卵泡。

传统的组织学和计量方法使用的卵巢切片和 immunolabeling 的血管是有限的二维 (2D) 图像2。随着三维 (3D) 重建技术的发展, 2D 图像的组织切片可以重叠, 使一个3D 的结构, 但这种方法仍然有一些局限性-切片的组织可以破坏的显微构造, 部分组织往往是缺掉的, 重要的劳动参与了从切片获得的图像进行3D 重建。全组织3D 成像与共聚焦显微镜可以克服许多这些限制, 但这些方法仅限于对胚胎卵巢血管生成的评价3。使用完整的组织清除方法, 如清晰的4可以增加可视化体积, 以解决产后和成人卵巢中的这些问题, 这些方法提供无任何结构变形的卵巢的光清除。对完整子房的3D 结构进行成像, 为图像分析软件提供了一个精确的图像数据库, 如本工作中使用的 Imaris 软件包。

整个成年期的卵巢重塑是一个动态生理系统的一部分, 这使得卵巢成为一个很好的模型来研究血管生成的调节。此外, 评估卵巢血管在女性生殖系统的病理条件, 如多囊卵巢综合征或卵巢癌的作用, 可以通过整个卵巢组织成像进行研究。被动清晰度法的发展和先进的图像分析软件的使用, 提供了详细的空间信息的关系之间的血管和卵巢结构, 如卵泡。

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研究方案

所有涉及动物的程序均遵循复旦大学上海医学院动物伦理委员会的指导方针 (批准编号 20160225-013)。

1. 透明小鼠卵巢的制备

  1. 解决方案的准备
    1. 准备磷酸盐缓冲盐水 (PBS) 溶液 (1 米, pH 7.6) 与0.1% 海卫 X-100 (PBST)。制作 1 L 10x PBS 库存溶液, 混合87克氯化钠, 3.1 克 NaH2PO4 ·2H2O, 28.7 克 Na2HPO4 · 12H2o 添加 dH2至 1 L, 并搅拌〜 2 h. 调整到 pH 7.4 与 1 N 氢氧化钠和室温贮存。使用 dH2O 将此10x 库存解决方案稀释 1/10, 然后在 PBS 中制作0.1% 海卫 X-100。
    2. 制备水凝胶溶液 (pH 值 7.5), 由 mixings 4% (重量/卷) 甲醛 (粉煤灰) 溶液, 4% (重/卷) 丙烯酰胺, 0.05% (重量/卷) bisacrylamide, 和 0.25% (重量/卷) VA-044 启动器在双蒸馏水冰。
    3. 在双蒸馏水中, 将含有 4% (重/卷) 十二烷基硫酸钠 (SDS) 的 200 mM 硼酸钠缓冲液混合, 准备清除溶液 (pH 值 8.5)。
  2. Transcardial 灌注和卵巢准备
    1. 在所有的过程中保持所有的解决方案。
    2. 麻醉成年雌性野生型 C57BL/6 小鼠腹腔注射戊巴比妥 (0.35 毫克/千克) 溶液。一旦它显示没有脚趾夹紧的反应, 老鼠是正确地被麻醉的。
    3. 用粘胶带固定在扁平泡沫板上的四肢伸展的老鼠。
    4. 通过胸、皮、骨和剪刀在剑过程中切开心脏。
    5. 在动物的右心房做一个切口, 然后用20毫升的冰冷 1x PBS 在10毫升/分钟灌注左心室。
    6. 灌注至少20毫升的水凝胶溶液在10毫升/分钟的动物。
    7. 用剪刀切开 medioventral 线上的腹部皮肤, 露出整个腹腔, 并切除肠道。收集卵巢和子宫, 以保持完整的卵泡形态学。
    8. 在显微镜下去除卵巢周围的脂肪组织。
  3. 气
    1. 将卵巢放在10毫升水凝胶溶液中, 在4° c 内固定3天。
    2. 将卵巢移植到5毫升的管子中, 用水凝胶溶液填充管。伸展膜在顶部的管, 然后包裹膜周围的颈部的管。
      注意: 确保膜和水凝胶溶液之间没有气泡。
    3. 在37° c 的恒温箱中放置一根管子, 最多3小时, 使水凝胶聚合。
    4. 用刮刀将卵巢从凝胶中取出, 用纸巾小心地从卵巢周围移除多余的凝胶。用 1x PBS 冲洗卵巢四次。
  4. 被动结算
    1. 将卵巢浸入10毫升的清除溶液中。轻轻摇动在 80 rpm 在37° c 开始清算过程。
    2. 在第一周, 每3天更改一次解决方案。一周后, 每周刷新一次清除解决方案, 直到卵巢变得清晰。通常这个过程大约需要2-3 星期。
      注: 卵巢可直接 immunostained 或可在4° c 的 PBS 中以叠氮化钠 (0.02%) 的形式储存, 免疫前数周。

2. 免疫

  1. 洗卵巢两次在 PBST 在1天在37° c 在一个振动筛。
  2. 孵育在主抗体/PBST 溶液 (表 1) 的一个振动筛上的卵巢在天2-3 在37° c。在这里的工作中, 主要的抗体是血小板-内皮细胞黏附分子 1 (CD31) 和酪氨酸羟化酶稀释1:10 和1:50 分别在 PBST。
    注意: 如果使用两种或多种初级抗体, 请确保有不同的动物来源。
  3. 洗掉的主要抗体与 PBST 缓冲在37° c 天4在一个振动筛。
  4. 孵育卵巢与所需的第二抗体在 PBST 在5-6 天在37° c 在一个振动筛。在这里介绍的工作中, 次要抗体是 alexa 面粉488为酪氨酸羟化酶和 alexa 面粉594为 CD31 稀释在1:50 在 PBST。
  5. 在37° c 的7天, 在一个振动筛上, 用 PBST 缓冲液冲洗第二抗体。
  6. 8天将组织转化为折射率均匀化的折射率匹配解。通过检查网格线是否可见, 将组织放在带有网格线的纸上以检查其视觉清晰度。一旦组织得到充分的澄清, 它可以成像。
  7. 做一个腻子缸, 可以只是周围的组织, 然后塑造成马蹄形的形状, 并按外脊紧紧地在一个玻璃幻灯片, 以使一个密封的空间。腻子的高度应该比卵巢稍高一些。
  8. 将被澄清的卵巢小心地放入腻子的中心, 并加入折射率匹配溶液。把一个玻璃底的盘子放在腻子上, 用腻子来固定盘子。

3. 共焦显微镜

  1. 为成像与共聚焦显微镜, 在 "镍 E" 面板选择的镜头 (在这种情况下, 水浸泡25X 物镜, 1.1 NA, 2 毫米 WD) 与适当的工作距离 (在这种情况下 2.0 mm)。
  2. 在 "购置" 面板中, 选择频道数。这里, 使用三通道。
    1. 首先, 使用 "眼睛端口" 标签和 XY 控制器操纵杆通过显微镜目镜将组织移到场中心。
    2. 关闭快门灯后, 单击 "实时" 选项卡, 分别调整 "激光电源"、"高压 (增益)" 和 "偏移"。较高的激光功率和高压可导致较高的信号, 较高的偏移量可以降低背景噪声。
    3. 选择正确的 "扫描大小" 和 "计数"。使用 1024年 x 1024 µm2的扫描大小, 计数为4到8。
  3. 在设置图像质量后, 在面板 "Z 强度校正" 中定义组织的深度, 然后在子房的最顶层 (在组织的中心) 上定位镜片, 然后调整顶层的采集, 单击 "加号"按钮来定义顶层。
    1. 将镜片向下移动, 并为组织底部设置适当的高压和激光功率, 并将最低层信息添加到 Z 强度校正表中。单击 "到 nd" 以将设置与 "nd 购置" 面板同步。
  4. 在 "ND 获取" 面板中, 首先设置扫描步骤的数量。然后, 勾选标签 "Z" 和 "大图像"。
    1. 转到 "扫描大图像" 窗口, 根据组织的边界, 通过目镜的组织可视化来定义字段的大小。返回 "ND 获取" 面板, 输入扫描区域 ("字段") 的大小, 并选择10% 和15% 之间的重叠。
    2. 单击 "运行 Z 校正", 而不是 "立即运行", 以自动设置每个图层的适当的高压、激光功率和偏移量, 并等待图像处理。

4. 3D 重建单个卵泡及其 Vasculatures

  1. 首先, 使用 ImageJ5打开原始 NIS 文件。单击 "图像" 按钮, 然后选择 "颜色" 和 "拆分通道"。然后, 单击 "文件", 并使用 "另存为" 中的 "图像序列" 选项将通道单独保存为 tiff 文件系列。
  2. 使用 Imaris 打开一个 tiff 文件系列。单击 "编辑" 按钮, 然后选择 "添加频道" 以添加其余的频道。可以在 "显示调整" 选项卡中更改通道的名称和颜色。在 "编辑" 下的下拉列表中, 可能需要在 "图像属性" 面板中更正组织的厚度。
  3. 对于最终图像的3D 裁剪和多余部件的去除, 单击 "编辑" 按钮, 然后选择 "裁剪 3D"。可以通过拖动边框来调整字段的大小。
  4. 在超越面板中用灯丝算法重构容器信号, 单击 "花丝" 按钮以创建新的灯丝, 然后单击 "下一步"。
    1. 为了确定最大和最薄的直径, 去 "切片" 面板, 找到追踪船。距离将自动显示在 "测量" 面板上, 选择两个点的最大宽度的船只。
    2. 返回 "超过" 面板并输入测量的宽度, 然后单击 "下一步"。
  5. 调整起始和种子点阈值。在 "相机" 面板中, 选择 "选择"。如果某些自动产生的球体需要被移除, 请按 shift 键并点击点。通过选择 "导航" 并移动鼠标, 可以旋转结构以确保保留了所有正确的点, 然后单击 "下一步"。
  6. 选择本地对比度的最高阈值, 然后单击 "下一步"。不要选择 "检测棘", 并继续完成血管缸的重建。可以通过单击 "颜色" 选项卡来编辑颜色。统计数据可以提取在 "统计" 面板的重建灯丝。多余的部件可以在 "编辑" 面板中删除。
    注: 其他算法可用于测量总卵泡或卵泡壁的体积。在这里所提出的工作中, 卵母细胞是由两种二次抗体的自发荧光标记的。由于数据量大, 工作站服务器被用于数据分析。

5. 统计分析

注: 图像分析数据为标准误差。

  1. 使用独立样本 t 检验对卵泡进行比较, 用皮尔逊相关试验比较滤泡壁与毛细管长度的相关系数。设置 P < 0.05 的值作为统计意义的极限。

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结果

我们将无源清晰方法应用于无源卵巢清除的快速简便方法, 同时保留了卵泡和血管结构, 并从标记的血管和卵泡中获得最高的荧光信号。卵泡血管的3D 结构是由免疫为 CD31, 一个标记为内皮细胞6。用灯丝算法追踪成年小鼠卵巢中的 CD31 染色, 并显示卵泡毛细血管与初级和次级卵泡之间的相互关系 (图 1)。

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讨论

在目前的研究中, 我们提出3D 成像来评估毛细血管与个体生长卵泡之间的关系。在我们以前使用相同的协议9的工作中, 我们研究了大血管、卵泡之间的相互作用以及完整的小鼠卵巢中卵泡的位置。被动清晰的方法使我们能够研究微 vasculatures、卵泡、黄和卵泡之间的相互关系以及在不同发育阶段重建卵巢结构。

为了获得完整的组织的3D 图像数据, 清除过程是第...

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披露声明

作者没有什么可透露的。

致谢

这项研究得到了中国博士后 (No. 2014T70392 至 YF)、中国国家自然科学基金 (No. 81673766 至 YF)、新教师启动基金、复旦大学 Zuoxue 基金会的赠款和发展上海市高峰学科综合医学项目 (20150407)。

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材料

NameCompanyCatalog NumberComments
AcrylamideVetecv900845http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/vetec/v900845
Alexa Flour 488 (Dilution 1:50) Life TechnologiesA11039https://www.thermofisher.com/antibody/product/Goat-anti-Chicken-IgY-H-L-Secondary-Antibody-Polyclonal/A-11039
Alexa Flour 594 (Dilution 1:50)Life TechnologiesA11012https://www.thermofisher.com/antibody/product/Goat-anti-Rabbit-IgG-H-L-Cross-Adsorbed-Secondary-Antibody-Polyclonal/A-11012
BisacrylamideAmresco172http://www.amresco-inc.com/BIS-ACRYLAMIDE-0172.cmsx
Black wall glass bottom dish (Willco-Dish)Ted Pella14032http://www.tedpella.com/section_html/706dish.htm#black_wall
Boric acidSinopharm Chemical Reagent10004818http://en.reagent.com.cn/enshowproduct.jsp?id=10004818
Disodium hydrogen phosphate dodecahydrate (Na2HPO4 12H2O)Sinopharm Chemical Reagent10020318http://en.reagent.com.cn/enshowproduct.jsp?id=10020318
FocusClearCelexplorerFC-102http://www.celexplorer.com/product_list.asp?MainType=107&BRDarea=1
ParafilmBemisPM996http://www.parafilm.com/products
ParaformaldehydeSinopharm Chemical Reagent80096618http://en.reagent.com.cn/enshowproduct.jsp?id=80096618
PECAM1/CD31, platelet-endothelial cell adhesion molecule 1 (Dilution 1:10)Abcamab28364http://www.abcam.com/cd31-antibody-ab28364.html
Photoinitiator VA044Wakova-044/225-02111http://www.wako-chem.co.jp/specialty/waterazo/VA-044.htm
Sodium azideSigmaS2002http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sial/s2002?lang=en&region=US
Sodium chloride (NaCl)Sinopharm Chemical Reagent10019318http://en.reagent.com.cn/enshowproduct.jsp?id=10019318
Sodium dihydrogen phosphate dihydrate (NaH2PO4 2H2O)Sinopharm Chemical Reagent20040718http://en.reagent.com.cn/enshowproduct.jsp?id=20040718
Sodium dodecyl sulfateSinopharm Chemical Reagent30166428http://en.reagent.com.cn/enshowproduct.jsp?id=30166428
Sodium hydroxide (NaOH)Sinopharm Chemical Reagent10019718http://en.reagent.com.cn/enshowproduct.jsp?id=10019718
Triton X-100Sinopharm Chemical Reagent30188928http://en.reagent.com.cn/enshowproduct.jsp?id=30188928
Tyrosine hydroxylase (TH, Dilution 1:50)Abcamab76442http://www.abcam.com/tyrosine-hydroxylase-phospho-s40-antibody-ab51206.html

参考文献

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