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Method Article
在这里,我们提出了一种使用裂解荧光素酶检测系统来抑制HBx-DDB1相互作用的抗乙型肝炎病毒药物的方法。该系统易于检测蛋白质-蛋白质相互作用,适用于识别此类相互作用的抑制剂。
迫切需要新的治疗乙型肝炎病毒(HBV)感染的治疗方法。虽然目前可用的核细胞(t)ide类比能有效抑制病毒复制,但它们对从病毒共价闭环DNA(cccDNA)转录的病毒蛋白的表达没有直接影响。由于高病毒抗原负荷可能在这个慢性和HBV相关的致癌作用,HBV治疗的目标是根除病毒蛋白。HBV调节蛋白X(HBx)与宿主DNA损伤结合蛋白1(DDB1)蛋白结合,降解染色体5/6(Smc5/6)的结构维持,导致从cccDNA激活病毒转录。在这里,使用裂化荧光素酶补充测定系统,我们提出了一个全面的化合物筛选系统,以识别HBx-DDB1相互作用的抑制剂。我们的协议能够轻松检测活细胞内的相互作用动力学。这项技术可能成为发现治疗HBV感染的新治疗剂的关键测定方法。
乙型肝炎病毒(HBV)感染是全世界一个重大的公共卫生问题,每年估计有2.4亿人长期感染乙肝病毒,9万人死于感染并发症,包括肝硬化和肝细胞癌(HCC)1。虽然目前抗HBV治疗剂,核细胞(t)类比,足以抑制病毒逆转录,但它们很少实现病毒蛋白的消除,这是长期的临床目标。它们对病毒蛋白消除的不良影响是因为他们对肝细胞核2中表皮病毒共价闭合环DNA(cccDNA)小染色体的病毒转录缺乏直接影响。
HBV转录由HBV调节X(HBx)蛋白3激活。最近的研究表明,HBx通过劫持DDB1-CUL4-ROC1 E3泛素结合酶复合物4,5,6,降解染色体5/6(Smc5/6)的结构维持,这是阻止HBV转录从cccDNA的宿主限制因子。因此,促进来自cccDNA的病毒转录的关键步骤被认为是HBx-DDB1相互作用。能够抑制HBx和DDB1之间结合的化合物可以阻断病毒转录,事实上,硝基氧烷通过实验室7开发的筛选系统被确定为HBx-DDB1相互作用的抑制剂。
在这里,我们介绍我们方便的筛选系统,用于识别HBx-DDB1相互作用的抑制剂,它利用裂性荧光素酶补充测定7,8。裂化荧光素酶亚单位与HBx和DDB1融合,HBx-DDB1相互作用使亚单位接近,形成产生明亮发光信号的功能酶。由于亚单位之间的相互作用是可逆的,该系统可以检测迅速分离的HBx-DDB1蛋白(图1)。利用该系统,可以很容易地筛选大型化合物库,从而发现能够有效抑制HBx-DDB1相互作用的新型化合物。
注:图1A显示了裂解荧光素酶测定的示意图表示,如图1B所示。图1B概述了测定过程。 相互作用动力学可以实时测量,无需细胞分变。
1. 细胞制备
2. 化合物筛选
使用该协议后的代表性结果如图2A,B所示。信背景比大于80,Z'因子9(高通量筛选的黄金标准质量指数)大于0.5,表明该检测系统对于高通量筛选是可以接受的。与对照组(仅限DMSO)相比,阈值设置为>40%抑制,我们确定硝基氧烷为候选药物7。使用这个系统,通过筛选其他更大的化合物库可以找到更好...
我们开发了一种方便的筛选方法,使用裂光酶测定法来发现HBx-DDB1结合抑制剂。相互作用动力学可以在活细胞中实时检测,而无需细胞变热。抑制HBx-DDB1相互作用导致Smc5/6的恢复,导致抑制病毒转录,蛋白质表达和cccDNA生产7。这种新的抗病毒作用机制可以克服目前HBV疗法的不足。
虽然有许多方法可用于研究活细胞中的蛋白质-蛋白质相互作用,但检查这些相?...
作者没有什么可透露的。
这项工作得到了教育部的助学金支持, 文化、体育、科学和技术,日本(#19H03430和#17K09405,#19J11829到K.S.),由创新领域科学研究资助(#18H05024到M.O.),由日本医学研究和发展厅肝炎研究计划,AMED(M.O.,#JP19fk021005),由创新开发和应用新药物乙型肝炎(#JP19fk0310102日本应用酶学基金会和小林癌症研究基金会(M.O.),GSK日本研究赠款2018年(K.S.),以及宫川纪念研究基金会(K.S.)的赠款。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Cell culture microplate, 96 well, PS, F-BOTTOM | Greiner-Bio-One GmbH | 655098 | |
DMEM | Sigma Aldrich | D6046 | |
DMSO | Tocris Bioscience | 3176 | |
Effectene transfection reagent | Qiagen | 301425 | Includes DNA-condensation buffer, enhancer solution and transfection reagent |
FBS | Nichirei | 175012 | |
GloMax 96 microplate luminometer | Promega | E6521 | |
HBx–LgBit expressing DNA plasmid | Our laboratory | Available upon request | |
HEK293T cells | American Type Culture Collection | CRL-11268 | |
NanoBiT PPI starter systems | Promega | N2015 | Includes Nano-Glo Live Cell Reagent |
Opti-MEM | Thermo Fisher Scientific | 11058021 | Described as "buffered cell culture medium" in the manuscript |
PBS | Takara | T900 | |
Penicillin-Streptomycin | Sigma Aldrich | P0781 | |
Screen-Well FDA-approved drug library V2 version 1.0 | Enzo Life Sciences | BML-2841 | Compounds used here were as follows: mequinol, mercaptopurine hydrate, mesna, mestranol, metaproterenol hemisulfate, metaraminol bitartrate, metaxalone, methacholine chloride, methazolamide, methenamine hippurate, methocarbamol, methotrexate, methoxsalen, methscopolamine bromide, methsuximide, methyclothiazide, methyl aminolevulinate·HCl, methylergonovine maleate, metolazone, metyrapone, mexiletine·HCl, micafungin, miconazole, midodrine·HCl, miglitol, milnacipran·HCl, mirtazapine, mitotane, moexipril·HCl, mometasone furoate, mupirocin, nadolol, nafcillin·Na, naftifine·HCl, naratriptan·HCl, natamycin, nebivolol·HCl, nelarabine, nepafenac, nevirapine, niacin, nicotine, nilotinib, nilutamide, nitazoxanide, nitisinone, nitrofurantoin, nizatidine, nortriptyline·HCl, olsalazine·Na, orlistat, oxaprozin, oxtriphylline, oxybutynin Chloride, oxytetracycline·HCl, paliperidone, palonosetron·HCl, paromomycin sulfate, pazopanib·HCl, pemetrexed disodium, pemirolast potassium, penicillamine, penicillin G potassium, pentamidine isethionate, pentostatin, perindopril erbumine, permethrin, perphenazine, phenelzine sulfate, phenylephrine, phytonadione, pimecrolimus, pitavastatin calcium, and podofilox |
SmBit–DDB1 expressing DNA plasmid | Our laboratory | Available upon request | |
Trypsin-EDTA | Sigma Aldrich | T4049 |
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