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摘要

ANS 与 Ca2+- ATPase 重组 N 域绑定。荧光光谱在激发时以 295 nm 的波长显示类似 FRET 的图案。NBS 调解的 Trp 化学修饰抑制了 N 域的荧光,这导致 Trp 残留物和 ANS 之间没有能量转移 (FRET)。

摘要

沙科/内质 Ca2+-ATPase (SERCA) 是一种 P 型 ATPase,在各种构象中结晶。尽管如此,仍可从孤立的重组域获取详细的功能信息。工程 (Trp552Leu 和 Tyr587Trp) 重组核苷酸绑定域 (N 域) 显示配体绑定后荧光淬火。一种外在的氟磷,即8-阿尼利诺-1-纳布他烯硫酸盐(ANS),通过静电和疏水性与阿格、赫斯、阿拉、卢和菲残留物的相互作用,与核苷酸结合。当兴奋的波长(+)为370纳米时,荧光强度的增加就证明了ANS的结合。然而,当兴奋在 \295 nm 时,荧光强度的增加似乎与 N 域内在荧光的淬火相伴而生。荧光光谱显示一个类似Föster共振能量转移(FRET)的模式,从而暗示了Trp-ANS FRET对的存在,这似乎由Tyr587Trp和ANS之间的短距离(+20+)支撑。本研究描述了由 N-溴素酰胺 (NBS)调解的 Trp-ANS FRET 对的 Trp 化学修饰(和荧光淬火)分析。在化学改性 N 域中,ANS 荧光在 295 nm 的兴奋时增加,类似于在 370 nm 时兴奋时增加。因此,NBS 调解的 Trp 残留物的化学修饰可用于探索 Trp 和 ANS 之间缺乏 FRET。在没有TRP荧光的情况下,不应观察ANS荧光的增加。NBS 对蛋白质中的 Trp 残留物进行化学修饰可能有助于检查接近绑定 ANS 的 Trp 残留物之间的 FRET。这种检测在使用其他氟化物时可能也很有用。

引言

Füster共振能量转移(FRET)已成为确定分子结构之间的距离后,结合或相互作用的蛋白质结构和功能研究1,2,3,4的标准技术。在P型ATPases中,FRET被用来研究SARCO内质视网膜Ca 2+-ATPase(SERCA)2、5、6、7、8的结构波动,例如,FRET7对整个蛋白质的结构波动进行了分析。

FRET捐赠者是多种多样的,从小荧光(外在)分子到荧光蛋白9,10。色氨酸(Trp)残留物(由于其荧光)有助于识别蛋白质氨基酸序列11,12....

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研究方案

1. 确定(在西里科)的ANS和SERCAN域互动

  1. 使用首选的蛋白质建模软件50进行分子建模,生成蛋白质(SERCA N-Domain)的三维(3D)结构。
  2. 使用首选分子结构软件51识别形成核苷酸结合位点的氨基酸残留物,确定Arg和Lys残留物的存在:这些是ANS结合和增加荧光强度(量子产量)所必需的。
  3. 执行分子对接(使用首选对接软件)52,53,54,以确定ATP,荧光素异氰酸酯(FITC)(与Lys515标记核苷酸结合站点)和ANS与氨基酸残留物在核苷酸结合场(图1)的相互作用。
  4. 使用首选软件中的测量工具计算 Trp 残留物和绑定 ANS 之间的分子距离 (+) 。
  5. 对ANS-N域复合物进行分子动力学模拟,以确定相互作用的稳定性52,54。然后,在确认复合物的稳定性时进行体外实验。
  6. ....

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结果

分子对接显示ANS通过静电和疏水相互作用与N域核苷酸结合部位的结合(图1)。Trp 残留物和 ANS(与核苷酸结合部位)之间的分子距离 (20+) 支持 FRET 的发生(图1)。设计(工程)重组N域通过亲和色谱仪(图2)获得高纯度,适合荧光实验。ANS-N 域复合物的荧光光谱在激发时显示类似 FRET 的图案,频率为 ±295 nm(?.......

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讨论

ANS-N 域复合物的荧光光谱在 295 nm 的兴奋时显示类似 FRET 的模式,而 Trp 残留物和 ANS 之间的分子距离 (20 +) 似乎支持 FRET 的发生(图1)。NBS 的 Trp 化学修饰导致荧光 N 域变小(图 3B,频谱 f):因此,能量转移是不可能的。ANS 荧光光谱与未修改的 N 域相似,当兴奋在 295 nm (图 3A 和 C)时。

因?.......

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披露声明

作者宣称他们没有相互竞争的经济利益。

致谢

这项工作部分由FAI-UASLP赠款编号C19-FAI-05-89.89和CONACYT赠款编号316463(阿波约斯前 拉:福塔莱西门托和曼特尼门托基础设施研究公司,乌索科门和卡帕西塔奇-恩特克尼卡2021年)。作者感谢朱利安·马塔-莫拉莱斯在视频版中的技术帮助。

....

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材料

NameCompanyCatalog NumberComments
AcrylamideBio-Rad1610107SDS-PAGE
Ammonium persulfateBio-Rad1610700SDS-PAGE
8-Anilino-1-naphthalenesulfonic acidSigma-AldrichA1028Fluorophore
Bis-acrylamideBio-Rad1610125SDS-PAGE
N-BromosuccinimideSigma-AldrichB81255Chemical modification
N,N-dimethylformamideJ.T. Baker9213-12Stock solution preparation
Fluorescein isothiocyanateSigma-AldrichF7250Chemical fluorescence label
Fluorescence cuvetteHellmaZ801291Fluorescence assay
Fluorescence SpectrofluorometerShimadzuRF 5301PCFluorescence assay
HisTrap™ FFGE Healtcare11-0004-59Protein purification
IPTG, Dioxane freeAmerican BionalyticalAB00841-00010Protein expression
ImidazoleSigma-AldrichI5513-25GProtein purification
LB mediaFisher Scientific10000713Cell culture
Pipetman L P10LGilsonFA10002MFluorescence assay
Pipetman L P100LGilsonFA10004MFluorescence assay
Pipetman L P200LGilsonFA10005MFluorescence assay
Pipetman L P1000LGilsonFA10006MFluorescence assay
Pipetman L P5000LGilsonFA10007Fluorescence assay
Precision plus stdBio-Rad1610374SDS-PAGE
Sodium dodecyl sulphateBio-Rad1610302SDS-PAGE
Sodium phosphate dibasicJ.T. Baker3828-19Buffer preparation
Sodium phosphate monobasicJ.T. Baker3818-01Buffer preparation
Syringe filter 0.2 umMilliporeGVWP04700Solution filtration
TemedBio-Rad1610801SDS-PAGE
TrisBio-Rad1610719SDS-PAGE

参考文献

  1. Munishkina, L. A., Fink, A. L. Fluorescence as a method to reveal structures and membrane-interactions of amyloidogenic proteins. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranes. 1768 (8), 1862-1885 (2007).
  2. Dong, X., Thomas, D. D.

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