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本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

光遗传学是一种功能强大的工具,具有广泛的应用。该协议演示了如何使用蓝光响应 TAEL/C120 系统在斑马鱼胚胎中实现光诱导基因表达。

摘要

诱导基因表达系统是研究生物过程的宝贵工具。光遗传表达系统可以利用光作为诱导剂,精确控制基因表达的时间、位置和振幅。在这个协议中,光遗传表达系统用于在斑马鱼胚胎中实现光诱导基因表达。该系统依赖于一个工程转录因子称为TAEL基于自然发生的光激活转录因子从细菌 E.利托拉利斯。当蓝光照射时,TAEL 变暗,与称为 C120 的认知调节元素结合,并激活转录。该协议使用转基因斑马鱼胚胎,表达TAEL转录因子在无处不在的 无所 不在的促进者控制下。同时,C120 调控元素驱动荧光记者基因 (GFP) 的表达。使用简单的 LED 面板提供激活蓝光,GFP 表达感应可在 30 分钟的照明后首先检测到,并在 3 小时光处理后达到 130 倍以上感应的峰值。表达感应可以通过定量实时PCR(qRT-PCR)和荧光显微镜进行评估。这种方法是一种多功能且易于使用的光遗传基因表达方法。

引言

诱导基因表达系统有助于控制基因表达的数量、时间和位置。然而,在多细胞生物体中实现精确的空间和时间控制是具有挑战性的。时间控制最常通过添加小分子化合物1 或激活热冲击促进剂2来实现。尽管如此,这两种方法都容易受到时间、上岗强度和偏离目标压力反应等问题的影响。空间控制主要通过使用组织特异性促进剂3来实现,但这种方法需要一个合适的促进者或调节元素,这些元素并不总是可用的,也不利于亚组织水平的诱导。

与这种传统方法相比,光激活光遗传学转录活化器具有更精细的基因表达空间和时间控制的潜力。蓝光响应TAEL/C120系统被开发和优化,用于斑马鱼胚胎5,6。该系统基于来自E.利托拉利斯7,8细菌的内源光活化转录因子。TAEL/C120 系统由称为 TAEL 的转录激活器组成,该激活器包含 Kal-TA4 转激活域、蓝光响应 LOV(光氧电压感应)域和六角形转氦 (HTH) DNA 绑定域5。照明后,LOV域经历了构象变化,允许两个TAEL分子变暗,与TAEL响应C120促进器结合,并启动下游感兴趣的基因5,8的转录。TAEL/C120 系统具有快速和坚固的感应,毒性最小,并且可以通过多种不同的送光方式激活。最近,通过向 TAEL (TAEL-N) 添加核定位信号,并将 C120 监管元素与 cFos 玄武岩促进器 (C120F) (图 1A)耦合,对 TAEL/C120 系统进行了改进。这些修改使感应水平提高了15倍以上6倍。

在此协议中,一个简单的 LED 面板用于激活 TAEL/C120 系统并诱导记者基因 GFP 的无处不在的表达。可以通过观察荧光强度或使用定量实时 PCR (qRT-PCR) 测量成绩单水平来定性地监测表达感应。该协议将证明TAEL/C120系统是一个多功能,易于使用的工具,使强大的调节基因表达 在体内

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研究方案

这项研究是经加州大学默塞德分校机构动物护理和使用委员会(IACUC)批准进行的。

1. 斑马鱼穿越和胚胎采集

  1. 保持单独的转基因斑马鱼线,其中包含TAEL转录激活剂或C120控制的记者基因,以尽量减少虚假激活。
  2. 使用标准方法9从每条线上穿过6-8只成年斑马鱼,产生含有TAEL和C120成分的双转基因胚胎(图1B)。
    注:或者,这两个组件可以通过使用标准方法10对mRNA或质粒DNA进行微注射来暂时表达。
  3. 在含有蛋水的培养皿中收集胚胎(60微克/mL 即时海洋盐溶解在蒸馏水中),每个条件约有30个胚胎需要测试。
  4. 将盘子放在防光箱中或用铝箔盖住,以尽量减少环境光线的意外激活(见表1)。

2. 全球光感应

  1. 使用蓝光(465 nm)LED面板同时为多个胚胎提供激活蓝光。
  2. 将 LED 面板相对于含有胚胎的培养皿放置,以便通过光功率和能量计(图 2A)测量,胚胎接收到的实际光功率约为1.5 mW/cm 2。
  3. 如果照明超过 3 小时,则使用时器继电器以 1 小时/1 小时的间隔脉冲光线,以降低对 TAEL 转录激活器5、8进行光伤害的风险。
    注:可能需要针对特定应用优化照明的确切持续时间。在此协议中,提供了 30 分钟、1 小时、3 小时和 6 小时照明持续时间示例。
  4. 取出培养皿盖,以尽量减少凝结产生的光散射。
  5. 将含有控制胚胎的培养皿放在防光箱中,或用铝箔盖住,以进行深色控制。

3. qRT-PCR 对上岗的定量评估

  1. 在所需的激活持续时间后,从照明中取出胚胎。
  2. 根据试剂盒的说明,使用RNA隔离套件从30-50个光激活和30-50个深色胚胎中提取总RNA。
    1. 将胚胎移植到1.5mL微中心管中,并去除多余的卵水。添加裂解缓冲器,用塑料害虫使胚胎均质化。
    2. 将解酯转移到工具包提供的列中,并继续使用套件的说明。立即开始第 3.3 步,或将纯化RNA存储在 -20 °C 至 -80 °C。
  3. 使用 1 μg 总 RNA 进行 cDNA 合成,使用 cDNA 合成套件,按照套件的说明进行合成。
    1. 使用薄壁 0.2 mL PCR 管,将 1 μg 的 RNA 添加到 4 μL 的 5 倍 cDNA 反应主组合(包含优化缓冲、寡头 dT 和随机引物以及 dNTP)、1 μL 的 20 倍反向转录酶溶液和无核酸酶水,总体积为 20 μL。
    2. 将管子放在热循环器中,编程如下:22 °C 10 分钟,42 °C 30 分钟,85 °C 5 分钟,然后保持在 4 °C。 立即开始步骤 3.4 或在 -20 °C 下存储 cDNA。
  4. 准备含有 SYBR 绿色酶主混合物、5 倍稀释 cDNA(步骤 3.3)和 325 nM 的 QPCR 反应,用于 GFP。
    注:本协议中使用的引点如下。GFP 转发: 5'-阿加卡CC-3':GFP 反向: 5 '- Gtccccc 加特加特加特克 - 3':ef1a 前锋 5 '- 卡卡加卡卡塔格 - 3';ef1a 反向: 5 '- 卡加加加塔克塔克塔克塔格特 - 3') 。
  5. 在实时 PCR 机器中执行 qPCR 反应。
    注:PCR 程序:初始激活速度为 95 °C,为 10 分钟,然后是 40 周期 30 秒,95 °C,30 秒 60 °C,1 分钟 72 °C。
  6. 完成 PCR 后执行熔化曲线分析,以确定反应特异性。为每个示例执行三个技术复制。
  7. 使用2+Ct 方法11计算光激活感应,作为相对于在黑暗中保存的胚胎的折叠变化。统计意义可以通过统计软件包确定。

4. 荧光显微镜诱导定性评估

  1. 在所需的激活持续时间后,从照明中取出胚胎。
  2. 固定胚胎,使其在玻璃抑郁症幻灯片中含有0.01%三甲基纤维素的3%中成像。
  3. 使用标准 GFP 滤镜设置,在连接到数码相机的荧光立体显微镜上获取荧光和亮场图像。对所有样品使用相同的图像采集设置。
  4. 收购后,将亮场和荧光图像与图像处理软件合并。

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结果

对于这次演示,一条C120响应的GFP记者线(Tg(C120F:GFP)ucm107)与一条转基因线交叉,该线表示TAEL-N无处不在,来自无处不在的b(ubb:TAEL-N)促进器(Tg(ubb:TAEL-N)ucm113),以产生含有这两种元素的双转基因胚胎。24小时受精后,胚胎暴露在激活蓝光下,脉冲频率为1h/1h关闭。激活后 30 分钟、1 小时、3 小时和 6 小时(图 2B表 1...

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讨论

本协议描述了使用光遗传学 TAEL/C120 系统实现蓝光诱导基因表达。该系统由转录激活器 TAEL 组成,该激活器在蓝光照射下变暗,并激活 C120 调控元素下游感兴趣的基因的转录。在光照曝光后,可以检测到 GFP 记者的诱导表达,这表明此方法具有相对快速和响应灵敏的动能。

有几个因素会影响上岗水平。最关键的是激活光的波长和功率。在此协议中,使用了 465 nm LED 灯,其速度?...

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披露声明

没有宣布任何利益冲突。

致谢

我们感谢斯特凡·马特纳和伍和马特纳实验室的成员对本协议的有益建议和评论。我们感谢安娜·里德、凯文·加德纳和劳拉·莫塔-梅纳在制定本协议时所做的宝贵讨论和见解。这项工作得到了国家卫生研究院(国家卫生研究院)的赠款的支持。R03 DK106358)和加州大学癌症研究协调委员会(CRN-20-636896)到S.W.

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材料

NameCompanyCatalog NumberComments
BioRender web-based science illustration toolBioRenderhttps://biorender.com/
Color CCD digital cameraLumenara755-107
Compact Power and Energy Meter Console, Digital 4" LCDThorlabsPM100D
Excitation filter, 545 nmOlympusET545/25x
illustra RNAspin Mini kitGE Healthcare95017-491
Instant Ocean Sea SaltInstant OceanSS15-10
MARS AQUA Dimmable 165 W LED Aquarium light (blue and white)AmazonB017GWDF7E
MethylcelluloseSigma-AldrichM7140
NEARPOW Programmable digital timer switchAmazonB01G6O28NA
PerfeCTa SYBR green fast mixQuantabio101414-286
Photoshop image procesing softwareAdobe
Prism graphing and statistics softwareGraphPad
qScript XLT cDNA SuperMixQuantabio10142-786
QuantStudio 3 Real-Time PCR SystemApplied BiosystemsA28137
StereomicroscopeOlympusSZX16
Tricaine (Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate)Sigma-AldrichE10521
X-Cite 120 Fluorescence LED light sourceExcelitas010-00326RDiscontinued. It has been replaced with the X-Cite mini+

参考文献

  1. Knopf, F., et al. Dually inducible TetON systems for tissue-specific conditional gene expression in zebrafish. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (46), 19933-19938 (2010).
  2. Halloran, M. C., et al. Laser-induced gene expression in specific cells of transgenic zebrafish. Development. 127 (9), Cambridge, England. 1953-1960 (2000).
  3. Hesselson, D., Anderson, R. M., Beinat, M., Stainier, D. Y. R. Distinct populations of quiescent and proliferative pancreatic beta-cells identified by HOTcre mediated labeling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (35), 14896-14901 (2009).
  4. Tischer, D., Weiner, O. D. Illuminating cell signalling with optogenetic tools. Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 15 (8), 551-558 (2014).
  5. Reade, A., et al. TAEL: a zebrafish-optimized optogenetic gene expression system with fine spatial and temporal control. Development. 144 (2), Cambridge, England. 345-355 (2017).
  6. LaBelle, J., et al. TAEL 2.0: An improved optogenetic expression system for zebrafish. Zebrafish. 18 (1), 20-28 (2021).
  7. Rivera-Cancel, G., Motta-Mena, L. B., Gardner, K. H. Identification of natural and artificial DNA substrates for light-activated LOV-HTH transcription factor EL222. Biochemistry. 51 (50), 10024-10034 (2012).
  8. Motta-Mena, L. B., et al. An optogenetic gene expression system with rapid activation and deactivation kinetics. Nature Chemical Biology. 10 (3), 196-202 (2014).
  9. Avdesh, A., et al. Regular care and maintenance of a zebrafish (Danio rerio) laboratory: an introduction. Journal of visualized experiments: JoVE. (69), e4196(2012).
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  11. Livak, K. J., Schmittgen, T. D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method. Methods. 25 (4), San Diego, Calif. 402-408 (2001).
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  13. Mruk, K., Ciepla, P., Piza, P. A., Alnaqib, M. A., Chen, J. K. Targeted cell ablation in zebrafish using optogenetic transcriptional control. Development. 147 (12), Cambridge, England. (2020).
  14. Liu, H., Gomez, G., Lin, S., Lin, S., Lin, C. Optogenetic control of transcription in zebrafish. PloS One. 7 (11), 50738(2012).
  15. Shimizu-Sato, S., Huq, E., Tepperman, J. M., Quail, P. H. A light-switchable gene promoter system. Nature Biotechnology. 20 (10), 1041-1044 (2002).
  16. Krueger, D., et al. Principles and applications of optogenetics in developmental biology. Development. 146 (20), Cambridge, England. (2019).

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