白细胞介素10缺陷小鼠模型中粪便微生物群移植的治疗评估

摘要

遗传易感性、黏膜免疫和肠道微生态环境的相互作用与炎症性肠病（IBD）的发病机制有关。在这项研究中，我们将粪便微生物群移植应用于IL-10缺陷小鼠，并研究了其对结肠炎症和心脏功能的影响。

摘要

随着近年来微生态学的发展，肠道细菌与炎症性肠病（IBD）的关系引起了相当多的关注。越来越多的证据表明，生态失调微生物群在触发或恶化IBD炎症过程中起着积极作用，粪便微生物群移植（FMT）是一种有吸引力的治疗策略，因为将健康的微生物群转移到IBD患者可以恢复适当的宿主 - 微生物群通讯。然而，分子机制尚不清楚，FMT的疗效尚未得到很好的确定。因此，有必要对IBD动物模型进行进一步研究。在该方法中，我们将野生型C57BL / 6J小鼠的FMT应用于IL-10缺陷小鼠，这是一种广泛使用的结肠炎小鼠模型。该研究详细说明了从供体小鼠收集粪便颗粒，制作粪便溶液/悬浮液，施用粪便溶液以及监测疾病。我们发现FMT显着减轻了IL-10敲除小鼠的心脏损伤，强调了其在IBD管理中的治疗潜力。

引言

人体肠道微生态系统极其复杂，一个健康人的肠道中有超过1000种细菌¹。肠道菌群参与维持肠道的正常生理功能和免疫反应，与人体有着密不可分的关系。越来越多的证据表明，肠道微生物组构成了人体的最后一个器官，它是人体的一部分，而不仅仅是一组寄生虫²。肠道微生物群、其代谢物和生命早期建立的宿主免疫系统之间的"健康"共生关系对于维持肠道稳态至关重要。在一些异常情况下，如慢性炎症，身体内部和外部环境的变化严重破坏肠道稳态，导致肠道微生物群落持续失衡，称为生态失调³。事实上，暴露于多种环境因素，包括饮食、药物和病原体，会导致微生物群的变化。

生态失调与多种肠道疾病的发病机制有关，例如炎症性肠病 （IBD）、肠易激综合征 （IBS） 和伪膜性肠炎，以及越来越多的肠外疾病，包括心血管疾病、肥胖和过敏⁴。微生物群分析显示，IBD患者的细菌多样性急剧减少，并且某些特定细菌菌株的种群显着改变^5，6。这些研究表明，IBD患者中的乳腺螺旋体科和拟杆菌较少，但变形杆菌和放线菌更多。据信，IBD的发病机制与多种致病因素有关，包括肠道菌群异常、免疫反应失调、环境挑战和^{遗传变异7}。大量证据表明，肠道细菌在IBD⁸，⁹的起始和应用阶段发挥作用^，表明纠正肠道生态失调可能代表IBD治疗和/或维持治疗的新方法。

粪便菌群移植（FMT）的雏形始于中国古代¹⁰.1958年，艾斯曼博士和他的同事们通过灌肠成功用健康供体的粪便治疗了四例严重的伪膜性肠炎，开启了现代西医利用人类粪便治疗人类疾病的新篇章¹¹。 已发现艰难梭菌 感染 （CDI） 是伪膜性肠炎¹² 的主要原因，FMT 在治疗 CDI 方面非常有效。在过去的八年中，FMT已成为治疗复发性CDI¹³的标准疗法，促使进一步研究FMT在其他疾病（如IBD）中的作用。在过去的二十年中，许多病例报告和队列研究记录了FMT在IBD¹⁴患者中的使用。一项包括 12 项试验的荟萃分析显示，62% 的克罗恩病 （CD） 患者在 FMT 后达到临床缓解，69% 的克罗恩病患者出现临床缓解¹⁵。尽管有这些令人鼓舞的发现，但FMT在IBD管理中的作用仍然不确定，FMT改善肠道炎症的机制知之甚少。在FMT加入目前临床IBD治疗方案的武器库之前，需要进一步调查。

在该协议中，我们将FMT应用于IL-10-/-小鼠，IL-10-^/-小鼠在断奶后自发发生结肠炎，并作为反映IBD¹⁶，^17，18多因素性质的金标准。IL-10^−/−小鼠已被广泛用于解剖IBD病因，因为它们表现出与IBD患者相似的分子和组织学特征，并且与患者一样，该疾病可以通过抗TNFα疗法得到改善¹⁶。与年龄匹配的野生型小鼠¹⁹相比，衰老的IL10^{− / -} 小鼠（>9个月大）的心脏大小增加，心脏功能受损，使其成为研究结肠炎引起的心脏病的极好模型。然而，也可以使用其他小鼠结肠炎模型，例如右旋糖酐硫酸钠模型和T细胞诱导的结肠炎模型。我们通过口服强饲法施用粪便悬浮液，事实证明，在人类中，粪便悬浮液比灌肠更有效且更好的途径²⁰。

研究方案

对动物进行的所有程序均已获得加尔维斯顿德克萨斯大学医学分院机构动物护理和使用委员会的批准（协议#1512071A）。

1. 收集新鲜粪便颗粒

1. 准备无菌纸巾、钝端镊子和 50 mL 锥形管。
   1. 将一些纸巾和镊子放在单独的高压灭菌袋中，并在180°C下干热高压灭菌30分钟。也使用无菌锥形管。称量锥形管并在管子上写下它们的重量。
2. 打开动物房的生物安全柜。
3. 取一个没有任何垫料的高压灭菌清洁小鼠笼，并将其放入生物安全柜中。取下盖子和食品架，然后将它们放在柜子内。
4. 将一些无菌纸巾放在笼子的底部，然后将金属架放回笼子的顶部。
5. 确定年龄匹配的粪便供体，并将小鼠笼放入生物安全柜中。打开笼子，轻轻抓住供体鼠标（C57BL / 6J）的尾巴，并将其放在干净笼子顶部的金属架上。
6. 将笼盖放在架子的顶部，等待动物排便。
   注意:将几只猫砂矿同时放在机架上。
7. 收集粪便颗粒并将其放入无菌 50 mL 锥形管中。按性别汇集颗粒。不要混合从男性和女性收集的粪便颗粒。
8. 再次称量管子并计算粪便颗粒的重量。

2.粪便悬浮液的制备

1. 准备无菌溶液（10%甘油在生理盐水中）。
2. 每克粪便颗粒向锥形管中加入 10 mL 10% 甘油/生理盐水。
   注意:如有必要，将溶液体积增加到 20 mL。这项研究也为每个沉淀（5-10 mg）使用了 1 mL 溶液。
3. 使用通风橱内的台式均质机或搅拌机以低速均质混合物以重悬粪便（3 X 30 s）。
4. 通过 2 层无菌棉纱布 （10.2 cm x 10.2 cm） 过滤粪便悬浮液。将滤液暂时存放在冰箱中长达6小时或将其包装到无菌低温小瓶中并将其储存在-80°C冰箱中。
5. 按照标准程序彻底清洁均质机或搅拌机。

3.口服强饲法给予粪便悬浮液

1. 如果使用冷冻样品，请在冰上解冻冷冻粪便悬浮液。通过涡旋混合解冻的粪便悬浮液。
2. 将新鲜或解冻的粪便悬浮液转移到 1 mL 注射器中。
   注意:每只小鼠将总共接受200μL粪便悬浮液，对照组中的每只IL-10-/^- 小鼠将获得200μL的10%甘油/生理盐水¹⁷。
3. 称量小鼠并选择正确的管饲针尺寸和最大剂量体积。
   注意:对于体重在20-25克之间的小鼠，使用带有2.25毫米球的20克3.81厘米弯曲管饲针。请查看 gavageneedle.com 以获取更多信息。
4. 通过测量从小鼠鼻尖到剑突（胸骨底部）的长度来测试管饲针。用10%甘油/盐水或粪便悬浮液填充注射器，并去除注射器和针头内的气泡。
   注意:如果针头长于长度，请在鼻子水平的针轴/管上做标记。不要将针头/管子穿过动物超过该点，以防止胃穿孔。
5. 将一个小鼠笼放在生物安全柜中，取下塑料笼盖，并将金属架留在原位。
6. 抓住一只鼠标的尾巴，把它放在金属架上。用一只手抓住老鼠的尾巴，用另一只手的拇指和中指抓住肩膀上的皮肤来约束动物。这样，前腿向侧面伸展，这将防止前脚将针推出。轻轻地将动物的头部向后伸出，并用一只手将头部固定到位。
   注意:练习鼠标操作，直到实验者完全有信心，然后再进行实验。
7. 将管饲针放在口腔内的舌头顶部。沿着上腭轻轻前进，直到针到达食道。通过一个动作平稳地通过针头。如果感觉到任何阻力，请勿用力针头。取出针头，再试一次。
8. 正确放置并验证针头后，通过推动连接到针头上的注射器来缓慢施用材料。不要旋转针头或向前推动针头，这可能会使食道破裂。给药后，轻轻拉出针头。
9. 将鼠标放回其主笼。通过寻找呼吸困难或痛苦的迹象来监测动物 5-10 分钟。FMT后12-24小时再次监测小鼠。

4. 疾病监测和安乐死

1. 通过潜血和/或结肠镜检查纵向监测小鼠的IBD发作²¹。通过经胸超声心动图评估心脏功能^22，23.
2. 通过在用异氟醚（1%-4%）的深层麻醉下斩首对动物实施安乐死。
3. 用抗凝剂在微量离心管中收集血液，并在冷冻离心机（4°C）中以1000-2000× g 离心10分钟。将指定血浆上清液保存在-80°C冰箱中。
4. 安乐死后，使用瑞士卷技术²⁴ 制备小鼠结肠以进行组织病理学分析（H&E染色）²⁵。
5. 使用酶免疫测定 （EIA） 试剂盒测量血浆中的 B 型利钠肽 （BNP）²³。

结果

我们对2个月大的C57BL / 6J野生型（WT）和IL-10敲除小鼠进行了3次健康供体FMT（每月一次，持续3个月）。年龄匹配的C57BL / 6J小鼠（年龄差异应为<2个月）作为粪便供体，每次使用新鲜粪便颗粒。EIA测定显示，IL-10缺乏小鼠血浆中的BNP显着升高，健康供体FMT显着减轻了BNP水平的增加（图1A，n = 5， p <0.05）。与WT小鼠相比，超声心动图检测到IL-10-^/- 小鼠的左心室射血?...

讨论

FMT作为一种创新的研究性治疗方法，近年来已成为各种疾病治疗的热门话题，因为共生微生物群的生态失调与多种人类疾病的发病机制有关，包括IBD，肥胖，糖尿病，自闭症，心脏病和癌症²⁶。虽然机制尚未确定，但据信FMT通过建立新的生物菌群并防止残留细菌的损失而起作用。本文提出的方法采用口服强饲法作为给药途径，其已被证明有效²⁷.我们之所以选择?...

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
BD Syringe, 1 mL	Fisher Scientific	14-829-10F
Blunt end forceps	Knipex	926443
Brain natriuretic peptide EIA kit	Sigma	RAB0386
C57BL/6J mice	Jackson Lab	000664
Centrifuge	Eppendorf	5415R
Conical tubes	ThermoFisher	339650
Curved feeding Needles	Kent Scientific	FNC-20-1.5-2
GLH-115 homogenizer	Omni International	GLH-115
Glycerol	MilliporeSigma	G5516
IL-10 knockout mice	Jackson Lab	004366
Isoflurane	Piramal Critical care	NDC66794-017-10
USP normal saline	Grainger	6280
Vaporizer	Euthanex Corp.	EZ-108SA