用于急性肾损伤研究的双侧肾缺血再灌注小鼠模型的技术改进

摘要

本研究建立了一个方案，重点是对用于急性肾损伤研究的双侧肾缺血再灌注小鼠模型进行技术改进。

摘要

心脏骤停会给公共卫生带来沉重的负担。急性肾损伤 （AKI） 是心肺复苏成功后自主循环 （ROSC） 恢复后心脏骤停幸存者的不良标志物。相反，AKI 肾功能恢复是有利神经系统结局和出院的预测指标。然而，缺乏有效的干预措施来预防ROSC后心脏骤停引起的肾脏损伤，这表明需要额外的治疗策略。肾灌注不足和再灌注是心脏骤停后引起AKI的两种病理生理机制。在临床环境中，双肾缺血再灌注诱导的 AKI （IR-AKI） 动物模型与 ROSC 后 AKI 患者相当。然而，双侧肾脏的IR-AKI在技术上难以分析，因为该模型与高死亡率和肾脏损伤的广泛差异相关，这可能会影响分析。选择轻量级小鼠，置于异氟醚全身麻醉下，采用背外侧入路进行手术，并在手术过程中保持体温，从而减少组织损伤并建立可重复的急性肾IR-AKI研究方案。

引言

在美国，心脏骤停每年发生超过 80,000 次 ^1,2。心脏骤停的死亡率极高 3,4,5,6。AKI 是 ROSC⁷、^8、9、^10、11、^12、13 后心脏骤停患者高死亡率和不良神经系统结局的主要危险因素。AKI的恢复是有利的神经系统结局和出院的良好预测指标^14,15,16。然而，IR-AKI的有效疗法仍然缺乏15,16,17,18,19。需要额外的治疗策略来进一步改善该疾病的临床结果。

IR-AKI与双侧肾缺血入路是用于AKI研究的动物模型之一20,21,22,23,24,25,26。肾脏 IR-AKI 动物模型在研究 ROSC⁶、27^、28、^29、30 后心脏骤停患者的 AKI 方面不如全身 IR 损伤模型复杂。这意味着肾脏IR-AKI动物模型的一致结果更容易实现，因为实验中存在的混杂因素较少。此外，肾脏 IR-AKI 方案通常涉及单侧或双侧肾蒂闭塞。双侧肾IR-AKI实验条件与成功心肺复苏后心脏骤停患者ROSC后AKI的临床条件相当。尽管两种模型中肾脏的病理特征都反映了人类肾IR损伤的病理特征31,32,33，但在人类病理条件下，如心力衰竭、血管收缩和感染性休克^35，双侧肾缺血方法与AKI更相关。双侧肾脏 IR-AKI 动物模型适用于专注于 ROSC 后心脏骤停的肾 IR 损伤的研究。

双侧肾脏IR-AKI模型与技术难度、实验复杂性和手术时间长有关23,26,32,33,35,36。为了克服这些技术难题，本研究通过对小鼠进行一些技术修改，建立了可靠的双侧IR-AKI研究方案。所提出的方案减少了手术并发症，减少了组织损伤，并降低了手术期间的死亡可能性。因此，可用于研究ROSC后AKI的病理生理过程，以开发针对肾灌注不足和再灌注损伤的新治疗策略^37,38,39。

研究方案

所有动物实验均按照美国国立卫生研究院出版的 《实验动物护理和使用指南》（NIH 出版物编号 85-23,1996 年修订）进行。该研究方案已获得辅仁大学机构动物护理和使用委员会的批准并符合其指南。有关本协议中使用的所有材料和仪器的详细信息，请参阅 材料表 。

1. 准备小鼠

1. 选择体重为21-23g的8周龄C57BL / 6雄性小鼠。
2. 在受控温度（21±2°C）下在12小时光照和黑暗循环下饲养和维持小鼠，自由获取食物，标准小鼠食物颗粒和自来水。

2. 麻醉

1. 戴上外科口罩和无菌手套。
2. 将小鼠置于麻醉下，在诱导室中以1L / min的速度将2%异氟醚与氧气混合。
3. 通过踏板反射评估麻醉水平。
   注意:踏板反射是后爪因脚趾捏紧而缩回。当踏板反射消失时，麻醉完成。
4. 麻醉完成后，将每只小鼠移动并俯卧在带有电热毯的手术平台上，以保持体温。手术前稳定体温，并用直肠温度探头监测。将眼药膏涂抹在双眼上，以防止干燥。
5. 将小鼠的爪子粘在板上。
6. 将面罩贴在小鼠的脸上，以提供1%异氟烷和1L / min氧气的持续供应
7. 定期通过踏板反射评估麻醉水平，并在手术过程中相应地调整麻醉剂的输送。

3. 双侧肾IR-AKI手术

1. 触摸背部并手动找到小鼠的腰椎。沿着脊柱向头移动，寻找位于小鼠最后一根肋骨两侧下方的肋脊角。
2. 将脱毛化妆水涂抹在肋脊角区域的两侧约30秒，然后用生理盐水去除皮毛。
3. 用棉球用三轮倍他丁溶液和75%酒精对剃光的皮肤进行消毒。
   注意:在整个手术过程中保持手术的无菌区域是关键。使用手术单并使用无菌器械。
4. 使用细尖镊子轻轻提起左肋脊角以下的皮肤，然后用剪刀从左侧腰椎中线沿皮肤张力线做一个 1 厘米的斜背外侧切口。用剪刀横切左侧肌肉壁，以可视化左肾。
5. 重复上述外科手术以可视化右肾。用无菌棉签清除手术过程中产生的少量血液。
6. 用镊子小心地将左肾与周围组织推开并分离。识别左肾暴露后的肾蒂。
   注意:注意不要伤害肾上腺和周围的血管。
7. 用微血管夹夹住左肾蒂25分钟。通过肾脏颜色从粉红色到深红色的明显变化来确认缺血。
8. 用无菌盐水湿棉球覆盖钳夹的肾脏，以避免左肾椎弓根钳夹期间干燥。
9. 重复上述外科手术，用微血管夹夹住右肾蒂25分钟。
10. 用无菌盐水湿棉球覆盖钳夹的肾脏，以避免在右肾椎弓根钳夹期间干燥。
11. 定期监测无菌盐水湿棉球的麻醉深度和湿度。
12. 打开左微血管夹，开始左肾再灌注。通过左肾从深红色到粉红色的可见颜色变化来确认再灌注。
13. 打开右微血管夹，开始右肾再灌注。
14. 确认肾脏变色后，将肾脏放回腹腔。
15. 用 6-0 可吸收缝合材料封闭腹腔和皮肤。
16. 用甜菜碱溶液和75%酒精用棉球擦洗伤口。
17. 仔细观察动物，直到它开始自由移动和进食。
    注意:密切注意动物，直到它们恢复足够的意识以保持胸骨卧位。
18. 给予卡洛芬（5 mg/kg，0.2 mL，皮下注射）2-3天，以防止术后疼痛。

结果

在进一步的显微镜或分子分析之前，应评估双侧肾脏 IR-AKI 手术的质量。在手术过程中，应通过观察肾脏是否在用微血管夹夹住肾蒂后不久将肾脏颜色从粉红色变为深红色来确认肾缺血（图1）。手术后，IR-AKI手术引起的肾脏损伤可以通过下颌下采血进行生化分析，用几微升血清进一步验证，结果表明血尿素氮和肌酐水平较基线增加（图2）。

讨论

拟议的双侧 IR-AKI 方案适用于研究双肾灌注不足和再灌注损伤的机制。该方案表明，轻量级小鼠、异氟醚全身麻醉、手术背外侧入路以及手术期间的体温维持减轻了相关的技术困难，缩短了手术持续时间，并增加了急性双侧肾脏 IR-AKI 研究的一致性。

技术难点影响双侧肾IR-AKI手术中肾损伤的严重程度³³.除了小鼠品系、性别、年龄和加热系统³⁶

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Absorbable Suture, 6-0	Ethicon	J510G-BX
Betadine solution	Shineteh Istrument
Carprofen	Sigma	PHR1452
Cotton balls	Shineteh Istrument
Graefe Forceps	Fine Science Tools	11051-10
Heating pad	Shineteh Istrument
Isoflurane	Piramal Critical Care Inc.	26675-46-7
Moria Vessel Clamp	Fine Science Tools	18320-11
Olsen-Hegar needle holder	Fine Science Tools	12002 - 12
Saline	Shineteh Istrument
Scalpel blades	Shinva	s2646
Small Animal Anesthesia Machine	Sheng-Cing Instruments Co.	STEP AS-01
Tissue scissors	Fine Science Tools	14072 - 10