这项工作是由美国心脏协会14FTF20370058（DMA）和美国国立卫生研究院T32 HL007101-35（DMA）的支持。

1.电导导管准备和压力校准<ol><li>电导导管连接至血流动力学导管模块。电子校准压力和体积测量通过记录预设的压力和体积的导管模块上设置。记录0毫米汞柱和25毫米汞柱（图1A）一个跟踪和分配的电压到两个压力描记（图1B 和1C）。同样地，记录5 RVU和25 RVU（图1D）的体积跟踪和分配的电压到两个体积描记（1E和1F）。 </li><li>确认与手动压力校准电子压力校准，使用水银柱式血压计。装上血压计袖带端口与3路阀。填3端口止血阀系统，通常用于冠状血管成形术，在使用侧端口RT水。 <ol><li>放置一个电导导管的尖端放入充满流体的止血阀，轻轻地固定机智豪特扭结导管。止血阀连接到血压计和膨胀到200毫米汞柱，并锁定3路阀。检查是否所测量的压力对应于充气的血压计的压力。 </li></ol></li><li>在盐水代替导管加热到37℃，即在操作场和测量压力的水平。调整压力控制，直到录制的压力是零。 </li></ol> 2.麻醉/插管<ol><li>施用氯胺酮/甲苯噻嗪（80〜100/10毫克千克-1），为腹膜内注射。 注意：替代麻醉剂都可以使用。在以前的这种技术11,12的评语是提供麻醉剂的详细列表。适当的麻醉可以通过温和的尾巴捏确认。 </li><li>一旦麻醉，剃颈部和胸部剪及地方上的加热垫。保持鼠标肛温在36.5-37.5ºC。低体温会导致抑郁症心脏率。适用软膏的眼睛，以防止干燥</li><li>做一个中线切口在颈部和解剖气管肌肉掉，露出气管。放置气管内管通过口，同时可视化气管以确保插管，并连接到呼吸器。 </li><li>在手术过程中保持鼠标呼吸机上。根据动物体重设置呼吸机参数设置如前面所述11。潮气量（毫升）= 6.2×（动物体重以公斤为单位），1.01和呼吸率= 53.5×（动物体重以公斤为单位）-0.26。 </li></ol> 3.放置电导导管的LV室<ol><li>颈动脉的方法<ol><li>以确保无菌性，两套无菌手术器械的使用 - 是一个用于初始皮肤切口，一个在开胸进行操作。仪器应使用动物的干燥灭菌个人外科会话期间进行消毒次高压灭菌在每个外科一天结束。 </li><li>后皮肤已经被净化了洗必泰+酒精擦洗皮肤（0.5％洗必泰/ 70％的酒精溶液）的三个周期，做一个切口在右颈从下颌到胸骨。解剖周围组织以暴露右颈，并切断它运行邻近于颈动脉的迷走神经。 </li><li>周围放置的远端的颈动脉（远离胸部）中的无菌6-0丝线缝合，领带和安全的。放置在颈动脉近端下方两个附加​​缝合线（接近胸部）到第一缝合，松散捆扎中间缝合。轻轻拉动近端缝合，并通过将其夹紧在皮肤上固定。确保颈动脉已在继续之前被夹住两个近端和远端。 </li><li>作一小切口在R.颈动脉，接近第一缝合，并纵向朝胸部延伸。 </li><li>将电导导管尖端，先前在温盐水浸泡30分钟，进容器通过切口并使用中间缝合固定导管。 </li><li>轻轻推进导管中通过颈动脉左心室，一边看压力 - 容积环追踪，以确保正确放置。 注意：在导管应产生显示矩形压力-体积环的最优放置（ 见图 2）。如果导管的通过任何遇到阻力，轻轻地拉了回来，并用温和的压力再次前进。导管轻柔旋转可以帮助置入左心室。迫使电导导管可导致严重的心血管并发症或损坏导管。 </li><li>记录基线压力-体积环的导管放置后〜10分钟，获得一个稳定的状态（ 图2）。 </li></ol></li><li>心尖​​方法<ol><li>在麻醉和通风的鼠标，做一个切口FR嗡剑突，并通过胸壁横向直至隔膜是可见的切割。 </li><li>切，虽然隔膜和可视化的心脏顶点。 </li><li>将电导导管进入左心室的穿过针刺伤口（使用25-30g的针）的先端，直到近侧电极只是心室内侧。 </li><li>记录基线压力 - 体积环的导管放置后〜10分钟，达到稳定状态。 </li></ol></li></ol> 4.变后负荷使用瞬态主动脉阻断<ol><li>要进行短暂的主动脉阻塞，做一个小的水平切口，在胸腔上部和解剖周围组织揭露横向主动脉。 </li><li>将横向主动脉下6-0丝线结扎。经过压力容积环已经恢复到基线，扣住缝线的两端用针钳，轻轻地，慢慢抬高缝合过1-2秒，慢慢释放压力。 </LI&gt; <li>重复此过程，直到三个独立的最佳记录被从同一动物制成。 注：最佳录音应至少有5个压力容量循环周期和紧张的缝合（ 图3A和3C）的应用过程中稳步上升，收缩末期压力。 </li></ol> 5.变预紧使用瞬态下腔静脉阻塞（IVC） <ol><li>要进行短暂的下腔静脉阻塞，使下面的剑突水平切口，隔膜暴露下腔静脉下方。 </li><li>放置IVC下6-0丝线结扎。后压力 - 容积环已经回到基线，​​扣用针夹具的缝合线的两端;轻轻地，慢慢抬高缝合过1-2秒，慢慢释放压力。 IVC闭塞，也可以通过压力使用棉花温柔应用程序执行倾斜拭子。 </li><li>重复这个过程，直到三个独立的最佳录音m个从相同的动物ADE。 注意：最佳记录应至少有5个压力体积循环周期和张力对缝线施加期间中左心室舒张末期压力稳定下降（图4A 和4B）。 </li></ol> 6.盐水校准<ol><li>在研究结束时，一个并联电导（Ⅴp）的值可以是获得由通过颈静脉注射高渗盐水（15％）到动物的10微升丸药（图5A 和5B）。 注：此丸会导致体积的压力没有变化的明显增加。这在体积明显的变化是在血池电导，而不是一个改变的结果，由于在卷的实际增加。在DP / dt的最大瞬时下降可以看出，由于高渗盐水有负性肌力作用13。计算出的V P能够沿着进入压力容积环分析软件与试管校准参数和从转换的RVU以微升。 </li></ol> 7.试管校准<ol><li>要执行校准试管，放置具有在加热垫上或水浴提供由制造商已知直径的孔中的试管加热到37ºC。从小鼠进行血流动力学评估填充第4-5孔新鲜温暖的肝素的血液。 注：试管校准允许使用鼠标血左心室的血池准确的评估，并允许从的RVU微升的转换数据量。 </li><li>将电导导管进入第一口井，直到所有的电极被淹没。轻柔地将导管孔，这将产生不同的RVU。 </li><li>记录中的RVU音量通道的电导的变化。选择最高RVU用于校准。 注：各孔的体积既可以由1使用等式为volum计算）Ë圆柱体，其中所述半径是试管井和长度的是基于内部的两个感测电极或2）在制造商的说明检查之间的长度。电导输出可以与已知体积相关，以开发出将数据从进入的RVU微升11将校准方程。 </li></ol> 8.安乐死<ol><li>在协议结束时，将小鼠用颈椎脱臼而麻醉下安乐死。 </li><li>为了确保死亡，已经历颈脱位小鼠必须经过安乐死的辅助方法。我们使用放血麻醉下，与在麻醉下采集心脏组织的用于实验，或双边开胸。 </li></ol> 9.使用数据分析压力容积环分析软件<ol><li>计算V p从盐水校准<ol><li>选择压力和VOLU我回路高渗盐水的喷射期间获得（图5A和5B） </li><li>出口循环到压力体积分析软件。选择选项盐水校准（图5C） </li><li>记录计算出的V P值 （图5D）。 注：购买V P值是通过识别1）舒张末期容积与从盐校准收缩末期容积的交集和2）舒张末期容积=收缩末期容积线计算。这些线的交叉点提供在V p，是由压力容积环的分析软件进行计算。 </li></ol></li><li>输入传导到体积（RVU）的体积通道选项的关系（ 图1F） </li><li>测量基线压力 - 体积循环关系<ol><li>从压力和体积渠道8-10个心动周期，一旦稳定状态已经实现（ 图2A），并出口到分析软件洁具。确定5-6呼气末环（ 图2B） </li><li>使用V P值来校正平行电导。选择“稳态”选项，并产生一个血液动力学汇总表（图2C） </li></ol></li><li>在主动脉缩窄测量压力容量环的关系<ol><li>选择从压力和体积沟道8-10个心动周期对应于之前的舒张末期压力（ 图3A）和出口到分析软件的增加主动脉缩窄。识别5-6呼气末回路（图3C） </li><li>选择“收缩”的分析（ 图3B），这将计算结束收缩的压力容积关系（ESPVR） </li></ol></li><li>在IVC缩窄测量压力容量环的关系<ol><li>从对应于下腔静脉收缩压力和体积渠道8-10个心动周期（FIGURË4A），并出口到分析软件。确定5-6呼气末环（ 图4B） </li><li>选择“收缩”的分析（图3B），这将计算预压Recruitable冲程工作（PRSW）（图4C），最大上升/ dt的VS EDV（图4D），以及ESPVR和最终舒张压容积关系（图4E） </li></ol></li></ol>

<ol>
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L., Burkhoff, D., Sagawa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Left+ventricular+interaction+with+arterial+load+studied+in+isolated+canine+ventricle.">Left ventricular interaction with arterial load studied in isolated canine ventricle.</a> Am J Physiol. 245 (Pt 1), H773-H780 (1983).</li><li>Suga, H., Sagawa, K., Demer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Determinants+of+instantaneous+pressure+in+canine+left+ventricle.+Time+and+volume+specification.">Determinants of instantaneous pressure in canine left ventricle. Time and volume specification.</a> Circ Res. 46 (2), 256-263 (1980).</li><li>Suga, H., Sagawa, K., Shoukas, A. 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C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anaesthesia+of+small+rodents+during+magnetic+resonance+imaging.">Anaesthesia of small rodents during magnetic resonance imaging.</a> Methods. 43 (1), 68-78 (2007).</li><li>Georgakopoulos, D., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Estimation+of+parallel+conductance+by+dual-frequency+conductance+catheter+in+mice.">Estimation of parallel conductance by dual-frequency conductance catheter in mice.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 279 (1), H443-H450 (2000).</li><li>Esposito, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Increased+myocardial+contractility+and+enhanced+exercise+function+in+transgenic+mice+overexpressing+either+adenylyl+cyclase+5+or+8.">Increased myocardial contractility and enhanced exercise function in transgenic mice overexpressing either adenylyl cyclase 5 or 8.</a> Basic Res Cardiol. 103 (1), 22-30 (2008).</li><li>Kohout, T. 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A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+contractile+state+on+curvilinearity+of+in+situ+end-systolic+pressure-volume+relations.">Influence of contractile state on curvilinearity of in situ end-systolic pressure-volume relations.</a> Circulation. 79 (1), 167-178 (1989).</li><li>Little, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+left+ventricular+dP/dtmax-end-diastolic+volume+relation+in+closed-chest+dogs.">The left ventricular dP/dtmax-end-diastolic volume relation in closed-chest dogs.</a> Circ Res. 56 (6), 808-815 (1985).</li><li>Glower, D. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Linearity+of+the+Frank-Starling+relationship+in+the+intact+heart:+the+concept+of+preload+recruitable+stroke+work.">Linearity of the Frank-Starling relationship in the intact heart: the concept of preload recruitable stroke work.</a> Circulation. 71 (5), 994-1009 (1985).</li><li>Sharir, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ventricular+systolic+assessment+in+patients+with+dilated+cardiomyopathy+by+preload-adjusted+maximal+power.+Validation+and+noninvasive+application.">Ventricular systolic assessment in patients with dilated cardiomyopathy by preload-adjusted maximal power. Validation and noninvasive application.</a> Circulation. 89 (5), 2045-2053 (1994).</li><li>Baan, J., Van der Velde, E. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sensitivity+of+left+ventricular+end-systolic+pressure-volume+relation+to+type+of+loading+intervention+in+dogs.">Sensitivity of left ventricular end-systolic pressure-volume relation to type of loading intervention in dogs.</a> Circ Res. 62 (6), 1247-1258 (1988).</li><li>Wei, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Volume+catheter+parallel+conductance+varies+between+end-systole+and+end-diastole.">Volume catheter parallel conductance varies between end-systole and end-diastole.</a> IEEE Trans Biomed Eng. 54 (8), 1480-1489 (2007).</li><li>Porterfield, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+correction+for+parallel+conductance,+GP,+and+gain+factor,+alpha,+in+invasive+murine+left+ventricular+volume+measurements.">Dynamic correction for parallel conductance, GP, and gain factor, alpha, in invasive murine left ventricular volume measurements.</a> J Appl Physiol (1985). 107 (6), 1693-1703 (2009).</li></ol>

作者什么都没有透露。

我们描述了使用小鼠电导导管，以获得两个心脏收缩和舒张的综合分析perfoming压力 - 容积环分析的方法。菅佐川急便和他 ​​的同事利用压力容积循环，以确定心脏收缩的措施，在ESPVR专门的坡度，或收缩末期弹性（E ES）和E 最大 。顺应性，通过压力的比率定义为体积（P / V），上变化收缩的持续时间。在每个心脏收缩，瞬时弹性度是依赖于心脏速率和心肌收缩力，但在很大程度...

心脏压力容积环分析提供心脏功能的详细信息，其中的金标准功能评估1。虽然诸如超声心动图或心脏MRI成像技术提供的功能的措施，这些措施在很大程度上取决于负载条件。心脏收缩和舒张的负载独立的措施需要心室压力和体积的关系在一定范围内的前后负荷的动态测量。压力容积关系的这种认识源于佐川急便和同事2,3的开创性工作。他们在体外灌注犬心脏表明，压力容积环衍生收缩措施是独立的负载条件4。 在这些分析的体内应用成为可能的传导导管在20世纪80年代的发展。这使得嘉的技术进步SS和他的同事进行的人类5,6压力-容积环分析。电导导管和改进手术技术在上世纪90年代7小型化由啮齿类动物心脏功能分析是可行的，允许遗传和药理学研究被执行。这一进步此后引发广泛使用的压力容积环分析，并产生了大量的洞察哺乳动物心脏生理。 在使用电导导管，并从中获得的数据的解释的一个关键概念是体积和电导之间的关系。电导是负相关的电压，这是使用与近侧放置电极，通常放在下面的主动脉瓣，和远侧，在LV尖8的导管测量。被改变电压或电导的变化电流从近端到远端电极的测量。虽然血池贡献š显著电导，心室壁的贡献，称为并联电导（V p）的 ，以测得的电导必须减去，以获得绝对的LV体积测量。 所述的方法来执行此校正，称为盐水校准，在下面的协议进行了讨论。电导和体积之间的数学关系，由班和同事描述的是体积= 1 /α; （ρL 2）（GG p），其中 α=均匀的场校正系数，ρ=电阻率血液，L为电极之间的距离，G =电导和 G p值=非血液电导9。值得注意的是，在小鼠的统一场校正系数接近1.0，由于小室容积10。再加上压力传感器，电导导管提供实时同步的压力和体积数据。 心脏PRESSU再卷分析呈现特别优势的心脏功能的其他措施，因为它们允许用于心室功能独立的负载条件和心脏速率的测量。收缩的具体负载无关的心脏指标包括：收缩末期压力容积关系（ESPVR），D P / D T最大末端舒张末期容积关系，最大顺应性（E max）和预加载recruitable工作行程（PRSW）。舒张功能的负载无关的指标是舒张末期压力容积关系（EDPVR）11。以下协议描述心脏的压力容积环分析的行为，同时使用一个颈动脉和顶部的方法。虽然进行这些研究的方法进行了详细先前8,11进行了说明，我们将审查的关键步骤，以获得精确的压力容积测量，包括盐水和试管校准修正，并提供THES的可视化演示Ë程序。研究与开展这项研究的动物按批准的方案和杜克大学医学中心的机构动物护理和使用委员会的动物福利法规进行处理。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>AnaSed (xylazine)&#160;</td>
			<td>Lloyd Laboratories</td>
			<td>NADA no. 139-236</td>
			<td>Anesthetic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketaset (ketamine)</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>440842</td>
			<td>Anesthetic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VIP3000</td>
			<td>Matrx Medical Inc.</td>
			<td></td>
			<td>Anesthesia machine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ventilator</td>
			<td>Harvard Apparatus</td>
			<td>Model 683</td>
			<td>Surgical Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tubing kit</td>
			<td>Harvard Apparatus</td>
			<td>72-1049</td>
			<td>Surgical Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Homeothermic Blanket&#160;</td>
			<td>Kaz Inc.</td>
			<td>5628</td>
			<td>Surgical Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereo microscope</td>
			<td>Carl Zeiss Optical Inc.</td>
			<td>Stemi 2000</td>
			<td>Surgical Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Illuminator</td>
			<td>Cole&#8211;Parmer</td>
			<td>41720</td>
			<td>Surgical Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dumont no. 55 Dumostar Forceps&#160;</td>
			<td>Fine Science Tools Inc</td>
			<td>11295-51</td>
			<td>Surgical Instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Graefe forceps, curved&#160;</td>
			<td>Fine Science Tools Inc</td>
			<td>11052-10</td>
			<td>Surgical Instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Moria MC31 forceps&#160;</td>
			<td>Fine Science Tools Inc</td>
			<td>11370-31</td>
			<td>Surgical Instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mayo scissors&#160;</td>
			<td>Fine Science Tools Inc</td>
			<td>14512-15</td>
			<td>Surgical Instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iris scissors&#160;</td>
			<td>Fine Science Tools Inc</td>
			<td>14041-10</td>
			<td>Surgical Instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Halsey needle holder&#160;</td>
			<td>Fine Science Tools Inc</td>
			<td>12501-13</td>
			<td>Surgical Instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Olsen&#8211;Hegar needle holder&#160;</td>
			<td>Fine Science Tools Inc</td>
			<td>12002-12</td>
			<td>Surgical Instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>spring scissors</td>
			<td>Fine Science Tools Inc</td>
			<td>15610-08</td>
			<td>Surgical Instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>disposable underpads</td>
			<td>Kendall/Tyco Healthcare</td>
			<td>1038</td>
			<td>Surgical Supplies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile gauze sponges, sterile&#160;</td>
			<td>Dukal</td>
			<td>62208</td>
			<td>Surgical Supplies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton-tipped applicators, sterile&#160;</td>
			<td>Solon</td>
			<td>368</td>
			<td>Surgical Supplies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical suture,&#160; silk, 6-0&#160;</td>
			<td>DemeTECH</td>
			<td>FT-639-1</td>
			<td>Surgical Supplies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 cc Insulin syringes&#160;</td>
			<td>Becton Dickenson</td>
			<td>329412</td>
			<td>Surgical Supplies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Access-9&#8482; Hemostasis Valve</td>
			<td>Merit Medical&#160;</td>
			<td>MAP111</td>
			<td>Hemodynamic equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sphygmomanometer</td>
			<td>Baumanometer</td>
			<td>320</td>
			<td>Hemodynamic equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Millar PV system MPVS-300/400 or MPVS Ultra (includes calibration cuvette)</td>
			<td>ADInstruments Inc</td>
			<td></td>
			<td>Hemodynamic equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.4F conductance catheter&#160;</td>
			<td>ADInstruments Inc</td>
			<td>SPR-839</td>
			<td>Hemodynamic equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PowerLab 4/30 with Chart Pro</td>
			<td>ADInstruments Inc.</td>
			<td>ML866/P</td>
			<td>Hemodynamic software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>animal clipper</td>
			<td>Wahl</td>
			<td>8787-450A</td>
			<td>Miscellaneous</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Intradermic tubing PE-10 (Becton Dickinson, cat. no. )</td>
			<td>Becton Dickenson</td>
			<td>427401</td>
			<td>Miscellaneous</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Intradermic tubing PE-50 (Becton Dickinson, cat. no.)</td>
			<td>Becton Dickenson</td>
			<td>427411</td>
			<td>Miscellaneous</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle assortment (18, 25 and 30 gauge; Thomas Scientific)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Miscellaneous</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.9% (wt/vol) sodium chloride injection, USP , cat. no. )</td>
			<td>Hospira</td>
			<td>NDC no. 0409-4888-50</td>
			<td>Miscellaneous</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical tape</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Miscellaneous</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alconox (Alconox Inc.) for catheter cleaning</td>
			<td>ADInstruments Inc.</td>
			<td></td>
			<td>Miscellaneous</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

cardiac pressure-volume loop analysis using conductance catheters in mice

Cardiac pressure-volume loop analysis is the &#8220;gold-standard&#8221; in the assessment of load-dependent and load-independent measures of ventricular systolic and diastolic function. Measures of ventricular contractility and compliance are obtained through examination of cardiac response to changes in afterload and preload. These techniques were originally developed nearly three decades ago to measure cardiac function in large mammals and humans. The application of these analyses to small mammals, such as mice, has been accomplished through the optimization of microsurgical techniques and creation of conductance catheters. Conductance catheters allow for estimation of the blood pool by exploiting the relationship between electrical conductance and volume. When properly performed, these techniques allow for testing of cardiac function in genetic mutant mouse models or in drug treatment studies. The accuracy and precision of these studies are dependent on careful attention to the calibration of instruments, systematic conduct of hemodynamic measurements and data analyses. We will review the methods of conducting pressure-volume loop experiments using a conductance catheter in mice.

压力-容积环分析可以用于测量在基因修饰的小鼠14,15或小鼠接受药物研究16心脏功能。代表压力容积环是由以前发表的著作16提供的调查β-arrestin的效果偏向AT1受体配体，TRV120023。为了测试TRV120023是否影响在体内的心脏功能，在接收到传统的和新颖的血管紧张素受体 ​​阻滞剂的野生型小鼠中进行压力-容积环分析。 TRV120023静脉滴注增强心肌收缩显著（</...

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Cardiac Pressure-Volume Loop Analysis Using Conductance Catheters in Mice

Cardiac pressure-volume loop analysis is the most comprehensive way to measure cardiac function in the intact heart. We describe a technique to perform and analyze cardiac pressure volume loops, using conductance catheters.

心脏压力容量环分析小鼠使用电导导管

Cardiac pressure-volume loop analysis is the &#8220;gold-standard&#8221; in the assessment of load-dependent and load-independent measures of ventricular ...

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