该协议允许从人类多能干细胞中衍生出交感神经元。这些细胞将使科学家能够研究影响交感神经系统的人类疾病。该技术允许在分裂的无馈线满足条件下以高可扩展效率推导交感神经元。
它在20天内产生电活性神经元。该技术可应用于由功能失调的交感神经系统引起的疾病，也可用于疾病建模、再生医学和药物筛查。这些细胞可以在体外用于创新联合培养系统内的任何组织，例如，用于心脏组织调节的研究。
当人类多能干细胞培养达到80%至90%的汇合时，应观察具有光滑明亮边缘的大菌落。对于分裂，在用4毫升0.25摩尔EDTA在37摄氏度和5%的二氧化碳下处理细胞之前，用PBS清洗培养基。两分钟后，用 10 毫升 E8 介质冲洗板，将分离的电池悬浮液转移到 15 毫升锥形管中。
然后将500微升细胞转移到9.5毫升的新鲜E8介质中。将干细胞板到涂有100毫米的新的玻璃素上。在分化感应前一天，将适当数量的六孔板涂上每孔两毫升的基底膜基质。
一夜之间把盘子储存在摄氏四度。第二天早上，将盘子加热到室温，用每次洗涤的新鲜PBS洗涤两次，以分离人类多能干细胞培养。第二次洗涤后，在细胞培养培养箱中用7毫升0.5毫升EDTA治疗细胞15分钟，然后吸上漂浮的人类多能干细胞，并将收获的细胞转移到50毫升的管中。
向管中加入等量的PBS，稀释EDTA，通过离心收集细胞。将颗粒重新在01天1毫升的分型介质中，然后加入适当的体积的介质进行核算。将细胞稀释到每平方厘米浓度的1.25倍至第五细胞，形成每井分型介质的毫升。
从先前准备的六孔板的每个井中吸气所有基底膜基质溶液。然后将两毫升细胞放入每个井中，将盘子放入细胞培养箱中。第二天早上，每井用三毫升01日增殖中等的细胞。
在分化的第二天，每井用三毫升2至10个分化介质喂养细胞，然后每隔一天喂一次细胞直到第10天。要将神经峰细胞聚合到球体中，第10天，用PBS清洗细胞。并添加两毫升的分离介质到每一个井。
在细胞培养培养箱中20分钟后，将漂浮细胞转移到50毫升锥形管中，用新鲜的PBS将管中的悬浮量达到50毫升。通过离心收集细胞。并在足够的体积 10 至 14 球体介质中重新暂停颗粒以进行计数。
计数后，使用第10至14天球体介质将细胞稀释至每500微升浓度的5倍至第5细胞。并板500微升的细胞进入每一个井的超低附件24井板。然后将细胞返回到细胞培养箱。
为了诱导最小的球体培养，在培养的第11天，每孔每孔10至14个球体介质中，再为神经波峰球体提供500微升。第 12 天，倾斜板以在板的一侧积聚球体。并仔细吸气尽可能多的介质从每一个井，而不吸球体。
然后每井用一毫升的10至14球体介质给球体喂食。为了诱导膨胀的球类培养，第15天，用第10天至14号球体介质的1.5毫升喂球体，每井补充0.5微摩尔视网膜酸。然后将球体返回到细胞培养箱。
对于交感神经元分化，第 14 或 28 天，倾斜板以在板的一侧积聚球体，并仔细吸气尽可能多的介质。用一毫升的交感神经元介质喂养细胞。要将大球体聚合分解成较小的球体，每井添加不超过一毫升的介质，并在分裂前移液球体 5 到 10 次。
并从先前准备的24孔板中去除多余的层压纤维素。将板状球体从 24 孔球形培养板上的每口孔中分离到新涂层 24 孔板的四个独立孔之间。在每个井中加入250微升新鲜交感神经元介质。
将盘子放在细胞培养箱中。第二天早上，用1毫升的交感神经元介质代替培养剂，补充0.125微摩尔视网膜酸，将板回细胞培养箱。第35天之后，通过小心地用新鲜介质替换每个井中现有介质的一半来喂养神经元。
在分化之前，人类多能干细胞菌落应该圆，边缘有光泽，光滑，很少或没有分化。细胞从第四天到第10天表达神经峰标记Sox10。神经峰细胞出现在密集的暗脊，从第六天开始可见。
这些山脊也表达索克斯10。在神经波峰细胞阶段，Sox10 与细胞表面标记 CD49D 关联，该标记可用于对神经波峰细胞进行排序。正排序和未排序的种群以类似的方式产生神经波峰球状体。
虽然负分细胞不能正确聚合，但不会产生圆形、平滑的健康球体，并在三到四天内死亡。此外，在第14天比较神经波峰球状体时，神经峰和交感神经祖细胞标记的定量逆转录酶PCR，无法检测到排序细胞和未分类细胞之间的显著差异。在第20天或第35天，各自的最小或扩展协议，神经ID可以观察到生长在径向模式从附加的球体。
与去甲肾上腺素合成和运输有关的标记在这个阶段表达， 以及 Hox6 通过九个树干神经波峰基因。电生理记录还检测从第20天开始的神经活动。这种活性可以通过针对交感神经元的自感知器的药物增强或抑制，这些药物调整分化神经元的功能。
人类的支持者自己必须健康地从零天开始分化，否则，实验可能会失败。药理抑制剂或活化剂可以添加到神经元中，以了解其正常或病理行为。这种方法为研究同情生物学和病理学开辟了一条新途径，因为现在可以很容易地从人类获得交感神经元的活检。
