TGFR提供肾功能的实时评估。与传统标志物相比,TGFR可以多次监测同一动物的肾功能变化。此外,该技术不需要任何血液或尿液收集。
随着异种移植的最新进展,将使用猪模型进行更多的研究。因此,我们相信这个工具对于转化研究至关重要,并且在未来几年更有可能在临床上使用。该实验在三到七天大的仔猪上进行。
这些动物容易出现体温过低、血容量不足和其他手术引起的并发症。因此,需要在整个过程中进行密切监测。此外,该方法需要实践,因为它涉及气管切开术和血管插管。
在动物准备好手术后,使用手术刀片创建一个五到六厘米的左副正中垂直切口,因为猪的盲肠位于左腰旁窝。解剖腹壁层,避免损伤浅表上腹部血管。一旦腹膜层被切开,使用牵开器来改善腹内结构的通道,并确定腹部左上象限的螺旋结肠。
要定位盲肠,请追踪尾部和背侧螺旋结肠。盲肠底部的螺旋结肠与髂骨相连。将盲肠结扎在回盲部交界处的远端。
使用 18 号针头,在盲肠中穿刺 7 次,然后将粪便挤出到腹膜区域。用3/0丝线缝合腹层,使用简单的中断或连续缝合。如果有的话,也可以使用吻合器来闭合皮肤层。
盲肠结扎 8 小时后,开始透皮 GFR 测量。使用 MB 服务软件版本 3.0 调整 GFR 设备上的采样率。使用 USB 连接器,将透皮 GFR 设备连接到计算机。
打开 MB 服务软件。单击连接并将计时调整为 4, 000 毫秒。单击写入以保存设置,然后单击断开连接。
将带有透明窗口的双面粘性贴片连接到设备的一侧。将电池连接到设备,确保发光二极管覆盖透明窗口,以便进行示踪检测。连接电池后,立即将粘性贴片与设备粘合到位。
确保它得到很好的保护。由于仔猪被深度麻醉,因此可能不需要胶带将设备固定到位。用盐水制备每毫升50毫克FITC-sintristrin溶液,并将适当剂量吸入注射器中。
将装有药物的注射器连接到三通旋塞阀的一侧,并在旋塞阀的另一侧使用盐水冲洗。推动FITC-sinistrin,然后立即推注五毫升盐水,然后关闭仔猪静脉的三向旋塞阀。将设备固定在仔猪上四个小时。
为避免在此期间出现运动伪影,请按照手稿中的说明将仔猪置于麻醉状态。四个小时结束后,取出设备并立即断开电池连接。使用供应商提供的 USB 连接器将透皮 GFR 设备连接到计算机。
打开 MB 实验室软件以从设备检索数据。要保存原始数据,请单击连接并选择读取。然后,等待设备完成读取。
单击重命名,最后单击保存。根据手册的说明在分析软件中处理和评估保存的数据。简而言之,打开 MB 工作室并单击加载以导入保存的数据。
使用自动标记调整偏移、开始和停止位置。如有必要,请删除项目。选择三室模型并单击拟合以获得在几分钟内显示FITC-sinistrin清除率的读数,并使用此公式计算TGFR。
假动物和败血症动物的体重相当。脓毒症 12 小时后,在脓毒症组中观察到血清 C 反应蛋白(脓毒症标志物)水平升高。显示假仔猪和败血症仔猪术后12小时的FITC-sinistrin清除曲线。
肾功能受损的化脓性猪表现出曲线下面积增加。脓毒症仔猪的FITC-sinistrin清除率受损,提示急性肾损伤。假手术组和脓毒症组中FITC-sininstrin的平均半衰期分别为114和537分钟。
假手术组的平均GFR显著高于脓毒症组。假手术组0小时和12小时时的血清肌酐水平相似。然而,12小时后,化脓猪的肌酐水平显着升高。
确保电池正确连接到仔猪。如果电池脱落,设备将无法工作。尝试在一次液体推注中注射FITC-sinistrin,以防止多个峰。
此外,确保设备正确连接到仔猪,以防止运动伪影。通过实时测量GFR,我们可以正确评估肾功能以检测早期AKI,并可能评估正在研究的治疗药物。