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Method Article
Wir beschreiben das Protokoll für die passive CLARITY (PACT)-Färbung des Mausdarms, um die Visualisierung von subepithelialen Geweben, einschließlich Neuronen, Gliazellen und enteroendokrinen Zellen (EEC), ohne Gewebeschnitt zu ermöglichen. Das Protokoll beinhaltet die Einbettung von Formaldehyd-fixiertem Gewebe in ein Hydrogel und die anschließende Delipidisierung mit einem anionischen Detergens, um das Gewebe zu "reinigen".
CLARITY (Clear Lipid-exchange Acrylamide-hybridized Rigid Imaging compatible Tissue hYdrogel) hat sich in jüngster Zeit zu einer wertvollen Technik entwickelt, bei der Acrylamid eingebettet wird, um Gewebe zu entfetten (ohne Schnitte) und die 3-D-Gewebestruktur für die Immunfärbung zu erhalten. Die Technik ist von großer Bedeutung für die Bildgebung der dynamischen Darmumgebung, in der verschiedene Zelltypen während der Homöostase und des Krankheitszustands interagieren. Diese für den Mäusedarm optimierte Methode wird hier beschrieben und hilft dabei, Zelltypen wie Epithelien, Enteroendokrine, Neuronen, Gliazellen und die neuronalen Projektionen in die Epithelien oder enteroendokrinen Zellen zu verfolgen, die die mikrobielle Sensorik bzw. die Nährstoffchemowahrnehmung vermitteln. Das Darmgewebe (1-1,5 cm) wird über Nacht an Tag 1 in 4% Paraformaldehyd (PFA) in phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS) bei 4 °C fixiert. An Tag 2 wird PFA verworfen und das Gewebe dreimal mit PBS gewaschen. Das Gewebe wird zur Erhaltung seiner Integrität in ein Hydrogel eingebettet, indem es über Nacht bei 4 °C in einer 4%igen Hydrogellösung (Acrylamid) in PBS (verdünnt aus 30 % ProtoGel) inkubiert wird. An Tag 3 wird die Gewebe-Hydrogel-Lösung 1 h lang bei 37 °C inkubiert, um eine Hydrogelpolymerisation zu ermöglichen. Das Gewebe wird dann dreimal vorsichtig mit PBS gewaschen, um überschüssiges Hydrogel zu entfernen. Der nächste Schritt der Delipidisierung (Clearing) umfasst die Inkubation des Gewebes in Natriumdodecylsulfat (8 % SDS in PBS) bei 37 °C für 2 Tage (Tage 4 und 5) auf einem Shaker bei Raumtemperatur (RT). Am Tag 6 wird das gereinigte Gewebe gründlich mit PBS gewaschen, um SDS zu entfernen. Das Gewebe kann immungefärbt werden durch Inkubation in Primärantikörpern (verdünnt in 0,5 % normalem Eselsserum in PBS mit 0,3 % Triton X-100), über Nacht bei 4 °C und anschließender Inkubation in geeigneten sekundären Alexa-Fluor-Antikörpern für 1,5 h bei RT und Kernfärbung mit DAPI (1: 10000). Das Gewebe wird auf einen sauberen Objektträger übertragen und mit VectaShield für die konfokale Bildgebung montiert.
CLARITY (Clear Lipid-exchange Acrylamide-hybridized Rigid Imaging compatible Tissue hYdrogel) hat sich in jüngster Zeit zu einer wertvollen Technik entwickelt, die die Einbettung von Acrylamid (Hydrogel) und die Delipidierung des Gewebes umfasst, um die 3-D-Gewebestruktur für die Immunfärbung (ohne Schnittbildung) zu erhalten1,2. Das in Hydrogel eingebettete Gewebe ist optisch transparent und makromoleküldurchlässig, wobei Proteine und Nukleinsäuren nach der Entfernung von Lipiden durch ein Detergens erhalten bleiben. CLARITY wurde 2013 von Science3 als einer von zehn bemerkenswerten Durchbrüchen ausgezeichnet. Obwohl die Technik ursprünglich entwickelt wurde, um lipidreiches Hirngewebe abzubilden, bei dem Lipide die Lichtstreuung und die Bildqualität beeinflussen, wird sie derzeit häufig für die Bildgebung anderer Gewebe wie Darm, Leber, Niere und Herz eingesetzt. Die Technik bietet die Möglichkeit, ein Gewebe zu färben und abzubilden, indem keine Schnitte erforderlich sind, die sonst aufgrund einer unregelmäßigen Verteilung der Zelltypen zu einer verzerrten Bewertung von Zell-Zell-Interaktionen führen könnten. Die Technik bietet auch die Möglichkeit, konfokale Z-Stacks durchzuführen und ein 3-dimensionales Bild des Gewebes zu erstellen, was dazu beitragen kann, die Dichten, die Mikroarchitektur und die Zell-Zell-Interaktion zwischen verschiedenen Zelltypen realistischer zu bestimmen als aus einem Gewebeschnitt. Darüber hinaus wurde die Technik modifiziert, um die Immunfärbung von dichten Geweben wie Knochen sowie In-situ-Hybridisierungsstudien zu ermöglichen. Das in das Hydrogel eingebettete 3D-Gewebe bietet eine attraktive Plattform zur Aufklärung der Wechselwirkungen zwischen epithelialen, enteroendokrinen, glialen und neuronalen Zellen, die kürzlich als entscheidend für das Verständnis der Pathophysiologie von Krankheiten wie Parkinson, Alzheimer, Autismus-Spektrum-Störungen usw. genannt wurden4.
Alle beschriebenen Tierversuche wurden vom Emory University Committee on the Use and Care of Animals genehmigt. C57BL/6-Mäuse (sowohl männliche als auch weibliche Mäuse können verwendet werden) im Alter von 8-12 Wochen erhielten vor der Euthanasie freien Zugang zu Futter und Wasser.
1. Entfernung des Darms (Tag 1)
2. Fixierung des Darmgewebes (Tag 1)
3. Hydrogel-Einbettung (Tag 2)
4. Schritt der Hydrogelpolymerisation und -delipidisierung (Clearing) (Tag 3)
5. Waschen Sie das Waschmittel vom gereinigten Tuch ab (Tag 6)
6. Immunfluoreszenzfärbung für Neuronen, Gliazellen und enteroendokrine Zellen
7. Konfokale Bildgebung
HINWEIS: Das geklärte, gefärbte und montierte Gewebe kann sofort abgebildet oder in Objektträgerboxen bei -20°C gelagert werden.
Die Bilder aus dem CLARITY-clearierten Darmgewebe der Maus sind in Abbildung 1 dargestellt. Ein erfolgreicher Abschluss des Protokolls führt zu qualitativ hochwertigen, gestochen scharfen Bildern, bei denen alle zellularen Details klar visualisiert werden können. Die DAPI-Färbung für Zellkerne ist ein sehr guter Index zur Beurteilung der Qualität des CLARITY-Protokolls und der anschließenden Immunfärbung, da sie die Gewebeintegrität abbilden kann. Da...
Die CLARITY-Methode ist sehr nützlich für die Färbung des Darms von Mäusen, um verschiedene Zelltypen wie Epithelien, Neuronen und Gliazellen in 3D zu visualisieren, insbesondere das Netzwerk neuronaler Projektionen, das sich über die Darmwand bis zum Lumen5 und deren Innervation zu Glia- und EEC-Zellen erstreckt. Die hier vorgestellte Methode wurde entsprechend der Originalstudie von Yang et al. 2014modifiziert 1.
Die Autoren haben nichts offenzulegen.
Die Autoren danken der American Gastroenterology Association (AGA), dem AGA-Rome Functional GI motility Disorders Pilot Research Award (an BC), dem U.S. National Institutes of Health Grant AI64462 (ASN) und dem Emory University Integrated Cellular Imaging Microscopy Core.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
4% paraformaldehyde (PFA) in PBS | ThermoFischer Scientific | J19943 | Used for tissue fixation |
4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride (DAPI) | ThermoFischer Scientific | D1306 | 1/10,000 dilution |
Alexa Fluor-488 | ThermoFischer Scientific | A-11034 | 1/1000 dilution |
Alexa Fluor-555 | ThermoFischer Scientific | A-21428 | 1/500 dilution |
Anti- GFAP (Glial Fibrillary Acid Protein) | Abcam | ab7260 | 1/500 dilution |
Anti-beta III Tubulin (or Tuj1) | Abcam | ab18207 | 1/1000 dilution |
Chromogranin A | Abcam | ab15160 | 1/250 dilution |
ProtoGel 30% | National Diagnostics | EC-890 | Toxic, hazardous, handle with care- make 4% solution in PBS for use |
Sodium dodecyl sulfate | ThermoFischer Scientific | 28364 | 8% in PBS |
Vectashield mounting medium | Vector Laboratories | H-1000 |
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