1. Identifizieren Sie die Maus, die in ihrem Käfig abgebildet werden soll, und übertragen Sie sie in die Anästhesie-Induktionskammer.
2. Anästhetisieren Sie die Maus mit Isofluran und bestätigen Knockdown mit einer Zehen-Pinch-Technik. Nehmen Sie die Pfote zwischen Daumen und Zeigefinger und kneifen Sie fest, um nach einer Antwort zu suchen. Wenn das Tier seinen Fuß zurückzieht, sollten Sie entweder warten oder mit Anästhesie nach dem genehmigten Protokoll erneut dosieren.
3. Überprüfen Sie, ob alle Mitarbeiter, die die Bildgebungseinrichtung betreten, MR-sicher sind. Dazu gehören das Entfernen von magnetischer Kleidung/Zubehör, die Bestätigung von magnetisch-implantaten oder Herzschrittmachern und das Entfernen von Metall, das Piercings enthält.
4. Offener Isofluran-Fluss zum Nosecon im MRT-Raum. Dadurch können die längeren Schläuche vor dem Maustransfer mit Anästhetikum grundiert werden, um sicherzustellen, dass das Tier nicht aufwacht.
5. Schließen Sie den Isofluranfluss zur Anästhesie-Induktionskammer und übertragen Sie die Maus in die Bildaufnahme. Platzieren Sie die Maus auf der Bühne so, dass die ungefähre Position des Herzens mit der Mitte des Magneten ausgerichtet ist.
6. Sichern Sie den Nasenkegel und bestätigen Sie den Knockdown mit der Zehen-Pinch-Technik.
7. Fügen Sie die drei Elektrokardiogramm-Leitungen subkutan mit einer Leitung nach links und rechts des Herzens und eine an der Basis der linken Hinterglied.
8. Setzen Sie die rektale Temperatursonde mit einem sterilen Sondenmantel und Schmiermittel ein.
9. Stellen Sie den Kissen-Atmungssensor auf den epigastrischen Bereich des Bauches und sichern Sie ihn mit einem Pappteller an Ort und Stelle. Der Karton sorgt für ein druckempfindliches Signal.
10. Bestätigen Sie, dass alle physiologischen Signale über die Überwachungssoftware außerhalb des Scannerraums erfasst werden. Wenn eine Herzfrequenz, Atemfrequenz oder Temperatur außerhalb des normalen Bereichs festgestellt wird, halten Sie die Bildgebung an und beurteilen Sie, ob das Tier entsprechend anästhesiert ist. Wenn festgestellt wird, dass sich das Tier in Not befindet, sollte die Anästhesieanwendung eingestellt und das Tier zur Genesung in den Käfig zurückgebracht werden.
11. Richten Sie das Heizmodul und den Lüfter ein und beginnen Sie mit der Erwärmung des Luftstroms zum Tier. Sichern Sie alle Luftschläuche an Ort und Stelle, so dass die warme Luft in Richtung der Maus bläst, die kurz hinter der Spitze des Schwanzes beginnt.
12. Legen Sie die Gradientenspule über das Tier und stellen Sie sicher, dass alle Kabel/Schläuche gesichert sind.

2. Herzmagnetresonanztomographie - Dieser Abschnitt kann für andere Anwendungen angepasst werden.

1. Optimieren und passen Sie die Gradientenspule außerhalb der Bohrung des Magneten an, um sicherzustellen, dass das maximale Signal vom Motiv erkannt wird.
2. Setzen Sie die Bildstufe langsam in die Bohrung des Magneten ein, so dass das Tier direkt in der Mitte der Bohrung positioniert ist. Dazu gehört auch, sicherzustellen, dass die Gradientenspule den gleichen Abstand entlang aller radialen Richtungen aufweist. Dies ist die Position, wo das Hauptmagnetfeld am homogensten sein wird.
3. Führen Sie einen Lokalisierungs-/Navigator-Scan aus, um den Speicherort der Maus im Scanner zu bestätigen. Ein Teil des Herzens sollte innerhalb aller drei Ebenen visualisiert werden (d. h. axial, sagittal und koronal). Wenn dies nicht der Fall ist, wiederholen Sie den Vorgang der Neupositionierung der Maus und der Ausführen von Lokalisierungs-/Navigationsscans, bis die gewünschte Position erreicht ist.
4. Richten Sie die Parameter für die FLASH-Sequenz ein. Zum Beispiel: TR/TE = 8,0/2,0 ms, FA = 20°, FOV = 35 x 35 mm, Matrixgröße = 192 x 192 und NEX = 6. Wählen Sie dann die externe Auslösung aus, um "ein" zu sein.
5. Konfigurieren Sie auf der Überwachungssoftware die externen Auslöser so, dass die MRT-Sequenzen bei der Identifizierung der R-Peaks in den Herzzyklen gestartet werden und während die Atmung während der Exspirierungsphase stabil ist. Da diese beiden Bedingungen erfüllt sind, kann die Sequenz seriell ausgeführt werden, und Daten werden erfasst.
6. Verschreiben und führen Sie eine erste FLASH-Sequenzscheibe in der koronalen Ansicht so aus, dass die Schnittebene der Achse vom Scheitelpunkt des Herzens durch die Aortenklappe folgt. Diese erste Cine-Schleife wird eine Zwei-Kammer-Ansicht des Herzens bieten.
7. Unter Bezugnahme auf die Ergebnisse aus der Zweikammeransicht wird eine neue FLASH-Sequenz entlang der Apex-Aorten-Ventilachse vorgeschrieben und ausgeführt, um eine Vierkammeransicht zu visualisieren.
8. Verschreiben Sie schließlich eine Kurzachsscheibe, die senkrecht zur Spitzenaortenklappenachse etwa auf halbem Weg durch das Herz liegt. Die Papillenmuskeln sollten an dieser Stelle innerhalb des Cine-Loop-Ausgangs deutlich sichtbar sein.
   1. Zusätzliche Slices können parallel zu diesem Slice erworben werden, um zeitsynchronisierte Volumes des Herzens zu erstellen. Diese Volumes werden durch Ververketten benachbarter Cine-Schleifen in der Nachbearbeitung erstellt.
9. Nach Abschluss der Bildgebung übertragen Sie die erfassten Daten an einen geeigneten Ort für die Analyse und entfernen Sie das Tier aus dem Scanner.