Die Autoren danken Herrn Luis F. Delgadillo (Department of Chemical and Biomolecular Engineering, Ohio University), Herrn Matthew H. Williams (Department of Chemical and Biomolecular Engineering, Ohio University) und Dr. Filiberto Cedeno-Laurent (Brigham and Women es Hospital und Harvard Medical School) für die technische Unterstützung von Experten. Die Autoren danken auch den Studenten des Winter 2011 CHE 404/BME 504 und des Herbst 2012 CHE 4830/BME 5830 (Department of Chemical and Biomolecular Engineering and Biomedical Engineering Program, Ohio University) für technische Beratung und Diskussion. Diese Arbeit wurde unterstützt durch das Major Research Instrumentation Grant CBET-1039869 (MMB), NSF CBET-1106118 (MMB), Dermatology Foundation Research Grant A050422 (SRB), National Institutes of Health (NIH) NCI Grant 1R15CA1 61830-01 (MMB), NIH Kirschstein-NRSA Postdoktorandenstipendium F32CA144219-01A1 (SRB), NIH/NCI R01CA173610 (CJD) und NIH NCCAM-Stipendium R01AT004628 (CJD).

1. Überprüfen Sie die Affinität für Protein A
<ol><li>Stellen Sie sicher, dass das Fc-exporierende Protein (rekombinantes Fusionsprotein oder IgG-Antikörper, bisher als "Protein" bezeichnet) eine akzeptable Affinität zu Protein A14-17 vor der Verwendung des Proteins A Membranadsorber hat, und testen Sie das Vorhandensein des Proteins in der Stammlösung(z. B. Zellkulturüberstand, der durch Zentrifugation bei 1.000 x g für 5 min zu einem). Verwenden Sie Durchflusszytometrie, Western Blotting, ELISA usw. Proteinfunktion und/oder Vorhandensein von Fc auf der Grundlage von Laborpräferenzen zu erkennen. Im Idealfall quantifizieren Sie das Protein in der Zellkultur Überstand (Schritt 6), um eine Überschreitung der Protein-A-Membranadsorberkapazität zu vermeiden. Fahren Sie fort, wenn Protein nachgewiesen wird.</li>
</ol>2. Bereiten Protein A Membran Adsorber und Zellkultur Supernatant
<ol><li>Befolgen Sie die Anweisungen des Herstellers zur Herstellung des Membranadsorbers. Lassen Sie niemals Luft in den Membranadsorber eindringen. Alle Lösungen, die durch den Membranadsorber durchsetzt werden, sollten bei Raumtemperatur sein und mit einem 0,22 m-Filter vorgefiltert werden. Füllen Sie eine 10 ml Spritze mit 0,22 m-gefilterter Dulbecco-Phosphat-gepufferter Saline (DPBS) oder Puffer nach Wahl und entleeren Luftblasen. Durchdringen Sie DPBS, um die Speicherlösung zu entfernen und den Membranadsorber unmittelbar vor der Anwendung auszudemt.</li>
	<li>Filtern Sie den Zellkulturüberstand unmittelbar vor der Perfusion durch den Membranadsorber, indem Sie eine vakuumgesteuerte sterile Filtrationseinheit mit 0,22 m verwenden.</li>
</ol>3. Laden Sie das Protein A Membrane Adsorber
<ol><li>Aspirieren Zellkultur Überstand in eine Luer Lock Spritze (30 ml oder größer), und entladen Alle Luftblasen.</li>
	<li>Montieren Sie Materialien und Ausrüstungen, wie in Abbildung 1dargestellt. Schließen Sie die Spritze an den Einlass des Membranadsorbers an. Befestigen Sie flexible Schläuche am Membranadsorberauslass. Legen Sie auf Wunsch einen Spritzenfilter von 0,22 m zwischen die Spritze und den Membranadsorber. Verwenden Sie einen Kolben oder eine Flasche, um den Durchfluss (auch als Filtrat bezeichnet) vom Adsorber zu fangen.</li>
	<li>Stellen Sie die Spritzenpumpe auf den gewünschten Volumendurchfluss ein, überschreiten Sie jedoch nicht den vom Hersteller empfohlenen Durchfluss(z. B. 10 ml/min). Durchdringen Sie die Zellkultur, die durch den Membranadsorber durchläuft, und sammeln Sie den Durchfluss in einem Becher oder einem anderen Behälter. Laden Sie die Spritze mit den erforderlichen Überstanden nach.</li>
	<li>Auf Wunsch testen Sie den Durchfluss auf das Vorhandensein von Protein entoverwendend, indem Sie Diedurchflusszytometrie, Western Blotting, ELISA usw.verwenden. basierend auf labor-Präferenz. Es ist in der Regel nicht erforderlich, den Durchfluss durchzuspielen.</li>
</ol>4. Elute Protein aus dem Membranadsorber
<ol><li>Waschen Sie den Membranadsorber mit 10 ml DPBS, um alle nicht gebundenen Proteine zu entfernen.</li>
	<li>Elute-Protein aus dem Membranadsorber bei der gewünschten Durchflussrate(z.B. 1 ml/min) mit 10-15 ml Elutionspuffer(z.B. Amin-basierter Elutionspuffer (pH 2,8)). Fangen Sie eluat in einem Rohr mit Neutralisationspuffer(z. B. 1 M Tris (pH 9.4)) bei 10% des Elutionsvolumens (1,0-1,5 ml).</li>
	<li>Alternativ wird elute Protein in einem ml in Tuben mit einem Neutralisationspuffer von 100 l mit einem Gesamtvolumen von 10-15 ml Elutionspuffer erhöht. Verwenden Sie die bevorzugte Charakterisierungsmethode, um jede Fraktion auf das Vorhandensein von Protein zu testen.</li>
	<li>Regenerieren Sie den Membranadsorber gemäß den Anweisungen des Herstellers. Durchdringen Sie 10 ml 0,22 m-gefilterte DPBS oder Puffer nach Wahl, dann 10 ml 0,22 m-gefilterte 50 mM NaOH in 1 N NaCl und schließlich 10 ml 0,22 m-gefiltertes DPBS. Füllen Sie den Membranadsorber mit 20% Ethanol in DPBS für die Langzeitlagerung bei 4 oC.</li>
</ol>5. Konzentrieren und Dialyse das Protein
<ol><li>Legen Sie alle Eluate (oder Elutionsfraktionen, die Protein enthalten, wie in Schritt 4.3 bestimmt) in einer 10 kDa Molekulargewichts-Trennzentrifugalfiltereinheit abzulegen. Befolgen Sie die Anweisungen des Herstellers für die Zentrifugation.</li>
	<li>Dialysieren Sie das Retentat in einer dialysatenkleinen Dialyseeinheit (10 kDa Molekulargewichtsabschaltung) nach den Anweisungen des Herstellers gegen den Puffer der Wahl. Wenn die Proteinfällung anlasse, muss dem Dialysematerial ein Puffer hinzugefügt werden. Auf Wunsch kann das Dialysematerial bis Schritt 6 gekühlt werden, eine Langzeitlagerung ohne Konservierungsstoffe wird jedoch nicht empfohlen.</li>
</ol>6. Quantifizieren und Charakterisieren von gereinigtem Produkt in einem beschleunigten Western Blotting-Verfahren
<ol><li>Lösen Sie gereinigte Protein- und Fc-Standards auf dem Gel der Wahl von SDS-PAGE, unter reduzierenden oder nicht reduzierenden Bedingungen wie gewünscht18-20. Verwenden Sie ein Mini-Gel anstelle von Midi-Gel, um die Laufzeit zu minimieren.<ol>
<li>Wenn nicht bereits bekannt, bestimmen Sie den Fc-Normbereich, über den das Bandsignal in Bezug auf die Menge der geladenen(z. B. 0,1-1 mg) linear variiert. Verwenden Sie das gleiche Gel, Laufbedingungen, Transferbedingungen und Reagenzien, die verwendet werden, um gereinigtes Protein zu quantifizieren und zu charakterisieren.</li>
			<li>Laden Sie mehrere Probenmengen an gereinigtem Protein, einschließlich probenverdünnt mit DPBS, um sicherzustellen, dass die gereinigten Proteinbandsignale innerhalb des linearen Signalbereichs der Fc-Standards in der Bildanalyse liegen.</li>
		</ol>
</li>
	<li>Übertragen Sie Proteine aus dem Gel auf eine Polyvinylidenfluorid-Membran (PVDF) in einem diskontinuierlichen Puffersystem mit einem semidry blotter13, entsprechend den Anweisungen des Blotterherstellers. Die Transferzeit beträgt in der Regel 5-10 min. Wenn gewünscht, Coomassie Färben sie das Gel nach der Übertragung, um Transfer-Effizienz zu überprüfen21.</li>
	<li>Durchführung von Immunoblotting mit Anti-Fc oder Anti-IgG konjugiert zu alkalischer Phosphatase (AP) oder Pferderettichperoxidase (HRP), basierend auf Laborpräferenz, mit einem vakuumunterstützten Proteinnachweissystem. Immunoblotting Zeit ist in der Regel weniger als 1 Stunde.</li>
	<li>Entwickeln Sie Immunoblot mit dem Substrat und der Methode ihrer Wahl(z. B. AP-Substrat und verbesserte Chemilumineszenz).</li>
	<li>Quantifizieren Sie gereinigtes Protein durch Bildanalyse. Führen Sie eine lineare Regression der Bandsignale von Fc-Standards durch. WennR2>0,90, verwenden Sie die Gleichung für die Linie, um die Proteinmenge aus ihren Bandsignalen zu berechnen. Ggf. Berücksichtigung der Probenverdünnung. Da die Quantifizierung des Proteins auf Basis von Fc erfolgt, passen Sie den Wert für molekulare Gewichtsunterschiede zwischen dem Protein und Fc an. WennR2<0,90, wiederholen Sie Schritt 6 in seiner Gesamtheit.</li>
	<li>Validieren Sie Protein emittiert mit funktionellen Assays oder Methoden, um Fc über Durchflusszytometrie, Western Blotting, ELISA usw.zu erkennen. basierend auf labor-Präferenz.</li>
	<li>Protein auf die gewünschte Konzentration verdünnen und/oder gewünschte Konservierungsstoffe oder Stabilisatoren in die gereinigte Proteinlösung geben, bevor es für eine langfristige Lagerung, gefroren oder auf andere Weise aliquotiert wird.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Gagnon, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Technology+trends+in+antibody+purification.">Technology trends in antibody purification.</a> J. Chromatogr. A. 1221, 57-70 (2012).</li><li>Gottschalk, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bioseparation+in+antibody+manufacturing:+The+good,+the+bad+and+the+ugly.">Bioseparation in antibody manufacturing: The good, the bad and the ugly.</a> Biotechnol. Prog. 24, 496-503 (2008).</li><li>Liu, H. 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Biol. 681, 369-382 (2011).</li><li>Hjelm, H., Hjelm, K., Sjoquist, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protein+a+from+staphylococcus+aureus.+Its+isolation+by+affinity+chromatography+and+its+use+as+an+immunosorbent+for+isolation+of+immunoglobulins.">Protein a from staphylococcus aureus. Its isolation by affinity chromatography and its use as an immunosorbent for isolation of immunoglobulins.</a> FEBS Lett. 28, 73-76 (1972).</li><li>Hober, S., Nord, K., Linhult, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protein+a+chromatography+for+antibody+purification.">Protein a chromatography for antibody purification.</a> J. Chromatogr. B Analyt. Technol. Biomed. 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K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cleavage+of+structural+proteins+during+the+assembly+of+the+head+of+bacteriophage+t4.">Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage t4.</a> Nature. 227, 680-685 (1970).</li><li>Towbin, H., Staehelin, T., Gordon, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrophoretic+transfer+of+proteins+from+polyacrylamide+gels+to+nitrocellulose+sheets:+Procedure+and+some+applications.">Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: Procedure and some applications.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 76, 4350-4354 (1979).</li><li>Reisner, A. H., Nemes, P., Bucholtz, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+use+of+Coomassie+brilliant+blue+g250+perchloric+acid+solution+for+staining+in+electrophoresis+and+isoelectric+focusing+on+polyacrylamide+gels.">The use of Coomassie brilliant blue g250 perchloric acid solution for staining in electrophoresis and isoelectric focusing on polyacrylamide gels.</a> Anal. Biochem. 64, 509-516 (1975).</li><li>Cedeno-Laurent, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Metabolic+inhibition+of+galectin-1-binding+carbohydrates+accentuates+antitumor+immunity.">Metabolic inhibition of galectin-1-binding carbohydrates accentuates antitumor immunity.</a> J. Invest. Dermatol. 132, 410-420 (2012).</li><li>Bradford, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+rapid+and+sensitive+method+for+the+quantitation+of+microgram+quantities+of+protein+utilizing+the+principle+of+protein-dye+binding.">A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding.</a> Anal. Biochem. 72, 248-254 (1976).</li><li>Desjardins, P., Hansen, J. B., Allen, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microvolume+Protein+Concentration+Determination+using+the+NanoDrop+2000c+Spectrophotometer.">Microvolume Protein Concentration Determination using the NanoDrop 2000c Spectrophotometer.</a> J. Vis. Exp. (33), (2009).</li><li>Ernst, O., Zor, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Linearization+of+the+Bradford+Protein+Assay.">Linearization of the Bradford Protein Assay.</a> J. Vis. Exp. (38), (2010).</li><li>Simonian, M. H., Smith, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spectrophotometric+and+colorimetric+determination+of+protein+concentration.">Spectrophotometric and colorimetric determination of protein concentration.</a> Curr. Protoc. Mol. Biol. Chapter. 10, 10-1002 (2006).</li><li>Smith, P. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+protein+using+bicinchoninic+acid.">Measurement of protein using bicinchoninic acid.</a> Anal. Biochem. 150, 76-85 (1985).</li><li>Gravel, C., Li, C., Wang, J., Hashem, A. M., Jaentschke, B., Van Domselaar, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+Analyses+of+all+Influenza+Type+A+Viral+Hemagglutinins+and+Neuraminidases+using+Universal+Antibodies+in+Simple+Slot+Blot+Assays.">Quantitative Analyses of all Influenza Type A Viral Hemagglutinins and Neuraminidases using Universal Antibodies in Simple Slot Blot Assays.</a> J. Vis. Exp. (50), (2011).</li></ol>

Es gibt nichts zu verraten.

Das hier beschriebene Protokoll wurde entwickelt, um ein chimäres Fusionsprotein, das den menschlichen Fc (Gal-1hFc) exzeichnet, schnell zu isolieren und zu charakterisieren, ohne die Produktrückgewinnung oder die Aufblähungskosten erheblich zu beeinträchtigen. Die wichtigsten Komponenten des optimierten Workflows sind ein Protein-A-Membranadsorber für die Isolierung sowie semidry transfer und vakuumunterstütztes Immunoblotting zur Charakterisierung durch Western Blotting.
Die dramatisc...

Die Isolierung von Antikörpern und rekombinanten Proteinen, die Immunglobulin G (IgG) fc-Fragmente aus Zellkulturüberstand und verdünnten lysierten Zelllösungen exemitzenen, kann mit Hilfe der Protein-A-Affinitätschromatographie erreicht werden. In wissenschaftlichen und technischen Grundlagenlaboren und der Industrie werden Säulen, die mit porösem Protein A-beschichteter Agarose, Glas oder Polymerperlen verpackt sind, am häufigsten für die Affinitätschromatographie verwendet, trotz hoher finanzieller Kosten und langer Verarbeitungszeiten1-3. Es ist sehr zu schätzen, dass die Affinitätschromatographie den größten Aufwands- und Verarbeitungsengpass sowohl im Labor als auch in der Industrie darstellt2,4. Als Ergebnis wurden zahlreiche Verbesserungen entwickelt, um Kosten und Verarbeitungszeit zu senken, ohne die gesamte Produktrückgewinnung aus dem Prozesszug1,2,5-7zu opfern. Besonders vielversprechend für die Isolierung von Antikörpern und anderen Fc-exemittierenden Proteinen ist die Affinitätschromatographie mit einem Protein A Membranadsorber2,5,7-10. Während die Fc-Capture in der Säulenchromatographie diffusionsbegrenzt ist(d.h. das Fc-extierende Protein muss in und durch die inneren Poren diffundieren, um den Großteil des Proteins A zu erreichen) mit hohem Druckabfall über die Säule, wird der Massentransport in Membranadsorbern durch Massenkonvektion angetrieben, was zur Vermeidung von Diffusionsbeschränkungen8,9,11,12führt. Darüber hinaus ist der Druckabfall über den Membranadsorber gering, was eine schnellere Durchblutung im Vergleich zu perlenverpackten Säulen8,9,11,12ermöglicht. Daher wird für die Isolierung von Laborskalen prognostiziert, dass die Membranchromatographie die Isolationszeit um mehrere Stunden reduziert und die Produkterfassung im Vergleich zur Säulenchromatographie erhöht. Darüber hinaus wurden mathematische Modelle für die IgG-Adsorption in Membranadsorbern8,9,11,12vorgeschlagen, so dass Endbenutzer die Leistung im Labor vorhersagen können.
Ein weiterer Engpass in wissenschaftlichen und technischen Grundlagenlaboren ist die Charakterisierung des Fc-exemittigen Proteins. Die Auswahl geeigneter Methoden zum Abschließen von Charakterisierungstests, wie westlichen Flecken, kann jedoch den Zeitaufwand für Produkttests erheblich reduzieren. Zum Beispiel kann die semitrockene Übertragung in einem diskontinuierlichen Puffersystem den elektrophoretischen Transfer von Proteinen von einem SDS-PAGE-Gel auf eine Polyvinyldifluoridin -Membran (PVDF) in wenigen Minuten erreichen, im Gegensatz zu 1-2 Stunden im Tank (Nasstransfer) in einem kontinuierlichen Puffersystem13.
Ein schnelles, kostengünstiges und effektives Protokoll zur Isolierung und Charakterisierung eines chimerischen Fusionsproteins, das ein Fc-Fragment menschlichen IgG ausdrückt, wird hierin beschrieben. Die meisten Geräte sind in grundlegenden biomedizinischen Grundlagen, Biologie, Chemie und (Bio-)Chemie-Engineering-Labors leicht verfügbar, und alle Reagenzien sind im Handel erhältlich. Obwohl repräsentative Ergebnisse aus der Isolierung und Charakterisierung eines murinen Galectin-1/menschlichen Fc chimeric Fusion Protein (Gal-1hFc) generiert wurden, kann das gestraffte Protokoll auf die Isolierung anderer Moleküle angewendet werden, die ein Fc-Fragment besitzen, wie Antikörper, Fc-Fragmente selbst oder andere Fc-Fusionsproteine. Unsere Verbesserungen verringerten die Verarbeitungszeit drastisch (nur 4 Stunden, aber in der Regel 9 Stunden, im Vergleich zu 20+ Arbeitsstunden) und erreichten gleichzeitig eine ähnliche oder verbesserte Produktwiederherstellung im Vergleich zu Standardmethoden.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="822">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:313px;">Protein A membrane adsorber (Sartobind Protein A 2 ml)&#160;</td>
			<td style="width:191px;">Sartorius-Stedim</td>
			<td style="width:147px;">93PRAP06HB-12--A</td>
			<td style="width:173px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Amicon Ultra centrifugal filter, 10 kDa, 4 ml</td>
			<td style="width:191px;">Millipore</td>
			<td>UFC801008</td>
			<td>Use 15 ml volume if needed</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Sterile vacuum filter unit, 0.22 &#181;m, 500 ml</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>SCGPU05RE</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">10 ml Syringes with Luer Lock tips</td>
			<td>BD</td>
			<td>301604</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">30 ml Syringes with&#160; Luer Lock tips</td>
			<td>BD</td>
			<td>309650</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Tygon lab tubing (1/16 in x 1/8 in x 50 ft)</td>
			<td>Cole Parmer</td>
			<td>WU-95903-16</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:313px;">Slide-A-Lyzer MINI Dialysis Devices (10K MWCO)</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>69576</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Snap i.d. antibody collection tray</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>WBAVDABTR</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Snap i.d. single well blot holder</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>WBAVDBH01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Elution buffer</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>21004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Tris, ultra pure</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>819623</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Sodium chloride</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>7647-14-5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Tween 20</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP337-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">DPBS</td>
			<td>Thermo Scientific&#160;</td>
			<td>SH30028.02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;width:313px;">DPBS with Ca2+/Mg2+</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>14080-055</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">BSA</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A9647</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Human Fc</td>
			<td>Bethyl Research Laboratories</td>
			<td>&#160;P80-104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Anti-human Fc-APC</td>
			<td>Jackson Immunoresearch</td>
			<td>109136170</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Anti-human Fc-AP</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>170-5018</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Alkaline phosphatase substrate</td>
			<td>Promega</td>
			<td style="width:147px;">S3841</td>
			<td style="width:173px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:313px;">Flow cytometry tubes (5 ml polystyrene or polypropylene)</td>
			<td>BD</td>
			<td>352054</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;"></td>
			<td style="width:191px;"></td>
			<td style="width:147px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:313px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:191px;">Company</td>
			<td style="width:147px;">Catalog Number</td>
			<td>Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Syringe pump</td>
			<td>Harvard Apparatus</td>
			<td>55-2226</td>
			<td style="width:173px;">A peristaltic pump is also acceptable</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;">Protein gel electrophoresis system&#160;</td>
			<td>Bio-Rad Laboratories</td>
			<td>552BR094876</td>
			<td style="width:173px;">Any gel electrophoresis system is acceptable, but mini gel systems run fastest</td>
		</tr>
		<tr height="126">
			<td height="126" style="height:126px;">Semidry blotter&#160;</td>
			<td>Bio-Rad Laboratories</td>
			<td style="width:147px;">690BR006163</td>
			<td style="width:173px;">Any transfer system is acceptable, but discontinuos transfer systems perform electrophoretic transfer fastest</td>
		</tr>
		<tr height="84">
			<td height="84" style="height:84px;width:313px;">SNAP i.d. vacuum-assisted protein detection system</td>
			<td style="width:191px;">EMD Millipore</td>
			<td>WBAVDBASE</td>
			<td style="width:173px;">An upgraded model has replaced this specific instrument, but either should work just as well</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

isolation and characterization of chimeric human fc-expressing proteins using protein a membrane adsorbers and a streamlined workflow

Laborwaage numerativ zur industriellen Reinigung von Biomolekülen aus Zellkulturüberstand und Lysed-Zell-Lösungen kann mit Affinitätschromatographie durchgeführt werden. Während die Affinitätschromatographie mit porösem Protein A AgarosePerlen, die in Säulen verpackt sind, wohl die häufigste Methode zur Isolierung von Antikörpern und rekombinanten Proteinen im Labor maßstabsgetreu ist, die Fc-Fragmente von IgG exdrücken, kann es ein zeitaufwändiger und teurer Prozess sein. Zeit- und Finanzzwänge sind besonders beängstigend in kleinen wissenschaftlichen Grundlagenlabors, die Hunderte von Mikrogramm bis Milligramm Proteinmengen aus verdünnten Lösungen zurückgewinnen müssen, aber keinen Zugang zu Hochdruck-Flüssigkeitsabgabesystemen und/oder Personal mit Expertise in Bioseparationen haben. Darüber hinaus kann die Produktquantifizierung und -charakterisierung auch die Bearbeitungszeit über mehrere Arbeitstage hinaus übermäßig verlängern und die Ausgaben (Verbrauchsmaterialien, Löhne usw.)aufblähen. Daher ist ein schnelles, kostengünstiges und dennoch effektives Protokoll für die Isolierung und Charakterisierung von Antikörpern und anderen Proteinen, die ein Fc-Fragment besitzen, erforderlich. Zu diesem Zweck haben wir ein Protokoll entwickelt, das von technischem Personal mit begrenzter Erfahrung in weniger als 9 Stunden (ungefähr einen Arbeitstag) und bis zu 4 Stunden abgeschlossen werden kann, im Gegensatz zu herkömmlichen Methoden, die mehr als 20 Arbeitsstunden erfordern. Die meisten benötigten Geräte sind in standardbiomedizinischen, biochemischen und (bio-)chemischen Engineering-Labors leicht verfügbar, und alle Reagenzien sind im Handel erhältlich. Um dieses Protokoll zu demonstrieren, werden repräsentative Ergebnisse präsentiert, in denen chimäres murinisches Galant-1 mit dem menschlichen Fc (Gal-1hFc) aus Zellkulturüberstand verschmolzen wurde, mit einem Protein-A-Membranadsorber isoliert wurde. Gereinigte Gal-1hFc wurde mit einem beschleunigten Western Blotting-Analyseverfahren quantifiziert und mit Durchflusszytometrie charakterisiert. Der optimierte Workflow kann für andere Fc-exzessiven Proteine, wie Antikörper, geändert und/oder geändert werden, um alternative Quantifizierungs- und Charakterisierungsmethoden zu integrieren.

Das gestraffte Protokoll zur Isolierung und Charakterisierung von Fc-exezierenden Proteinen wird routinemäßig verwendet, um charisch-murines Galectin-1 mit dem menschlichen Fc (Gal-1hFc) aus verdünnten Zellkultur-Übertreibmitteln zu verarbeiten. Das Flussdiagramm in Abbildung 2 veranschaulicht den Workflow und die Zeit für jeden Schritt im Protokoll. Bei einer typischen Charge von 300 ml Überstand beträgt die Gesamtverarbeitungszeit ca. 9 Stunden, wenn die optionale Durchflusszytometrieprüfung vo...

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Isolation and Characterization Of Chimeric Human Fc-expressing Proteins Using Protein A Membrane Adsorbers And A Streamlined Workflow

Im Vergleich zur traditionellen Affinitätschromatographie mit Protein A Agarose Perlen-verpackten Säulen können Protein-A-Membranadsorber die Isolation von Antikörpern und anderen Fc-Fragment-exemittierenden Proteinen im Labormaßstab erheblich beschleunigen. Geeignete Analyse- und Quantifizierungsmethoden können die Proteinverarbeitung weiter beschleunigen, so dass die Isolierung/Charakterisierung an einem Werktag statt an mehr als 20 Arbeitsstunden abgeschlossen werden kann.

Isolation und Charakterisierung von chimeric Human Fc-expressing Proteins Using Protein A Membrane Adsorbers And A Streamlined Workflow

Laboratory scale to industrial scale purification of biomolecules from cell culture supernatants and lysed cell solutions can be accomplished using ...

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Bioengineering

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